本发明的目的是提供一种治疗糖尿病的药物,同时提供该药物的制备方法,该方法操作简便、成本低廉。
为了实现上述目的,本发明提供了如下技术方案:
一种治疗糖尿病的药物,是以珍珠露水草Cyanotis arachnoidea(以下简称为露水草)为原料按照下述方法制成的药剂:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草,干燥粉碎,用工业乙醇或乙醇/水或乙酸乙酯或甲醇或甲醇/水或水加热回流提取1-5次,每次2-4小时,过滤,滤液浓缩,放置过夜,再过滤,滤液浓缩至块状,烘干磨碎,加入乙醇/乙酸乙酯(1∶9-9∶1)加热溶解冷却过滤,滤液浓缩粉碎成粉状物即有效部位,按常规制剂制备方法制成胶囊或按重量比1∶2-1∶5加入赋形剂,制粒压片。
制备上述药物的方法,取露水草,干燥粉碎,用工业乙醇或乙醇/水或乙酸乙酯或甲醇或甲醇/水或水加热回流提取1-5次,每次2-4小时,过滤,滤液浓缩,放置过夜,再过滤,滤液浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇/乙酸乙酯(1∶9-9∶1)加热溶解冷却过滤,滤液浓缩粉碎成粉状物即有效部位,按常规制剂制备方法制成胶囊或按重量比1∶2-1∶5加入赋形剂,制粒压片。
制备上述药物的方法,取露水草,干燥粉碎,用工业乙醇或乙醇/水或乙酸乙酯或甲醇或甲醇/水或水加热回流提取1-5次,每次2-4小时,过滤,除去残渣,浓缩后过夜放置,过滤,收集滤液,滤渣再用10一70%乙醇煮沸,冷却过滤,收集滤液,滤渣弃掉,合并两次滤液,浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇/乙酸乙酯(10%-90%)(V/V)加热溶解冷却过滤,弃掉残渣,收集滤液,滤液通过吸附材料中性氧化铝或活性碳或大孔树脂或硅胶,收集层析液,浓缩精制得有效部位,按常规制剂制备方法制成胶囊或按重量比1∶2-1∶5加入赋形剂,制粒压片。
上述制备方法中,所用吸附材料可回收套用,醇、酯液可大体校正比例为10-90%。
上述制备方法中,粗品可用乙醇溶解后倾入搅拌加热的乙酸乙酯中,使其醇:乙酸乙酯=10%-90%(V/V),然后放置冷却。
下面用药效学试验来证明本发明药物的优益效果:
受试药物:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草,干燥粉碎后原料10公斤,用30公斤工业乙醇或乙醇/水或乙酸乙酯或甲醇或甲醇/水或水加热回流提取2次,每次4小时,过滤,滤液浓缩,放置放夜,再过滤,滤液浓缩至块状,烘干磨碎,加入乙醇/乙酸乙酯(1∶4))加热溶解冷却过滤,滤液浓缩粉碎成粉状物即有效部位320克(以下简称CA-1粉剂)。
溶剂:羧甲基纤维素钠溶液
配制方法:用羧甲基纤维素钠溶液配成所需浓度的混悬液。
动物:来源、种属、品系、合格证:ICR品系小白鼠、SD品系大白鼠,白色家兔,均由西安医科大学实验动物中心提供。质量合格证号分别为:陕医卫动证字08-004和08-005号。
□体重 小鼠:18-23g,大鼠:180-230g,家兔1.8-2.5kg
□每组动物数小鼠、大鼠每组10只,家兔每组6只。
□室温、湿度室温:17-20℃,相对湿度62%-72%□试验方法与结果一、对正常大鼠血糖的影响
大鼠180~230g,50只,雌雄各半,按体重、性别,随机分为5组:空白对照组;优降糖组(25mg/kg,天津市力生制药厂,9705024);CA-1粉剂大、中、小剂量组(1g/kg、0.5g/kg、0.25g/kg),每组10只。给药组动物连续灌胃6d,每天一次,给药容积为20ml/kg,空白对照组给等量0.5%羧甲基纤维素钠溶媒(以下同)。末次给药前禁食12h,末次给药后1h、3h,分别断尾取血,用葡萄糖氧化酶法测血糖值。结果见表1。表1 CA-1粉剂对正常大鼠血糖的影响(x±s)
组别 |
剂量(g/kg) |
动物数(只) |
给药前血糖(mmol/L) |
