CN107252681A - 一种黄曲霉素b1免疫亲和柱的制备方法 - Google Patents
一种黄曲霉素b1免疫亲和柱的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN107252681A CN107252681A CN201710515681.9A CN201710515681A CN107252681A CN 107252681 A CN107252681 A CN 107252681A CN 201710515681 A CN201710515681 A CN 201710515681A CN 107252681 A CN107252681 A CN 107252681A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- chitosan
- aflatoxins
- cross
- preparation
- antibody
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/281—Sorbents specially adapted for preparative, analytical or investigative chromatography
- B01J20/286—Phases chemically bonded to a substrate, e.g. to silica or to polymers
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/26—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism
- B01D15/38—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism involving specific interaction not covered by one or more of groups B01D15/265 - B01D15/36
- B01D15/3804—Affinity chromatography
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
本发明公开了一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法。该方法的具体步骤为:交联壳聚糖的制备:用二醛对壳聚糖进行交联,再用单醛对未反应的氨基进行交联,得到富含羟基的交联壳聚糖基质;交联壳聚糖经甲基环氧氯丙烷活化后,与黄曲霉素B1抗体进行偶联,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖悬浮液;直接装柱。本发明将抗体的非结合活性区域Fc端定向偶联到交联壳聚糖上,更好地保持抗体的活性;利用甲基环氧氯丙烷而不是环氧氯丙烷进行交联反应,通过空间位阻以及疏水相互作用,很好的避免了黄曲霉素B1抗体中的结合活性位置与交联壳聚糖的非特异性相互作用;甲基环氧氯丙烷上的甲基也很好的降低了交联后暴露出的羟基的反应活性。
Description
技术领域
本发明属于化学分析技术领域,具体涉及一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法。
背景技术
黄曲霉毒素(AFT)在1993年就已经被世界卫生组织(WHO)的癌症研究机构划定为I类致癌物。在天然污染的食品和饲料中以黄曲霉毒素B1(AFB1)最为常见,其毒性和致癌性也最强,不仅给社会带来重大的经济损失,而且严重威胁消费者的健康。世界各国及地区均制定了严格的AFT限量标准,且限量要求日益严格。
目前黄曲霉毒素的检测方法有薄层层析法、高效液相色谱法、酶联免疫吸附法、放射免疫测定法、免疫亲和层析柱-高效液相色谱法、免疫亲和层析柱-荧光光度法等。目前免疫亲和层析柱-高效液相色谱法和免疫亲和层析柱-荧光光度法,具有快速、灵敏、准确的特点,已被国家标准GB/T 18979-2003所采用。免疫亲和层析柱-高效液相色谱法和免疫亲和层析柱-荧光光度法的核心技术就是制备性能稳定、安全可靠,结果可以信赖的免疫亲和柱。目前亲和柱固定基质的选择分几大类:高分子材料、生物大分子、生物高分子材料。在上述几种材料中,生物高分子材料具有环境友好,价格便宜等优点,已经成为研发的热点。
壳聚糖作为一种廉价易得的生物高分子材料已经越来越得到广泛的应用于各种生化检测材料中。壳聚糖分子中具有氨基和羟基,因此改性的方式多,反应灵活。经过改性,壳聚糖也能形成结构规整的微球。目前壳聚糖的改性交联主要通过其结构上的氨基与醛类形成席夫碱来实现。壳聚糖上的氨基完全席夫碱化留下的羟基则能够保证下一步与抗体的偶联反应的均一性和稳定性。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法。
为解决上述技术问题,本发明所采取技术方案是:一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,所述方法包括交联壳聚糖基质的制备、抗体与交联壳聚糖的偶联以及装柱工序,具体工艺步骤如下所述:
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖溶于体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解;壳聚糖经过二醛交联、单醛交联,真空干燥得到交联壳聚糖基质;
