CN108186617A - 香叶醇及其衍生物在制备mrsa感染性疾病药物中的新用途 - Google Patents

Abstract

本发明提供了香叶醇或其衍生物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途。本发明还提供了一种治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物组合物。本发明最后提供了一种治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的联合用药物，它含有相同或不同规格单位制剂的用于同时或者分别给药的香叶醇和治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物。本发明香叶醇或其衍生物为天然药物，单用能有效抑制MRSA的生长或杀灭MRSA，能缓解MRSA感染引起的氧化应激及炎症反应，可用于治疗葡萄球菌感染性疾病；同时联合β‑内酰胺类抗生素能显著增强抗MRSA的活性，具有良好的协同增效作用；将本发明药物制备成治疗MRSA感染药物，临床应用前景良好。

Description

香叶醇及其衍生物在制备MRSA感染性疾病药物中的新用途

技术领域

本发明涉及香叶醇及其衍生物的新用途，具体地，是在制备治疗葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途。

背景技术

耐甲氧西林金葡菌(methicillin-resistant Staphylococcus aureus, MRSA)被称作“超级病菌”，自1961年在英国被首次发现以来，即以惊人的速度在世界范围内蔓延，目前MRSA感染已超过艾滋病、结核和病毒性肝炎成为患者首位致死病因，严重威胁公共卫生安全。虽然利奈唑胺、达托霉素、头孢洛林、奥利万星、达巴万星、磷酸泰地唑胺等新药陆续获得FDA批准用于MRSA的治疗，但近年来临床上已发现上述药物的耐药菌株，并且分得的几率逐渐增加，故新型抗 MRSA＝感染药物的研发显得尤为迫切。

香叶醇(反-3,7-二甲基-2,6-辛二烯-1-醇)，又名“牻牛儿醇”是一种单萜烯醇，橙花醇的顺式异构体，比重0.883～0.886，折光率nD 201.4766，沸点230℃，能溶于醇、醚。香叶醇天然存在于牦牛儿苗科天竺葵属天竺葵、禾水科香茅属芸香草、樟科木姜子属山鸡椒的果实山仓苍子、禾本科香茅、蔷薇科蔷薇属玫瑰的花和掌瑰等250多种植物中。

香叶醇具有抗细菌、抗霉菌、杀虫、抗肿瘤、逆转细菌耐药性和免疫调节等广泛的药理活性。代敏等，“香叶醇治疗小鼠白假丝酵母菌阴道炎的疗效研究”中成药2013年第9期公开了香叶醇对白假丝酵母菌有较强的抗菌活性。余伯良等，“山苍子油抗霉菌及抑制黄曲霉产毒的有效成分研究”，四川轻化工学院学报2002年第1期公开了香叶醇对曲霉属中的黄曲霉、黑曲霉、杂色曲霉均有较强的抗菌作用。

发明内容

本发明的技术方案提供了香叶醇或其衍生物的用途。

本发明提供了香叶醇或其衍生物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途。

其中，所述耐药葡萄球菌为耐甲氧西林葡萄球菌。

其中，所述耐甲氧西林葡萄球菌为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌；优选地，所述耐甲氧西林金黄色葡萄球菌为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC43300或耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC33591。

其中，所述的药物是抑制耐药葡萄球菌生长或杀灭耐药葡萄球菌的药物。

本发明还提供了一种治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物，它是由香叶醇或其衍生物为活性成分，加上药学上可接受的辅料或辅助性成分制备而成的制剂。

其中，所述制剂为注射制剂或口服制剂。

本发明还提供了一种治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的联合用药物，它含有相同或不同规格单位制剂的用于同时或者分别给药的香叶醇和治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物，以及药学上可接受的载体。

其中，所述治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物包括β-内酰胺类抗生素。

其中，述的β-内酰胺类抗生素包括阿莫西林、头孢氨苄、头孢吡肟等。

其中，它是由下述重量配比的原料药制备而成的制剂：

香叶醇0.1～0.9份、β-内酰胺类抗生素0.1～0.9份。

本发明提供了前述的药物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途；优选地，所述耐药葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病；更优选地，所述的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC43300或耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC33591感染性疾病。