给药后不同时间血糖(mmol/L) |
1h |
3h |
空白对照组 | |
10 |
6.72±0.86 |
6.82±0.86 |
6.34±0.64 |
优降糖组 |
0.025 |
10 |
6.42±0.81 |
3.42±0.73** |
3.52±0.84** |
小剂量组 |
0.25 |
10 |
6.76±0.71 |
6.96±0.52 |
6.92±0.55 |
中剂量组 |
0.5 |
10 |
6.09±1.1 |
4.67±1.05** |
4.29±1.47** |
大剂量组 |
1 |
10 |
6.19±1.39 |
4.90±0.97** |
4.46±1.13** |
与对照组比较*P<0.05**P<0.01
结果表明,优降糖25mg/kg对正常大鼠血糖有显著影响,(P<0.01)。CA-1粉剂0.5g/kg和1.0g/kg两个剂量组,在末次给药后1h、3h均有明显的降低正常大鼠的血糖作用。与对照组比较有非常显著的统计学意义(P<0.01)。说明CA-1粉剂对正常大鼠有明显的降低血糖作用。二、对正常大鼠血清胰岛素水平的影响
在上述实验中,采血测血糖的同时,另取一份血液,用放射免疫法,测血清胰岛素含量,进行组间t检验,结果见表2。
表2 CA-1粉剂对正常大鼠血清胰岛素含量的影响(x±s)
组别 |
剂量(g/kg) |
动物数(只) |
血清胰岛素含量(μm/ml) |
空白对照组 | |
9 |
13.74±5.9 |
优降糖组 |
0.025 |
9 |
24.1±6.92** |
CA-1小剂量组 |
0.25 |
9 |
15.0±7.3 |
CA-1中剂量组 |
0.5 |
9 |
16.54±6.5 |
CA-1大剂量组 |
1 |
9 |
21.76±7.65* |
与对照组比较*P<0.05
结果表明,优降糖组可使血清胰岛素明显升高,具有显著性意义(P<0.01)。CA-1粉剂大剂量组能升高血清胰岛素含量,有显著性意义(P<0.05),中、小剂量组有升高的趋势,但无显著性(P>0.05)。三、对四氧嘧啶至大鼠高血糖的影响
取大鼠90只,雌雄各半,禁食14h后,断尾取血,用葡萄糖氧化酶法测正常血糖值。除取10只作为正常对照组外,其余动物由舌下静脉注射四氧嘧啶(Sigma公司产品)70mg/kg造高血糖模型,同时灌胃给予20%葡萄糖溶液3ml/100g以预防低血糖休克。造模48h后,测定动物禁食12h的空腹血糖值,选择血糖值在11.0mmol/L以上的动物,随机分为5组:四氧嘧啶模型组;降糖灵组(75mg/kg,南通制药总厂,970116);CA-1粉剂大、中、小剂量组(1.0、0.5、0.25g/kg),每组10只,灌胃给药,给药体积均为20ml/kg,空白对照组和模型组给等量溶媒,每天1次,连续6天,末次给药前,禁食12h,末次给药1h后,取血测血糖值,计算血糖降低绝对值〔1〕,进行组间t检验,结构见表3。
表3 CA-1对四氧嘧啶致大鼠高血糖的影响(X±s,n=10)
组别 |
剂量(g/kg) |
血糖值(mmol/L) | 差值 |
正常 |
给药前 |
给药后 |
空白对照组 | |
6.42±0.73 |
6.72±1.09 |
6.52±1.03 |
0.23±0.32 |
四氧嘧啶模型组 | |
7.19±1.26 |
17.60±5.67△△ |
17.44±6.17△△ |
0.48±5.16 |
降糖灵+四氧嘧啶组 | 0.075 | 6.71±1.28 | 17.73±6.31△△ |
10.26±3.63**(42.1%) | 7.46±4.63** |
CA-1+四氧嘧啶组 | 0.25 | 6.83±0.55 | 16.68±5.83△△ |
12.01±5.03**(28%) | 4.67±3.88 |
CA-1+四氧嘧啶组 | 0.5 | 7.51±1.08 | 16.52±6.74△△ |
10.50±4.21**(36.4%) | 6.02±4.35* |