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖,悬浮于甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加氢氧化钠水溶液,于50-70℃恒温水浴振荡器上活化反应4-8h,反应结束后,用水反复洗涤,真空干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖分散于黄曲霉素B1抗体的缓冲液中,于35-39℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、磷酸盐缓冲液进行洗涤至黄曲霉素B1抗体不能检出,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
优选地,所述步骤1)中的所述二醛交联、单醛交联方法为:待壳聚糖在1%醋酸溶液中完全溶解后,将二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,搅拌反应;然后将单醛缓慢的滴入瓶中交联固化,搅拌反应,冷却,加入与水互溶的溶剂帮助沉淀,过滤,滤饼用与水不互溶的溶剂洗涤,将过滤得到的滤饼于真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
优选地,所述步骤1)中二醛交联,二醛添加量为壳聚糖质量的1-2倍;搅拌反应时间为2-4h,搅拌反应温度为20-40℃。
优选地,所述步骤1)中单醛交联,单醛加量为壳聚糖质量的0.5-1.5倍;搅拌反应时间为2-4h,搅拌反应温度为20-40℃。
优选地,所述步骤2)中氢氧化钠水溶液的浓度为40wt%,交联壳聚糖与氢氧化钠水溶液质量比为1:1-2;所述交联壳聚糖与活化剂质量比为1:4-6。
优选地,所述步骤1)中的壳聚糖交联所用的二醛为链长2-6个碳的二醛;壳聚糖交联所用的单醛为链长1-5个碳的单醛。
优选地,所述步骤1)中壳聚糖经过二醛交联、单醛交联后,加入与水互溶的溶剂帮助沉淀;所述与水互溶的溶剂为链长1-4个碳的单醇、丙酮中的任意一种;所述水互溶的溶剂体积用量为壳聚糖质量的8-12倍,所述质量单位为g,所述体积单位为mL。
优选地,所述步骤1)中壳聚糖经过二醛交联、单醛交联后,过滤,得到滤饼用与水不互溶的溶剂洗涤;所述与水不互溶的溶剂为乙醚、沸点30-60的石油醚、沸点60-90的石油醚、正己烷、环己烷中的任意一种或几种;所述水不互溶的溶剂体积用量为壳聚糖质量的8-12倍,所述质量单位为g,所述体积单位为mL。
优选地,所述步骤1)中壳聚糖与醋酸溶液质量体积比为1:8-12,所述质量单位为g,所述体积单位为mL;所述真空干燥温度为50-70℃。
优选地,所述步骤2)中黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液的浓度为6-8g/l,缓冲液的pH为7.2-8.0,体积用量为活化壳聚糖质量20-30倍,所述体积单位为mL,所述质量单位为g。
本发明设计思路如下:1)首先利用二醛对壳聚糖进行交联反应,形成交联壳聚糖;2)利用单醛对交联壳聚糖进行再交联,使壳聚糖上未反应的氨基反应完全,并且限定了交联壳聚糖微球中孔道的内径大小与疏水结构;3)利用甲基环氧氯丙烷而不是环氧氯丙烷进行交联反应,通过空间位阻以及疏水相互作用,很好的避免了黄曲霉素B1单抗中的结合活性位置与交联壳聚糖的非特异性相互作用;甲基环氧氯丙烷上的甲基也很好的降低了交联后暴露出的羟基的反应活性;4)交联壳聚糖的活化反应与偶联抗体的反应分开进行,从而最大限度的保证了黄曲霉素B1单抗的活性。
本发明偶联率检测及计算方法如下:
G1=(C0-C1)*V0/W1
G1:偶联率(g/g);
C0:黄曲霉素B1抗体的起始浓度(g/l)
C1:黄曲霉素B1抗体的最终浓度(g/l)
V0:黄曲霉素B1抗体溶液的体积(l)
W1:活化壳聚糖的质量(g)
本发明黄曲霉素B1抗体的检测方法:利用紫外分光光度法确定黄曲霉素B1抗体的浓度标准曲线,利用标准曲线确定抗体的浓度。
采用上述技术方案所产生的有益效果在于:1、本发明利用二醛和单醛分别对壳聚糖进行交联反应,形成氨基反应完全且富含羟基的交联壳聚糖基质。2、本发明将抗体的非结合活性区域Fc端定向偶联到交联壳聚糖上,更好地保持抗体的活性,利用交联壳聚糖与甲基环氧氯丙烷进行交联活化反应,避免了黄曲霉素B1抗体中的结合活性位置与交联壳聚糖的非特异性相互作用,使绝大部分抗体处于游离状态。3、本发明交联壳聚糖的活化反应与偶联抗体的反应分开进行,从而最大限度的保证了黄曲霉素B1抗体的活性。4、本发明偶联率最高达到0.95g/g,偶联效率高,本发明制备的以壳聚糖为载体的免疫亲和柱能够与黄曲霉素B1特异性结合,能得到纯度较高的黄曲霉素B1;免疫亲和柱对黄曲霉素B1最大结合容量约为585ng/g,回收率达到99.2%以上。
附图说明
图1为活化壳聚糖与壳聚糖偶联黄曲霉素B1的制备图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步详细的说明。
实施例1
本实施例黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法包括交联壳聚糖基质的制备、抗体与交联壳聚糖的偶联以及装柱工序,具体工艺步骤如下所述:
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖1.05g溶于10mL体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解,待壳聚糖完全溶解后,将1.5g戊二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,35℃搅拌反应3h;然后将1.0g乙醛缓慢的滴入瓶中交联固化,35℃搅拌反应3h,冷却,加入与10ml丙酮帮助沉淀,过滤,滤饼用10ml石油醚(沸点30-60)洗涤3次,将过滤得到的滤饼于60℃真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖1.28g,悬浮于5.5g活化剂甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加1.3g的40wt%氢氧化钠水溶液,于60℃恒温水浴振荡器上活化反应6h,反应结束后,用水反复洗涤,干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖1.54g分散于黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液(33ml,6.0g/l,pH7.2)中,于37℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、pH7.2磷酸盐缓冲液进行洗涤,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
本实施例制备黄曲霉素B1免疫亲和柱检测偶联率为0.94g/g。
实施例2
本实施例黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法包括交联壳聚糖基质的制备、抗体与交联壳聚糖的偶联以及装柱工序,具体工艺步骤如下所述:
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖1.05g溶于10mL体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解,待壳聚糖完全溶解后,将1.4g乙二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,35℃搅拌反应3h;然后将1.1g丙醛缓慢的滴入瓶中交联固化,35℃搅拌反应3h,冷却,加入与10ml甲醇帮助沉淀,过滤,滤饼用10ml正己烷洗涤3次,将过滤得到的滤饼于60℃真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖1.33g,悬浮于5.8g活化剂甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加1.5g的40wt%氢氧化钠水溶液,于60℃恒温水浴振荡器上活化反应6h,反应结束后,用水反复洗涤,干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖1.59g分散于黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液(38ml,6.8g/l,pH7.4)中,于37℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、pH7.4磷酸盐缓冲液进行洗涤,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
本实施例制备黄曲霉素B1免疫亲和柱检测偶联率为0.91g/g。
实施例3
本实施例黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法包括交联壳聚糖基质的制备、抗体与交联壳聚糖的偶联以及装柱工序,具体工艺步骤如下所述:
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖1.06g溶于10mL体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解,待壳聚糖完全溶解后,将1.3g丙二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,35℃搅拌反应3h;然后将0.8g甲醛缓慢的滴入瓶中交联固化,35℃搅拌反应3h,冷却,加入与10ml乙醇帮助沉淀,过滤,滤饼用10ml环己烷洗涤3次,将过滤得到的滤饼于60℃真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖1.34g,悬浮于5.7g活化剂甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加1.4g的40wt%氢氧化钠水溶液,于60℃恒温水浴振荡器上活化反应6h,反应结束后,用水反复洗涤,干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖1.65g分散于黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液(40ml,7.2g/l,pH7.6)中,于37℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、pH7.6磷酸盐缓冲液进行洗涤,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
本实施例制备黄曲霉素B1免疫亲和柱检测偶联率为0.95g/g。
实施例4
