CN107698676B - 一种高纯度尿促性素的提取制备方法 - Google Patents

一种高纯度尿促性素的提取制备方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供一种高纯度尿促性素的制备方法,该制备方法包括以下步骤:(1)人绝经期促性腺激素粗制品经过阴离子交换层析纯化,得到高中间体I;(2)中间体I经过阳离子交换层析纯化,得到中间体II;(3)中间体II经过染料亲和层析纯化,得到高纯度尿促性素。本发明依次采用阴离子交换层析、阳离子交换层析、染料亲和层析工艺,提取纯化制得高纯度HMG。经过阴离子交换层析与阳离子交换层析,HMG纯化倍数可达60倍以上。利用FSH及LH能与染料亲和吸附的性质,进一步去除杂质蛋白。经过3步层析工艺,使HMG纯化倍数达到500倍以上,从而获得高纯度尿促性素,其中FSH与LH比例约为1:1。

Description

一种高纯度尿促性素的提取制备方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及一种高纯度尿促性素(High Purified HumanMenopausal Gonadotropin,HP-HMG)的提取制备方法。
背景技术
20世纪60年代人尿促性素(HMG)产品问世以来,就开始广泛用于人类不孕症的治疗。此后,20年间它成为全世界范围内不孕症治疗的主流。HMG中卵泡刺激素(FSH)和黄体生成激素(LH) 二者的比例为1:1。含有FSH 的第一代产品是尿促性素(HMG),如Serono 公司的Pergonal,它是FSH与LH 比例约为1:1 的混合物。但是它的比活和纯度都很低,比活一般在40-300IU/mg 蛋白,纯度只有2-3%的有效成分,其余约97%都是杂蛋白。HMG在我国已应用多年,可独立地作为促排卵治疗的用药, 一般用在排卵功能障碍用克罗米酚作为一线治疗失败的不孕症妇女;也应用于低促性腺激素性性腺功能不全的男性和女性;还广泛应用于行体外受精( invitro fertilization, IVF) 的控制性促排卵( controlled ova rianhyperstimulation, COH) 的妇女中。但同时它也有明显的不足之处,如尿蛋白杂质多、尿源的污染、批间的不稳定性、过敏反应、不能皮下注射等。这就需要在辅助生育治疗中使用更高纯度和质量的HMG产品。
高纯度的HMG(HP-HMG)是从天然提取的促性腺激素制剂,纯度达到了重组单组分制剂的水平。HP-HMG相比于普通纯度的HMG,应当具备纯度高、杂质少的优点,基于这些优点,HP-HMG不会造成人体的过敏反应,且可以使用皮下注射,提高患者的顺应性。
专利US7022822B1中公布了一种高纯度HMG的制备方法,工艺为HMG粗品先用阳离子交换层析纯化,再经阴离子交换层析,最后使用疏水层析技术。由于FSH与LH在疏水性质上差异较大,要同时纯化两者需要使用较强的洗脱条件,比如添加乙醇,才能将两者同时洗脱,此洗脱条件会将疏水性介于FSH与LH中间的杂质蛋白洗脱,因此最终产品比活性只有4000IU/mg蛋白质左右。要制备更高纯度的HMG,需要开发使用更有效的分离技术,将FSH与LH同时纯化,使其达到最终的1:1比例,同时,尽量去除杂质蛋白。
发明内容
本发明的目的是提供一种高纯度尿促性素的提取制备方法,本方法操作简便、生产成本低,对原料的要求低,工业适应性强,获得的HP-HMG纯度更高,卵泡刺激素(FollicleStimulating Hormone,FSH)与黄体生成素(Luteotropic Hormone,LH)的比例接近1:1。 高纯度尿促性素比活性以FSH计,大于8000IU/mg 蛋白质,FSH:LH约为1:1。
本发明采用的技术方案如下:一种高纯度尿促性素的提取制备方法,制备方法包括以下步骤:
(1) 人绝经期促性腺激素(Human Menopausal Gonadotropin,HMG)粗制品经阴离子交换层析纯化,得到中间体I;
(2) 中间体I经阳离子交换层析纯化,得到中间体II;
(3) 中间体II经染料亲和层析纯化,得到高纯度尿促性素溶液。
根据以上所述的制备方法,其特征在于,所述制备方法还包括将步骤(3)所得高纯度尿促性素溶液进行超滤换盐,换盐所用溶液为0.01M PB缓冲溶液,用磷酸氢二钠-磷酸二氢钠(PB)缓冲液置换原缓冲溶液,优选地,其pH为5.5-7.0。
优选地,上述制备方法还包括将步骤(3)所得尿促性素溶液与冻干保护剂混合后冻干,冻干保护剂为乳糖,优选地,乳糖添加量为3%-6%(g/ml)。
优选地,上述制备方法所述阴离子交换层析填料配基为三乙基氨基乙基、二乙基氨基乙基、氨基乙基或三乙醇基氨基,基质为纤维素、葡聚糖、琼脂糖、苯乙烯;所述阳离子交换层析填料配基为羧甲基、磺酸基、磷酸基、亚磷酸基、酚基,基质为纤维素、葡聚糖、琼脂糖、聚苯乙烯;所述染料亲和层析填料配基为Cibacron Blue、Red、Green、Orange,基质为琼脂糖、葡聚糖或壳聚糖;