CA-1+四氧嘧啶组 | 1 | 6.32±0.82 | 18.01±6.04△△ |
9.27±4.0**(48.5%) | 8.75±4.46** |
与模型组比较*P<0.05 **P<0.01(%)血糖下降率
与对照组比较△△P<0.01
结果表明,以70mg/kg四氧嘧啶静脉注射可使大鼠血糖明显升高,与正常组血糖比较,均有显著性意义(P<0.01),造高血糖模型成立。给药6d后各剂量组可不同程度地降低四氧嘧啶致高血糖大鼠的血糖,统计学上有非常显著意义(P<0.01或P<0.05)。以CA-1大、中剂量的降血糖作用较强,分别可使血糖降低48.5%和36.4%。提示CA-1对四氧嘧啶致大鼠高血糖有明显的降糖作用。四、对肾上腺素所致小鼠血糖升高的影响
将60只小鼠,体重18~23g,雌雄各半,按体重、性别随机分为6组:空白对照组;肾上腺素模型组;优降糖组(25mg/kg);CA-1大、中、小剂量组(1.0、0.5、0.25g/kg),灌胃给药,给药体积0.2ml/10g,正常对照组和模型组给等量溶媒,每天给药1次,连续6天,于末次给药前禁食12h,末次给药1h后,除空白对照组外,其余5组均腹腔注射肾上腺素0.2mg/kg,于注射后30min,从眼眶静脉取血测血糖,进行组间t检验,结果见表4。
表4 CA-1对肾上腺素致小鼠血糖升高的影响
组别 |
动物数(只) |
剂量(g/kg) |
血糖值(mmol/L) |
空白对照组 |
10 | |
4.97±1.39 |
肾上腺素模型组 |
10 |
0.0002 |
9.59±1.88△△ |
优降糖+肾上腺素组 |
10 |
0.025 |
6.12±1.74** |
CA-1+肾上腺素组 |
10 |
0.25 |
9.54±1.54 |
CA-1+肾上腺素组 |
10 |
0.5 |
8.04±1.05* |
CA-1+肾上腺素组 |
10 |
1.0 |
7.94±1.44* |
与模型组比较*P<0.05 **P<0.01
与对照组比较_△△P<0.01
结果表明,肾上腺素0.2mg/kg腹腔注射可使小鼠血糖明显升高,优降糖组动物给药后血糖明显低于模型组(P<0.01)。CA-1大、中剂量组也能使血糖降低,具有显著性意义(P<0.05)。结果提示,CA-1能抑制肾上腺素对小鼠的升高血糖作用。五、对家兔糖耐量的影响
家兔36只,体重18~2.5g,雌雄各半,按体重、性别,随机分为6组:分别为:空白对照组;溶媒+葡萄糖组;降糖灵(75mg/kg)+葡萄糖组;CA-1大、中、小剂量(1g、0.5g、0.25g/kg)+葡萄糖组。实验前各组动物禁食12h,空腹采血,测其正常血糖值后,连续灌胃给药3天,给药容积为10ml/kg,空白对照组和溶媒+葡萄糖组给等量0.5%羧甲基纤维素钠溶液,末次给药1h后,除空白对照组外,其余五组均腹腔注射50%葡萄糖2.5g/kg,给糖后分别于0.5、1、2、3h从耳静脉采血,按葡萄糖氧化酶法分别测定血糖水平,绘制家兔糖耐量曲线,进行组间t检验。结果见表5及附图。
表5 CA-1对家兔糖量的影响(X±s,n=6)
组别 |
剂量(g/kg) |
给药前血糖(mmol/L) |
给药后ip葡萄糖不同时间血糖值(mmol/L) |
糖曲线下面积(mmol/L.h) |
0.5h |
1h |
2h |
3h |
空白对照组 | |
7.19±1.27 |
7.93±1.43 |
7.89±1.27 |
8.38±0.92 |
7.19±0.72 |
18.2±3.02** |
溶媒+葡萄糖 | |
7.31±1.50 |
20.53±7.39 |
19.76±5.93 |
12.24±3.12 |
8.10±1.07 |
32.72±8.24 |
降糖灵+葡萄糖 |
0.075 |
7.66±1.37 |
11.39±4.42* |
11.62±5.20* |
8.63±0.95* |
8.69±2.17 |
21.85±4.88* |
小剂量+葡萄糖 |
0.25 |
7.34±0.72 |
12.62±8.35 |
13.36±8.07 |
10.18±3.38 |
7.94±1.30 |
24.78±9.98 |
中剂量+葡萄糖 |
0.5 |
6.51±1.43 |
7.78±1.28** |
8.25±1.23** |
7.71±1.72* |
8.68±1.64 |
18.33±2.89** |
大剂量+葡萄糖 |
1 |
6.81±0.77 |
8.67±2.75** |
7.50±1.27** |
6.68±1.23** |
7.29±0.83 |
16.38±2.58** |
与溶媒+葡萄糖组比较
*P<0.05
**P<0.01
结果表明,给药前各组间无明显差异,给药及葡萄糖后0.5、1、2h,CA-1大、中剂量组动物血糖水平明显低于溶媒葡萄糖组,均可使血糖曲线下面积显著降低(P<0.01)。小剂量组血糖曲线下面积亦有降低的趋势。但无显著性(P>0.05)。提示,CA-1有明显提高家兔糖耐量的作用。□试验结论
CA-1粉剂中剂量组(0.5g/kg)和大剂量组(1.0g/kg),灌胃给药6天,对正常大鼠血糖有明显降低作用,大剂量组能使血清胰岛素浓度增加;对动物给于四氧嘧啶而导致胰岛β细胞破坏,分泌胰岛素减少所造成的高血糖模型,均有明显的降血糖作用;对肾上腺素促进肝糖原和肌糖原的分解而引起的血糖升高,CA-1有一定的抑制作用;家兔糖耐量试验表明,CA-1灌胃给药3天后给葡萄糖,能使家兔糖耐量曲线明显下移,有显著提高家兔糖耐量的作用。
六、对小鼠骨髓细胞微核率的影响:
选择体重为20-22g健康ICR小鼠60只随机分为六组,每组10只,雌、雄各半,设高、中、低3个剂量组,环磷酰胺(CP)阳性对照组、溶剂对照组和空折对照组。用12%DMSO溶液作为溶剂,将CA-1配成10%、5%、2.5%3个浓度的混悬液,即高、中、低剂量组分别为5.0,2.5,1.25g/kg体重,三组均0.5ml/10g体重等容量灌胃给予。空白对照组按0.5ml/10g体重灌胃给予蒸馏水,连续给药7天。CP阳性对照组按35mg/kg腹腔一次注射给药,于最后一次给药后30小时处死动物,常规制片,油镜观察每只小鼠1000个嗜多染红细胞并记录出现的微核数,计算微核率(%)用Poisson检验进行统计分析。结果见表6。
表6 CA-1对小鼠骨髓细胞微核率的影响
组别 |
剂量(g/kg) |
动物数 |
观察细胞数 |
微核数 |
% |
CP对照组 |
0.0035 |
10 |
10000 |
173 |
17.3 |
空白组 |
- |
10 |
10000 |
12 |
1.2 |
溶剂组 |
- |
10 |
10000 |
13 |
1.3 |
高剂量组 |
5.0 |
10 |
10000 |
23 |
2.3 |
中剂量组 |
2.5 |
10 |
10000 |
17 |
1.7 |
低剂量组 |
1.25 |
10 |
10000 |
18 |
1.8 |
**P<0.01与各组比较有高度显著性差异
结论:CA-1对小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验结果显示,CA-1高、中、低三个剂量和空白对照、溶剂对照组微核发生率均在参考值范围(1-3%)与CP阳性对照组比较有高度显著性差异(P<0.01>,认为CA-1无致突变作用。
实施例1:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用工业乙醇50公斤加热回流提取2次,每次4小时,过滤,滤液浓缩,再过滤,滤液浓缩至块状,烘干磨碎,加入乙醇/乙酸乙酯(1∶5)(V/V)加热溶解冷却过滤,滤液浓缩粉碎成粉状物即有效部位206克,按粉状物与赋形剂重量比为1∶5的比例加入赋形剂,制粒压片。
实施例2:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用乙醇/水40公斤加热回流提取3次,每次3小时,过滤,滤液浓缩,再过滤,滤液浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇/乙酸乙酯(1∶4)(V/V)加热溶解冷却过滤,滤液浓缩粉碎成粉状物即有效部位300克,按常规胶囊制剂方法制成肠溶胶囊。
实施例3:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用60公斤水加热回流提取2次,每次4小时,过滤,除去残渣,浓缩后过夜放置,过滤,收集滤液,滤渣再用30%乙醇煮沸,冷却过滤,收集滤液,滤渣弃掉,合并两次滤液,浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇/乙酸乙酯(4∶1)(V/V)加热溶解冷却过滤,弃掉残渣,收集滤液,滤液通过吸附材料中性氧化铝,收集层析液,浓缩精制得有效部位310克,按有效部位与赋形剂重量比为1∶2的比例加入赋形剂,制粒压片。
实施例4:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用甲醇60公斤加热回流提取2次,每次4小时,过滤,除去残渣,浓缩后过夜放置,过滤,收集滤液,滤渣再用40%乙醇煮沸,冷却过滤,收集滤液,滤渣弃掉,合并两次滤液,浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇溶解后倾入搅拌加热的乙酸乙酯中,使其醇:乙酸乙酯=9∶1(V/V)然后放置冷却。过滤,弃掉残渣,收集滤液,滤液通过吸附材料中性氧化铝和层析硅胶套用,醇、酯液可大体校正比例为10-90%。收集层析,浓缩精制得有效部位320克,按有效部位与赋形剂重量比为1∶3的比例加入赋形剂,制粒压片。
实施例5:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用80公斤乙酸乙酯加热回流提取2次,每次4小时,过滤,除去残渣,浓缩后过夜放置,过滤,收集滤液,滤渣再用50%乙醇煮沸,冷却过滤,收集滤液,滤渣弃掉,合并两次滤液,浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇溶解后倾入搅拌加热的乙酸乙酯中,使其醇:乙酸乙酯=1∶9(V/V)然后放置冷却。过滤,弃掉残渣,收集滤液,滤液通过吸附材料中性氧化铝和层析硅胶套用,醇、酯液可大体校正比例为10-90%。收集层析液,浓缩精制得有效部位290克,按常规胶囊制剂配制方法制成肠溶胶囊。
实施例6:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用工业乙醇30公斤加热回流提取2次,每次4小时,过滤,除去残渣,浓缩后过夜放置,过滤,收集滤液,滤渣再用70%乙醇煮沸,冷却过滤,收集滤液,滤渣弃掉,合并两次滤液,浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇溶解后倾入搅拌加热的乙酸乙酯中,使其醇:乙酸乙酯=1∶4(V/V)放置冷却。过滤,弃掉残渣,收集滤液,滤液通过吸附材料中性氧化铝和层析硅胶套用,醇、酯液可大体校正比例为10-90%。收集层析液,浓缩精制得有效部位300克,按有效部位与赋形剂重量比为1∶4的比例加入赋形剂,制粒压片。
实施例7:
取露水草Cyanotis arachnoidea全草干燥粉碎后原料10公斤,用工业乙醇50公斤加热回流提取2次,每次4小时,过滤,除去残渣,浓缩后过夜放置,过滤,收集滤液,滤渣再用50%乙醇煮沸,冷却过滤,收集滤液,滤渣弃掉,合并两次滤液,浓缩至块状,烘干磨碎得粗品,粗品用乙醇溶解后倾入搅拌加热的乙酸乙酯中,使其醇:乙酸乙酯=1∶5(V/V)放置冷却。过滤,弃掉残渣,收集滤液,滤液通过吸附材料中性氧化铝和层析硅胶套用,醇、酯液可大体校正比例为10-90%。收集层析液,浓缩精制得有效部位310克,按有效部位与赋形剂重量比为1∶3的比例加入赋形剂,制粒压片。