本发明最后提供了前述的联合用药物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途；优选地，所述耐药葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病；更优选地，所述的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 ATCC43300或耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC33591感染性疾病。

本发明香叶醇或其衍生物为天然药物，单用能有效抑制MRSA 的生长或杀灭MRSA，能缓解MRSA感染引起的氧化应激及炎症反应，可用于治疗葡萄球菌感染性疾病；同时联合β-内酰胺类抗生素能显著增强抗MRSA的活性，具有良好的协同增效作用；将本发明药物制备成治疗MRSA感染药物，临床应用前景良好。

显然，根据本发明的上述内容，按照本领域的普通技术知识和惯用手段，在不脱离本发明上述基本技术思想前提下，还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。

以下通过实施例形式的具体实施方式，对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。

附图说明

图1发明药对MRSA生长曲线的影响；注：A.空白对照组，B.发明药1组(1/8MIC)，C.发明药2组(1/4 MIC)，D.发明药3组(1/2MIC)， E.发明药4组(3/4 MIC)；

图2发明药对MRSA超微结构的影响；注：A.空白对照组；B.溶剂对照组(Tween-80)，C.发明药1组(2MIC处理2h)，D.发明药2 组(4 MIC处理2h)；

图3发明药对MRSA感染小鼠炎性细胞因子的影响；注：B.空白组， N.模型组，P.阳性药物组，H.发明药高剂量组，M.发明药中剂量组， L.发明药低剂量组。与空白组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与模型组比较，^ΔP＜0.05，^ΔΔP＜0.01；与阳性组比较，^#P＜0.05，^##P＜0.01；

图4发明药对MRSA感染小鼠氧化因子的影响；注：B.空白组， N.模型组，P.阳性药物组，H.发明药高剂量组，M.发明药中剂量组， L.发明药低剂量组。与空白组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与模型组比较，^ΔP＜0.05，^ΔΔP＜0.01；与阳性组比较，^#P＜0.05，^##P＜0.01；

图5MRSA感染小鼠肺组织的病理变化；注：a.空白组，b.模型组；

图6MRSA感染小鼠肝组织的病理变化；注：a.空白组，b.模型组；

图7MRSA感染小鼠肾组织的病理变化；注：a.空白组，b.模型组；

图8发明药对MRSA感染小鼠肺组织的病理影响；注：a.空白组， b.模型组，c.阳性药物组，d.发明药组。

具体实施方式

实施例1香叶醇及与β-内酰胺类抗生素联用体外抗MRSA活性研究

1实验材料

1.1实验菌株

标准株：耐甲氧西林金黄色葡萄球菌MRSA标准株ATCC43300 和ATCC33591，购自美国典型菌种保藏中心。

临床分离株：30株MRSA临床分离株，来源于四川省妇幼保健院，经VITEK32、16srRNA鉴定为金黄色葡萄球菌，经头孢西丁抗菌药物敏感试验和mecA基因鉴定为MRSA，菌株来源和编号见表1。

表1：受试菌株的编号和来源

1.2药物

实验药物：发明药香叶醇(Geraniol)，Sigma-aldrich，批号 MKBQ1662V。

抗生素：阿莫西林(Amoxicillin hydrochloride trihydrate)，批号B326BA3634，生工生物工程(上海)股份有限公司；头孢氨苄(Cephalexin monohydrate)，批号BA14BA0016，生工生物工程(上海)股份有限公司；头孢吡肟(cefepime)，批号RK9Y-DN25，中国食品药品检定研究院。

1.3培养基

MUELLER-HINTON BROTH(MHB)，批号583507，英国OXOID 公司；MUELLER-HINTONAGAR(MHA)，批号1376993，英国 OXOID公司；营养琼脂，批号20150810，北京奥博星生物技术有限责任公司。