本实施例黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法包括交联壳聚糖基质的制备、抗体与交联壳聚糖的偶联以及装柱工序,具体工艺步骤如下所述:
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖1.0g溶于12mL体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解,待壳聚糖完全溶解后,将1g丁二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,20℃搅拌反应4h;然后将0.5g丁醛缓慢的滴入瓶中交联固化,20℃搅拌反应4h,冷却,加入与12ml丙醇帮助沉淀,过滤,滤饼用12ml乙醚洗涤3次,将过滤得到的滤饼于70℃真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖1g,悬浮于4g活化剂甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加1g的40wt%氢氧化钠水溶液,于50℃恒温水浴振荡器上活化反应8h,反应结束后,用水反复洗涤,干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖1g分散于黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液(20ml,7.6g/l,pH7.8)中,于35℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、pH7.8磷酸盐缓冲液进行洗涤,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
本实施例制备黄曲霉素B1免疫亲和柱检测偶联率为0.89g/g。
实施例5
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖1.0g溶于8mL体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解,待壳聚糖完全溶解后,将2g己二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,40℃搅拌反应2h;然后将1.5g戊醛缓慢的滴入瓶中交联固化,40℃搅拌反应2h,冷却,加入与8ml丁醇帮助沉淀,过滤,滤饼用8ml石油醚(沸点60-90)洗涤3次,将过滤得到的滤饼于50℃真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖1g,悬浮于6.0g活化剂甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加2.0g的40wt%氢氧化钠水溶液,于70℃恒温水浴振荡器上活化反应4h,反应结束后,用水反复洗涤,干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖1g分散于黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液(30ml,8.0g/l,pH8.0)中,于39℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、pH8.0的磷酸盐缓冲液进行洗涤,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
本实施例制备黄曲霉素B1免疫亲和柱检测偶联率为0.88g/g。
实施例6
本实施例对制备的黄曲霉素B1免疫亲和柱柱容量进行测定。以黄曲霉素B1的稀碳酸氢钠溶液(100ppb)为洗脱液,上柱,直至流出液中黄曲霉素B1的浓度恢复到初始浓度为止(结果见表1)。
柱容量计算方法如下:
G1=C0*V0/W1
G1:柱容量(g/g)
C0:黄曲霉素B1的起始浓度(g/l)
V0:流出液的体积(l)
W1:抗体交联活化壳聚糖的质量(g)
实施例7
本实施例对实施例1-5制备的黄曲霉素B1免疫亲和柱加标回收率的测定。用4mol/L的氯化镁溶液进行洗脱,至流出液中黄曲霉素B1不能检出。用荧光光度计测定流出液中黄曲霉素B1浓度(结果见表1)。
表1实施例1-5亲和柱的偶联率、柱容量以及回收率
以上实施例仅用以说明而非限制本发明的技术方案,尽管参照上述实施例对本发明进行了详细说明,本领域的普通技术人员应当理解:依然可以对本发明进行修改或者等同替换,而不脱离本发明的精神和范围的任何修改或局部替换,其均应涵盖在本发明的权利要求范围当中。
Claims (10)
1.一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述方法包括交联壳聚糖基质的制备、抗体与交联壳聚糖的偶联以及装柱工序,具体工艺步骤如下所述:
1)交联壳聚糖基质的制备:
称取壳聚糖溶于体积分数1%醋酸溶液中,搅拌并超声至完全溶解;壳聚糖经过二醛交联、单醛交联,真空干燥得到交联壳聚糖基质;
2)抗体与交联壳聚糖的偶联:
a.取步骤1)交联壳聚糖,悬浮于甲基环氧氯丙烷中,缓慢滴加氢氧化钠水溶液,于50-70℃恒温水浴振荡器上活化反应4-8h,反应结束后,用水反复洗涤,真空干燥,得到活化壳聚糖备用;
b.将活化壳聚糖分散于黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液中,于35-39℃恒温水浴振荡器上活化反应,直至溶液中黄曲霉素B1抗体的浓度不发生变化为止,待反应结束后,得到偶联抗体的交联壳聚糖混悬液;