具体来说,所述步骤(1)包括以下步骤:
用水溶解HMG粗制品,调节溶液的pH值至4.0-7.0;将HMG溶液上样至已平衡好的阴离子交换层析柱;以pH值为4.0-7.0 的0.02M PB溶液洗涤,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;收集上样流出液和洗涤流出液,所得溶液即为中间体I。
具体来说,所述步骤(2)包括以下步骤:
将中间体I的溶液上样至已平衡好的阳离子交换层析柱;以pH 值为4.0-6.0 的0.1M 醋酸-醋酸钠(HAc-NaAc)溶液洗涤,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再用pH 值为4.0-6.0的含0.1-0.5M NaCl的0.1M HAc-NaAc溶液洗脱,收集洗脱液,并检测洗脱液在280nm 处的吸光值,直至吸光值不再下降,所得洗脱液即为中间体II。
具体来说,所述步骤(3)包括以下步骤:
将中间体II的溶液上样至已平衡好的染料亲和层析柱;以pH 值为6.0-9.0 的0.1M NaAc溶液洗涤,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再以pH 值为8.0-10.0 的含0.8-2.5M KCl 的0.02M PB溶液洗脱,收集洗脱液,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,所得洗脱液即为高纯度尿促性素溶液。
优选地,向所述步骤(1)或(2)或(3)获得的产物中加入乙醇,例如95%乙醇进行沉淀;然后用无水乙醇脱水,再进行干燥,例如真空干燥。
优选地,所制备高纯度尿促性素比活性高于6000IU/mg蛋白质,优选地,比活性高于8000IU/mg蛋白质。另外,其中FSH:LH比值为1:0.6~1:1.4,优选地,其比值为1:1。
本发明以HMG为起始原料,依次采用阴离子交换层析、阳离子交换层析、染料亲和层析工艺,提取纯化制得高纯度HMG。其中,利用蛋白质两性电离的性质,通过改变溶液pH,使蛋白质带上不同电荷,经过阴离子交换层析与阳离子交换层析,HMG纯化倍数可达60倍以上。利用FSH及LH能与染料亲和吸附的性质,进一步去除杂质蛋白。经过3步层析工艺,使HMG纯化倍数达到500倍以上,从而获得高纯度尿促性素,其中FSH与LH比例约为1:1。
附图说明
图1为本发明的工艺流程图。
图2为实施例1制备的高纯度尿促性素成品的HPLC图谱。
图3为实施例2制备的高纯度尿促性素成品的HPLC图谱。
具体实施方式
本发明涉及的生物效价、比活性及纯度的测定及计算方法。
生物效价测定:
FSH、LH生物效价测定按照《中华人民共和国药典》2015年版四部通则1216及1217检测。
比活性测定:
精密称取本品约20mg,精密加入水1ml使溶解;另精密称取牛血清白蛋白对照品,加水溶解制成每1ml中分别含1.0mg、0.8mg、0.6mg、0.4mg、0.2mg、0mg的溶液,照紫外-可见分光光度法(《中华人民共和国药典》2015年版四部通则0401),分别在280nm的波长处测定吸光度,以牛血清白蛋白溶液的浓度为横坐标,在280nm的吸光度为纵坐标绘制标准曲线,吸光度和浓度关系应呈线性。从标准曲线上求得供试品溶液的蛋白浓度,按下式计算比活:
Figure DEST_PATH_IMAGE002
HPLC纯度测定:
取本品适量,加水制成每1ml中约含500IU FSH的溶液作为供试品溶液。照《中华人民共和国药典》2015年版四部通则0512高效液相色谱法试验。采用凝胶色谱柱 Superdex75;以磷酸盐缓冲液(取85%H3PO46.74ml,加水800ml,再加Na2SO4 14.2g,用50%NaOH调pH至6.7,用水定容为1000ml);柱温30℃;流速0.5ml/min;检测波长214nm;进样量100μl。
下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述,给出的实施例仅为了阐明本发明,而不是为了限制本发明的范围。
实施例1
如图1所示,将HMG粗制品(本公司生产,批号Z0203160701)作为起始原料,其FSH生物效价为10IU/mg,LH生物效价为9IU/mg,FSH比活性为16IU/mg蛋白质。
1. Capto DEAE 阴离子交换层析
用1000ml水溶解60g HMG粗制品,调节溶液的pH值至5.0,将此溶液上样至柱体积为1250ml的Capto DEAE层析柱(购自GE公司),层析柱预先用平衡液(0.02M PB,pH5.0)平衡好;FSH和LH不能吸附,直接流穿,收集上样流穿液,上样结束后用平衡液洗涤未吸附的蛋白,与上样流穿液合并收集。并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;此收集液即为中间体I。
2. CM-Sepharose 阳离子交换层析
中间体I用6KD的超滤膜浓缩至约100ml,调整pH及电导率与CM-Sepharose 阳离子交换层析平衡液一致,上样至柱体积为120ml的 CM-Sepharose 层析柱(购自GE公司),层析柱预先用平衡液平衡好;上样结束后用平衡液洗涤未吸附的蛋白,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再用洗脱液(0.1M HAc-NaAc+0.2M NaCl,pH5.5)洗脱FSH,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,共收集洗脱流出液460ml,即为中间体II。
3. Capto Blue (high sub)染料亲和层析
将中间体II 460ml调节pH及电导率与平衡液(0.1M NaAc,pH7.0)一致,上样至已平衡好的柱体积为35ml的Capto Blue (high sub) 层析柱(购自GE公司);上样结束后用平衡液洗涤未吸附的蛋白,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再用洗脱液(0.02M PB+1.5M KCl,pH 9.0)洗脱FSH,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,共收集洗脱流出液70ml,即为高纯度尿促性素。
将高纯度尿促性素溶液用截留分子量为6KD的超滤膜超滤浓缩后,用0.01M PB缓冲溶液(pH 6.0)换盐3次,按照3%(w/v)的比例添加乳糖配制成冻干原液,冷冻干燥后得到0.84g高纯度尿促性素成品,成品相关参数见表1,产品的HPLC图谱如图2所示。
表1 实施例1制备的高纯度尿促性素成品参数
Figure DEST_PATH_IMAGE004
实施例2
将低纯度HMG(本公司生产,批号Z0203160801)作为起始原料,其FSH生物效价为11IU/mg,LH生物效价为12IU/mg,FSH比活性为17IU/mg蛋白质。
1. Capto DEAE 阴离子交换层析
用3000ml水溶解180g HMG粗制品,调节溶液的pH值至5.0,将此溶液上样至柱体积为3800ml的Capto DEAE层析柱(购自GE公司),层析柱预先用平衡液(0.02M PB,pH5.0)平衡好;FSH和LH不能吸附,直接流穿,收集上样流穿液,上样结束后用平衡液洗涤未吸附的蛋白,与上样流穿液合并收集。并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;此收集液即为中间体I。 共收集中间体I 15.3L,用截留分子量为6KD的超滤膜浓缩至约1500ml,加入预冷至-20℃的95%乙醇至乙醇浓度为85%,搅拌均匀后静置过夜沉淀蛋白,次日离心收集沉淀,加入无水乙醇脱水3次后真空干燥,得到尿促卵泡素中间体I 14.85g。
2. CM-Sepharose 阳离子交换层析
中间体I用约400ml平衡液溶解(0.1M HAc-NaAc,pH5.5),调整pH及电导率与CM-Sepharose 阳离子交换层析平衡液一致,上样至柱体积为360ml的 CM-Sepharose 层析柱(购自GE公司),层析柱预先用平衡液平衡好;上样结束后用平衡液洗涤未吸附的蛋白,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再用洗脱液(0.1M HAc-NaAc+0.2MNaCl,pH5.5)洗脱FSH,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,共收集洗脱流出液1400ml,即为中间体II。
3. Capto Blue (high sub)染料亲和层析
将中间体II 调节pH及电导率与平衡液(0.1M NaAc,pH7.0)一致,上样至已平衡好的柱体积为100ml的Capto Blue (high sub) 层析柱(购自GE公司);上样结束后用平衡液洗涤未吸附的蛋白,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再用洗脱液(0.02M PB+1.5M KCl,pH 9.0)洗脱FSH,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,共收集洗脱流出液220ml,即为高纯度尿促性素。
将高纯度尿促性素溶液用截留分子量为6KD的超滤膜超滤浓缩后,用0.01M PB缓冲溶液(pH 6.0)换盐3次,按照3%(w/v)的比例添加乳糖配制成冻干原液,冷冻干燥后得到2.4 g高纯度尿促性素成品,成品相关参数见表1,产品的HPLC图谱如图2所示。
表1 实施例1制备的高纯度尿促性素成品参数
Figure DEST_PATH_IMAGE006

Claims (4)

1.一种高纯度尿促性素的制备方法,该制备方法为:
(1)人绝经期促性腺激素(Human Menopausal Gonadotropin,HMG)粗制品经过阴离子交换层析纯化,得到中间体I;包括以下步骤:用水溶解HMG粗制品,调节溶液的pH值至5.0;将HMG溶液上样至已用pH值为5.0的0.02M PB溶液平衡好的阴离子交换层析柱;以pH值为5.0的0.02M PB溶液洗涤,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;收集上样流出液和洗涤流出液,所得溶液即为中间体I;所述阴离子交换层析柱为Capto DEAE阴离子交换层析柱;
(2)中间体I经过阳离子交换层析纯化,得到中间体II;包括以下步骤:将中间体I的溶液调节pH至5.5,再上样至已用pH值为5.5的0.1M醋酸-醋酸钠(HAc-NaAc)溶液平衡好的阳离子交换层析柱;以pH值为5.5的0.1M醋酸-醋酸钠(HAc-NaAc)溶液洗涤,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再用pH值为5.5的含0.2M NaCl的0.1M HAc-NaAc溶液洗脱,收集洗脱液,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,所得洗脱液即为中间体II;所述阳离子交换层析柱为CM-Sepharose阳离子交换层析柱;
(3)中间体II经过染料亲和层析纯化,得到高纯度尿促性素溶液;包括以下步骤:将中间体II的溶液调节pH至7.0,上样至预先用pH值为7.0的0.1M NaAc溶液平衡好的染料亲和层析柱;以pH值为7.0的0.1M NaAc溶液洗涤,并检测洗涤液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降;再以pH值为9.0的含1.5M KCl的0.02M PB溶液洗脱,收集洗脱液,并检测洗脱液在280nm处的吸光值,直至吸光值不再下降,所得洗脱液即为高纯度尿促性素溶液;所述染料亲和层析柱为Capto Blue high sub染料亲和层析柱。
2.根据权利要求1所述一种高纯度尿促性素的制备方法,其特征在于,所述制备方法还包括将步骤(3)所得尿促性素溶液进行超滤,再用pH为5.5-7.0的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液置换原缓冲溶液。
3.根据权利要求1所述一种高纯度尿促性素的制备方法,其特征在于,所述制备方法还包括将尿促性素溶液与冻干保护剂混合后冻干,冻干保护剂为乳糖,其添加量为3%-6%。
4.根据权利要求1所述一种高纯度尿促性素的制备方法,其特征在于,向步骤(3)所得的产物中加入95%乙醇进行沉淀;然后用无水乙醇脱水,再进行真空干燥。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108774285B (zh) * 2018-07-03 2020-06-02 北京市新里程医药科技有限公司 一种生长抑素的制备方法及其药物组合物

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1415628A (zh) * 2002-08-14 2003-05-07 上海天伟生物制药有限公司 一种提取人尿黄体生成素的方法
US7022822B1 (en) * 1999-04-16 2006-04-04 Instituto Massone S.A. Highly purified gonadotropin compositions and process for preparing them
CN101087805A (zh) * 2004-11-09 2007-12-12 阿雷斯贸易股份有限公司 Fsh的纯化方法
CN102464713A (zh) * 2010-12-21 2012-05-23 上海丽珠制药有限公司 一种卵泡刺激素的制备方法
CN102924588A (zh) * 2012-10-26 2013-02-13 日照新康生物科技有限公司 一种高比活尿促卵泡素的制备方法
CN106117342A (zh) * 2016-07-07 2016-11-16 江西浩然生物医药有限公司 一种高纯度尿促卵泡素的制备方法

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7022822B1 (en) * 1999-04-16 2006-04-04 Instituto Massone S.A. Highly purified gonadotropin compositions and process for preparing them
CN1415628A (zh) * 2002-08-14 2003-05-07 上海天伟生物制药有限公司 一种提取人尿黄体生成素的方法
CN101087805A (zh) * 2004-11-09 2007-12-12 阿雷斯贸易股份有限公司 Fsh的纯化方法
CN102464713A (zh) * 2010-12-21 2012-05-23 上海丽珠制药有限公司 一种卵泡刺激素的制备方法
CN102924588A (zh) * 2012-10-26 2013-02-13 日照新康生物科技有限公司 一种高比活尿促卵泡素的制备方法
CN106117342A (zh) * 2016-07-07 2016-11-16 江西浩然生物医药有限公司 一种高纯度尿促卵泡素的制备方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Roles and Novel Regimens of Luteinizing Hormone and Follicle-Stimulating Hormone in Ovulation Induction;MARCO FILICORI AND GRACIELA E. COGNIGNI;《The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism》;20011231 *

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