1.4主要试剂

Tween-80，批号20150429，国药集团化学试剂有限公司；麦氏比浊管，bioMerieuxSA公司。

1.5主要仪器

生物安全柜(BIOsafe12)，上海力申科学仪器有限公司；全自动高压灭菌锅(HICLAVE HVE-50)，HIRAYAMA公司；隔水式恒温培养箱，上海一恒科学仪器有限公司；电热鼓风干燥箱 (GZX-9240MBE)，上海博迅实业有限公司医疗设备厂；优普 UPH-II-10T纯水系统；分析天平(ME104)，METTLER TOLEDO公司；Varioskan Flash光谱扫描多模板读数器，Thermo Fisher Scientific 公司；BA200 Digital数码三目摄像显微摄像系统，麦克奥迪实业集团有限公司；Tecnai G2 F20，FEI公司。

2实验方法

2.1发明药体外抗MRSA活性

2.1.1菌液制备

活化各受试菌，挑取单克隆菌落于0.9％生理盐水中，将菌液配置成0.5麦氏浓度(1.5×10⁸CFU/ml)，后用无菌MHB培养液稀释50 倍备用。

2.1.2药液配制

以Tween-80为乳化剂，制备发明药；以无菌水为溶剂，将β-内酰胺类抗生素(阿莫西林、头孢氨苄和头孢吡肟)配制成浓度为4096 μg/ml的母液，4℃冰箱保存备用。采用二倍稀释法分别对发明药和抗生素母液进行系列稀释，共稀释成12个不同浓度梯度的稀释液，用于测定MIC、MBC和FIC。

2.1.3最低抑菌浓度(MIC)测定

微量稀释法测定发明药和β-内酰胺类抗生素(阿莫西林、头孢氨苄和头孢吡肟)的MIC。具体方法如下：在96-孔板每孔中依次加入 MHB培养液、稀释药液和受试菌液，使发明药的终浓度为43.9mg/ml ～0.021mg/ml，抗生素的终浓度为2048μg/ml～1μg/ml，37℃恒温培养18h，观察受试菌的生长情况，以抑制受试菌生长的最低药物浓度为该菌的MIC值。以不加药物为受试菌阳性对照，以不加菌液为药物阴性对照，以仅含培养液不含药液和菌液为空白对照。每株受试菌进行三个平行实验，实验重复三次。

2.1.4最低杀菌浓度(MBC)测定

药液稀释和菌液配制同MIC测定。

MBC测定：按照MIC值测定方法，将培养基、受试菌株及受试药物加入96-孔板中，37℃培养18h，将未见细菌生长培养孔中的肉汤接种于MHA琼脂平板上，37℃培养18h，观察生长情况，以未见菌落生长的最低药物浓度为该药物的MBC。以不加药物为受试菌阳性对照，以不加菌液为药物阴性对照，以仅含培养液不含空白药液和菌液为空白对照。每株受试菌进行三个平行实验，实验重复三次。

2.2发明药增强β-内酰胺类抗生素抗MRSA体外活性

药液稀释和菌液制备同MIC测定。

部分抑菌浓度(fractional inhibitory concentration，FIC)指数测定：根据发明药(甲药)和β-内酰胺类抗生素(以阿莫西林、头孢氨苄和头孢吡肟为代表药)(乙药)的MIC，将甲药和乙药分别进行倍比稀释，使其终浓度为2MIC～1/16MIC，棋盘法测定甲、乙两药联合用药的MIC。即在96孔板中分别加入甲药、乙药和受试菌液，37℃培养18h，观察结果，判定甲、乙两药联合用药的MIC。以不加药物为受试菌阳性对照，以不加菌液为药物阴性对照，以仅含培养液不含药物和菌液的为空白对照。每株受试菌进行三个平行实验，实验重复三次。

数据统计与分析：FIC＝甲药联用的MIC/甲药单用的MIC+ 乙药联用的MIC/乙药单用的MIC)。其中FIC≤0.5为协同作用， 0.5<FIC≤1为相加作用，1<FIC≤2为无关作用，FIC>2为拮抗作用。

3实验结果

3.1发明药体外抗MRSA活性

微量稀释法测定了发明药和β-内酰胺类抗生素(阿莫西林、头孢氨苄和头孢吡肟)抗MRSA的MIC和MBC，结果见表2。

表2：发明药和3种β-内酰胺类抗生素抗MRSA体外活性

由表2可知，MRSA受试菌对临床常用3种β-内酰胺类抗生素 (阿莫西林、头孢氨苄、头孢吡肟)的MIC值分别为4μg/ml～256 μg/ml、16μg/ml～1024μg/ml、4μg/ml～1024μg/ml，MBC分别为 128μg/ml～1024μg/ml、128μg/ml～1024μg/ml、64μg/ml～1024 μg/ml。发明药对MRSA临床分离株具有明显体外活性，其MIC值为 0.34mg/ml～0.69mg/ml，MBC为0.69mg/ml～10.76mg/ml。

3.2发明药与β-内酰胺类抗生素联合使用抗MRSA活性

棋盘法测定了发明药与β-内酰胺类抗生素联合使用体外抗 MRSA活性，分析FIC指数及其相互作用，结果见表3；统计分析β- 内酰胺类抗生素单用和联合发明药使用，MIC50和MIC90的变化，结果见表4。

表3：发明药与β-内酰胺类抗生素联合使用的相互作用

由表3可知，发明药与3种β-内酰胺类抗生素联合使用时，具有协同增效的效果，例如：对耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC43300 和ATCC33591有协同作用。

表4：发明药增强β-内酰胺类抗生素活性

由表4可知，发明药与β-内酰胺类抗生素联合使用后，阿莫西林、头孢氨苄、头孢吡肟的MIC₅₀、MIC₉₀均有明显降低，发明药自身的活性也明显增强。说明发明药在防治MRSA感染性疾病中，可有效降低β-内酰胺类抗生素的用量，分别为单独使用的1/8～1/4和1/4～1/2，增强其抗MRSA活性。

由上述结果可知：发明药香叶醇体外具有较强抗MRSA活性，还具有增强β-内酰胺类抗生素抗MRSA活性。发明药低浓度可延长 MRSA生长迟缓期，降低细菌生长总量，达到抑制作用；高浓度可破坏细胞超微结构(细胞膜、细胞壁和胞质)，胞质内容物渗漏，达到杀灭作用；发明药对MRSA的抑制和杀灭作用均呈明显量效关系。

实施例2香叶醇体内抗MRSA感染疗效研究

1实验材料

1.1实验菌株

标准株：耐甲氧西林金黄色葡萄球菌MRSA标准株ATCC43300，购自美国典型菌种保藏中心。

1.2药物

实验药物：发明药香叶醇(Geraniol)，Sigma-aldrich，批号 MKBQ1662V。

阳性药物：Vancomycin，Sigma公司。

1.3实验动物

KM小鼠，SPF级，雌雄各半，体重(20±2)g，四川省成都生物制品研究所有限责任公司提供，动物生产许可证号SCXK(川) 2016-08。

1.4培养基

MUELLER-HINTON BROTH(MHB)，批号583507，英国OXOID 公司；MUELLER-HINTONAGAR(MHA)，批号1376993，英国 OXOID公司；营养琼脂，批号20150810，北京奥博星生物技术有限责任公司。

2实验方法

2.1 MRSA感染小鼠模型制备

MRSA毒力测定：KM小鼠(SPF级)适应性饲喂后，按体重将随机分为空白组和5个模型组，每组10只。37℃恒温培养MRSA标准株ATCC43300至对数期，用生理盐水将菌液稀释成五个不同浓度梯度，腹腔注射小鼠。在空白组小鼠不死亡的前提下，记录各模型组小鼠72h内的死亡率，测定SPF小鼠全部死亡的最低细菌量，即为 ATCC43300的最小全死量(Minimumlethal dose,MLD)。

MRSA感染模型小鼠制备：以MLD菌液腹腔注射KM小鼠(SPF 级)，制备MRSA感染小鼠模型。

2.2实验分组及给药

肌内注射：KM小鼠(SPF级)适应性饲喂后，按体重随机分为 11组，即空白组，模型组，阳性组，实验1、2、3、4、5、6、7、8 共8个剂量组，每组10只。其中空白组和模型组肌内注射生理盐水，阳性组肌内注射万古霉素，实验组分别按不同剂量注射发明药(给药剂量详见表5)，1次/d，连续给药3d。除空白组不感染MRSA外，其余各组小鼠均在给药第3d后，用MRSA的MLD菌液量腹腔注射小鼠，观察小鼠攻毒感染后7d的存活情况。

灌胃：KM小鼠(SPF级)适应性饲喂后，按体重随机分为10 组，即空白组，模型组，阳性组，实验1、2、3、4、5、6、7共7个剂量组，每组小鼠10只。其中空白组和模型组灌胃生理盐水，阳性组灌胃万古霉素，实验组分别按不同剂量灌胃发明药(给药剂量详见表6)，1次/d，连续给药3d。除空白组不攻毒外，其余各组小鼠均在给药第3d后，用MRSA的MLD菌液量腹腔注射小鼠，观察小鼠攻毒感染后7d的存活情况。

数据统计与分析：统计小鼠感染MRSA后7d内的存活情况，分析发明药对MRSA感染模型小鼠的体内保护率；寇氏法统计分析发明药肌内注射和灌胃给药的半数有效量(50％effective dose,ED₅₀)。

3实验结果

3.1发明药肌内注射抗MRSA感染疗效

采用预防给药方式，用发明药肌内注射小鼠，即1次/d，连续给药3d，最后一次给药后用MRSA攻毒感染，观察小鼠感染后7d的存活情况，结果见表5。

表5：发明药肌内注射抗MRSA感染疗效

由上表可知，发明药肌内注射预防给药，对由MRSA诱导感染模型小鼠有很好的体内抗感染疗效，并呈明显量效关系，具有与阳性药物万古霉素相似的作用。其中用0.149g/kg发明药肌内注射小鼠，对MRSA感染模型小鼠的体内保护率达100％；寇氏法统计分析表明，发明药肌内注射预防给药，对MRSA感染模型小鼠的ED₅₀为0.030 g/kg。

3.2发明药灌胃抗MRSA感染疗效

采用预防给药方式，用发明药灌胃小鼠，即1次/d，连续给药3d，最后一次给药后用MRSA攻毒，观察小鼠攻毒后7d的存活情况，结果见表6。

表6：发明药灌胃抗MRSA感染疗效

由上表可知，发明药灌胃预防给药，对由MRSA诱导的感染模型小鼠有很好的体内抗感染疗效，并呈明显量效关系，具有与阳性药物万古霉素相似的作用。其中0.810g/kg发明药灌胃预防给药，对 MRSA感染模型小鼠的体内保护率达100％；寇氏法统计分析，发明药灌胃预防给药对MRSA感染模型小鼠的ED50为0.197g/kg。

由上述结果可知：采用肌内注射和灌胃2种方式，对发明药进行预防给药，均有较强体内抗MRSA感染疗效，且呈明显量效关系， ED50分别为0.030g/kg和0.197g/kg。

实施例3香叶醇抗MRSA的作用机制

1实验材料

1.1实验菌株

标准株：耐甲氧西林金黄色葡萄球菌MRSA标准株ATCC43300，购自美国典型菌种保藏中心。

1.2药物

实验药物：发明药香叶醇(Geraniol)，Sigma-aldrich，批号 MKBQ1662V；Vancomycin，Sigma公司。。

1.3实验动物

KM小鼠，SPF级，雌雄各半，体重(20±2)g，四川省成都生物制品研究所有限责任公司提供，动物生产许可证号SCXK(川) 2016-08。

1.4培养基

MUELLER-HINTON BROTH(MHB)，批号583507，英国OXOID 公司；MUELLER-HINTONAGAR(MHA)，批号1376993，英国 OXOID公司；营养琼脂，批号20150810，北京奥博星生物技术有限责任公司。

1.5主要试剂

Mouse TNF-α(Tumor Necrosis Factor Alpha)ELISA kit.96T，批号AK0017MAY19010，Elabscience公司；Mouse IL-1β(Inter leukin 1 Beta)ELISA kit.96T，批号AK0017MAY19012，Elabscience公司； Mouse IL-6(Inter leukin 6)ELISA kit.96T，批号AK0017MAY19011， Elabscience公司。SOD试剂盒(WST-1法)，批号20170518，南京建成生物工程研究所；谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)试剂盒，批号20170515，南京建成生物工程研究所；丙二醛(MDA)试剂盒，批号20170517，南京建成生物工程研究所；羟基自由基(·OH)试剂盒，批号20170516，南京建成生物工程研究所。0.9％氯化钠注射液，批号B16051903，四川科伦药业股份有限公司。

2实验方法

2.1体外作用机制

2.1.1发明药对MRSA生长曲线的影响

取ATCC43300对数期菌液，将菌液浓度调至1.5×10⁸CFU/ml备用。在MHB培养基中分别加入MRSA菌液和发明药(1/8MIC、1/4 MIC、1/2MIC、3/4 MIC)，每隔2h取样，检测OD₆₀₀，以不加药物为空白对照。以OD₆₀₀为纵坐标，时间为横坐标，EXCEL软件绘制 MRSA生长曲线。

2.1.2发明药对MRSA细胞超微结构的影响

药物处理：取MRSA对数期菌液，分别用2MIC发明药处理2h 和4 MIC发明药处理2h，以Tween-80和生理盐水分别作溶剂对照和空白对照。

菌液固定：取处理后的菌液10000r/min离心10min，弃上清， PBS洗涤3次；加入0.5％戊二醛固定液，4℃静置10min预固定； 10000r/min离心15min，弃上清，加入3％戊二醛固定液固定。

样品制备及超微结构分析：采用锇酸后固定，醋酸铀块染，丙酮包埋后超薄切片，用Tecnai G2 F20电子显微镜观察MRSA超微结构，由四川大学分析测试中心完成。

2.2体内作用机制

2.2.1发明药对MRSA感染模型小鼠炎性细胞因子和氧化因子的影响

用发明药肌内注射，以0.149g/kg、0.104g/kg、0.061g/kg为高剂量(H)、中剂量(M)和低剂量(L)组，比较分析发明药对MRSA 感染模型小鼠治疗前后细胞因子和氧化因子的变化，并分析量效关系。

血清制备：发明药预防给药3d，用MRSA攻毒感染小鼠，感染7d后，对各组存活小鼠进行眼眶取血，制备血清。

炎性细胞因子测定：ELISA法测定小鼠血清中主要炎性细胞因子 TNF-α、IL-6和IL-1β的含量。

氧化因子测定：ELISA法测定小鼠血清中谷胱甘肽过氧化物酶 (GSH-Px)、超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)和羟基自由基(·OH)含量。

数据统计与分析：用SPSS 19.0软件单因素方差分析法，比较分析空白组、模型组、阳性组和发明药组小鼠体内细胞因子和氧化因子的差异，其中P＜0.05表示具有统计学差异，P＜0.01表示具有显著统计学差异。

2.2.2发明药对MRSA感染模型小鼠病理变化的影响

用发明药肌内注射预防给药，选择高剂量组(0.149g/kg)为实验组，分析发明药高剂量作用下对MRSA感染模型小鼠组织病理变化的影响。

样品采集和固定：发明药肌内注射预防给药3d，用MRSA感染，取感染7d后小鼠的肺、肝和肾，生理盐水洗涤后放入4％甲醛固定液固定，24h后更换固定液，保存于4℃冰箱，用于病理切片制作。以不给药物不感染的为空白组，以只攻毒感染不给药的为模型组，以给药万古霉素为阳性对照组。

制备病理切片和病理分析：对固定好的肺、肝和肾进行脱水处理，后包埋、切片和染色，采集图像，并进行病理切片分析，由成都里来生物科技有限公司完成。

3实验结果

3.1体外作用机制

3.1.1发明药对MRSA生长曲线的影响

生长曲线法分析发明药体外对MRSA标准株生长的影响，结果见图1。

由图1可知，发明药能明显延长MRSA的迟缓期，抑制MRSA 生长，明显减少细菌生长量，当发明药浓度增加到3/4 MIC时，MRSA 生长完全处于抑制状态。说明发明药抑制MRSA生长呈明显量效关系，与“体内抗感染疗效结果”一致。

3.1.2发明药对MRSA超微结构的影响

将ATCC43300培养至对数期，分别用2MIC发明药处理2h，4 MIC发明药处理2h，分别以生理盐水和Tween-80为空白对照和溶剂对照，透射电镜观察其超微结构变化，结果见图2。

由图2可知，空白对照和溶剂对照的MRSA细胞结构完整，细胞正常分裂，生长无明显影响。当2MIC发明药处理MRSA细胞2h 时，部分细胞超微结构受到破坏，细胞壁及细胞膜完整性被破坏，部分胞内容物出现外漏；4 MIC发明药处理MRSA细胞2h时，细胞结构完整性完全被破坏，细胞内含物被分解，细胞壁和细胞膜损坏，胞内容物泄漏，细胞碎片增多。由此可见，作用浓度是影响MRSA细胞超微结构的主要因素，低浓度发明药对MRSA主要呈抑制作用，高浓度发明药对MRSA细胞呈明显杀伤作用。

3.2体内作用机制

3.2.1发明药对MRSA感染模型小鼠炎性细胞因子和氧化因子的影响

比较分析发明药对小鼠炎性细胞因子(图3)和氧化因子(图4) 的影响。

由图3可知，MRSA感染后，模型组小鼠3种炎性细胞因子 (IL-1β、IL-6和TNF-α)的含量均显著高于空白组(P＜0.01)；经发明药治疗后，3种炎性细胞因子含量均下降，并呈明显量效关系。与空白组比较，阳性组的TNF-α含量无统计学差异(P＞0.05)，恢复至正常水平；发明药高剂量组小鼠的IL-1β和TNF-α含量无统计学差异(P＞0.05)，恢复至正常水平。与模型组比较，阳性组的IL-1β和 IL-6显著降低(P＜0.01)、TNF-α明显降低(P＜0.05)；发明药高、中、低剂量组小鼠的IL-1β含量均显著降低(P＜0.01)，高、中剂量组小鼠的IL-6含量显著降低(P＜0.01)，高剂量组小鼠的TNF-α含量明显降低(P＜0.01)。与阳性组比较，发明药高、中剂量组的IL-1β和TNF-α含量均无明显统计学差异(P＞0.05)，高、中、低剂量组的IL-6含量以及低剂量的IL-1β和TNF-α含量有显著统计学差异(P＜ 0.01)外，说明发明药能明显降低MRSA感染小鼠炎性细胞因子 TNF-α、IL-6和IL-1β含量，以控制MRSA感染，具有与阳性药物万古霉素相似的作用。

由图4可知，MRSA感染后，模型组小鼠氧化因子GSH-Px和 SOD含量显著降低(P＜0.01)，MDA和·OH含量显著升高(P＜0.01)；经发明药治疗后，除SOD含量变化量效不明显外，GSH-Px含量显著增加、MDA和·OH含量显著降低，均呈明显量效关系。与空白组比较，阳性组GSH-Px含量无统计学差异(P＞0.05)，SOD含量显著降低(P＜0.01)，MDA和·OH含量显著增加(P＜0.01)；发明药中低剂量组GSH-Px含量无明显统计学差异(P＞0.05)，恢复至正常水平，高剂量组GSH-Px含量明显增加(P＜0.05)，高中低剂量组的SOD、 MDA和·OH含量有显著统计学差异(P＜0.01)。与模型组比较，阳性组GSH-Px、SOD、MDA和·OH含量有显著统计学差异(P＜0.01)；发明药高中低剂量组GSH-Px含量显著增加(P＜0.01)、MDA和·OH 含量显著降低(P＜0.01)。与阳性组比较，发明药高、中剂量组的 GSH-Px和·OH含量无明显统计学差异(P＞0.05)，低剂量组的SOD 含量和中剂量的MDA含量无明显统计学差异(P＜0.05)。说明发明药能有效调节MRSA感染模型小鼠氧化因子GSH-Px、MDA和·OH 含量，增强小鼠的氧化应激能力，以控制感染，与阳性药万古霉素具有相似的作用。

3.2.2发明药对MRSA感染小鼠病理组织的影响

MRSA感染对小鼠的病理影响：用MLD的MRSA菌液量腹腔注射小鼠，以肺、肝和肾为代表，分析小鼠感染MRSA后内脏器官的组织病理变化。其中肺组织的病理变化见图5，肝组织的病理变化见图6，肾组织的病理变化见图7。

由图5、图6和图7可知，MRSA腹腔注射小鼠，主要引起小鼠肺组织的炎性病理变化，肺出现明显炎性变化，肺间质细胞内中性粒细胞大量浸润，少量肺泡腔塌陷；肝组织和肾组织均无明显病理变化。

发明药对MRSA感染小鼠肺组织的病理影响：用发明药高剂量 (0.149g/kg)注射给药，分析发明药对MRSA感染模型小鼠肺组织病理变化的影响，结果见图8。

由图8可知，发明药治疗后，MRSA感染模型小鼠肺部炎性病理变化的得到明显改善，肺间质细胞内无明显中性粒细胞浸润，肺泡结构清晰。说明发明药能有效改善肺部炎性病变，控制小鼠肺部炎症，以消除MRSA感染。

由上述结果可知：腹腔注射MRSA感染小鼠，主要引起小鼠肺组织病理变化，肝组织和肾组织无明显病理变化。发明药体内抗 MRSA感染机制主要与其调节MRSA感染小鼠炎性细胞因子(IL-1β、 IL-6和TNF-α)和氧化因子(GSH-Px、MDA和·OH)含量，改善肺组织炎性细胞浸润，修复炎性病变等因素有关。

综上，本发明香叶醇或其衍生物为天然药物，单用能有效抑制 MRSA的生长或杀灭MRSA，能缓解MRSA感染引起的氧化应激及炎症反应，可用于治疗葡萄球菌感染性疾病；同时联合-β内酰胺类抗生素能显著增强抗MRSA的活性，具有良好的协同增效作用；将本发明药物制备成治疗MRSA感染药物，临床应用前景良好。

Claims (12)

1.香叶醇或其衍生物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途。

2.根据权利要求1所述的用途，其特征在于：所述耐药葡萄球菌为耐甲氧西林葡萄球菌。

3.根据权利要求2所述的用途，其特征在于：所述耐甲氧西林葡萄球菌为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌；优选地，所述耐甲氧西林金黄色葡萄球菌为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC43300或耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC33591。

4.根据权利要求1所述的用途，其特征在于：所述的药物是抑制耐药葡萄球菌生长或杀灭耐药葡萄球菌的药物。

5.一种治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物，其特征在于：它是由香叶醇或其衍生物为活性成分，加上药学上可接受的辅料或辅助性成分制备而成的制剂。

6.根据权利要求5所述的药物，其特征在于：所述制剂为注射制剂或口服制剂。

7.一种治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的联合用药物，其特征在于：它含有相同或不同规格单位制剂的用于同时或者分别给药的香叶醇和治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物，以及药学上可接受的载体。

8.根据权利要求7所述的联合用药物，其特征在于：所述治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物包括β-内酰胺类抗生素。

9.根据权利要求8所述的联合用药，其特征在于：所述的β-内酰胺类抗生素包括阿莫西林、头孢氨苄、头孢吡肟等。

10.根据权利要求7-9任意一项所述的联合用药物，其特征在于：它是由下述重量配比的原料药制备而成的制剂：

香叶醇0.1～0.9份、β-内酰胺类抗生素0.1～0.9份。

11.权利要求5或6任意一项所述的药物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途；优选地，所述耐药葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病；更优选地，所述的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC43300或耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC33591感染性疾病。

12.权利要求7-10任意一项所述的联合用药物在制备治疗耐药葡萄球菌感染性疾病的药物中的用途；优选地，所述耐药葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病；更优选地，所述的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染性疾病为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC43300或耐甲氧西林金黄色葡萄球菌ATCC33591感染性疾病。