3)装柱:
取步骤2)制备的混悬液装柱,沉降,分别用纯水、磷酸盐缓冲液进行洗涤至黄曲霉素B1抗体不能检出,在4℃下磷酸盐缓冲液中保存,即得到黄曲霉素B1免疫亲和柱。
2.根据权利要求1所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中的所述二醛交联、单醛交联方法为:待壳聚糖在1%醋酸溶液中完全溶解后,将二醛缓慢的滴入瓶中交联固化,搅拌反应;然后将单醛缓慢的滴入瓶中交联固化,搅拌反应,冷却,加入与水互溶的溶剂帮助沉淀,过滤,滤饼用与水不互溶的溶剂洗涤,将过滤得到的滤饼于真空干燥,得到白色粉末,即为交联壳聚糖基质。
3.根据权利要求1所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中二醛交联,二醛添加量为壳聚糖质量的1-2倍;搅拌反应时间为2-4h,搅拌反应温度为20-40℃。
4.根据权利要求1所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中单醛交联,单醛加量为壳聚糖质量的0.5-1.5倍;搅拌反应时间为2-4h,搅拌反应温度为20-40℃。
5.根据权利要求1所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤2)中氢氧化钠水溶液的浓度为40wt%,交联壳聚糖与氢氧化钠水溶液质量比为1:1-2;所述交联壳聚糖与活化剂质量比为1:4-6。
6.根据权利要求1-5任意一项所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中的壳聚糖交联所用的二醛为链长2-6个碳的二醛;壳聚糖交联所用的单醛为链长1-5个碳的单醛。
7.根据权利要求1-5任意一项所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中壳聚糖经过二醛交联、单醛交联后,加入与水互溶的溶剂帮助沉淀;所述与水互溶的溶剂为链长1-4个碳的单醇、丙酮中的任意一种;所述水互溶的溶剂体积用量为壳聚糖质量的8-12倍,所述质量单位为g,所述体积单位为mL。
8.根据权利要求1-5任意一项所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中壳聚糖经过二醛交联、单醛交联后,过滤,得到滤饼用与水不互溶的溶剂洗涤;所述与水不互溶的溶剂为乙醚、沸点30-60的石油醚、沸点60-90的石油醚、正己烷、环己烷中的任意一种或几种;所述水不互溶的溶剂体积用量为壳聚糖质量的8-12倍,所述质量单位为g,所述体积单位为mL。
9.根据权利要求1-5任意一项所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤1)中壳聚糖与醋酸溶液质量体积比为1:8-12,所述质量单位为g,所述体积单位为mL;所述真空干燥温度为50-70℃。
10.根据权利要求1-5任意一项所述的一种黄曲霉素B1免疫亲和柱的制备方法,其特征在于,所述步骤2)中黄曲霉素B1抗体的磷酸盐缓冲液的浓度为6-8g/l,缓冲液的pH为7.2-8.0,体积用量为活化壳聚糖质量20-30倍,所述体积单位为mL,所述质量单位为g。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201710515681.9A CN107252681B (zh) | 2017-06-29 | 2017-06-29 | 一种黄曲霉素b1免疫亲和柱的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201710515681.9A CN107252681B (zh) | 2017-06-29 | 2017-06-29 | 一种黄曲霉素b1免疫亲和柱的制备方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN107252681A true CN107252681A (zh) | 2017-10-17 |
CN107252681B CN107252681B (zh) | 2019-10-18 |
Family
ID=60024465
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201710515681.9A Active CN107252681B (zh) | 2017-06-29 | 2017-06-29 | 一种黄曲霉素b1免疫亲和柱的制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN107252681B (zh) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1588068A (zh) * | 2004-09-07 | 2005-03-02 | 上海大学 | 黄曲霉毒素的检测方法 |
CN101367018A (zh) * | 2007-09-13 | 2009-02-18 | 中国海洋大学 | 壳聚糖树脂固定化酶纯化大豆乳清废水中胰蛋白酶抑制剂的工艺 |
CN104437408A (zh) * | 2014-12-03 | 2015-03-25 | 江苏省苏微微生物研究有限公司 | 黄曲霉毒素b1免疫亲和柱的制备方法及其应用 |
CN106423079A (zh) * | 2016-10-17 | 2017-02-22 | 江苏大学 | 一种壳聚糖微球免疫亲和吸附剂的制备方法及用途 |
-
2017
- 2017-06-29 CN CN201710515681.9A patent/CN107252681B/zh active Active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1588068A (zh) * | 2004-09-07 | 2005-03-02 | 上海大学 | 黄曲霉毒素的检测方法 |
CN101367018A (zh) * | 2007-09-13 | 2009-02-18 | 中国海洋大学 | 壳聚糖树脂固定化酶纯化大豆乳清废水中胰蛋白酶抑制剂的工艺 |
CN104437408A (zh) * | 2014-12-03 | 2015-03-25 | 江苏省苏微微生物研究有限公司 | 黄曲霉毒素b1免疫亲和柱的制备方法及其应用 |
CN106423079A (zh) * | 2016-10-17 | 2017-02-22 | 江苏大学 | 一种壳聚糖微球免疫亲和吸附剂的制备方法及用途 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
LINLIN SUN ET AL.: "Aptamer based surface plasmon resonance sensor for aflatoxin B1", 《MICROCHIM ACTA》 * |
王恩兰: "以壳聚糖为载体新型免疫亲和吸附剂及分子印迹聚合物的制备与应用研究", 《万方数据知识服务平台》 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN107252681B (zh) | 2019-10-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yan et al. | Molecularly imprinted matrix solid-phase dispersion combined with dispersive liquid–liquid microextraction for the determination of four Sudan dyes in egg yolk | |
CN109293938A (zh) | 制备金属骨架化合物结合分子印迹聚合物的复合材料 | |
CN107262078B (zh) | 一种石墨烯/硅胶固相萃取材料及其应用 | |
CN105693906A (zh) | 一种两性离子型聚合物微球及其制备方法 | |
Chen et al. | Comparison and recent progress of molecular imprinting technology and dummy template molecular imprinting technology | |
CN108169471B (zh) | 黄曲霉毒素b1和b2适配体亲和柱及其制备方法与应用 | |
CN108251427A (zh) | 黄曲霉毒素b2适配体亲和柱及其制备方法与应用 | |
CN110004148B (zh) | 链格孢酚适配体亲和柱及其制备方法与应用 | |
CN103551118B (zh) | 一种柱[5]芳烃键合硅胶固定相及其制备方法与应用 | |
CN106423079A (zh) | 一种壳聚糖微球免疫亲和吸附剂的制备方法及用途 | |
CA3109058C (en) | Benzeneboronic acid solid-phase extraction column packing and preparation method thereof | |
CN105498721B (zh) | 一种黄曲霉毒素分子印迹材料及其制备方法 | |
CN108872447A (zh) | 基于亲水性固相萃取的甲状腺抑制剂的检测方法 | |
CN108855003A (zh) | 一种用于清除血液中炎性因子的免疫吸附剂及其制备方法 | |
CN104784972B (zh) | 一种橙皮苷类免疫亲和柱的制备及其应用 | |
CN104174185A (zh) | 一种孔雀石绿免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN107252681A (zh) | 一种黄曲霉素b1免疫亲和柱的制备方法 | |
CN104181300B (zh) | 一种伏马毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN1325516C (zh) | 卵黄免疫球蛋白的仿生亲和纯化方法 | |
CN115245816B (zh) | 一种氨基烟酸类混合模式色谱固定相及其制备方法和应用 | |
CN109833648B (zh) | 呕吐毒素及其衍生物适配体亲和柱及其制备方法与应用 | |
CN103965484B (zh) | 一种ω‑二胺基衍生化β‑环糊精键合SBA‑15手性固定相的制备方法及用途 | |
CN107271663A (zh) | 一种赭曲霉素a免疫亲和柱的制备方法 | |
CN108059673B (zh) | 一种人血清中分离免疫球蛋白IgG的方法 | |
CN109847407A (zh) | 一种戊柔比星的纯化方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |