CN106995838A - 解折叠邻近探针及其使用方法 - Google Patents

解折叠邻近探针及其使用方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及用于检测样品中分析物的基于邻位探针的检测分析，特别地涉及包括使用至少一组至少第一和第二邻近探针的方法，其中探针各自包含分析物‑结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合分析物，其中至少一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以通过裂解核酸域而解折叠产生至少一个可连接游离末端或与所述样品中另一个核酸分子互补的区域，其中当探针结合所述分析物时，解折叠所述发夹结构允许所述至少第一和第二邻近探针的核酸域直接地或间接地相互作用。

Description

解折叠邻近探针及其使用方法
本申请是申请日为2012年5月11日、申请号为201280034685.0、发明名称为“解折叠邻近探针及其使用方法”的中国发明专利申请的分案申请。
本发明涉及针对样品中的分析物的基于邻近探针的检测分析(“邻近分析”)，主要是邻近连接分析。本发明特别地涉及改进降低在复杂生物样品中出现的非特异性“背景”信号的方法，并简化所述分析。所述改进包括提供用于该测定的一个或多个修饰的“解折叠”邻近探针，其中一个或多个邻近探针的核酸域的至少部分“反应”或“功能”元件得到了保护(屏蔽或掩蔽)，避免了当与包括分析物的样品接触时其与其它核酸分子相互作用。解折叠的邻近探针的设计使得分析的至少一个邻近探针的核酸域包括一个或多个发夹环，从而使所述核酸域的反应(功能)元件的至少一部分避免与其它核酸分子相互作用。一旦邻近探针的分析物-结合域能够与分析物相互作用(即，同时结合分析物)，则由于“解折叠”发夹结构而可以从核酸域除去“保护”，能够使核酸域的反应元件与样品中的其它核酸域/分子以邻近依赖性方式相互作用。反应中至少一个邻近探针的核酸域的反应(功能)元件可以通过裂解反应解折叠，产生与所述样品中另一个核酸分子互补的至少一个游离末端或区域，其能够与样品中其它核酸域/分子相互作用。
因此，在本发明中，解折叠邻近探针的作用是阻止加入到检测反应的探针彼此相互作用，尽管其具有互补序列元件，即能够相互作用的核酸域。因此，邻近探针能够与彼此独立的它们的靶分子(即分析物)相互作用，并且仅在解折叠之后，显示出核酸域的反应元件(例如，互补区域)且允许相互作用。解折叠机制也确保在反应期间出现邻近探针核酸域的“新”反应元件。其为能够参与连接或延伸反应的反应元件的“新”反应元件(即，之前被屏蔽的元件)，例如呈连接或扩增模板或者呈连接或延伸的核酸分子。解折叠机制也可以获得核酸分子之间，例如邻近探针的核酸域或样品中存在的其它分子之间的非特异相互作用(例如，错配)的数量减少。因此，可观察效应是分析的特异性、灵敏性和效率都由此增加。本发明还提供一些解折叠邻近探针和包括所述解折叠邻近探针的试剂盒，用于邻近分析，特别是邻近连接分析和邻近延伸分析。
邻近分析依赖“邻近探测”的原理，其中通过同时结合多个(即两个或多个，通常两个、三个或四个)探针来检测分析物，所述的探针当通过结合分析物到达邻近(因此为“邻近探针”)时，使得信号生成。一般地，邻近探针中的至少一个包括连接于探针的分析物-结合域(或部分)的核酸域(或部分)，并且信号的生成涉及核酸部分和/或由其它探针携带的另外的功能部分之间的相互作用。因此，信号生成取决于探针之间(更具体地由它们携带的核酸或其它功能部分/域之间)的相互作用，因此仅当两个(或多个)必须的探针都结合于分析物时才出现，从而向检测系统提供改善的特异性。近年来发展了邻近探测的概念，现在基于该原则的许多分析在本领域是熟知的。例如，邻近连接分析(PLAs)依赖邻近探针与分析物的邻近结合，从而从连接反应产生信号，所述的连接反应涉及到邻近分析的核酸域或者由所述邻位分析的核酸域介导(例如，在其之间和/或通过其作为模板)。
因此，在邻近分析中可以使用邻近探针，所述的邻近探针结合分析物并具有核酸域或部分，其在所述分析物结合后以邻近依赖性方式相互作用，通常导致连接至少一个、优选地两个或多个核酸分子，以形成可检测的、优选可扩增的核酸检测产物，可以借助所述核酸检测产物检测所述分析物。
基于检测分析的邻近探针，特别是邻近连接分析通过将存在的该分析物转化为容易地可检测的或可定量的基于核酸的信号，从而允许灵敏地、快速地和便利地检测或定量样品中的一种或多种分析物，并且能够均质的或异质的形式进行。
本领域的邻近探针通常成对地使用，并且分别由对靶分析物具有特异性的分析物-结合域和与其偶联的功能域构成，所述功能域例如为核酸连接域。所述分析物-结合域可以是例如核酸“适体”(Fredriksson等人(2002)Nat Biotech20：473-477)或可以是蛋白质的，比如单克隆或多克隆抗体(Gullberg等人(2004)Proc Natl Acad Sci USA101：8420-8424)。每个邻近探针对的各自分析物-结合域可以对分析物上的不同结合位点具有特异性，所述分析物可以由单个分子或相互作用分子的复合物构成，或例如在靶分析物作为多聚体存在的情况下可以具有相同的特异性。当邻近探针对彼此紧密相邻时，这主要当两者结合于相同的分析物(其可以是相互作用分子的复合物)上的其各自的位点时发生，即当多个探针同时结合靶分析物时，功能域(例如核酸域)能够直接地或间接地相互作用。例如，核酸域通常可以通过连接反应结合形成新的核酸序列，其可以被加入反应中的夹板寡核苷酸作为模板，所述夹板寡核苷酸包含与邻近探针对的各自核酸域末端互补的区域。由此生成的新核酸序列用于报告样品中分析物的存在或量，并可以定性地或定量地检测，例如通过实时定量PCR(q-PCR)。
可选地，当邻近时，邻近探针的核酸域可以在一个或多个加入的寡核苷酸(其可以是一个或多个邻近探针的核酸域)的相互连接时作为模板而不是彼此连接，所述的相互连接包括使加入的线性寡核苷酸成圆形的分子内连接，例如基于所谓的锁式探针原理，其中类似于锁式探针的是，加入的线性寡核苷酸的末端通过杂交至模板而并列，以进行连接，在本文中为邻近探针的核酸域(在锁式探针的情况下为探针的靶核酸)。各种这样的分析形式在WO01/61037中描述。
WO97/00446和US6,511,809公开了邻近连接分析的不同形式，即首先借助特异性分析物结合试剂将分析物固定于固体基质。
同质邻位连接分析(即，在溶液中的)公开在WO 01/61037，WO 03/044231，WO2005/123963，Fredriksson等人(2002)Nat Biotech 20：473-477和Gullberg等人(2004)Proc Natl Acad Sci USA 101：8420-8424中。
虽然通常使用邻近探针对，但是在例如WO01/61037和WO2005/12963中描述了邻近探针检测分析的修饰，其中使用三个邻近探针检测单个分析物分子，第三探针的核酸域具有两个游离末端，所述游离末端可以结合(连接)至第一和第二探针的核酸域各自游离末端，从而变成夹在其间。在该实施方案中，需要两种夹板寡核苷酸对第一和第二探针的每个核酸域与第三探针的核酸域的连接进行模板化。
在WO2007/107743描述的一个进一步修饰中，为两个邻位探针的核酸域的连接作为模板的夹板寡核苷酸携带于第三邻位探针上。
不是所有邻近分析均基于连接。WO2007/044903公开了用于检测分析物的基于邻近探针的分析，所述分析依赖于释放的核酸裂解产物的形成和检测。某些描述的实施方案涉及的探针包括分析物结合部分和连接的酶，所述酶作用于连接第二探针的分析物结合部分的核酸部分，使得释放可检测的核酸裂解产物。
分析物检测分析，在某些实施方案中包括邻近探针样试剂，其中连接一个探针的分析物结合部分的聚合酶作用于连接第二探针的分析物结合部分的核酸部分，如在WO2009/012220中描述的。这些分析中，作为探针对的一个探针的部分的“锚定”聚合酶的作用导致游离在溶液中的模板的生成，所述模板通过加入的聚合酶而易于扩增。与锚定聚合酶不同，加入的聚合酶仅能够作用于由所述锚定聚合酶生成的模板，并且不直接作用于探针对的不含聚合酶的探针的核酸部分。根据邻近探测原理，加入的聚合酶的作用导致所生成模板的扩增，扩增的拷贝是可检测的并指示样品中分析物的存在。
除了对邻近探针检测分析的修饰，邻近探针自身结构的修饰都进行了描述，例如在WO03/044231中，其中使用了多价邻近探针。这样的多价邻近探针包括至少两个，最多100个分析物-结合域，所述分析物-结合域共轭至少一个、优选地多于一个核酸。
在许多不同的应用中，已证明基于邻近探针的检测分析，特别是邻近连接分析在特异性和灵敏地检测蛋白，例如弱表达或低丰度蛋白的检测中非常有用。然而，这样的分析在分析的灵敏度和特异性方面并非没有问题，并且存在改进空间。
常规邻近分析的灵敏度，例如如上所述的邻近连接分析，受到两个主要因素的限制：(i)分析物-结合域对靶分析物的亲和力，和(ii)由未结合的探针(特别是探针对)的随机邻位产生的非特异性背景信号。使用具有对分析物亲和力高的结合域的探针，灵敏度限于检测约6000个分子。传统上，为了实现低背景水平，必须使用非常低浓度的邻近探针。这排除了通过使用更高浓度的探针来补偿包含低亲和分析物-结合域的探针的任何尝试。因此，发现了这可以限制分析的灵敏度和能够得到定量结果的范围。
已经提出了用于降低非特异性背景信号的其它方法，比如将夹板(连接模板)寡核苷酸偶联于第三邻近探针和/或使用阻断剂比如阻断寡核苷酸，所述阻断寡核苷酸结合邻近探针上的核酸域的游离末端，直到被夹板寡核苷酸置换。仅当邻位探针结合于靶分析物时才容易发生置换(WO2007/107743)。其它降低背景信号的方法集中于改进对连接的核酸的检测。
然而，仍然有空间来改进背景信号的水平，来克服邻近分析的限制，特别是本领域已知的邻近连接试验。如上所述，目前已发现使用解折叠邻近探针可显著提高分析的灵敏度和特异性，因为其允许反应顺序进行，即以离散和/或可分离阶段进行。此外，在某些实施方案中，使用这样的解折叠邻近探针简化了分析方案，因为其允许所有可能的相互作用组分同时接触样品，而没有相互作用，即由于解折叠邻近探针的发夹结构而阻止了该解折叠邻近探针的核酸域的反应(功能)元件的相互作用。因此，在第一种情况下，邻近探针能够与样品相互作用，使得仅邻近探针的分析物-结合域可以与样品中的分析物相互作用。在允许邻近探针结合分析物(即，探针同时结合分析物)的充分条件下，所述解折叠邻近探针的核酸域可以被活化，即通过裂解反应解折叠发夹结构，以释放核酸域的反应元件，然后该反应元件可以以邻近依赖性方式相互作用。通过保护(屏蔽或掩蔽)分析的一个或多个邻近探针的核酸域以避免与样品中的其它核酸分子或其它组分反应，直到探针结合分析物，这有可能降低分析中存在的非特异背景信号。
虽然使用试剂阻断邻近探针的反应元件在用于检测样品中的分析物的方法中是熟知的，但是与之前描述阻断剂相比，在本发明中使用解折叠邻近探针和折叠结构的释放机制的性质提供独特且出乎意料的优点。
本发明是建立在检测单独的、序列特异性蛋白质-DNA-相互作用的分析的发展的基础上。然而，从本说明书显而易见的是，发现本发明的解折叠邻近探针可用于许多邻近探针分析，且不限于探测蛋白质-DNA-相互作用。实际上，本发明的方法可用于如下定义的检测样品中的任一种分析物。
作为背景技术，控制基因表达的一个基本方面是由蛋白质和核酸分子，例如转录因子、组蛋白等之间的相互作用引起。过去，已经通过方法比如电泳迁移位移分析和染色质免疫沉淀在大量细胞群中研究了这样的相互作用。虽然这种分析提供了有关结合一些DNA序列的蛋白质的信息，但是该数据仅提供所述细胞中相互作用的概述。在这种分析中不能检测到只在少量细胞中发生的任何相互作用，该相互作用产生的信号是来自大量细胞的平均信号。
应当理解，转录因子活性的表观遗传修饰或改变在控制基因表达方面起重要作用。实际上，这些假设位于将细胞转化成所谓的癌症干细胞(CSC)的初始事件中。通过研究当癌细胞进行上皮的-间充质转化时癌症发展或特异性转录因子活化期间以基因组DNA水平的蛋白质-DNA相互作用(PDI)，如表观修饰变化，可以鉴别CSC和转移性肿瘤集落的标记物。然而，由于CSC只代表包括来自患者活组织检查的肿瘤的所有细胞的一小部分，它们不能通过对全部细胞群求平均值的整体分析来鉴别。因此，需要能够以细胞和亚细胞分辨率研究细胞和组织中PDI的新方法。
为了解决该需要，本发明人研究了一种能够检测这种相互作用的邻近连接分析，其一个实例显示在图1中。该图描述了本发明的一个代表性的实施方案，显而易见的是基于使用包括可以裂解而解折叠的核酸域的邻近探针，有可能进行该分析的许多变化。
然而，图1中显示的步骤代表起始点，从该起始点可以描述本发明的其余部分。在这点上，图1中的分析包括具有能够结合(直接地或间接地)PDI复合物(即分析物)的蛋白质的域的第一邻近探针，所述PDI复合物偶联能够与第二邻近探针的核酸域相互作用的核酸域。在图1中显示的具体实施方案中，第一邻近探针为偶联核酸域的抗体，其中所述抗体直接地结合分析物，即其结合PDI复合物的蛋白质。
第二邻近探针包括能够结合(例如杂交)接近PDI复合物的蛋白质的PDI复合物的核酸的域。所述邻近探针的DNA-结合部分(分析物-结合域)偶联能够与第一邻近探针的核酸域相互作用的核酸域。然而，第二邻近探针的核酸域包括至少一个自身互补区域，使其形成阻止其于第一邻近探针的核酸域相互作用的茎环或发夹环。在图1中显示的具体实施方案中，第二邻近探针是可环状化的寡核苷酸，所谓的锁式探针。包括自身互补区域的锁式探针也称为“喇叭”探针，如下进一步定义的。
第一和第二邻近探针与样品接触，分析物-结合域(即，能够与PDI复合物相互作用的邻近探针域)允许特异性结合其各自的靶标。第二邻近探针与分析物的相互作用的特异性得到第一连接反应的证实，所述第一连接反应以PDI复合物的核酸作模板，产生环状寡核苷酸。然后，第二邻近探针的茎环(所谓的喇叭探针)解折叠(通过裂解反应)释放与第一邻近探针的核酸域互补的两个区域。第一和第二邻近探针的核酸域允许相互作用(即，杂交或退火)，并且第一邻近探针的核酸域充当第二邻近探针核酸域的释放的可连接末端的模板。第二邻近探针的核酸域的可连接末端可以以第二连接反应进行连接，产生环状寡核苷酸。所述连接反应(即，第一和第二连接反应)可以是直接连接，例如，如果末端彼此直接相邻，或者间接连接，例如如果在游离的可连接末端之间存在空间，则可以将“间隔”寡核苷酸加入到反应中，使得每个游离末端连接到间隔寡核苷酸(如图1所示)。所述间隔寡核苷酸包括至少一个与连接模板互补的区域，在中间存在邻近探针的核酸域的可连接游离端。可以例如通过滚环扩增(RCA)和将标记探针杂交至RCA产物来检测环状寡核苷酸的形成，由此检测两个邻近探针之间的相互作用。在某些实施方案中，RCA可以通过邻近探针的核酸域或分析物启动。
因此，应当看到使用至少一个解折叠邻近探针能够以控制的不同(离散的或可分离的)阶段进行反应。在上述实施方案，所述阶段可以视为：
(i)使邻近探针结合分析物；
(ii)第一连接反应；
(iii)解折叠受保护的邻近探针；
(iv)第二连接反应；和
(v)检测邻近探针之间的相互作用。
应当进一步看到，所述分析的组分可以同时与包含分析物的样品接触，并且在解折叠邻近探针的发夹解折叠之前，所述组分不会与邻近探针的核酸域相互作用。这些特征的组合，即反应可以分阶段进行，同时能够同时加入分析的相互作用组分，是特别有利的。本文描述的方法降低了分析方案的复杂性，同时还提高了邻近探针检测分析的灵敏度和特异性。此外，可知的是本发明的解折叠邻近探针可以用于任何合适的邻近探针分析，进一步阻止邻近探针核酸域的非特异性相互作用，因此降低了非特异性背景信号。
因此，在最广义上，可以看出本发明提供一种检测样品中分析物的方法，称为邻近分析，其中该方法包括使用至少一组至少第一和第二邻近探针，其中探针各自包含分析物-结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合分析物，其中至少一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以通过裂解核酸域而解折叠以产生与所述样品中另一个核酸分子互补的至少一个可连接游离末端或区域，其中当探针结合所述分析物时，解折叠所述发夹结构允许所述至少第一和第二邻近探针的核酸域直接地或间接地相互作用。
因此，显而易见的是，在本发明方法的一个特别优选的实施方案中，所述第一和第二邻近探针的核酸域在解折叠之后互相互补或与共用模板互补。
因此，解折叠允许的核酸域的相互作用可以彼此杂交或连接域，或者杂交共用模板(例如连接模板)。因此，应当看到共用模板可以是邻近探针的核酸域(即，“相互作用”域)可以各自杂交的核酸分子(例如寡核苷酸)。因此，同用模板因此包含用于核酸域杂交的分离的或不同的结合位点，因此它们可以同时结合相同的(即“共用”)分子(即，同时)。
因此，本发明的方法包括裂解核酸域以解折叠发夹结构，来产生或释放至少一个互补的可连接游离末端或区域的步骤。例如，在使探针结合分析物之后，核酸域可以裂解以解折叠发夹结构和允许核酸域的相互作用。
另一个角度来看，本发明的方法可以看作提供一种提高邻近分析的灵敏度和/或特异性的方法。以另一种方式表达，本发明可以看作提供一种降低邻近分析中邻近探针之间非特异性相互作用的方法。在另一个方面，所述方法可以看作降低邻近分析中的背景噪声或提高邻近分析中背景噪声与信号的比例。
如在下述详细描述的，本发明的一个进一步的方面是提供用于本发明的方法和一般邻近分析中的解折叠邻近探针，例如喇叭探针，其包括可以通过裂解核酸域而解折叠的发夹结构。特别地，这样的分析将是邻近连接分析，尽管本发明的这一方面不限于检测基于连接的邻近探针的核酸域之间的相互作用(例如，核酸结构之间的相互作用可以是基于杂交，例如在WO97/00446或WO01/61037中所公开的)。
例如，如在US6,558,928中描述的使用锁式探针(其中喇叭探针是一种特定类型)，或实际上使用任意环状核酸分子作为模板的滚环扩增，也可以用于产生独特的核酸分子和可以用于扩增现有的“信号”核酸分子(例如，由邻近探针连接分析产生的)或检测特定分析物，例如其中所述分析物是核酸分子。从下述说明书显而易见的是，使用方法可以产生滚环扩增方法可以应用于其的环状寡核苷酸。
因此，在一个优选的方面，本发明提供一种检测样品中分析物的方法，包括：
a)用至少一组的至少第一和第二邻近探针接触所述样品，其中探针各自包含分析物-结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合所述分析物，其中至少第一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以通过裂解核酸域而解折叠产生至少一个可连接游离末端，其中当探针结合所述分析物时，所述至少一个可连接游离末端能够与所述第二邻近探针的核酸域相互作用；
(b)使所述至少一个可连接游离末端直接地或间接地连接邻近探针的核酸域；和
(c)检测所述连接。
步骤(b)中的连接可以是分子间连接或分子内连接。因此，裂解释放的可连接游离末端可以连接不同邻近探针的核酸域，或者其可以连接同一邻近探针的核酸域的其它末端(其它末端也可以在裂解步骤中释放出，如下进一步讨论的)。
本发明的可选的优选的实施方案提供一种检测样品中分析物的方法，包括：
a)用至少一组的至少第一和第二邻近探针接触所述样品，其中探针各自包含分析物-结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合所述分析物，其中至少第一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以通过裂解核酸域而解折叠以产生与所述样品中的一个核酸分子互补的至少一个区域，所述互补的至少一个区域是至少能够杂交所述第二邻近探针的核酸域的连接模板，其中当探针结合所述分析物时，第二邻近探针的核酸域可利用所述第一邻近探针的所述杂交的连接模板介导的相互作用连接至邻近探针的核酸域；
(b)用邻近探针的核酸域直接地或间接地连接所述第二邻近探针的核酸域；和
(c)检测所述连接。
此外，步骤(b)的连接可以是分子内连接或分子间连接，即连接相同或不同邻近探针的核酸域。
本发明的一个进一步可选的实施方案提供一种检测样品中分析物的方法，包括：
(a)用至少一组的至少第一和第二邻近探针接触所述样品，其中探针各自包含分析物-结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合所述分析物，其中至少第一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以通过裂解核酸域而解折叠产生与所述样品中的一个核酸分子互补的至少一个区域，所述互补的至少一个区域是能够直接地或间接地杂交所述第二邻近探针的核酸域的引物，其中当探针结合所述分析物时，第二邻近探针的核酸域是用于所述第一邻近探针的核酸域延伸的模板；
(b)延伸所述第一邻近探针的核酸域；和
(c)检测所述核酸延伸产物。
虽然不希望受到理论的束缚，相信本发明的方法依赖解折叠邻近探针的核酸域中的发夹结构来保护(屏蔽或掩蔽)所述核酸域的反应元件以避免当没有结合到分析物的靶位点时与核酸域的其它邻近探针的相互作用。据认为该保护作用可减少邻近探针的核酸域之间的非特异性相互作用(即，在反应混合物中探针的非靶特异性接近引起的相互作用)，从而减少非靶特异性相互作用产生的信号量。
如下将更详细地描述的，本发明的一个特别优选的方面涉及其中核酸域的发夹结构被解折叠的解折叠邻近探针，优选地通过裂解该发夹结构，以释放两个游离末端，5′和3′末端，这两个游离末端都能够与样品中的其它核酸分子相互作用，优选地其中所述核酸分子是其它邻近探针的核酸域。
例如，在某些实施方案中，游离末端可以杂交一个或多个核酸域(共用模板)，该核酸域充当使游离末端彼此连接产生环状寡核苷酸的模板。这样的连接可以是直接的，即其中游离末端杂交彼此直接邻近的连接模板。或者，所述连接可以是间接的，即其中游离末端杂交连接模板，两者之间具有间隔，该间隔被“间隔”寡核苷酸填充，使得每个游离末端连接所述间隔寡核苷酸的一个末端。在某些实施方案中，所述游离末端两者之间的间隔可以通过例如在聚合酶反应中，使用连接模板作为延伸模板将游离3′末端延伸来“填充”。一旦游离3′末端已经延伸至接近游离5′末端，则两个末端可以通过连接反应结合。
在再进一步的实施方案中，两个游离末端中的一个或两个可以连接至其它邻近探针的核酸域，其中这样的连接以一个或多个连接模板(包含与邻近探针的核酸域的每个末端互补的区域的寡核苷酸)作为模板。在某些实施方案中，每个游离末端连接至不同邻近探针的核酸域。在另一个实施方案中，两个游离末端(5′和3′)连接第二邻近探针的核酸域的各自3′和5′末端。在这样的实施方案中，两个邻近探针的核酸域可以各自解折叠以释放5′和3′末端，允许每个域各自的各自末端连接在一起形成环状分子。因此，探针的核酸域的可连接5′和3′末端的释放可以看作产生了用于两个半环一起连接而环化的“半环”。本领域已知这样的半环作为两部分锁式探针的两个部分。在某些实施方案中，连接模板可以是其它邻近探针的核酸域。
在另一个实施方案中，两部分锁式探针的“半环”可以提供作为杂交第一邻近探针的核酸域的寡核苷酸。这样的杂交可以在用邻近探针接触样品之前或之后，即两部分锁式探针可以看作是邻近探针的核酸域的一部分，或者可以看作是加入到分析的另一种寡核苷酸。第二邻近探针可以是解折叠邻近探针，其中所述核酸域包括连接模板。因此，在邻近探针结合分析物之后，第二邻近探针可以例如通过裂解而解折叠，并且两个连接反应可以以第一和第二邻近探针的核酸域作为模板，得到环状寡核苷酸(参见例如图16)。
如上所述，本发明涉及解折叠的邻近探针的用途。以其最简单的形式，解折叠可以定义为释放出解折叠的邻近探针的核酸域的发夹结构的至少一部分，以得到至少一个与另一个核酸分子互补的可连接游离末端或区域。换言之，解折叠导致发夹结构开放。在某些实施方案中，解折叠可以通过分裂发夹结构的双链元件的至少一部分来实现。在其它实施方案中，发夹结构的双链元件可以保留，并且可以通过修饰例如裂解发夹结构的环实现解折叠。在一个特别优选的实施方案中，邻近探针的解折叠导致释放两个游离末端5′末端和3′末端。
显而易见的是，可以以多种方式实现解折叠。对于在方法中使用的不同邻近探针，可以使用不同的解折叠手段。虽然本发明的方法要求通过裂解解折叠邻近探针的至少一个核酸域，但是没有要求每个域通过解折叠裂解。因此，可以使用超过一个解折叠探针，但是只需要通过裂解解折叠一个探针。在本发明的一个优选的实施方案中，每个解折叠探针的解折叠都可以通过裂解核酸域实现。在其它实施方案中，至少一个域是通过裂解解折叠的，并且至少一个其它域是通过其它手段解折叠的。优选地，裂解发生的位点位于核酸域的发夹结构，即形成该发夹结构的一部分。如下所述，裂解优选地为酶催化裂解。
如上所述，本发明的解折叠邻近探针的核酸域包含至少一个发夹结构。发夹结构也可以称为发夹环或茎环，这些术语在本文中可互换地使用。发夹是可以在单链DNA或RNA分子中出现的分子内碱基对模式。当核苷酸序列中通常互补的同一链的两个区域以相反方向读取时，碱基对形成以不成对的环即单链端接的双螺旋(duplex)，出现发夹。其结构可以被描述为棒棒糖形。
在一个优选的方面，发夹没有形成邻近探针的核酸域的末端，即每个发夹的双螺旋由双螺旋的5′和3′末端的单链区域侧链。在另一个实施方案中，发夹可以是核酸域的一个末端，即双螺旋的一个末端(3′或5′末端)形成核酸域的末端。
如上所述，也可以通过分裂发夹结构的双链元件的至少一部分实现解折叠。这可以通过如下来实现：改变样品的条件，使得发夹结构不再是热力学有利的结构，例如通过改变溶液的温度或盐浓度。类似地，发夹结构可以通过修饰双螺旋中一个或多个核苷酸碱基以分裂氢键(所谓的Watson-Crick碱基配对)使两个链退火来去稳定化。例如，来自核苷酸的碱的裂解可以足够分裂双螺旋充分达到“解折叠”所述发夹。
或者，发夹结构可以解折叠开-竞争发夹结构的双链元件与“抗阻断”寡核苷酸。例如，在高浓度的抗阻断寡核苷酸的存在下，所述抗阻断寡核苷酸与发夹结构的链之一互补，抗阻断寡核苷酸和邻近探针的核酸域之间的相互作用(杂交)将对发夹结构有利。因此，在本发明的邻近分析中，“抗阻断”寡核苷酸可以是邻近探针的核酸域的形式，例如连接模板寡核苷酸或引物寡核苷酸。显而易见的是，当邻近探针全部绑定到分析物时，所述探针的核酸域有效地以高局部浓度存在。因此，如果邻近探针的核酸域之间的相互作用(杂交)比解折叠邻近探针的发夹结构的元件之间的相互作用更稳定(热力学有利的)，发夹结构将解折叠以恢复邻近探针的核酸域之间的相互作用。
在某些优选的实施方案中，邻近分析包括超过一个解折叠邻近探针。在这样的实施方案中，显然这样的解折叠邻近探针的发夹结构可以在同一反应中以不同的方式解折叠，例如第一解折叠邻近探针可以通过裂解而解折叠，第二解折叠邻近探针可以通过与另一个邻近探针的核酸域竞争而解折叠。例如，解折叠第一邻近探针可以产生互补区域，其引起第二邻近探针中发夹结构分裂。
在其它实施方案中，可以使用一个或多个解折叠邻近探针与“标准”非解折叠邻近探针的组合。在优选的实施方案，这样的标准邻近探针可以利用阻断寡核苷酸(下文进一步描述的)来保护(掩蔽或屏蔽)所述邻近探针的核酸域的反应元件，以使其与其它邻近探针的核酸域或样品中的其它组分的相互作用最小化。
根据本发明的方法，至少一个解折叠邻近探针通过裂解解折叠。
“裂解”在本文中广义地定义为包括使核苷酸链(即核苷酸序列)断裂或分裂的任何手段。因此，裂解可能涉及共价键断裂。这可以包括，但不要求核苷酸链裂解(即，链裂解或链切断)，例如通过磷酸二酯键裂解。
在某些实施方案中，解折叠邻近探针的核酸域的裂解涉及使连接核酸分子的相邻核苷酸残基的至少一个共价键断裂，例如水解磷酸二酯键。裂解优选地包括水解发夹结构的一个链中的一个或多个磷酸二酯键。因此，在一个特别优选的实施方案中，发夹结构包括裂解识别位点，例如被能够裂解核酸分子的一个或多个酶识别的序列。可以使用任何合适的酶来裂解所述发夹结构，以解折叠邻近探针的核酸域。
例如，发夹结构可以包括或可以被工程化或修饰以包括限制性核酸内切酶识别序列。在一个优选的实施方案中，例如其中发夹结构包括限制性核酸内切酶识别位点，所述限制性核酸内切酶将只裂解发夹结构的双螺旋部分的单个链。
在一个优选的方面，发夹结构可以被工程化以包括限制性核酸内切酶识别序列。例如，这可以通过使寡核苷酸(本文称为“限制性寡核苷酸”)杂交至发夹结构的单链环以包括所述环中的双螺旋来实现。所形成的双螺旋的至少一部分应当包括限制性核酸内切酶识别位点，其可以裂解导致解折叠发夹结构。可以使用任何合适的限制性核酸内切酶来解折叠发夹结构。在某些实施方案中，限制性寡核苷酸可以是邻近探针的核酸域的形式。
在本发明的再进一步的实施方案中，可以使用核酸外切酶降解发夹双螺旋的一个链，从而释放发夹的单链环，即解折叠探针。核酸外切酶可以具有5′或3′核酸外切酶活性，这取决于发夹结构的方向。
在其它实施方案中，裂解可以包括使核酸序列中一个或多个核苷酸之内的共价的键断裂。例如，当发夹结构包括尿嘧啶残基时，发夹结构中双螺旋的至少一部分可以通过除去一个或多个尿嘧啶碱基被分裂，即使用尿嘧啶-DNA糖基化酶从核酸裂解所述碱基。所述一个或多个尿嘧啶碱基的除去导致发夹双螺旋的两个链之间的一些氢键损失，引起丧失稳定性和核酸域的解折叠。
在某些实施方案中，裂解识别位点是通过产生核酸域实现的，其中发夹结构包括一个或多个尿嘧啶残基。在一个特别优选的实施方案中，可以用尿嘧啶-DNA糖基化酶(UNG)与能够识别双链DNA的脱嘌呤/脱嘧啶(AP)位点的核酸内切酶，例如核酸内切酶IV，结合处理来解折叠所述发夹结构。
在一个进一步优选的实施方案中，可以使用切口酶裂解发夹结构，且由此解折叠，其只裂解发夹结构的双螺旋中的一个链。切口酶是只裂解DNA双螺旋的单链的核酸内切酶。如上所述，在发夹结构的单链环中，裂解识别位点可以被工程化，例如通过使寡核苷酸退火(杂交)至所述环。
某些切口酶通过结合和识别特定核苷酸识别序列只在DNA分子的特定位点引入单链切口。已经发现了大量天然存在的切口酶，其中目前已经确定了至少四个切口酶的序列识别性质。切口酶描述在美国专利No.6,867,028中，将其全部引入本文作为参考，在本发明的方法中可以使用任何合适的切口酶。
在利用切口酶的某些优选的实施方案，在邻近探针的核酸域解折叠之后，切口酶从分析中被除去或灭活，以避免非预期的连接产物的裂解。
所述检测自身依赖于样品中分析物的存在，并检测两个(或多个)邻位探针与分析物结合(即，邻近探针同时结合分析物)时这样的探针之间的相互作用。因此，探针之间的相互作用(或更具体地，在其各自核酸域之间的相互作用)为邻近依赖性的；邻近探针一起结合到分析物使它们变得邻近，使得它们(或更特别地，其核酸域)可相互作用。因此，通过检测相互作用，例如连接反应(例如通过检测相互作用产物，例如连接反应的产物)，可以检测分析物。因此，在通常情况下邻近探针的核酸域之间的相互作用可导致产物的生成，所述的产物通常为核酸产物，可以对其进行检测以检测分析物。因此，在上述方法的步骤(c)中，通过检测所述连接(例如通过检测所述连接反应的产物)，可检测分析物。类似地，在其中检测步骤涉及检测延伸产物的实施方案，例如通过另一个邻近探针的核酸域作为最初的模板延伸引物，可以通过检测该延伸产物检测分析物。
如上可知，基于连接的邻近依赖性分析代表了本发明的优选的实施方案(即，其中用于检测方法中的至少第一和第二邻近探针包括核酸域，其中至少一个核酸域包括通过裂解可解折叠的发夹结构，并且其间的相互作用涉及连接反应)。一般来看，探针的核酸域可以直接地或间接地介导(例如参与)连接反应。这样的连接反应可以涉及邻近探针的核酸域的连接(例如，其中核酸域杂交共用模板)，和/或核酸域可以作为连接反应的模板(例如，其中核酸域互相互补)。
通过一个更具体的实例，在本发明的方法的一个实施方案中，邻位探针可以通过彼此相结合，例如通过连接而相互作用。所述相互作用可以通过检测结合产物来进行检测(相互作用产物；连接产物)。在该方法的一种形式中，所述核酸域的相互作用需要一个或多个连接模板(夹板)寡核苷酸与域结合，并介导其相互作用(具体地，在连接的情况下，所述夹板寡核苷酸杂交所述域，并充当连接反应的模板)，以及所述夹板促进或介导该相互作用。如从上述各种邻近分析和下述具体实施例的描述中可以认识到，在其它形式/实施方案中，所述夹板可以作为第三邻近探针的核酸域提供，和/或核酸域的连接可以是直接的(即，核酸域可以直接地彼此连接)，或间接的，即，它们可以间接地连接，例如经由间隔寡核苷酸的中介性；在一个这样的实施方案中，核酸域可以杂交到夹板寡核苷酸，并在它们各自的末端留下间隔，可通过间隔寡核苷酸或通过使用聚合酶延伸核酸域之一的末端(游离的3′端)填充该间隔。邻近连接分析的这样的“间隔填充”的实施方案在文献中有充分描述，例如在WO01/61037或在WO2007/107743中。
在一个特别优选的实施方案中，三个邻近探针的核酸域可以由两个连接模板(夹板)寡核苷酸介导而连接在一起，如图2所示。在该实施方案中，第一邻近探针的核酸域通过裂解解折叠，产生两个游离可连接末端5′和3′末端。每个游离末端分别连接第二和第三邻近探针的核酸域，每个连接都由连接模板寡核苷酸(即，共用模板)所介导。显而易见的是，第二和第三邻近探针的一个或两个都可以是解折叠邻近探针的形式。在其中所有的解折叠邻近探针都可以通过单一机制，例如裂解，来解折叠的实施方案中，在探针已经结合分析物之后，加入单一试剂，例如裂解酶，将引起核酸域解折叠，促进它们的相互作用。在其中解折叠邻近探针需要不同的解折叠机制的实施方案中，每个探针可以分别如上所述解折叠。解折叠的顺序性可以使样品中核酸分子之间非预期的相互作用最小化。
来自这样的反应的连接产物可以通过任何合适的手段检测，例如连接产物的部分或全部的PCR扩增，其中如下详细描述的检测扩增产物。
在一个进一步优选的实施方案中，在邻近探针结合分析物之后，第一邻近探针通过裂解解折叠，得到部分双链的核酸域，其中一个链包括两个游离可连接的末端(类似于锁式探针，如本文在别处描述的)。每个末端包括与第二邻近探针的核酸域互补的区域。第二邻近探针的核酸域充当介导第一邻近探针的两个游离末端连接以形成环状寡核苷酸的连接模板(看例如图3A)。该环状寡核苷酸，即连接产物可以以任何合适的手段例如滚环扩增来检测。图3A中显示的实施方案可以看作是通过裂解所述解折叠探针释放环状寡核苷酸，即锁式探针。虽然没有在图3A或图4中描述，但是显而易见，在一个代表性的实施方案中，第二邻近探针的核酸域可以充当介导第一邻近探针的两个游离末端连接的连接模板，和充当用于扩增连接产物的引物，例如用于滚环扩增的引物。
如下更详细描述的，图3B显示两部分锁式探针的释放，所谓的连接的两个半环的释放，一个来自两个邻近探针的每个核酸域(或者，释放的一个半环连接第二邻近探针的核酸域提供的一个半环)。
在某些实施方案中，解折叠邻近探针的游离末端的连接可以是间接地连接，例如经由一个或多个间隔寡核苷酸，或者在“间隔-填充”延伸寡核苷酸的3′末端之后，如在本文别处描述的。
在进一步实施方案，第一或第二邻近探针的核酸域之一可以充当滚环扩增的引物。因此，没有直接参与连接反应的第一邻近探针的核酸域的部分可以具有可延伸的3′末端。或者，在连接反应之后，第二邻近探针的连接模板也可以充当引物。在另一个实施方案中，用于扩增环状寡核苷酸的引物可以提供在第三邻近探针上。
因此，在某些实施方案中，可能期望没有连接的第一邻近探针的核酸域的部分，或者释放不具有能够使其充当引物的游离3′末端的连接模板((即，它们具有游离5′末端且不能充当引物))的第二邻近探针的核酸域的部分。因此，引发连接产物(例如环化寡核苷酸)的扩增只能通过加入引物或例如在第三邻近探针(其也可以解折叠)上提供的引物来进行。
当加入合适的聚合酶(如有必要时，以及加入引物)时，可以通过环化的寡核苷酸的滚环扩增(RCA)检测样品中分析物的存在。多联体RCA产物提供用于检测分析物的标记物“信号”，所述多联体RCA产物只能当邻近探针邻近时结合，即形成用于杂交或寡核苷酸和/或连接反应的模板时才能形成。所述信号可以通过本领域已知的(参见下述进一步的实例)及如US7,320,860中教导的任何合适的手段，例如将标记的探针杂交到在整个多联体RCA产物中重复的报导体域序列来检测。如上所述，使用包括具有发夹环的核酸域的邻近探针意味着邻近探针的核酸域不能彼此相互作用，直到发夹结构被解折叠。因此，在代表性的实施方案中，可以将检测邻近探针相互作用例如扩增相互作用产物可需要的另外的试剂与邻近探针同时加入到反应中，由此避免以单独步骤中加入特定检测试剂的需要。使邻近分析的步骤数最小化可以促进减少进行该分析需要的全部次数，即提高分析效率，并且有助于提高信噪比，即有助于减低非特异性背景。
在一个进一步的实施方案中，第二邻近探针的核酸域可以包括部分双链的核酸分子，其中一个链具有两个游离可连接末端。在该实施方案中，分析中存在连接模板寡核苷酸介导第一和第二邻近探针的核酸域的连接(直接地或间接地)，以生成环状寡核苷酸(参见图3B)。因此，所述连接模板寡核苷酸各自具有与第一和第二邻近探针的两个核酸域的一个末端互补的区域。例如，第一连接模板寡核苷酸可以具有与第一邻近探针的3′末端和第二邻近探针的5′末端互补的区域，而第二连接模板寡核苷酸可以具有与第一邻近探针的5′末端和第二邻近探针的3′末端互补的区域。因此，所述连接模板可以被看作是邻近探针的核酸域同步地或同时地结合的共用模板，即在该实施方案(和涉及共用连接模板的其它实施方案中)，所述连接模板包括与每个核酸域互补的不同区域。如上所述，超过一个分析的邻近探针可以是解折叠的邻近探针，参见例如图4和5。而且，一个或两个连接模板寡核苷酸都可以作为邻近探针的核酸域提供(参见例如图6)，其也可以是解折叠邻近探针。
在一个进一步的具体实例中，邻近探针的一个或多个核酸域可以充当一个或多个加入的寡核苷酸的连接中的模板。在一个这样的实施方案中，在解折叠一个或多个邻近探针，例如通过裂解所述发夹，之后，首先加入的寡核苷酸可以杂交到所有核酸域，也可以加入一个或多个仅杂其中一个交域的其它寡核苷酸，例如可以与每个核酸域结合的寡核苷酸，每个寡核苷酸邻近第一寡核苷酸的每个末端，所述加入的寡核苷酸可以在核酸域作为模板的反应中与第一寡核苷酸连接。而且，可以通过任何合适的手段检测连接产物。
在可选的实施方案中，加入的寡核苷酸可以通过连接反应环化(即，类似于如上所述锁式探针)。因此，举例来说，连接于各自探针的分析物特异性结合部分的邻位探针对(其中至少一个是通过裂解解折叠的解折叠邻近探针)的核酸域可分别与加入的线性寡核苷酸(类似与“锁式探针”)的(i)5′和3′端，和(ii)所述末端之间的区域具有互补性。当邻近探针对的两个探针均由于结合相同分析物而邻近时，在解折叠邻近探针的发夹解折叠之后，各自探针的核酸域能够与加入的寡核苷酸(可视为共同模版)的各自部分进行杂交。与加入的寡核苷酸的5′和3′端互补的核酸域可以作为并列杂交和所述末端的连接的模板(加入合适的连接酶时)，导致加入的寡核苷酸的环化。然后，使用其它核酸域作为引物，通过滚环扩增(RCA)检测该环化的寡核苷酸；所述对中的另一个探针的核酸域具有3′游离末端，所述的核酸域杂交加入的寡核苷酸区域的连接末端之间。在加入合适的聚合酶时，可以通过环化寡核苷酸的滚环扩增(RCA)来检测样品中的分析物的存在。仅当邻近探针邻近结合时才能够形成的多联体RCA产物为分析物的检测提供了“替代”标志物。
应当理解，单一加入的寡核苷酸能够被两个寡核苷酸取代，所述两个寡核苷酸可连接到一起形成环(这样的连接可以由一个或两个核酸域作为模板，但是所述域中的一个应当具有游离3′端以充当引物)。或者，单一加入的寡核苷酸可以是预形成环的形式，因此不需要连接反应。例如，所述预形成环可以杂交第一邻近探针的核酸域，使环状寡核苷酸与能够充当用于RCA的引物的第二邻近探针的核酸域邻近。在这些实施方案中，所述邻近探针的一个或两个可以是解折叠邻近探针。因此，预形成环可以仅在解折叠之后杂交或仅作为在解折叠之后RCA的模板，或两者。
邻近探测反应也可通过利用两个游离3′端来进行，一个在每个邻位探针上并具有弱的互补性，当邻近时(在至少一个解折叠邻近探针解折叠之后产生互补区域)，DNA聚合酶可以通过加入dNTP延伸这些末端，从而形成可检测的DNA模板，如在7,306,904和6,511,809号美国专利中所述的。
在再一个进一步的证实本发明方法的潜在复杂性的特定实施方案中，可以使用至少四个邻近探针，其中任一个或多个所述邻近探针可以是如本文定义的解折叠邻近探针。一个实例为如在图14中显示的，其中第一邻近探针的核酸域包括用于滚环扩增的引物。第二邻近探针的核酸域，例如当通过裂解解折叠时，能够形成环状寡核苷酸(即，当裂解时，其可以释放锁式探针，或环状寡核苷酸)，并且包括与由其杂交的预形成环状寡核苷酸互补的区域。第三邻近探针的核酸域包括与第二邻近探针的核酸域互补的区域，使得其在裂解之后能够介导第二邻近探针的核酸域的游离可连接末端的相互作用，即第三邻近探针的核酸域包括连接模板。第四邻近探针的核酸域包括与杂交至第二邻近探针的核酸域的预形成环状互补的区域，以便形成裂解识别位点，优选限制性核酸内切酶裂解位点。
因此，在该实施方案中，一旦邻近探针结合分析物，则核酸域可以如本文在别处描述的解折叠。优选地，至少第二邻近探针的核酸域通过裂解解折叠，使得释放两个游离可连接末端，即裂解核酸域使得生成部分杂交的核酸的两个单链，其中一个核酸链包括保持杂交连接于分析物-结合域的母体核酸链的一部分的中间区域。
因此，只有当结合分析物时，四个邻近探针的“解折叠”核酸域可以基于如上所述相互作用域而相互作用，如图14所示。第二邻近探针的核酸域可以连接形成环状寡核苷酸，其中所述连接以第三邻近探针的核酸域作为模板。虽然第一邻近探针的核酸域可以杂交连接的环状寡核苷酸，但是第一核酸域的核酸域的延伸(使用第二邻近探针的连接的环状寡核苷酸作为RCA的模板)受到存在的预形成环状寡核苷酸的抑制，所述预形成环状寡核苷酸杂交第二和第四邻近探针的核酸域。然而，在预形成环状寡核苷酸和第四邻近探针的核酸域之间的相互作用(杂交)所形成的裂解识别位点裂解时，RCA反应可以进行，即裂解导致预形成环状寡核苷酸的线性化。然而，线性化的预形成环状寡核苷酸包括核酸外切酶嵌段(如下详细描述的)，其阻止该寡核苷酸充当RCA的引物。因此，只有当第四邻近探针的核酸域已经解折叠且允许杂交第二邻近探针的连接的环状寡核苷酸，才可以进行RCA。RCA产物的检测相应于第二邻近探针的核酸域的连接，由此发出样品中存在分析物的信号。
可以在本文描述的任何邻近分析中使用核酸外切酶嵌段，其中其用于阻止邻近探针的一个或多个核酸域充当引物，例如以确保经由合适的引物实现核酸延伸，所述合适的引物可以是邻近探针或游离核酸分子的核酸域。其也可用于阻止核酸域生成不需要的延伸产物。例如，在其中分析物-结合域是核酸分子(参见例如图7和8)的实施方案中，将核酸外切酶嵌段引入没有用作引物的核酸中是有用的，所述引物用于检测邻近探针的核酸域之间相互作用，例如用于避免核酸的延伸，其可能引起附近结合的类似构建物向下游移位。在代表性的实施方案中，有可能同时检测多联的单个核酸上的几个区域(例如，使用图7和8中图示的邻近探针)，并且核酸分析物-结合域的延伸可引起邻近探针的下游结合的其它邻近探针复合物移位。
核酸外切酶嵌段在利用具有3′核酸外切酶活性的聚合酶的分析中特别地有用，例如滚环扩增反应，尽管阻止核酸分子用作引物的其任何修饰都将是合适的，例如阻止核酸被聚合酶识别。在一个代表性的实施方案中，滚环扩增有利地利用具有3′核酸外切酶活性的聚合酶，例如Phi29，其中所述核酸外切酶的活性是沿着链从3′到5′，而聚合酶延伸引物是从5′到3′。如果所述酶遭遇连接到DNA的阻断基团，其阻止了所述酶起作用。因此，包含阻断基团的核酸分子不能起用于核酸延伸的引物作用。可以使用任何合适的阻断基团，比如核苷酸修饰，例如修饰具有阻止聚合酶结合引物的基团的核苷酸，例如通过空间位阻修饰，例如生物素或酶不能处理的基团。在代表性的实施方案中，对于待阻断的核酸分子，例如待阻断的核酸外切酶，可以引入本领域已知的任何合适的修饰，比如2′O-Me-RNA残基、锁核酸(LNA)、肽核酸(PNA)、硫代磷酸酯修饰的核酸、核酸之间的聚乙烯基接头骨架段等。已有一些修饰核酸使得它们是核酸外切酶抗性的和/或不会起引物作用的手段，并且预期本发明的方法不限于上述实例。
如上所述，分析物-结合域可以是靶分析物的任何结合配偶体，并且其可以是直接或间接结合配偶体。因此，其可以直接地结合靶分析物，或经由中间分子或结合靶分析物的结合配偶体间接地结合，所述分析物-结合域结合所述中间分子(结合配偶体)。特别地，分析物-结合域或中间结合配偶体是分析物的特异性结合配偶体。结合配偶体是能够结合其靶标例如靶分析物的任意分子或实体，以及特异性结合配偶体是能够特异性结合其靶标(例如靶分析物)的配偶体，即结合配偶体以比样品中的其它组分更高的亲和力和/或特异性结合靶标(例如分析物)。因此，与靶分析物的结合可以区分于非靶分析物；特异性结合配偶体不与非靶分析物结合或以可忽略的或不可检测的或任意该非特异性结合的方式结合，如果发生了则可以区分。靶分析物及其结合配偶体之间的结合通常是非共价的。
在其中邻近探针经由中间分子结合分析物的某些实施方案中，可以采用中间分子预培养邻近探针。例如，在其中邻近探针是结合其它邻近探针的核酸域的喇叭探针(如在本文别处描述的)的实施方案中，所述其它邻近探针直接地结合靶分析物，则该喇叭探针可以预杂交到其它邻近探针的核酸域。在该实施方案中，喇叭探针可以看作是形成其它邻近探针的核酸域的一部分。在一个优选的实施方案中，喇叭探针没有预杂交其它邻近探针的核酸域。这样的表示描述在图11中。在这样的实施方案中，喇叭探针可以看作第一邻近探针(其间接地结合分析物)。在这样的条件下，直接地结合分析物的两个邻近探针可以看作第二和第三邻近探针。另一个角度来看，喇叭探针可以看作是“第三”邻近探针的核酸域的一部分。
可以选择分析物结合域以对靶分析物具有较高的结合亲和力。较高的结合亲和力是指结合亲和力至少为约10-4M，通常至少约10-6M或更高，例如10-9M或更高。当作为邻近探针的一部分存在时，分析物结合域可以是任何多种不同类型的分子，只要其对靶分析物显示出所需的结合亲和力。在其它实施方案中，分析物结合域可以是配体，所述配体对其靶分析物具有中等或甚至较低的亲和力，例如低于约10-4M。
因此，邻近探针的分析物结合域可以是能够选择性地结合靶分子的任何分子。例如，所述结合域可选自蛋白质，比如单克隆或多克隆抗体、凝集素、可溶性细胞表面受体、来自噬菌体展示或核糖体展示的组合地衍生蛋白、肽、糖类、核酸，比如包括靶核酸的互补序列的适体或核酸分子，或其组合。在本发明的一个优选的实施方案中，分析物结合域为蛋白质，优选抗体或其衍生物或片段。
在另一个优选的实施方案中，邻近探针的分析物-结合域是核酸分子。邻近探针的分析物-结合域可以由核糖核苷酸和/或脱氧核糖核苷酸以及合成核苷酸残基构成，它们是能够参与沃森-克里克类型或类似碱基对相互作用的。因此，核酸域可以是DNA或RNA或其任意修饰物，例如PNA或含有非核苷酸骨架的其它衍生物。在某些实施方案中，分析物-结合域可以包括核酸外切酶嵌段，使其不能用作核酸延伸反应中的引物，即不能作为引物被聚合酶所识别。
其中邻近探针的分析物-结合域是核酸分子的如上所述邻近连接反应的实例显示在图7和8中。虽然这些实例描述了其中所有邻近探针均为解折叠邻近探针的分析，但是应当理解本发明涵盖其中仅仅一个邻近探针是通过裂解可解折叠的解折叠邻近探针的分析。然而，在一个优选的实施方案中，超过一个邻近探针是解折叠邻近探针。在一个特别优选的实施方案中，反应中的所有邻近探针都是解折叠邻近探针。然而，如上所述，解折叠邻近探针的发夹结构可以以不同的方法解折叠。在一个优选的实施方案中，反应中的所有解折叠邻近探针的核酸域都以同样的方法解折叠，优选通过裂解。
在一个实施方案中，当至少一个邻近探针的分析物-结合域是核酸时，至少一个邻近探针是锁式探针，即可环化寡核苷酸。在一个特别优选的实施方案中，锁式探针包括至少一个发夹结构，即所谓的喇叭探针。
因此，喇叭探针是一种特定类型的解折叠邻近探针，可以定义为寡核苷酸，包括：
(i)第一域，其包括与第一目标序列互补的两个区域，其中所述第一互补区域位于寡核苷酸的5′末端，所述第二互补区域位于寡核苷酸的3′末端，并且其中所述互补区域杂交第一目标序列，使得5′和3′末端是直接地或间接地可连接的；
(ii)第二域，其包括与第二目标序列互补的两个区域，其中至少一个所述互补区域的至少一部分与寡核苷酸之内的序列互补，使得其形成发夹结构的一部分，该发夹结构抑制所述互补区域杂交第二目标序列；
其中所述发夹结构的解折叠能够使第二域的互补区域杂交第二目标序列。
任选地，其中当裂解而解折叠所述发夹时，第二域的互补区域能够杂交第二目标序列，使得5′和3′末端直接地或间接地可连接。更特别地，第二域的互补区域位于通过裂解探针释放的第二域的5′和3′末端。
在其中第一和/或第二域的区域杂交其各自靶标使得它们是间接地可连接地，即5′和3′末端之间存在间隔的实施方案中，所述间隔可以被间隔寡核苷酸填充或者通过延伸3′末端直到其直接地连接第二域的5′末端来填充。
在本发明的方法中，第一域优选地为分析物-结合域，其直接地结合分析物或者间接地即经由中间分子结合分析物，所述中间分子例如能够特异性结合如上定义的的靶分析物或分析物-结合域的适体，所述靶分析物或分析物-结合域偶联至包括第一目标序列的核酸分子。
类似地，第二域优选地为核酸域(即，邻近探针的核酸域)。探针的第二靶标可以是如本文定义的第二邻近探针的核酸域。
与“标准”锁式探针的单一连接相比，形成本发明的一个方面的如本文描述的喇叭探针是特别有利的，因为它们可以利用两个邻近依赖性连接反应生成环状寡核苷酸。据信另一个连接反应提高了邻近探针分析的特异性和选择性。
在一个优选的实施方案中，所述喇叭探针包括两个发夹结构，例如其中第二域的两个所述互补区域的至少一部分与寡核苷酸之内的不同序列互补(参见，例如图9)。所述发夹结构的解折叠能够使第二域的互补区域杂交第二目标序列。
因此，本发明的喇叭探针可用于检测样品中分析物的方法中。在本发明的一个方面，当分析物是核酸分子时可以使用一个或多个喇叭探针。例如，喇叭探针的第一和第二目标序列可以存在于单个核酸分子中。图15描述了一个喇叭探针，其中第一域的第一和第二互补区域杂交分析物(核酸分子)中的第一目标序列，其为连接第一域的模板。探针通过例如裂解来解折叠，其能够使喇叭探针的第二域的两个区域杂交核酸分析物中的第二目标序列。在该实施方案中，第二目标序列作为连接第二域的模板，其得到可以例如通过RCA检测的环状寡核苷酸。显而易见的是，可以使用两个喇叭探针进行类似的反应，参见例如图10。在该实施方案中，包括每个喇叭探针的第一目标序列的核酸域存在于单个核酸分子上，并且每个喇叭探针的第二域的一个互补区域的第二目标序列存在于连接模板寡核苷酸中。
因此，本发明的一个进一步的方面是提供至少一个喇叭探针在检测样品中核酸分析物中的用途，其中所述核酸分析物是至少部分单链的。
以另一种方式表达，本发明提供一种用于检测样品中部分单链核酸分析物的方法，包括：
a)用至少一个喇叭探针接触所述样品，所述喇叭探针包括：
(i)第一域，其包括与第一目标序列互补的两个区域，其中所述第一互补区域位于寡核苷酸的5′末端，所述第二互补区域位于寡核苷酸的3′末端，并且其中所述互补区域杂交第一目标序列，使得5′和3′末端是直接地或间接地可连接的；
(ii)第二域，其包括与第二目标序列互补的两个区域，其中至少一个所述互补区域的至少一部分与寡核苷酸之内的序列互补，使得其形成发夹结构的一部分，该发夹结构抑制所述互补区域杂交第二目标序列；
其中所述发夹结构的解折叠能够使第二域的互补区域杂交第二目标序列；
(b)当至少一个喇叭探针结合所述分析物时，直接地或间接地连接所述第一域的第一和第二互补区域；和
(c)检测所述连接。
在某些实施方案中，所述至少部分单链核酸分析物包括分别与喇叭探针的第一和第二域互补的第一目标序列和第二目标序列。因此，在一个优选的实施方案中，所述方法也包括当至少一个喇叭探针结合所述分析物时，直接地或间接地连接第二域的第一和第二互补区域。
在其它实施方案中，所述至少部分单链核酸分析物包括至少一个与每个喇叭探针的第一域互补的第一目标序列。因此，在一个优选的实施方案中，其中所述方法使用超过一个喇叭探针，每个喇叭探针的第二域的一个互补区域的第二目标序列存在于连接模板寡核苷酸中，该连接模板寡核苷酸可以形成核酸分析物的一部分。因此，在某些实施方案中，喇叭探针的第二域的第一和/或第二互补区域连接至另一个喇叭探针的第二域的第一和/或第二区域。
在一个特别优选的实施方案中，核酸分析物是完全单链的的。如有必要，可以通过本领域已知的任何合适的手段，例如酶消化/降解、加热变性等使核酸分析物变成部分或完全单链。在用至少一个喇叭探针接触样品之前、之后或同时，可以使核酸分析物变成部分或完全单链。优选地，在用所述样品接触至少一个喇叭探针之前，使核酸分析物变成部分或完全单链。
本发明的另一个方面涉及解折叠邻近探针，包括偶联核酸域的分析物-结合域(如本文定义的)，其中所述核酸域包括：
(i)至少一个与目标序列互补的区域；和
(ii)自身互补的区域，使得其形成发夹结构，该发夹结构抑制所述至少一个互补区域杂交目标序列；
其中发夹结构的解折叠产生部分双链的核酸域，其包括游离5′和3′末端且能够使核酸域的所述至少一个互补区域杂交目标序列。
在一个代表性的实施方案中，解折叠邻近探针的核酸域可以被裂解，从而生成核酸的两个单链，其彼此部分杂交，其中一个核酸链包括保持杂交连接于分析物-结合域的母体核酸链的一部分的中间区域。
在一个优选的实施方案中，上述解折叠邻近探针的分析物-结合域不是核酸。
上述给出的解折叠邻近探针用于如本文描述的本发明的方法中。因此，在一个实施方案中，目标序列包括连接模板的一部分，其中所述连接模板可以是邻近探针的核酸域的形式。或者，所述连接模板可以是游离的寡核苷酸，即未偶联分析物-结合域。
在一个进一步的实施方案中，部分双链的核酸域的游离5′和3′末端可以直接地或间接地连接形成环状寡核苷酸。在另一个实施方案中，部分双链的核酸域的5′末端可以连接其它邻近探针的核酸域的3′末端。在另一个或可选的实施方案中，部分双链的核酸域的3′末端可以连接其它邻近探针的核酸域的5′末端(参见，例如图2)。
显而易见的是，不同类型的邻近探针可以组合用于本发明的方法中。例如，第一邻近探针的分析物-结合域可以包括抗体或其片段，第二邻近探针的分析物-结合域可以包括核酸，例如第二邻近探针可以是喇叭探针。在一个进一步代表性的实例中，第一邻近探针的分析物-结合域可以包括凝集素，第二邻近探针的分析物-结合域可以包括可溶性细胞表面受体。本文涵盖所有可能的组合。
类似地，本发明的方法也涵盖核酸域的不同组合。例如，第一邻近探针可以是解折叠探针，第二邻近探针可以不包括发夹结构。类似地，在某些实施方案中，第三、第四等邻近探针可以不包括发夹结构。或者，所有邻近探针都可以是解折叠邻近探针。本发明的方法涵盖任何这样的组合。
在特别优选的实施方案中，至少第一和第二邻近探针的分析物-结合域包括抗体或其片段。在一个进一步优选的实施方案中，至少第一和第二邻近探针包括喇叭探针，参见例如图10。在再一个优选的实施方案中，第一邻近探针是喇叭探针，第二邻近探针是非喇叭探针，参见例如图1。在某些实施方案中，喇叭探针间接地结合分析物，例如经由其它(例如“第三”)邻近探针的核酸域(参见图11)。
本发明的方法涵盖的任何间接连接反应都可以涵盖使用间隔寡核苷酸。因此，在利用喇叭探针的实施方案中，第一和第二连接反应都可以涉及间隔寡核苷酸(参见例如图12)。在本发明的多个实施方案，即其中在单个分析中检测多于一种分析物时，这是特别有利的，其中所述间隔寡核苷酸可以包括独特的“标记物”或识别序列(例如，条码序列，或特定检测探针的结合位点)以允许单独检测和/或定量样品中的各种分析物。因此，在多重分析中，每个邻近探针组可以包括不同的标记物，并且检测所述探针的相互作用，即检测每种分析物可以是平行检测(即同时)，例如使用用不同可以杂交其各自标记物的不同荧光团标记的寡核苷酸。或者，可以使用连续可视化反应检测每种标记物(因此，每种分析物)，其中每个反应可以通过例如反萃取或漂白步骤隔开。适用于本发明的方法的连续可视化反应的方法是本领域已知的，例如等人，2009(A single molecule array fordigital targeted molecular analyses.Nucleic Acids Res.2009Jan；37(1)：e7)，等人，2002(Sequential immunofluorescence staining and image analysisfor detection of large numbers of antigens in individual cellnuclei.Cytometry，47(1)：32-41，2002)将其并入引入作为参考。在本发明的某些代表性的实施方案中，可以平行检测多种分析物。在本发明的其它代表性的实施方案中，可以顺序检测多种分析物。
因此，在单个连接产物生成中利用超过一种间隔寡核苷酸的实施方案可以加入超过一种标记物，因此所述连接是例如双标记的。在其它实施方案中，本发明的邻近探针的核酸域可以包括标记物序列，并且间隔寡核苷酸的连接引入其它标记物序列。
在这方面，在某些实施方案中，间隔寡核苷酸可以包括与连接模板互补的两个区域，其中所述区域被与连接模板不互补的序列分开。因此，与连接模板互补的两个区域分别位于间隔寡核苷酸的5′和3′末端。因此，与连接模板没有互补的序列形成环或凸出(参见例如图13)，并且可以包括标记物序列，例如条码序列。
本发明的解折叠邻近探针的一种益处是未反应的探针的解折叠核酸域，例如没有结合其靶分析物的探针，可以阻止参与可产生不需要的背景信号的任何不需要的反应。例如，本领域已知具有游离3′末端的未反应的寡核苷酸探针(例如，没有环化的锁式探针)可能参与引发不需要的延伸反应，包括不需要的扩增反应(例如，PCR或RCA反应)，例如引起非特异性序列的不期望的扩增。本领域进一步已知，所述发夹可以包括在这样的探针中，以便使未反应的探针“失活”而防止这种不需要的活化产应。因此，当未反应的探针中的3′末端参与发夹结构时，可以使用探针的其余部分作为模板延伸3′末端。这样的延伸稳定了所述发夹，且消除了未反应的探针起引物作用的能力(在反应的探针中，当与其靶标反应时发夹打开)。这样的系统描述在US 6,573,051(Alsmadi等天)和WO 03/012119中。应当看到，根据本发明的邻近探针的解折叠核酸域可以与上述“自毁探针(”类似的方式进行设计，使得任何未反应的探针的解折叠核酸域可以使用域序列的一部分作为模板从3′末端延伸出，以便稳定发夹结构。
术语“检测”在本文广泛地使用，以包括测定分析物存在的任何手段(即，如果其存在与否)，或测量分析物的任意形式。因此，“检测”可以包括以各种方式测定、测量、评估或分析分析物的存在或不存在或量或位置。包括定量和定性测定、测量或评估，包括半定量。这样的测定、测量或评估可以是相对的，例如当对样品中两种或多种不同的分析物进行检测时，或绝对的。同样的，当用于定量样品中靶分析物时，术语“定量”可以指绝对或相对定量。绝对定量可以通过包含已知浓度的一种或多种对照分析物和/或将检测到的靶分析物水平与已知对照分析物进行对比(例如，通过生成标准曲线)来实现。或者，相对定量可以通过比较两种或多种不同靶分析物之间的检测水平或量来实现，以提供两个或多个不同分析物的相对定量，即相对于彼此。
“分析物”可以是期望通过本发明的方法检测的任意物质(例如分子)或实体。所述分析物是本发明的分析方法的“靶标”。因此，分析物可以是期望检测的任意生物分子或化学化合物，例如肽或蛋白，或核酸分子或小分子，包括有机和无机分子。所述分析物可以是细胞或微生物，包括病毒或其片段或产物。因此，可以看出分析物可以是任何物质或实体，其中可以形成特异结合配偶体(例如亲和结合配偶体)。所需要的是分析物能够同时结合于至少两个结合配偶体(更特别地，至少两个邻位探针的分析物-结合域)。基于邻近探针的分析，比如本发明的分析，已经发现在蛋白或多肽的检测中有着特定的应用。因此，特别感兴趣的分析物可以包括蛋白质分子比如肽、多肽、蛋白或朊病毒或包括蛋白或多肽组分等的任何分子，或其片段。所述分析物可以是单个分子或包含两个或多个分子亚基的复合物，例如包括但不限于蛋白质-DNA复合物，所述分子亚基可以是或不是彼此共价结合的，并且可以相同或不同。因此，除了细胞或微生物之外，这样的复合分析物也可以是蛋白复合物或蛋白相互作用。因此，该复合物或相互作用可以是同型或异型多聚体。分子聚集物，例如蛋白也可以是靶分析物，例如相同蛋白或不同蛋白的聚集物。所述分析物也可以是蛋白或肽和核酸分子比如DNA或RNA之间的复合物。特别感兴趣的可以是蛋白和核酸之间的相互作用，例如，调节因子，比如转录因子和DNA或RNA。在其它代表性的实施方案中，分析物可以是核酸分子或其区域。因此，分析物可以是DNA(例如基因组、线粒体)或RNA(例如信使RNA、核糖体RNA、微型RNA等)。有利地，核酸可以原位检测，即无需从细胞移出或萃取核酸。
包括所有生物和临床样品，例如，生物体的任何细胞或组织样品，或来自其的任何体液或标本，以及样品比如细胞培养物、细胞标本、细胞裂解物等。也包括环境样品，例如土壤和水样品或食物样品。可以新鲜制备样品或可以以任何方便的方式对样品预先处理以用于例如储存。
因此，代表性样品包括任何可以包含生物分子、或者可以包含任意其他期望的或者靶分析物的材料，其包括例如食物和关联产物、临床和环境样品。样品可以是生物样品，其可以包含任意病毒或细胞材料，包括所有原核或真核细胞、病毒、噬菌体、支原体、原生质体和细胞器。因此，这样的生物材料可以包括所有类型的哺乳动物和非哺乳动物细胞、植物细胞、藻类，所述的藻类包括蓝绿藻、真菌、细菌、原生动物等。因此，代表性的样品包括全血和血衍生的产物比如血浆、血清和血沉棕黄色层、血细胞、尿液、粪便、脑脊液或任何其它体液(例如，呼吸系统分泌物、唾液、乳汁等)、组织、活检切片、细胞培养物、细胞悬液、条件培养基或细胞培养组分的其它样品等。可以以任何方便的或期望的方式预处理样品以准备用于本发明的方法中，例如通过细胞裂解或纯化，分离分析物等。
在一组中针对邻近探针的各自分析物-结合域的分析物上的结合位点可以是相同或不同的。因此，例如在包含两个或多个相同亚单元或蛋白成分的同数蛋白复合物或聚集物的情况下，两个或多个探针的分析物-结合域可以是相同的。当分析物是单个分子或包括不同亚单元或组分时(例如不同蛋白的异数复合物或聚集物或不同分子之间的相互作用)，分析物-结合域可以是不同的。
由于可以构建邻位探针的核酸域的长度以跨越不同分子距离，因此对于分析物-结合域的分析物上的结合位点不需要在相同的分子上。它们可以在独立的但紧密放置的分子上。例如，可以通过本发明的方法靶向生物体比如细菌或细胞或病毒的，或蛋白复合物的或相互作用的多个结合域。
用于本发明检测方法的邻近探针包括分析物-结合域和功能域(其优选地为核酸域)，但是如上所述，在邻近分析中使用的一个或多个邻近探针包括不同的功能基比如酶。邻近探针实际上是结合分析物(经由分析物-结合域)的检测探针，可以利用在这样的结合时在功能(例如核酸)域之间发生的相互作用的检测来检测所述结合(以检测分析物)。因此，当功能域是核酸分子时，探针可看作分析物的核酸标记的亲和配体或结合配偶体，分析物-结合域是亲和结合配偶体，核酸域是核酸标记。核酸域偶联分析物-结合域，并且该“偶联”或连接可通过本领域已知的任意手段，可以是需要的或方便的，可以是直接的或间接的，例如经由连接基团。当分析物-结合域和功能域都是核酸时，优选地该域通过核苷酸键，即磷酸二酯键偶联。其中蛋白质可以偶联至核酸的方式的实例详细描述如下。优选地，当邻近探针不只包括核酸时，用于偶联分析物-结合域和邻近探针的核酸域的连接基或方式与每个邻近探针的的接头或方式相同。
在本发明的方法的一个优选的方面，至少一个邻近探针(进一步优选地，至少两个或多个，优选地所有邻近探针)的分析物-结合域是拟蛋白质分子。因此，分析物-结合域可以是小肽分子或较大多肽或蛋白。肽的大小可以例如为约5至约100个氨基酸残基，通常约5至约50个残基，更通常约10个至约30个残基。大的多肽或蛋白是指大小为约100个氨基酸残基或更大的分子。作为分析物-结合域而特别感兴趣的是抗体，以及其结合片段和衍生物或模拟物。当抗体为分析物-结合域时，它们可以来自多克隆组分，使得通过特异性区分的抗体的异质群体均各自“标记”相同的标记核酸(核酸域)，或来自单克隆组分，其中对靶分析物具有相同特异性的相同抗体的均质种群均各自标记相同的核酸。同样地，分析物-结合域可以是单克隆或多克隆抗体。在再其它实施方案中，亲和结合域是抗体片段或其衍生物或模拟物，其中这些片段、衍生物和模拟物对靶分析物具有所需的结合亲和力。抗体、抗体片段、其模拟物和衍生物的实例如上所述，本发明考虑所述亲和结合域可以是任意类型的这些分子，只要它们对靶分析物具有所需的结合亲和力。
如本文使用的术语“抗体”可以指抗体结合片段或其衍生物或模拟物，其中这些片段、衍生物和模拟物对于靶分析物具有结合亲和力。例如，抗体片段，比如Fv、F(ab)2和Fab可以通过裂解完整蛋白来制备，例如通过蛋白酶或化学裂解。还感兴趣的是重组或合成制备的抗体片段或衍生物，比如单链抗体或scFv，或其它抗体衍生物比如嵌合抗体或CDR接枝抗体，其中该重组或合成制备的抗体片段保留上述抗体的结合特征，即它们不能够特异性结合靶分析物。这样的抗体片段或衍生物通常包括主体抗体的至少VH和VL域，以保持主题抗体的结合特征。本发明的这样的抗体片段、衍生物或模拟物可以使用任何方便的方法容易地制备，比如5,851,829和5,965,371号美国专利中所公开的方法，将其公开引入本文作为参考。
上述抗体、其片段、衍生物和模拟物可以由商业来源获得和/或使用任何方便的技术制备而成，其中制备多克隆抗体、单克隆抗体、其片段、衍生物和模拟物(包括其重组衍生物)的方法是本领域技术人员已知的。
在如上所述其它优选的实施方案，一个或多个(优选地两个或多个或全部的)邻近探针的分析物-结合域可以是核酸分子。
重要地，分析物-结合域应当是一种域，其包括可以共价结合核酸域而基本上不会消除分析物-结合域对其靶分析物的结合亲和力的部分。
在本发明的方法的一个实施方案中，邻近探针可以是多价邻近探针。这样的多价邻近探针包括至少两个共轭至少一个，优选地多于一个，核酸的分析物-结合域。因此，多价邻近探针可以包括至少5、10、20、50、100、200、500或1000个共轭至少一个且优选地多于一个核酸的分析物-结合域。
“偶联”或连接可以是本领域已知的任何手段，其可以是需要的或方便的且可以是直接或间接的，例如经由连接基团。例如，域可以通过共价键(例如化学交联)或通过非共价连接来互相连接，所述非共价连接例如经由基于链酶亲和素-生物素的偶联(在一个域上提供生物素，在另一个上提供链酶亲和素)。
邻近探针的两种组分可以通过键直接连接或通过连接基团间接连接。当采用连接基团时，可以选择该基团以提供结合域和核酸域通过连接基团的共价连接。感兴趣的连接基团可以根据组分域的性质有很大的变化。当连接基团存在时，其在许多实施方案中是生物惰性的。本领域技术人员已知多种连接基团，并且已发现其应用于本发明的邻近探针中。在代表性的实施方案中，连接基团通常为至少约50道尔顿，通常至少约100道尔顿，可以高达1000道尔顿或以上，例如如果连接基团含有间隔基时可高达1000000道尔顿，但通常不会超过约500道尔顿，通常不会超过300道尔顿。一般而言，这样的接头包括在任一端由反应性官能团封端的间隔基团，所述反应性官能团能够共价结合核酸域或蛋白组分。感兴趣的间隔基团可以包括脂肪族的和不饱和的烃链、含有杂原子比如氧(醚比如聚乙二醇)或氮(多胺)、肽、碳水化合物、可能包含杂原子的环状或非环状系统。间隔基团也可以由结合于金属的配体构成，使得存在的金属离子与两种或多种配体进行配位以形成复合物。具体的间隔元件包括：1，4-二氨基己烷、二甲苯二胺、对苯二甲酸、3，6-二氧杂辛二酸、乙二胺-N，N-二乙酸、1，1′-乙烯双(5-氧代-3-吡咯烷羧酸)、4，4′-乙烯二哌啶。可能的反应性官能团包括亲核官能基团(胺、醇、硫醇、酰肼)，亲电官能基团(醛、酯、乙烯酮、环氧化合物、异氰酸酯、马来酰亚胺)，能够发生环加成反应、形成二硫键或结合金属的官能基团。具体实例包括伯和仲胺、异羟肟酸、N-羟基琥珀酰亚胺酯、N-羟基琥珀酰亚胺碳酸酯、氧基羰基咪唑、硝基苯基酯、三氟乙酯、缩水甘油醚、乙烯砜和马来酰亚胺。可用于本发明的标记物的特定接头包括杂官能团化合物，比如叠氮基苯甲酰基酰肼、N-[4-(对叠氮基水杨基氨基)丁基]-3′-[2′-吡啶基二硫]丙酰胺)、双-磺基琥珀酰亚胺辛二酸酯、己二亚胺二甲酯、双琥珀酰亚胺酒石酸酯、N-马来酰亚胺丁酰基氧基琥珀酰亚胺酯、N-羟基磺基琥珀酰亚胺基-4-叠氮基苯甲酸酯、N-琥珀酰亚胺基[4-叠氮基苯基]-1，3′-二硫代丙酸酯、N-琥珀酰亚胺基[4-碘乙酰基]氨基苯甲酸酯、戊二醛、和琥珀酰亚胺基-4-[N-马来酰亚胺基甲基]环己烷-1-羧酸酯、3-(2-吡啶基二硫代)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯(SPDP)、4-(N-马来酰亚胺基甲基)-环己烷-1-羧酸-N-羟基琥珀酰亚胺酯(SMCC)等。
在本发明的方法中使用的邻近探针可以使用任何常规方法制备。在代表性的实施方案中，分析物-结合域和核酸域可以直接偶联或通过连接基团偶联。所述组分可以通过如本领域已知的官能基团彼此共价结合，其中这样的官能基团可以存在于所述组分上或者使用一个或多个步骤例如氧化反应、还原反应、裂解反应等引入到所述组分上。可以用于将组分共价键合在一起以制备邻近探针的官能基团包括：羟基、巯基、氨基等。可以选择经过修饰以提供共价键的不同组分的特定部分，以便于基本上不会不利地干扰组分对于其靶分析物的结合亲和力。换言之，共价连接应当不会抑制邻近探针的分析物-结合域与靶分析物的结合，并且应当不会促进核酸域结合靶分析物。当必要和/或需要时，可以使用本领域已知的阻断基团保护组分上的某些部分，参见例如Green&Wuts，Protective Groups inOrganic Synthesis(John Wiley&Sons)(1991)。用于制备核酸/抗体共轭物的方法是本领域技术人员熟知的。参见例如美国专利No.5,733,523，将其公开的内容引入本文作为参考。
在其它实施方案中，可以使用体外方案制备邻近探针，产生核酸-蛋白共轭物，即分子具有共价结合蛋白的核酸例如编码序列，即其中由编码邻近探针的载体在体外制备分析物-结合域或蛋白组分。感兴趣的这样的体外方案的实例包括：基于RepA的方案(参见例如Fitzgerald，Drug Discov.Today(2000)5：253-258and WO 98/37186)，基于核糖体展示的方案(参见例如Hanes等人，Proc.Natl Acad.Sci.USA(1997)94：4937-42；Roberts，CurrOpin Chem Biol(1999)Jun；3：268-73；Schaffitzel等人，J Immunol Methods(1999)Dec10；231：119-35；and WO 98/54312)等。
如上所述，分析物-结合域可以直接或间接地结合分析物。在间接结合的情况下，靶分析物可以首先被特异性结合配偶体(或亲和配体)结合，并且邻近探针的分析物-结合域可以结合该特异性结合配偶体。这使得能够设计作为通用试剂的邻近探针。例如，分析物特异性结合配偶体可以是抗体，通用邻近探针组可以通过部件结合各种不同分析物特异性抗体的Fc区域来检测不同分析物。
邻近探针的核酸域可以被认为是核酸“标记”，其相互作用形成可检测产物，可以被检测到以报告分析物的检测。因此，核酸域可以被认为是反应性核酸官能团，或者包括反应元件，其相互作用以提供信号，利用所述信号来检测分析物(例如形成产生信号的产物(例如它们可以连接到一起形成连接产物)，或介导产生信号的产物的形成或促进其形成，例如作为连接模板和/或引物，例如作为RCA引物)。换言之，核酸域可以被认为是“检测标记”，所述“检测标记”可以相互作用而形成“可检测的”标记或产物。当两个或多个分析物存在于相同样品中时，可以使用两个或多个邻近探针组同时检测，其中设计每组邻位探针以通过相互作用形成独特的核酸序列“可检测的标记”。可以使用文献中熟知的方法对这些独特的“可检测的标记”分别进行检测和定量(任选地在扩增之后)，所述方法包括液相色谱、电泳、质谱、DNA阵列技术、DNA测序和多色实时PCR。在其中分析是异质分析的某些实施方案中，例如反应在载玻片或阵列上进行，则可以目测检测所述检测标记。例如，可以通过杂交荧光标记的核酸探针来检测RCA生成的核酸多联体，在可以例如使用显微镜检查目测的载玻片得到“斑点”。如上所述，在检测多种分析物的测定中，可以平行或顺序检测或目测不同的分析物。因此，可以进行检测和通过计数单独的反应产物定量。因此，在某些实施方案中，本发明的方法可用于原位检测样品中的分析物。
如上所述，基于邻近探针的检测分析是现有技术中熟知的，例如WO97/00446、WO01/61037、WO03/044231、WO2005/123963和WO2007/107743，将其引入本文作为参考。其它邻近分析也是本领域已知且描述的，例如在WO2007/044903和WO2009/012220中，也将其引入本文作为参考。清楚的是，本领域技术人员将能够使用本领域公开的方法修饰如本文描述的检测方法，只要那些方法延伸至利用邻近探针的基于邻近探针的检测分析。然而，本发明的检测方法的特别优选的方面为本文阐述的。
在一个优选的本发明的检测方法中，第一和第二邻位探针的核酸域可以结合在一起，例如通过连接。该“结合”(或“共轭”)可以是直接的，即各个核酸域可以直接彼此结合在一起，或其可以是间接的，即各个核酸域可以间接结合在一起，例如通过分别与另一个中间核酸分子(例如，“间隔”寡核苷酸，在本领域也称为“盒式”寡核苷酸)的两端之一结合。该“共轭”或“相互作用”(通常为连接)可以通过一个或多个连接模板(夹板)寡核苷酸介导。同样地，可以将夹板或间隔/盒式寡核苷酸以独立核酸的形式加入样品中，或可作为如下进一步解释的第三邻近探针的核酸域提供。在新核酸分子或序列形成时的相互作用(通过连接)结果可以检测到。
如上所述以及以下进一步讨论，连接模板寡核苷酸可以杂交第一和第二邻近探针的核酸域，从而使其能够连接。或者，连接模板可以形成一个或多个邻近探针的核酸域。连接模板可以看作邻近探针的核酸域同步地或同时地结合的共用模板，即连接模板包括与每个核酸域互补的不同区域。
虽然本发明的方法中的至少一个邻近探针的核酸域包括可以通过如上所述裂解解折叠的发夹结构，第二、第三、第四等邻近探针的核酸域可以以任何合适的形式用于邻近分析中。因此，所述邻近探针的核酸域可以是单链核酸分子(例如，寡核苷酸)，部分双链的和部分单链的分子，或包括双链的区域和其中两个核酸链不互补且因此为单链的区域的双链分子。同样地，在某些实施方案中，核酸域由单链核酸组成。在其它实施方案中，核酸域可以由两个部分互补的核酸链组成，其中所述两个链包括杂交区域和非杂交区域。
当与靶分析物结合时，邻近探针的核酸域的长度通常足够允许发生与另一个邻近探针的核酸域的连接模板介导的相互作用。核酸域的长度通常为约8至高达约1000个核苷酸，其中在某些实施方案中它们的长度为约8至约500个核苷酸，包括长度为约8至约250个核苷酸，例如长度为约8个至约160个核苷酸，比如长度为约12至约150个核苷酸，长度为约14至约130个核苷酸，长度为约16至约110个核苷酸，长度为约8至约90个核苷酸，长度为约12至约80个核苷酸，长度为约14至约75个核苷酸，长度为约16至约70个核苷酸，长度为约16至约60个核苷酸等。在某些代表性的实施方案中，核酸域的长度可以为约10至约80个核苷酸，长度为约12至约75个核苷酸，长度为约14至约70个核苷酸，长度为约34至约60个核苷酸，以及在所述范围之间的任意长度。在某些实施方案中，核酸域的长度通常不超过约28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、44、46、50、55、60、65或70个核苷酸。
解折叠邻近探针的核酸域的至少一个发夹结构可以包括任何合适量的核苷酸残基，使得可以解折叠所述发夹。优选地，发夹结构仅仅在合适的条件下，例如在加入裂解剂时，才能解折叠。显而易见的是，该发夹的结构将取决于用于促进其解折叠的方法。在一个代表性的实例中，形成发夹结构的核酸域的长度为约20至约1000个核苷酸，其中在某些实施方案中，其长度可以为约20至约500个核苷酸，包括长度为约20至约250个核苷酸，例如长度为约20至约160个核苷酸，比如长度为约20至约150个核苷酸，长度为约20至约130个核苷酸，长度为约20至约110个核苷酸，长度为约20至约90个核苷酸，长度为约20约80个核苷酸，长度为约20至约75个核苷酸，长度为约20至约70个核苷酸，长度为约20至约60个核苷酸，及所述范围内的任意长度。因此，至少一个发夹结构的双螺旋部分可以具有的长度为至少8个碱基对，优选地长度为至少9、10、11、12、13、14、15、20、25、30、40或50个碱基对。在其它实施方案中，解折叠邻近探针的至少一个发夹结构的双螺旋部分可以具有的长度为至少100、200、300或400个碱基对。
至少一个发夹结构的单链环优选地包括至少8个核苷酸，优选地至少9、10、11、12、13、14、15、20、25、30、40或50个核苷酸。在其它实施方案中，至少一个发夹结构的单链环可以具有的长度为至少100、200、300或400个核苷酸。
在本发明的优选的方面，解折叠邻近探针的核酸域的至少一个发夹结构包括至少一个尿嘧啶残基，优选地至少2、3、4、5、6、7、8、9或10个尿嘧啶残基。
邻近探针的核酸域可以由核糖核苷酸和/或脱氧核糖核苷酸以及合成核苷酸残基构成，所述合成核苷酸残基是能够参与沃森-克里克类型或类似碱基对相互作用的。因此，核酸域可以是DNA或RNA或其任意修饰物，例如PNA或含有非核苷酸骨架的其它衍生物。
可以相对于连接模板挑选或选择第一和第二邻近探针的核酸域的序列(即，“检测”核酸域)。在其中第一和第二邻近探针的核酸域与共用连接模板互补(与相同连接模板的不同区域互补)的实施方案中，即当核酸域彼此连接时，共用连接模板可以提供在第三邻近探针上。因此，各个核酸域的序列不是关键的，只要第一和第二域可以直接地或间接地相互作用，例如它们可以彼此杂交或杂交第三核酸域(例如，连接模板)。然而，除了解折叠发夹结构所需的序列之外，应当选择核酸域的序列以避免出现不同于第一和第二邻近探针的核酸域与连接模板之间的杂交事件。例如，邻近探针的核酸应当不能够杂交间隔/盒式寡核苷酸。一旦选择或识别核酸域的序列，则可以使用任何方便的方法合成该核酸域。
连接模板可以被看作为“连接子”寡核苷酸，其用于连接或将第一邻位探针的核酸域“保持在一起”，例如在其中核酸域连接本身的实施方案中，生成环状连接产物。连接模板可以被看作是将第一和第二(在某些实施方案中，以及第三)邻近探针的核酸域保持在一起，这样它们可以相互作用，例如可以连接在一起。
特别地，连接模板可以与第一和/或第二邻近探针的核酸域杂交。更特别地，连接模板与至少第一和/或第二邻近探针的核酸域同时杂交(退火)。当连接模板为第三邻近探针的核酸域的形式时，所有邻位探针组的核酸域的彼此杂交在结合靶分析物时提高了探针-靶标复合物的活动性。该活动性作用通过支持产生信号的邻近探针-靶分析物复合物的形成而有助于分析的灵敏度。
如本文使用的术语“杂交(hybridisation)”或“杂交(hybridises)”指在核苷酸序列之间双螺旋的形成，其足够互补以通过沃森-克里克碱基配对形成双螺旋。当分子具有碱基对结构的同源性时，两个核苷酸序列彼此“互补”。因此，邻近探针的核酸域中的互补区域指能够形成分子内或分子间双螺旋，即相同分子(发夹结构)内的双螺旋或与不同分子的双螺旋的核酸域的一部分。“互补的”核苷酸序列可以特异性地结合以在合适的杂交条件下形成稳定的双螺旋。例如，当第一序列的一部分可以以反向平行的方向结合第二序列的一部分时，两个序列是互补的，其中每个序列的3′端结合其它序列的5′端，并且一个序列的每个A、T(U)、G和C分别与另一个序列的T(U)、A、C和G对准。RNA序列也可以包括互补的G＝U或U＝G碱基对。因此，在本发明中，两个序列不需要具有完美的同源性以“互补”。通常当至少约85％(优选至少约90％，最优选至少约95％)的核苷酸在确定长度的分子内共享碱基配对结构时，两个序列具有足够的互补性。在某些实施方案中，第一和第二邻近探针的核酸域包含对一个或多个连接模板寡核苷酸互补的区域，相反地，连接模板寡核苷酸的核酸域包含对第一和第二邻位探针的每个核酸域互补的区域。在其中第一邻近探针的核酸域为连接模板的实施方案中，第二邻近探针的核酸域可以包含与第一邻近探针的核酸域互补的两个区域，即与第二邻近探针的核酸域的每个末端5′和3′互补的区域，使得每个末端可以直接地或间接地连接。
互补区域(即，杂交区域)的长度范围可以为4-30碱基对，例如6-20、6-18、7-15或8-12碱基对。
连接模板核酸域的长度通常足以提供上述第一和第二探针的单个探针的两个末端的核酸域的同时结合。在代表性的实施方案中，连接模板寡核苷酸的长度为约6至约500个核苷酸，包括约20至约40个寡核苷酸，例如约25至约30个寡核苷酸。
如上所述，在一个上述优选的实施方案中，第一和第二邻近探针的核酸域之间的相互作用为各自域的结合。该结合可以优选为连接，特别是模板引导的连接。在这种情况下，显然应当理解连接模板由连接模板(夹板)寡核苷酸提供。可以使用连接酶进行这样的连接。
因此，在本发明的方法的一个优选的实施方案中，第一和第二探针的核酸域可利用杂交夹板作为模板的反应来连接，其中所述核酸域连接并且可检测到连接产物。因此，在这样的实施方案中，夹板可被看作为“夹板模板”或“连接模板”或“模板寡核苷酸”。
为了使相互作用，或更具体地进行连接，第一和第二邻近探针的核酸域之一通常可通过其5′末端偶联拟蛋白质分析物-结合域(留下游离3′羟基末端)，而另一个域可以通过其3′末端偶联(留下游离的5′磷酸酯末端)。因此，第一和第二邻位探针之一应当是具有游离3′羟基的5′探针，所述游离3′羟基能够与另一个3′探针的5′磷酸酯相互作用。
为了能够连接，第一和第二核酸域(相同探针的或不同探针的)分别杂交连接模板，一个的3′末端对准另一个的5′磷酸酯。然而，如上所述并且如本文在别处更详细地描述的，各自域的连接不需要是直接的，它们可以利用中间寡核苷酸连接在一起，或可以使用聚合酶延伸第一或第二邻近探针中的携带游离3′核酸域末端的任一个以填充间隔，直到第一和第二核酸域可以通过连接反应结合。因此，夹板(连接和/或延伸模板)上的相应3′末端和5′末端不需互相紧邻地杂交，但是可以杂交夹板并在其中留下空间(或一段核苷酸)。
夹板同时与第一和第二邻近的核酸域的杂交(即，在使邻近探针的核酸域同步地结合夹板寡核苷酸是)产生包含所有三个核酸域的稳定的双螺旋结构。例如，这样的双螺旋结构使第一邻近探针的核酸域的3′羟基游离末端和第二邻近探针的核酸域的5′磷酰基游离末端结合在一起(虽然如上所述，但是这些不需要紧邻地并列放置)。
因此，连接模版(夹板)可以包括对5′游离邻近探针的核酸域互补的第一3′区域和对3′游离邻近探针的核酸域互补的第二5′区域。夹板的第一和第二区域长度可以为3至20、6至17、6至15或6至12或8至12个核苷酸，例如长度为约13至17、12至16、11至15、或12至14个核苷酸或长度为约6至12、7至11或8至10个核苷酸。
如下将更详细地描述的，相互作用(例如连接)产物的扩增可用作检测过程的一部分。因此，在某些实施方案中，需要设计夹板以便将在这样的步骤中可能发生的任何错误扩增最小化，例如夹板充当扩增中使用的聚合酶的模板的任何可能性。因此，例如夹板可以作为RNA寡核苷酸或DNA/RNA杂交体来提供；通常用于扩增反应中的Taq聚合酶不能使用RNA模板。或者，使用具有两个短杂交区域的DNA夹板可以达到类似效果；由于杂交较弱，该夹板不能在PCR使用的高温下为DNA聚合作为模板。
如上所述，在一个实施方案中，第一和第二探针的核酸域可以杂交彼此不紧邻的夹板，而在其间留出间隔。为了使其能够共轭(例如连接)本文称为“间隔”或“盒式”寡核苷酸的另一个寡核苷酸，可以杂交该间隔中的夹板，更具体地，跨过该间隔。这样的间隔/盒式寡核苷酸可以直接杂交其每个末端，所述末端与每个各自域的末端邻近，使得每个这样的域末端可以连接间隔/盒式寡核苷酸以形成单个的新核酸产物。这需要两个连接事件，所述两个连接事件都以夹板作为模板。间隔/盒式寡核苷酸的5′和3′末端以合适的方式结合(连接)第一和第二探针的核酸域的游离末端。因此，经由间隔/盒式寡核苷酸连接或结合第一和第二域。这样的排列使探针的核酸域的柔软度增加。间隔寡核苷酸可以如上讨论的用于引入标记物或识别序列，例如条码。如图13中描述的，使用具有在互补末端之间具有非互补序列的间隔寡核苷酸可以促进引入一个或多个或更长的这种标记物序列。间隔/盒式寡核苷酸的长度(当杂交夹板时第一和第二域的末端之间的间隔)可以不同，例如为4至50，例如6-30、6-25、6-22、8-22、10-22、6-20、8-20、10-20个核苷酸。
间隔/盒式寡核苷酸在第一和第二核酸域的连接中充当中间寡核苷酸，在探针与样品接触后可以将所述间隔/盒式寡核苷酸加入。或者，可以同时将其加入，或可以将其预杂交至夹板寡核苷酸。
也可以使用聚合酶，通过延伸携带游离3′末端的第一或第二邻近探针的任何一个核酸域来填充间隔。一旦填充了间隔，就通过连接步骤结合末端。
为了实施本发明的方法，可以在与至少一组探针接触之前将样品与阻断试剂接触，以降低非特异性邻近探针的相互作用。
在某些实施方案中，可以针对两种或多种不同的靶分析物对样品进行分析。在这样的实施方案中，将样品与针对每个靶分析物的一组邻近探针接触，以使接触样品的探针组的数量可以为两个以上，例如三个以上、四个以上等。该方法在多重和高通量应用中有着特别的用途。在这方面，本发明的方法特别有利地用于检测样品中均质和异质形式的多种分析物。在某些实施方案中，例如用于检测高突变的分析物比如病毒序列，针对相同分析物(例如转录本)可以使用多个探针组，以最佳化检测效率。在其它代表性的实施方案中，分析物-结合域可以设计用于涵盖某些错配的抗性，例如其中分析物-结合域和分析物都是核酸时，序列不需要100％互补，例如序列可以共享至少85、90或95％的序列一致性。
可以选择加入到样品中邻近探针的量，以提供在反应混合物中足够低浓度的邻近探针，从而确保在未结合靶分析物时，邻近探针不会随机地彼此紧密邻近，至少不会以任何大的或很大的程度。同样地，期望的是仅当邻近探针通过邻近探针的分析物-结合域和分析物的结合位点之间的结合相互作用结合分析物时，邻近探针才会彼此紧密邻近(即，当使邻近探针同步地结合分析物时)。在代表性的实施方案中，在与样品组合之后的反应混合物中的邻近探针的浓度范围为约1fM至1μM，比如约1pM至约1nM，包括约1pM至约100nM。
在与样品和邻近探针组(或多个探针组)组合后，可以将反应混合物培养一段时间，如果存在于样品中，所述时间足够使邻近探针结合于靶分析物。如上所述，一旦邻近探针结合分析物，则样品中解折叠邻近探针通过裂解和任何其它合适的机制“解折叠”，以至少使邻近探针的核酸域相互作用，即邻近探针的核酸域结合分析物且彼此接近。当在分析中使用超过一种类型的解折叠邻近探针时，每种不同类型的解折叠探针可以分别“解折叠”，例如第一组探针可以通过裂解解折叠，第二组邻近探针可以在随后改变样品的条件以促进解折叠而解折叠。在某些实施方案中，邻近探针可以以多于一步接触样品。因此，一个或多个解折叠邻近探针可以接触样品，并且与分析物相互作用(在喇叭探针的情况下，这可能涉及连接反应)。所述解折叠邻近探针被“解折叠”，然后另一个邻近探针(其可以是解折叠邻近探针)与样品接触。因此，邻近探针可以在一个、两个、三个或多个阶段中与样品接触。在一个特别优选的实施方案中，邻近探针与样品同时接触。在某些代表性的实施方案中，例如在原位分析或分析物被固定的其它分析中，可以在加入不同的邻近探针之间、或者在加入邻近探针和使该探针的核酸域解折叠之间、或者更特别地在裂解步骤之前包括冲洗步骤，例如用固定在基质上的探针俘获分析物，所述基质可以被洗涤以除去未结合的或非特异性结合的分析物或样品，之后加入其它邻近探针，参见例如图21和22。或者或另外地，在将邻近探针已经加入到样品并允许其结合之后，但是在解折叠或裂解步骤之前，可以包括冲洗步骤。
在代表性的实施方案，(解折叠)邻近探针和样品可以在加入邻近探针之前预培养一段时间，所述时间为5分钟至约24小时。优选地，在温度为4至约50℃下，优选地在室温下例如18-30℃下，所述预培养为约20分钟至约12小时。应当优化保持反应混合物的条件，以促进邻近探针特异性结合分析物，同时抑制非特异性相互作用。
在预培养之后，如果包括该步骤，解折叠邻近探针的核酸域解折叠，并且可以在约4至约50℃下，包括约20至约37℃下培养一段时间，所述时间为约5分钟至约48小时，包括约30分钟至约12小时。条件应当允许在如上所述核酸域之间有效地且特异性地杂交。
在某些实施方案中，培养混合物的有效体积至少在培养步骤的部分期间降低，在该步骤中探针邻近探针结合靶分析物，如果靶分析物存在于样品中的话。在这些实施方案中，培养混合物的有效体积由于许多不同原因而降低。在某些实施方案中，为了能使用中等和低亲和性的分析物-结合域和/或提高分析的灵敏度，降低培养混合物的有效体积。例如，在培养混合物的有效量降低的某些实施方案中，分析物-结合域可以是中等或低亲和性的结合物，所述中等或低亲和性的结合物是指分析物-结合域对其靶分析物的结合亲和力小于约10-4M，比如约1mMKd。在某些实施方案中，可以升高分析灵敏度使得该分析可以在1μl样品中检测到低至约100个或更少的靶分析物，包括在1μl样品中低至约75个或更少的靶分析物，包括在1μl样品中低至约50个或更少的靶分析物。
在某些实施方案中，在上述培养步骤过程中在混合物中包括“聚集剂”或“体积排斥剂”，例如在邻近探针与其靶分析物结合期间降低培养混合物的有效体积。通常，“聚集剂”是水溶性大分子材料。合适的大分子材料广泛地包括具有平均分子量为约1500至数百万的生物相容性天然或合成聚合物，其不与混合物中的其它试剂或产物发生特异性相互作用。这样的聚合物在本领域被称为“体积排斥剂”，因为其主要功能是在体外反应介质中占据体积，并且为生物化学反应提供高浓度的环境，例如，接近体内条件。体积排斥剂聚合物当然必须足够可溶以提供所需浓度。合适的示例性的聚合物包括，但不限于：市售聚乙二醇(PEG)聚合物，例如具有平均分子量大于约2000的；FICOLL聚合物，比如具有平均分子量为约70,000的那些，牛血浆白蛋白，糖原，聚乙烯吡咯烷酮，葡聚糖等。在代表性实施方案中采用更高分子量的PEG聚合物，尤其是具有分子量分别为约1450、3000-3700、6000-7500和15,000-20,000的PEG1450、PEG3350、PEG6000(也作为PEG8000出售)，和PEG20,000。在代表性实施方案中采用PEG6000和PEG8000。在代表性实施方式中的培养反应中体积排斥剂聚合物的浓度落入约5％w/v至约45％w/v，取决于聚合物类型及其分子量。通常，预期给定类型的更高分子量的聚合物需要以比相同类型的更低分子量的聚合物更低的浓度存在，以实现对酶活性相同的效果。
在其中使用体积排斥剂的那些实施方案中，在方法的下一步之前，由于解释体积排斥剂的存在可以根据所存在的体积排斥剂的量、稀释流体的性质等稀释培养混合物，例如稀释至少约2倍或更多，比如至少约5倍或更多，包括至少约10倍或更多，其中在代表性实施方案中，所述稀释流体为水或某些其它合适的水和一种或多种溶质例如盐、缓冲剂等的水性流体。
替代地或除了使用体积排斥剂外，例如经由蒸发从培养混合物中除去部分水，可以降低培养期间孵培养混合物的体积。在这些实施方式中，流体体积可以根据需要降低至少约2倍以上，比如至少约5倍以上，包括至少约10倍以上。重要的，在这些实施方案中不是从培养混合物中除去所有水。可以采用任何方便的方案通过从其中除去一部分水来降低培养混合物的体积。可以采用通过监测和调整湿度和温度的用于控制蒸发速率的仪器，其中在某些实施方案中，例如通过持续测量培养混合物的体积来监测培养混合物的体积，其中当适当蒸发后，可以如上所述加入连接和PCR混合物。根据需要，可以使用加热器来加快蒸发。可选地，培养混合物的体积可以通过过滤出水来降低。在代表性的实施方案中，使用尺寸排阻过滤器选择性地保留尺寸大于临界值的分子，同时通过使小分子和水通过过滤器而将其除去。可以通过离心或真空抽吸对溶液施加力而使其通过滤器移动。
当邻近探针的分析物-结合域与分析物结合时，邻近探针的合适域彼此紧密邻近。然而，核酸域应当直到解折叠邻近探针已经“解折叠”时才能相互作用。一旦解折叠已经实现连接模板寡核苷酸，则如果使用夹板寡核苷酸，则能够结合(杂交)至例如第一和第二探针的核酸域。
在样品与邻近探针组合之后，如果使用的话，可以加入间隔/盒式寡核苷酸并使其杂交。可选地或另外地，针对多个邻近探针，可以加入一个或多个间隔寡核苷酸。在某些实施方案中，间隔寡核苷酸可以预杂交至连接模板。如上所述，在某些实施方案中，可以杂交夹板的第一和第二探针的核酸域随后可以通过第一和第二邻位探针的核酸域的游离3′羟基和5′磷酸酯末端的核酸连接结合在一起。然后，分析反应混合物中相互作用的存在。因此，通常通过检测其连接产物来检测第一和第二核酸域的连接。从上述实例显而易见的是，所述连接可以在相同核酸域的两个区域之间，或者可以包括第三邻近探针的核酸域的连接。
通常，可以采用任何能够检测邻近依赖性相互作用的存在的方便的方案。检测方案可以需要或不需要分离步骤。
在这些代表性的实施方案中，通过与例如由合适的核酸连接酶提供的具有核酸连接活性的反应混合物接触来实现稳定邻近探针的核酸域的夹板的连接，并且将混合物保持在足以发生核酸域的连接的条件下。
如本领域已知的，当两个紧邻的核酸退火或杂交与其互补的第三核酸序列(即，模板)时，连接酶催化该两个紧邻的核酸的并列3′-羟基和5′-磷酸末端之间的磷酸二酯键的形成。可以使用任何方便的连接酶，其中感兴趣的代表性连接酶包括但不限于：温度敏感的和热稳定的连接酶。温度敏感的连接酶包括，但不限于，噬菌体T4DNA连接酶、噬菌体T7连接酶和大肠杆菌连接酶。热稳定的连接酶包括，但不限于，Taq连接酶、Tth连接酶、和Pfu连接酶。热稳定的连接酶可以由嗜热性或极端嗜热性生物体获得，所述生物体包括但不限于原核、真核或古生物体。在本发明的方法中，也可使用某些RNA连接酶。
在该连接步骤中，将必需和/或期望的合适的连接酶和任何试剂与反应混合物组合，并保持在足够发生杂交的连接寡核苷酸的连接的条件下。连接反应条件是本领域技术人员熟知的。在连接期间，在某些实施方案中将反应混合物保持在约4℃至约50℃的温度下，比如约20℃至约37℃下一段时间，所述时间为约5秒至约16小时，比如约1分钟至约1小时。在其它实施方案中，可以将反应混合物保持在约35℃至约45℃的温度下，例如在或约37℃至约42℃，例如在或约38℃、39℃、40℃或41℃下一段时间，所述时间为约5秒至约16小时，比如约1分钟至约1小时，包括约2分钟至约8小时。在一个代表性实施方案中，连接反应混合物包括50mM Tris pH7.5、10mM MgCl2、10mM DTT、1mM ATP、25mg/ml BSA、0.25单位/mlRNA酶抑制剂、和0.125单位/ml的T4DNA连接酶。在仍然另一个代表性的实施方案中，使用2.125mM镁离子、0.2单位/ml RNA酶抑制剂；和0.125单位/ml DNA连接酶。
显而易见的是，连接条件可取决于在本发明的方法中使用的连接酶。因此，上述连接条件仅仅是一个代表性的实例，参数根据根据众所周知的方案变化。例如，本发明的方法的一种优选的连接酶即可以在高于50℃的温度下使用。然而，应当进一步理解，一个参数例如温度的变化可能需要改变其它条件以确保分析的其它步骤不会受到抑制或破坏，例如邻近探针与分析物的结合。邻近分析法的这种处理是本领域常规的。
在连接之后，检测连接产物(邻近探针的连接的核酸域)作为样品中分析物存在的指示，或者作为量和任选的位置的测量。在这些实施方案中，连接产物包括在单链核酸分子(其为至少第一和/或第二探针的两个邻近核酸域的连接产物，以及任意中间间隔/盒式寡核苷酸，如果使用的话)。在某些实施方案中，单链核酸分子可以在分析物-结合域的每个末端处终止。在其它实施方案中，单链核酸分子可以是环状分子，其可以杂交一个或多个邻近探针的核酸域。
在连接步骤之后，该方法的下一个步骤是测定连接产物在反应混合物中的存在以检测样品中的靶分析物。换言之，针对任何所产生的连接产物的存在对反应混合物进行筛选等(即，分析、评估、评价、测试等)以检测所分析的样品中靶分析物的存在。
在最广泛的意义中，可以使用任何方便的方案检测由上述方法产生连接产物。特定的检测方案可以根据所需的灵敏度和实施方法的应用而变化。在某些实施方案中，可以直接检测核酸连接产物而不进行任何扩增，而在其它实施方案中，检测方案可以包括扩增部分，其中连接产物核酸的拷贝数增加，例如用于提高特定分析的灵敏度。当可以不扩增进行检测时，可以按照许多不同的方式检测核酸连接产物。例如，可以直接标记一个或多个邻近探针的核酸域，所述的标记例如荧光标记、或以其它方式分光光度标记、或放射性同位素标记或使用任何产生信号的标记物，以使连接产物直接标记。在这些实施方案中，可以按照大小将直接标记连接产物与反应混合物的其余部分分离，包括未连接的直接标记的连接寡核苷酸(即，核酸域寡核苷酸或间隔/盒式寡核苷酸)，以检测连接的核酸。可选地，构象选择性探针，例如可以采用分子信标(如以下更详细描述的)检测连接产物的出现，其中这些探针针对跨过连接的核酸的序列，因此仅以其整体存在于连接产物中。
如上所述，在本发明方法的某些实施方案中，检测步骤包括扩增步骤，其中连接核酸的拷贝数增加，例如为了提高分析的灵敏度。根据需要，扩增可以是线性的或指数的，其中感兴趣的代表性扩增方案包括但不限于：聚合酶链反应(PCR)；恒温扩增、滚环扩增(RCA)等。
当检测步骤包括扩增步骤时(更具体地共轭产物的体外扩增步骤)，可以检测到扩增产物(或扩增产物)以检测分析物。
聚合酶链反应(PCR)是本领域熟知的，描述在4,683,202；4,683,195；4,800,159；4,965,188和5,512,462号美国专利中，将其公开内容引入本文作为参考。在代表性的PCR扩增反应中，将包括上述连接核酸或连接产物(其也可以看作是扩增反应中的模板核酸)的反应混合物与在引物延伸反应例如PCR引物中采用的一种或多种引物组合(如在几何(或指数)扩增中使用的正向和反向引物，或在线性扩增中采用的单一引物)。模板核酸(为方便起见，以下称为模板DNA)所接触的寡核苷酸引物应具有足够的长度以在退火条件下(以下更详细地描述)提供与互补模板DNA的杂交。引物的长度通常为至少10bp，长度通常为至少15bp，长度更通常为至少16bp，长度可以长至30bp或更长，其中引物的长度通常为18至50bp，长度通常为约20至35bp。模板DNA可以接触单一引物或一组两个引物组(正向和反向引物)，取决于引物是否延伸，期望模板DNA的线性或指数扩增。在某些实施方案中，引物可以提供为邻近探针的核酸域。在其它实施方案中，连接模板也可以充当引物。
除了上述组分之外，本发明的方法中制备的反应混合物通常包括聚合酶和三磷酸脱氧核糖核苷(dNTP)。期望的聚合酶活性可以通过一种或多种不同的聚合酶提供。在许多实施方案中，反应混合物包括至少家族A聚合酶，其中感兴趣的代表性家族A聚合酶包括但不限于：栖热水生菌聚合酶，包括天然存在的聚合酶(Taq)及其衍生物和同源物，比如Klentaq(如在Barnes et al，Proc.Natl.Acad.Sci USA(1994)91：2216-2220中描述的)；嗜热菌(Thermus thermophilus)聚合酶，包括天然存在的聚合酶(Tth)及其衍生物和同源物等。在高保真反应中实施扩增反应的某些实施方案中，反应混合物可以进一步包括具有3′-5′外切酶活性的聚合酶，例如由家族B聚合酶所提供的，其中感兴趣的家族B聚合酶包括但不限于：嗜热高温球菌DNA聚合酶(Vent)，比如描述在Perler等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1992)89：5577-5581；火球菌属物种GB-D(Deep Vent)；强烈炽热球菌DNA聚合酶(Pfu)，如在Lundberg等人，Gene(1991)108：1-6中描述的，焦酚热球菌(Pwo)等。其中反应混合物包括家族A和家族B聚合酶，家族A聚合酶可以按照多于家族B聚合酶的量存在于反应混合物中，其中活性的差异通常为至少10倍，更通常为至少约100倍。通常反应混合物将包括四种不同类型的dNTP，其对应于四种天然存在的碱基，即dATP、dTTP、dCTP和dGTP。在本发明的方法中，每种dNTP通常以约10至5000μM的量存在，通常为约20至1000μM。
在本发明方法的该检测步骤中制备的反应混合物可以进一步包括水性缓冲介质，所述缓冲介质包括一价离子源、二价阳离子源和缓冲剂。可以使用任何方便的一价离子源，比如KCl、K-醋酸盐、NH4-醋酸盐、K-谷氨酸盐、NH4Cl、硫酸铵等。二价阳离子可以是镁、锰、锌等，其中阳离子通常为镁。可以使用任何方便的镁离子源，包括MgCl2、Mg-醋酸盐等。存在于缓冲液中的Mg2+的量可以为0.5至10mM，但优选地为约3至6mM，理想地为约5mM。可以存在于缓冲液中的代表性的缓冲剂或盐包括Tris、Tricine、HEPES、MOPS等，其中缓冲剂的量通常为约5至150mM，通常为约10至100mM，更通常为约20至50mM，其中在某些优选的实施方案中，缓冲剂存在的量足以提供约6.0至9.5的pH，其中最优选的是在72℃下pH为7.3。可以存在于缓冲介质中的其它试剂包括螯合剂，比如EDTA、EGTA等。
滚环扩增(RCA)是本领域熟知的，描述在Dean等人的2001(Rapid Amplificationof Plasmid and Phage DNA Using Phi29 DNA Polymerase and Multiply-PrimedRolling Circle Amplification，Genome Research，11，pp.1095-1099)中，将其公开内容引入本文作为参考。在代表性的RCA反应中，将包括上述连接的(即环化的)核酸或连接产物(其也可以看作是扩增反应中的模板核酸)的反应混合物与一个或多个在引物延伸反应中使用的引物混合，例如RCA可以以单个引物作为模板以产生单个多联体产物，或者以多个引物作为模板，每个引物退火至环状寡核苷酸的不同区域，以产生每个环多个多联体产物。模板核酸所接触的寡核苷酸引物应具有足够的长度以在退火条件下(以下更详细地描述)提供与互补模板DNA的杂交。用于RCA的引物可以与如上所述用于PCR的引物的定义类似。在某些实施方案中，引物可以提供为邻近探针的核酸域。在其它实施方案中，连接模板也可以充当引物。
除了上述组分之外，本发明的方法中制备的反应混合物通常包括聚合酶例如phi29DNA聚合酶和如上所述DNA聚合酶反应所需的其它组分。期望的聚合酶活性可以通过一种或多种不同的聚合酶提供。
在制备本发明方法的该步骤的反应混合物中，各种组成成分可以以任何方便的顺序组合。例如，缓冲液可以与引物、聚合酶、然后与模板DNA组合，或所有的各种组成成分可以同时组合以产生反应混合物。
可以使用任何方便的方案检测扩增反应的扩增产物，只要其中所使用的特定方案可以非特异性地或特异性地检测扩增产物，如下文更详细地描述的。感兴趣的代表性的非特异性检测方案包括使用信号生成系统的方案，所述信号生成系统例如通过相互作用选择性地检测双链DNA产物。在这样的实施方案中使用的代表性的可检测分子包括荧光核酸染色剂，比如啡啶染料，包括其单体或同型或异型二聚体，当与核酸复合时荧光增强。啡啶染料的实例包括乙啡啶同型二聚体、溴化乙锭、碘化丙啶、和其它烷基取代的啡啶染料。在本发明的另一个实施方案中，核酸染色剂为或包含吖啶染料、或其同型或异型二聚体，比如吖啶橙、吖啶同型二聚体、乙啡啶-吖啶异型二聚体、或9-氨基-6-氯-2-甲氧基吖啶。在本发明的仍然另一个实施方案中，核酸染色剂为吲哚或咪唑染料，比如Hoechst 33258、Hoechst33342、Hoechst 34580(BIOPROBES34，Molecular Probes，Inc.Eugene。Oreg.，(May2000))，DAPI(4′，6-二脒基-2-苯基吲哚)或DIPI(4′，6-(二咪唑啉-2-基)-2-苯基吲哚)。其它允许使用的染色剂包括，但不限于7-氨基放线菌素D、羟基脒替、LDS751、选择的补骨脂素(呋喃香豆素)、苯乙烯基染料、金属复合物比如钌复合物、和过渡金属复合物(例如掺入Tb3+和Eu3 +)。在本发明的某些实施方案中，核酸染色剂为花青染料或花青染料的同型或异型二聚体，当与核酸连接时其赋予荧光增强。可以使用Lee的4,883,867号美国专利(1989)、Yue等人的5,582,977号美国专利(1996)、Yue等人的5,321,130号美国专利(1994)、和Yue等人的5,410,030号美国专利(1995)(将所有四篇专利引入本文作为参考)中描述的任意染料，包括来自Molecular Probes，Inc.，Eugene，Oreg的商标为TOTO、BOBO、POPO、YOYO、TO-PRO、BO-PRO、PO-PRO和YO-PRO的市售可获得的核酸染色剂。可以使用Haugland等人的5,436,134号美国专利(1995)、Yue等人的5,658,751号美国专利(1997)、和Haugland等人的5,863,753号美国专利(1999)(将所有三篇专利引入本文作为参考)中所述的任意染料，包括来自Molecular Probes，Inc.，Eugene，Oreg的商标为SYBR Green、evagreen、SYTO、SYTOX、PICOGREEN、OLIGREEN、和RIBOGREEN的市售可获得的核酸染色剂。在本发明的仍然其它实施方案中，核酸染色剂为掺入氮杂或多聚氮杂苯唑啉杂环的单体、同型二聚体、或异型二聚体花青染料，比如氮杂苯并噁唑、氮杂苯并咪唑、或氮杂苯并噻唑，当与核酸相连时其赋予荧光增强，包括来自Molecular Probes，Inc.，Eugene，Oreg的商标为SYTO、SYTOX、JOJO、JO-PRO、LOLO、LO-PRO的市售可获得的核酸染色剂。
在其它实施方案中，与通常双链分子相反的是，可以采用对扩增产物具有特异性的信号生成系统来检测扩增。在这些实施方案中，信号生成系统可以包括特异性结合扩增产物中存在的序列的探针核酸，其中可以使用直接或间接可检测的标记物对所述探针核酸进行标记。直接可检测的标记物是能够直接检测而无需使用其它试剂的标记物，而间接可检测的标记物是通过采用一种或多种其它试剂而可检测的标记物，例如，其中标记物为由两个或多个组分构成的信号生成系统。在许多实施方案中，标记物是直接可检测的标记物，其中感兴趣的直接可检测的标记物包括但不限于：荧光标记物、放射性同位素标记物、化学发光标记物等。在许多实施方案中，标记物是荧光标记物，其中在这样的实施方案中所采用的标记试剂是荧光标记的核苷酸(或多种核苷酸)，例如荧光标记的CTP(如Cy3-CTP、Cy5-CTP)等。可用于标记核苷酸以制备标记探针核酸的荧光部分包括，但不限于：荧光素、花青染料比如Cy3、Cy5、Alexa555、Bodipy630/650等。本领域已知也可采用其它标记物，比如上文所述的那些。
在某些实施方案中，使用“能量转移”标记物对特异性标记的探针核酸进行标记。如本文所使用的“能量转移”是指一个过程，荧光修饰基团借助所述过程改变荧光基团的荧光发射。如果荧光修饰基团是淬灭基团，则来自荧光基团的荧光发射会减弱(淬灭)。能量转移可以通过荧光共振能量转移或通过直接能量转移来发生。在这两种情况下，具体的能量转移机制是不同的。应当理解，在本申请中对能量转移的任何提及包括所有这些机制-不同的现象。如本文使用的“能量转移对”指参与能量转移的任何两个分子。通常，一个分子充当荧光基团，另一个充当荧光修饰基团。“能量转移对”用于指形成单一复合物的一组分子，在其中发生能量转移。这样的复合物可以包括，例如彼此不同的两个荧光基团，和一个淬灭基团，两个淬灭基团和一个荧光基团，或多个荧光基团和多个淬灭基团。在存在多个荧光基团和/或多个淬灭基团的情况下，单个基团可以彼此不同。如本文使用的“荧光共振能量转移”或“FRET”指能量转移现象，其中激发的荧光基团所发射的光至少部分被荧光修饰基团吸收。如果荧光修饰基团为淬灭基团，则该基团能够将所吸收的光辐射为不同波长的光，或者其可以由于加热而消散。FRET依赖荧光基团的发射光谱和淬灭基团的吸收光谱之间的重叠。FRET也取决于淬灭基团和荧光基团之间的距离。在高于某些临界距离时，淬灭基团不能够吸收由荧光基团发射的光，或仅能够微弱地吸收。如本文使用的“直接能量转移”指其中荧光基团和荧光修饰基团之间不存在光子的通过的能量转移机制。不受单一机制的束缚，据信在直接能量转移中，荧光基团和荧光-修饰基团干扰彼此的电子结构。如果荧光-修饰基团为淬灭基团，这甚至可导致淬灭基团防止荧光基团发射光。
可以以多种不同方式构建能量转移标记的探针核酸，例如寡核苷酸，只要其包括供体、受体和靶核酸结合域。同样地，在这些实施方案中使用的能量转移标记的寡核苷酸为核酸检测子，所述检测子包括荧光能量供体即供体所处的荧光团域，和荧光能量受体即受体所处的受体域。如上所述，所述供体域包括供体荧光团。所述供体荧光团可处于核酸检测子中的任何位置，但是通常存在于检测子的5′末端。受体域包括荧光能量受体。受体可以位于受体域的任何位置，但通常存在于核酸检测子或探针的3′末端。
除了荧光团和受体域，能量转移标记的探针寡核苷酸也包括靶核酸结合域，所述靶核酸结合域结合感兴趣(如上所述)的扩增产物中存在的靶核酸序列(例如条码序列)，例如在(如上所定义的)严格杂交条件下。该靶结合域的长度通常为约10至约60个核苷酸，通常为约15至约30核苷酸。根据寡核苷酸和分析本身的性质，靶结合域可以杂交于模板核酸区域或引物延伸产物区域。例如，当分析为5′核酸酶试验时，例如当使用类型的寡核苷酸探针时，靶结合域在严格的条件下杂交模板核酸的靶结合位点，所述位点为引物结合位点的下游或3′端。在一个可选的实施方案中，例如在分子信标类型分析中，靶结合域杂交引物延伸产物的域。在这些实施方案中使用的包括所有上述三个域的能量转移标记的寡核苷酸的总长度通常为约10至约60个核苷酸，通常为约15至约30个核苷酸。
在某些实施方案中，当能量转移标记的寡核苷酸没有杂交靶核酸时，对能量转移标记的寡核苷酸进行构建以在荧光团激发后，能量转移标记的寡核苷酸探针的荧光团和受体之间发生能量转移。
在某些实施方案中，寡核苷酸为单链分子，其中不形成分子内结构并且由于供体和受体的间隔提供单链线性形式的能量转移而在其中发生能量转移。在这些实施方案中，当标记的寡核苷酸探针杂交靶核酸时，在荧光团激发之后，标记的寡核苷酸探针的荧光团和受体之间也发生能量转移。这样的标记的寡核苷酸探针的具体实例包括类型探针，如在6,248,526号美国专利中描述的，将其全部内容引入本文作为参考(以及Held等人，Genome Res.(1996)6：986-994；Holland等人，Proc.Natl Acad.Sci.USA(1991)88：7276-7280；和Lee等人，Nuc.Acids Res.(1993)21：3761-3766)。在许多这些实施方案中，靶核酸结合域为杂交即互补于模板核酸序列的域，即靶核酸结合域的靶核酸为存在于模板核酸中的序列(即，伪目标或替代核酸)。
在其它实施方案中，当能量转移标记的寡核苷酸探针杂交靶核酸时，对探针寡核苷酸进行构建以使在荧光团激发之后在能量转移标记的寡核苷酸探针的荧光团和受体之间不发生能量转移。这些类型的探针结构的实例包括：Scorpion探针(如在Whitcombe等人，Nature Biotechnology(1999)17：804-807；6,326,145号美国专利中描述的，将其公开引入本文作为参考)，Sunrise探针(如在Nazarenko等人，Nuc.Acids Res.(1997)25：2516-2521；6,117,635号美国专利中描述的，将其公开内容引入本文作为参考)，分子信标(Tyagi等人，Nature Biotechnology(1996)14：303-308；5,989,823号美国专利，将其公开内容引入本文作为参考)，和构象辅助探针(如在60/138,376号临时申请系列中描述的，将其公开内容引入本文作为参考)。在许多这些实施方案中，靶结合序列或域包括与扩增反应的引物延伸产物的序列互补并且不与伪靶核酸中存在的序列互补的杂交域。
在本发明方法中的下一步为检测来自感兴趣的标记扩增产物的信号，其中信号检测可以根据所使用的特定信号生成系统而有所不同。在某些实施方案中，仅测定了可检测信号例如荧光的存在或不存在，并且用于本发明的分析中，例如经由检测伪靶核酸和/或其扩增产物来测定或确定靶核酸的存在或不存在。根据所使用的特定标记，信号的检测可以表明靶核酸的存在或不存在。
在信号生成系统是荧光信号生成系统的那些实施方案中，信号检测通常包括检测来自反应混合物的荧光信号的变化以获得分析结果。换言之，评估反应混合物所生成的荧光信号的任意调整。根据所使用的标记的性质，改变可以是荧光增强或减弱，但是在某些实施方案中是荧光增强。可以使用任何方便的手段筛选荧光增强的样品，例如合适的荧光计，比如热稳定比色杯或读板式荧光计，或者当样品是在显微镜载玻片上的组织样品时，可以使用荧光显微镜检测荧光。使用已知的荧光计对荧光进行合适的监测。来自这些装置的信号，例如以光电倍增电压的形式发送到数据处理面板并转化为与各样品管相关的光谱。可以同时评估多管，如96管。因此，在某些实施方案中，可以平行检测多种分析物，而在其它实施方案中，可以顺序检测多种分析物，例如每次检测一种分析物或每次检测一组分析物。
当检测方案为实时方案，例如，当在实时PCR反应方案中使用时，在整个反应中可以按照该方式在频繁的间隔下收集数据，例如每次3分钟。通过监测每个循环中来自样品的反应性分子的荧光，可以以各种方式监测扩增反应进程。例如，可以分析熔融峰提供的数据，例如通过计算熔融峰下的面积和将这些数据对循环数作图。
可以例如使用预选择的荧光部分比如染料的“拟合”来分辨以该方式生成的光谱，以形成代表每个发出信号的部分(即，荧光团)的峰。可以测定峰下的面积，此面积代表每个信号的强度值，如果需要，将其表示为彼此的商。信号强度和/或比例的微分使得能够通过反应或在不同反应条件下比如不同温度下记录标记的探针变化。所述的改变与寡核苷酸探针和靶序列之间的结合现象或结合靶序列的寡核苷酸探针的降解相关。在微分峰下的面积的积分使得能够计算标记效果的强度值。
针对荧光改变筛选混合物提供一个或多个分析结果，这取决于是否在引物延伸反应结束时筛选样品一次或多次，例如在扩增反应的每个循环之后(例如，如在实时PCR监测中所进行的)。
可以以各种方式解释如上所述生成的数据。在其最简单的形式中，在扩增反应的过程中或结束时来自样品的荧光增强或降低表示存在于样品中的靶分析物的量升高，例如，与在反应混合物中检测到的扩增产物的量相关，表明扩增反应进行的事实，因此靶分析物实际上存在于初始样品中。也可以通过监测整个扩增过程的扩增反应来定量。如上所述，定量也可包括在反应混合物中测试一种或多种核酸对照。
以这种方式，可以容易地针对靶分析物的存在筛选(或评估或分析等)反应混合物。所述方法适于检测单一靶分析物以及多重分析，在所述的多重分析中分析样品中的两种或多种靶分析物。在这些后面的多重情况下，可以使用的不同探针组的数量通常为约2个至约20个或更高，例如高达100个以上，1000个以上等，其中可以平行或顺序检测样品中的多种分析物。
当使用本发明的解折叠邻近探针时，使用几种不同的邻近探针组(多重)同时以及在单一反应中对许多分析物的分析通过所获得的升高的特异性和灵敏度而得到提高。可以设计每个探针组以产生独特的相互作用(例如连接)产物，所述产物可用于测定探针组所寻找的分析物的存在或不存在、数量和/或位置。可以直接地或在扩增后使用任何由文献中已知的已确定的核酸分子的分析方法检测相互作用产物，所述方法包括液相色谱、电泳、质谱、显微镜检查、实时PCR、荧光探针等。特别感兴趣的是结合本文描述的方法与具有“DNA阵列”读出格式的组合。来自多重邻近分析的若干独特的相互作用产物可以杂交标准化的DNA阵列，所述标准化的DNA阵列携带许多与连接产物序列互补的寡核苷酸序列(标记)。可以通过在DNA阵列上的位置识别每种杂交于阵列的相互作用产物，并且在给定杂交点的检测强度将表示特异性相互作用产物的量，因此表示导致该相互作用产物的分析物的量。相互作用产物的检测可通过光谱测定、荧光、放射性同位素等实现。在扩增反应(PCR)中，可以使用荧光标记的引物或荧光标记的核苷酸将荧光部分方便地引入相互作用产物中。DNA阵列可以是膜上的简单的斑点印迹阵列，其含有少量斑点或携带成数十万个斑点的高密度阵列。
可以对本发明的方法的检测步骤进行改变以便进一步降低与非特异性核酸杂交事件相关的背景。这样的改变包括调整为能够降低任何非特异性核酸杂交事件的方法。在某些实施方案中，可以将蛋白加入包含样品和邻近探针的混合物中以降低较弱的和非特异性的DNA杂交事件。例如，大肠杆菌单链DNA结合蛋白已经用于提高引物延伸反应和PCR反应的产率和特异性(5,449,603和5,534,407号美国专利)。噬菌体T4的基因32蛋白(单链DNA结合蛋白)可以明显提高扩增较大DNA片段的能力(Schwartz等人，Nucl.Acids Res.18：1079(1990))并提高DNA聚合酶的保真度(Huang，DNA Cell.Biol.15：589-594(1996))。当使用时，这样的蛋白可以用于使反应混合物中的浓度达到约0.01ng/μL至约1μg/μL；比如约0.1ng/μL至约100ng/μL；包括约1ng/μL至约10ng/μL。
如上所述，设计本发明的方法以使邻近探针的核酸域之间的相互作用(例如连接)仅在邻位探针与分析物结合时或在解折叠邻近探针已经“解折叠”之后发生。然而，在所有该类型的分析的情况下，不能总保证这样，并且可能有一些背景相互作用，例如，在该分析中使用的“标准”邻近探针的核酸域的连接；如果探针在溶液中随机邻近。通过利用连接模板寡核苷酸要求所有探针的核酸域并行彼此杂交可降低其可能性，以使这样的相互作用发生。类似地，当其中超过一个邻近探针是解折叠邻近探针，即至少一个邻近探针是解折叠邻近探针，优选地两个、三个、四个以上的邻近探针是解折叠邻近探针时，背景的可能性降低。因此，为了进一步使得由于未反应的(即未结合的)探针导致背景的可能性降低或者最小化，除了如上所述解折叠探针之外，可以使用阻断寡核苷酸。
阻断寡核苷酸与“标准”邻近探针的核酸域的游离末端结合(即杂交或退火)。因此，阻断寡核苷酸可以结合5′邻近探针的核酸域的游离3′OH末端和3′邻近探针的核酸域的游离5′磷酸酯末端。阻断寡核苷酸的结合可以在高浓度抗阻断寡核苷酸(其可以是例如连接模板)的存在下可以胜出。在其中连接模板是抗阻断寡核苷酸的实施方案中，当所有探针一起结合在分析物上时，连接模板可以看作呈高局部浓度，因此能够结合邻近探针的核酸域而优先于阻断寡核苷酸。阻断寡核苷酸可以按照这种方式防止核酸域在分析物结合不存在时杂交到连接模板。因此，可以在与分析物的结合不存在时防止“标准”邻近探针的游离末端相互作用。当所有探针都结合分析物时，抗阻断寡核苷酸例如夹板的局部浓度，尤其是当夹板形成邻近探针的核酸域时，足以超过阻断寡核苷酸；核酸域杂交至夹板并且取代阻断寡核苷酸。
因此，阻断寡核苷酸允许使用基于竞争的策略来降低背景并因此进一步提高分析的灵敏度。
阻断寡核苷酸的长度可以为约4-100个核苷酸，例如6-75或10-50个核苷酸。它们可以杂交第一或第二探针的核酸域的游离末端处或附近的区域(“附近”指在游离3′或5′末端的1-20或1-10个核苷酸之内，例如1-6个核苷酸)。杂交区域的长度可以是3-15个核苷酸，例如3-12、3-10、3-8、4-8、3-6、4-6个核苷酸。
可以方便地设计阻断寡核苷酸以具有发夹结构，使得阻断寡核苷酸可以连接不能杂交夹板的邻近探针的末端。
通常以超过各自探针的量使用阻断寡核苷酸，例如过量2-1000倍，例如20-500、50-300、100-500或100-300倍，例如20、200或300倍。
在使用低亲和力和慢结合动力学的邻近探针检测分析物的情况下，邻近探针可以与样品接触，并且在足够高以促进邻近探针与分析物结合的浓度下培养。该培养步骤可以迅速稀释成大批的的冷缓冲液(例如，不包括分析物或邻近探针的缓冲液)，并且随后将一部分该稀释液加入连接反应混合物中。该连接反应混合物可以包含间隔/盒式寡核苷酸(如果使用)、ATP和连接酶。低温，例如约0℃至约20℃，包括约4℃至约10℃，使现有邻近探针分析物复合物的解离最小化，而大量的稀释导致未结合的邻近探针浓度下降，从而降低其反应性并使背景信号最小化。
在这样的实施方案中，通过如下方法进行分析：使用较小培养体积的样品和邻近探针，所述较小培养体积为约1μl至约20μl，比如约1μl、或约2μl、或约3μl、或约4μl、或约5μl或约6μl，然后加入较大培养体积的间隔/盒，所述较大培养体积为约8μl至约1.5ml以上，比如约20μl至约1.3ml，比如约50μl至约1ml，比如约75μl至约800μl，比如约100μl至约500μl，比如约200μl至约300μl。由于探针和分析物之间的结合在核酸域连接之前没有时间解离，因此在最终培养体积中的邻近探针的有效浓度得到稀释，在保持信号的同时降低了背景。只要能够从较大比如超过100ul以上的体积中浓缩连接产物，然后检测邻位依赖性相互作用，该方法就能够实现极高的灵敏度。在这样的实施方案中，可以通过使用单链结合蛋白降低探针-探针相互作用。
与复杂样品相关的问题可以进一步通过在分析之前稀释复杂样品来解决。复杂样品的稀释可以与本发明的解折叠邻近探针组合，进一步降低背景信号。实际上，稀释样品的步骤会极大降低探针和非特异性结合的蛋白的量，从而降低所需探针的浓度。虽然也稀释分析物，但是邻近探测的高灵敏度将提供良好的检测和定量。
本发明的方法可以如上所述均质(即，在溶液中)实施，或者不均质实施，使用固相例如其中分析物固定在固相上，允许使用洗涤步骤。固相分析的使用带来了优势，特别是对于检测困难的样品而言：洗涤步骤可以辅助抑制性组分的去除，并且可以从不想要的大样品体积中浓缩分析物。由于未结合的分析物和探针可以通过洗涤除去，因此可以使用更高浓度和更大量的邻近探针。通过洗涤除去未结合探针或未相互作用的探针的能力也意味着固相分析与均质分析相比可以耐受更低纯度的邻近探针。在某些实施方案中，洗涤步骤可以在加入邻近探针期间进行，例如如果将探针分阶段加入到样品中，或者在加入探针之后且在解折叠/裂解步骤之前进行。
可以以多种方式将分析物固定在固相上。因此，考虑固相邻近探针分析的若干实施方案。在一个这样的实施方案中，可以将一个(或多个)第一或第二(或第三，如果使用)邻近探针(或可能能够)固定在固相(或固体载体)上。分析物能够首先被一个(或多个)固定的(或可固定的)探针捕获，其次被随后加入的探针结合。
固定邻近探针可以以任意方便的方式固定在，即结合在载体上。因此，固定的方式或手段和固体载体可以根据选择选自任意数量的如本领域广泛已知的和文献中所描述的固定手段和固体载体来选择。因此，探针可以直接结合载体，例如经由分析物-结合域(例如，化学交联的)，可以利用接头基团，或通过中间结合基团(例如，利用生物素-链酶亲和素相互作用的方式)间接结合。因此，可以将邻近探针以及载体上提供的固定手段一起提供(例如，亲和结合配偶体，例如能够结合其结合配偶体的生物素或半抗原或核酸分子，即同源结合配偶体，例如链酶亲和素或抗体或核酸分子)。可以在结合分析物之前或之后对探针进行固定。此外，该“可固定的”探针可以与样品和载体一起接触。
固体载体可以为任意熟知的目前广泛用于或提议用于固定、分离等的载体或基质。这些可以采用颗粒(例如，磁性或非磁性珠粒)、片状物、凝胶、滤膜、膜、纤维、毛细管或微滴定条、管、板或孔等的形式。
所述载体可以由玻璃、二氧化硅、乳胶或聚合材料制成。合适的是具有用于结合分析物的高表面积的材料。这样的载体可以具有不规则表面，并且可以是例如多孔的或微粒状的，例如颗粒、纤维、网、烧结物或筛。微粒材料例如珠粒由于其更大的结合能力而有用，特别是聚合珠粒。
方便地，根据本发明使用的微粒固体载体可以包括球形珠粒。珠粒的大小不是关键的，但是它们的直径的级数例如可以为至少1μm，以及优选至少2μm，最大直径优选地不大于10μm，以及例如不大于6μm。
单分散颗粒，即大小基本均匀的颗粒(例如具有直径标准偏差小于5％的尺寸)的优势在于其提供非常均匀的反应重现性。可以通过如US-A-4336173中描述的技术制备代表性的单分散聚合物颗粒。
然而，为了有助于处理和分离，磁性珠粒是有利的。如本文使用的术语“磁性”指当置于磁场中时载体能够具有赋予的磁矩，即顺磁体，因此在磁场作用下可移动。换言之，包括磁性颗粒的载体可以容易地通过磁聚集来除去，其在分析物结合步骤之后提供快速、简单和有效的分离颗粒的方式。
在另一个实施方案中，除了均质结合夹板分析的非固定的邻近探针之外，可以使用仅包括结合域的固定的(或可固定的)分析物特异性探针(即分析物俘获探针)。因此，在这样的实施方案中，分析物首先被固定的或可固定的俘获探针俘获，所述俘获探针仅用于将分析物固定于固相上，随后将固定的分析物与邻近探针进行培养。在这样的实施方案中，俘获探针可以是任意能够直接地或间接地结合分析物的结合配偶体(例如，如以上所讨论的关于邻近探针的分析物-结合域)。更特别地，这样的俘获探针特异性地结合分析物。由于方法的该实施方案需要至少三个探针(结合域)同时结合至分析物或分析物复合物，因此可能找到至少三个不同的表位，这赋予分析较高的特异性。
在一个进一步的实施方案中，分析物可以自身被固定(或可固定)在固相上，例如通过非特异性吸附。在一个特定的这种实施方案中，分析物可以存在于任选地固定的和/或可渗透的细胞内，所述分析物(能够)连接固体支持物，例如包括分析物的组织样品可以固定在显微镜载玻片上。
上述方法导致对存在于反应混合物中的邻近依赖性相互作用的检测，转而对所分析的样品中的靶分析物的量提供测量。这样的测量可以是定性的或定量的。
因此，检测复杂样品中的一种或多种靶分析物的存在的上述方法可用于多种不同应用中。
本发明的方法可以用于针对样品中一种或多种靶分析物的存在或不存在来筛选样品。如上所述，本发明提供检测样品中一种或多种靶分析物的存在或定量的方法。
可以使用本发明的方法来检测多个不同类型样品中一种或多种靶分析物的存在，包括具有大量非靶向实体的复杂样品，其中与未利用本发明的解折叠邻近探针的等价方法相比，本发明的方法的解折叠探针允许更加优越地检测靶分析物。同样地，本发明的方法是检测简单或复杂样品中的一种或多种靶分析物的高度灵敏的方法。在本发明的方法中分析的样品在许多实施方案中来自生理来源，如上更详细地讨论的。
除了检测多种分析物，本发明的方法也可用于筛选化合物，所述化合物调节邻近探针的分析物-结合域与分析物的结合区域之间的相互作用，即分析物-结合域与分析物的结合。术语调节包括降低(例如抑制)和提高两个分子之间的相互作用。所述筛选方法可以是体外或体内形式，其中本领域技术人员可以容易地开发出两种形式。
可以通过上述方法筛选多种不同的候选试剂。候选试剂涵盖多种化学物种，但它们通常为有机分子，优选具有分子量大于50并且小于约2，500道尔顿的小型有机化合物。候选试剂包括与蛋白质结构相互作用所必需的官能基团，特别是氢键，并且其通常包括至少一种胺、羰基、羟基或羧基，优选至少两个化学功能基团。候选试剂通常包括被一种或多种上述官能基团取代的碳环或杂环结构和/或芳香或多芳香结构。候选试剂也存在于生物分子中，包括肽、糖类、脂肪酸、类固醇、嘌呤、嘧啶、衍生物、结构类似物或其组合。
从广泛的来源中获得候选试剂，包括合成或天然化合物库。例如，可以用多种方式来随机和定向合成多种有机化合物和生物分子，包括随机寡核苷酸和寡肽的表达。或者，以细菌、真菌、植物和动物提取物形式存在的天然化合物库是可用的或容易制备的。此外，可以容易地将天然或合成制备的库和化合物通过常规化学、物理和生物化学手段进行修饰，并且可以用于制备组合库。已知的药理试剂可以经受定向或随机化学修饰，比如酰基化、烷基化、酯化、酰胺化等以产生结构类似物。
在上述筛选分析中确定的试剂可用于各种方法中，包括调节靶分析物活性的方法，和用于与其存在和/或活性相关的条件中。
如上所述的，也提供了用于实施本发明方法的试剂盒。例如，在某些实施方案中，用于实施本发明方法的试剂盒包括至少一组第一和第二邻近探针，所述探针各自包括分析物-结合域和核酸域，其中所述邻近探针的至少一个是解折叠邻近探针，其中所述核酸域包括发夹结构，其可以裂解产生可连接的游离末端或与另一个核酸分子互补的区域，如上所述。所述试剂盒可以进一步包括另外的探针，例如第三、第四等邻近探针，如上所述。如上所述，某些方案可以使用两个或多个不同组的这样的探针以同时检测样品中的两种或多种靶分析物，例如，以多重和/或高通量形式。同样地，在某些实施方案中，试剂盒将包括两个或多个不同组的邻近探针。此外，采用试剂盒组分所实施的方案中要求或需要的另外的试剂是可以存在的，其中所述另外的试剂包括，但不限于以下物质的一种或多种：解折叠所述邻近探针的手段(例如，酶或酶的组合，比如切口酶、限制性核酸内切酶或尿嘧啶-DNA糖基化酶和核酸内切酶，例如核酸内切酶IV)，连接酶，间隔/盒式寡核苷酸，可连接的寡核苷酸，阻断寡核苷酸，用于固定探针、结合域或分析物的固体载体，用于固定探针、结合域或分析物的手段，检测手段例如荧光标记的核苷酸或寡核苷酸，互补核酸对，单链结合蛋白和PCR扩增试剂(例如，核苷酸、缓冲液、阳离子等)等。在某些实施方案中，所述试剂盒可以包括如上所述的为降低培养混合物有效体积而采用的成分，例如体积排斥剂。试剂盒组分可以存在于独立的容器中，或一种或多种组分可以存在于相同容器中，其中所述容器可以是储存容器和/或用于设计试剂盒的分析期间采用的容器。
除了上述组分之外，本发明的试剂盒可以进一步包括实施本发明的方法的说明书。这些说明书可以以各种形式存在于本发明的试剂盒中，其中一种或多种可以存在于试剂盒中。这些说明书可以存在的一种形式是在合适介质或基质上印刷的信息，所述的介质或基质是例如印刷了信息的一张或多张纸、在试剂盒的包装中、在包装内含物上等。另一个手段可以是计算机可读的介质，例如软磁盘、CD等，其中将信息记录在其上。可以存在的另一个手段是网站地址，其中可以经由因特网使用所述网站地址得到远端站点的信息。任何方便的手段都可以存在于试剂盒中。
因此，在一个在进一步的方面，本发明提供一种用于检测样品中分析物的方法中的试剂盒，所述试剂盒包括：
(a)至少一组的至少第一和第二邻近探针，其中探针各自包含分析物-结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合所述分析物，其中至少一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以被裂解产生至少一个可连接游离端或与所述样品中另一个核酸分子互补的区域，其允许所述至少第一和第二邻近探针的核酸域直接地或间接地相互作用；
(b)任选地，调节所述第一和第二邻近探针的核苷酸之间相互作用的工具(例如，共用模板，例如连接模板寡核苷酸和/或连接酶)；
(c)任选地，解折叠至少一个包括发夹结构的邻近探针的工具(例如，酶催化手段，比如切口酶、限制性核酸内切酶或尿嘧啶-DNA糖基化酶和核酸内切酶，例如核酸内切酶IV)；和
(d)任选地，用于检测所述相互作用的工具。
如上所述，用于介导核酸之间的相互作用的工具可以包括一个或多个连接模板(夹板)寡核苷酸和/或连接酶，并且该工具可以任选地进一步包括连接酶反应必须的其它试剂。用于介导相互作用的工具可以是上述在分析方法的内容中讨论的任何手段，例如在第一和第二探针的核酸域上提供的标记物，或可以是扩增工具和用于检测其扩增产物的工具，例如用于PCR反应的试剂(例如，扩增引物，以及任选地聚合酶和/或核苷酸等)和用于检测PCR扩增子等的试剂(例如，探针等)。
所述试剂盒可以进一步任选地包括用于标准邻近探针的间隔/盒式寡核苷酸和/或阻断寡核苷酸。
所述试剂盒可以进一步任选地包括针对分析物的固定的俘获探针，或用于固定的工具所提供的俘获探针。可选地，所述试剂盒可包括用于俘获或结合于分析物的固相，或一个或多个所述第一、第二或第三邻近探针可以按照固定或由用于固定的工具提供。根据上述说明书和下述代表性的实施例显而易见的是，本发明的方法和产物具有优于现有方法的大量优点。有利地，使用解折叠邻近探针(优选地，其中至少一个探针被裂解解折叠)使得本发明的方法特别地用于同时检测样品中的多种分析物，即，多重分析。而且，每个探针组可以产生独特标记的相互作用产物，其允许平行检测多种分析物。可选地，对于用于检测大量分析物的分析，其可用于顺序检测(例如，目测)相互作用产物，例如每次一个产物或每次一组产物。在本文描述的方法中使用的解折叠探针也能够使其它试剂与探针同时加入到分析中。由于探针的相互作用域(即核酸域)直到它们已经解折叠才能彼此相互作用，或与样品中的其它组分相互作用，因此，可以将用于检测相互作用产物的组分的加入到分析中而不会得到由非特异性相互作用而产生的产物。减少分析步骤的数量使可能的错误最少化，并且使方案更适用于自动化。其它优点将根据发明说明书是显而易见的。
根据本文的详细说明显而易见的是，本发明涵盖各种不同的实施方案，并且不同的这种实施方案可以得到不同的优点。例如，应当认识到如果锁式探针仍然连接其靶分子，由于靶分子的拓扑障碍，锁式探针不容易通过RCA扩增。然而，在本文描述的本发明的某些实施方案中，核酸域的裂解产生环状分子，其连接产生环状报导体分子，该环状报导体分子解环为靶分子，因此，可容易通过RCA扩增，仍然允许局部锚定扩增信号(即，由来自结合的邻近探针核酸域或由其得到的引物而生成的RCA产物)。
将参照下述非限制性实施例、参照以下附图进行进一步描述本发明，其中：
图1显示使用两个邻近探针的邻近连接分析，其中一个邻近探针是解折叠邻近探针，如所谓的喇叭探针。在该代表性的实施方案中，分析物为蛋白质-DNA复合物，其中第一邻近探针结合分析物(描述为圆形)的蛋白质元件，第二邻近探针(喇叭探针)结合分析物的DNA元件。DNA充当喇叭探针的分析物结合(“第一”)域的连接模板，并且第一邻近探针的核酸域充当第二邻近探针的核酸(“第二”)域的连接模板。其中所述连接涉及喇叭探针的核酸(“第二”)域的两个末端之间的间隔寡核苷酸。
图2显示使用三个邻近探针的邻近连接分析，其中一个邻近探针是解折叠邻近探针。解折叠邻近探针的核酸域通过裂解解折叠，并且每个末端连接不同邻近探针的核酸域。每个连接反应以连接模板(“夹板”)寡核苷酸作为模板。邻近探针结合的分析物没有显示。
图3显示使用两个邻近探针的邻近连接分析，其中一个是解折叠邻近探针。(A)解折叠邻近探针的核酸域只有当接近充当连接模板的第二邻近探针的核酸域时才能够形成环状寡核苷酸。(B)解折叠邻近探针的核酸域形成两部分锁式探针的一个部分。锁式探针的第二部分提供为第二邻近探针的核酸域。只有当所述探针邻近结合(到分析物，没有显示)时，两个部分才能够形成环状寡核苷酸。两个“夹板”寡核苷酸作为连接反应的模板。在(A)和(B)中的解折叠邻近探针(描述为箭头)的核酸域的游离3′末端能够启动RCA反应。
图4显示类似于图3A的邻近连接分析，其中两个邻近探针包括发夹结构。
图5显示类似于图4的邻近连接分析，加入了具有发夹保护的核酸域的第三邻近探针，该发夹保护的核酸域能够启动解折叠邻近探针的环化寡核苷酸的RCA反应。
图6显示类似于图1的邻近连接分析，加入了结合蛋白质-DNA复合物(分析物)中另一种蛋白质的第三邻近探针，即第三邻近探针可以看作是间接地结合分析物或所述分析物可以看作是复合物。喇叭探针的核酸(“第二”)域的两个区域间接地连接，即经由间隔寡核苷酸连接，针对每个连接利用了其它邻近探针的核酸域作为连接模板。
图7显示与图4中显示的类似的邻近连接分析，其中邻近探针的分析物-结合域和靶分析物都为核酸分子。该图证实邻近探针的核酸域如何可充当RCA的引物。
图8显示与图5中显示的类似的邻近连接分析，其中邻近探针的分析物-结合域和靶分析物都为核酸分子。
图9显示具有两个发夹结构的喇叭探针。
图10显示两个喇叭探针如何相互作用以经由两个连接模板寡核苷酸形成环状寡核苷酸。分析物可以看作是包括针对各个喇叭探针的第一域的两个目标序列的单个核酸分子，其中分析物核酸的插入序列没有显示。或者，喇叭探针可以看作结合邻近探针的核酸域，所述邻近探针结合分析物(没有显示)，即如间接地结合分析物。
图11显示与图1中类似的邻近连接分析，其中蛋白质-DNA复合物的DNA被邻近探针代替。因此，喇叭探针可以看作是间接地结合分析物。
图12显示与图1类似的邻近连接分析，其中喇叭探针的第一和第二连接都涉及间隔寡核苷酸。
图13显示与图5类似的邻近连接分析，其中环状寡核苷酸的连接涉及间隔寡核苷酸。在该代表性的实施例中，间隔寡核苷酸包括与连接模板核酸域互补的两个区域，使得其形成“凸出”或“环”。另外的“环”序列可以充当并入用于检测的环状寡核苷酸的标记物序列。
图14显示包括四个邻近探针的邻近连接分析，其中每个探针的核酸域的反应元件通过发夹结构加以保护。预形成的环状寡核苷酸，其杂交第二邻近探针的核酸域，包含核酸外切酶嵌段(描述为在预形成的环状寡核苷酸上黑色环)，使得其被裂解之后不能用作滚环扩增的引物。
图15显示单个喇叭探针如何可以用于检测样品中的核酸分子。
图16显示邻近探针的核酸域如何可以通过包括两个部分锁式探针的一部分。第一邻近探针是解折叠邻近探针，其当例如裂解解折叠时，提供针对锁式探针的两部分的连接模板。另一个连接模板提供为第二邻近探针的核酸域。
图17显示基于杂交的原位邻近连接分析(PLA)，其中：Ai显示DNA-结合PLA探针杂交单链基因组DNA；Aii显示通过一级抗体和二级PLA-探针检测组蛋白H3；Aiii显示两个环化寡核苷酸，一个锁式探针和一个间隔寡核苷酸(锁式探针包含针对荧光检测的杂交位点)，其都杂交两个PLA-探针的核酸域；Aiv显示形成环状DNA分子的后续连接；和Av显示现在通过RCA扩增环状DNA分子，并且通过与荧光标记的寡核苷酸杂交来检测。Bi显示在人(BJhTert)和小鼠(NIH3T3)成纤维细胞中组蛋白H3的免疫荧光检测(比例尺代表10μm)。Bii显示在人类和小鼠细胞中杂交DNA-结合PLA-探针的RCA-介导的检测(比例尺代表10μm)。C显示接近Alu-副本(RCA产物看作点)的单独组蛋白H3蛋白质的检测。D显示在人类和小鼠细胞中的组蛋白H3-Alu-副本相互作用的定量，以及显示来自三个复制物的一个实验的33个(人类)和36个(小鼠)细胞中RCA产物的自动定量结果。每个点代表检测单独细胞中相互作用的数量。显示中值百分数(位于方框中)、25和75百分数(方框)。
图18显示以基因组DNA作为模板的原位PLA，其中：Ai显示一级抗体和结合组蛋白H3的二级PLA-探针；Aii显示两部分锁式探针(其中一部分包含荧光检测的杂交位点)，其杂交基因组DNA以形成与基因组DNA的单一G/A错配；Aiii显示两部分锁式探针的第一个连接；Aiv显示利用MutY/EndoIV酶形成游离3′末端基因组DNA，所述MutY/EndoIV酶裂解两部分锁式探针形成的G/A错配；Av显示结合邻近探针的蛋白质的核酸域与两部分锁式探针的未连接的区域的杂交，引入另一个间隔寡核苷酸(显示为箭头)；Avi显示两部分锁式探针的第二个连接，引入间隔寡核苷酸，以形成环状DNA分子；和Avii显示通过RCA对环状DNA分子的扩增，和通过使荧光标记的寡核苷酸杂交两个检测位点(第一个来自两部分锁式探针的一个部分，第二个来自间隔寡核苷酸)，产生双色信号进行检测。B显示在人类(上部)和小鼠(下部)成纤维细胞中接近Alu-副本(RCA产物看作点)的单独组蛋白H3蛋白质的检测(比例尺代表10μm)。C显示在人类和小鼠细胞中组蛋白H3-Alu-副本相互作用的定量。显示来自三个复制物的一个实验的15个(小鼠)-29个(人类)细胞中RCA产物的自动定量结果。每个点代表检测单独细胞中相互作用的数量。显示中值百分数(位于方框中)、25和75百分数(方框)。
图19显示基于喇叭探针的原位PLA，其中：Ai通过喇叭探针(包含锁式探针的发夹，也包含针对荧光检测的杂交位点)的杂交检测-Alu副本；Aii显示Ampligase连接的喇叭探针的第一个连接；Aiii显示一级抗体和结合组蛋白H3的二级PLA-探针；Aiv显示如何通过UNG/EndoIV处理打开喇叭探针的发夹结构，以释放互补末端。在同一步骤中，使用MutY/EndoIV酶裂解喇叭探针形成的G/A错配而产生基因组DNA的游离3′末端。Av显示蛋白质结合的邻近探针的核酸域与喇叭探针的未连接互补的末端的杂交，引入另一个间隔寡核苷酸(显示为箭头)；Avi显示喇叭探针的第二个连接，引入间隔寡核苷酸，以形成环状DNA分子；和Avii显示通过RCA对环状DNA分子的扩增，和通过使荧光标记的寡核苷酸杂交两个检测位点(第一个来自喇叭探针的一个部分，第二个来自间隔寡核苷酸)，产生双色信号进行检测。Bi显示在人类和小鼠成纤维细胞中，Aii中的喇叭探针的扩增单独引起单独的Alu-副本(RCA产物看作点)的检测。Bii显示在人类和小鼠成纤维细胞中接近Alu-副本(同时与红色和绿色荧光标记的寡核苷酸杂交，得到RCA产物，看作黄色点)的单独的组蛋白H3蛋白质的检测(比例尺代表10μm)。C显示在人类和小鼠细胞中组蛋白H3-Alu-副本相互作用(图的左半部分)和单独Alu-副本(图的右半部分)的定量。显示来自三个复制物的一个实验的15个(人类，PDI)、21个(小鼠，PDI)、20个(人类，仅仅Alu-副本)和16个(小鼠，仅仅Alu-副本)细胞中RCA产物的自动定量结果。每个点代表单独细胞中检测的相互作用。显示中值百分数(位于方框中)、25％和75％四分位数(方框)。
图20显示来自显示在图17-19的实验的BJhTert/NIH3T3细胞中每个细胞核的平均PDI计数的比值。
图21显示在具有双连接系统的PLA芯片的原位斑点测序读数，其中：a)显示具有双连接系统的PLA芯片的图解，其中一组共轭发夹结构寡核苷酸的三个抗体充当邻近探针，即解折叠邻近探针。一个探针通过连接附着在载玻片上的短寡核苷酸而固定在玻璃载玻片上，并且其它两个邻近探针携带条码序列。当邻近探针结合同一靶分子且所述探针的核酸域解折叠时，加入另外的连接模板形成环状DNA；和b)显示芯片的照片，其上使用VEGF和小鼠IgG作为靶蛋白，并且与1∶1的比例掺入缓冲液中。邻近探针中包括针对每个蛋白质的特定蛋白条码。在芯片上邻近连接和RCA之后，通过使用Illumina测序试剂调用第一个碱基显影扩增产物。编码小鼠IgG的碱基‘T’在红色和绿色道中都出现，而编码VEGF的碱基‘G’仅出现在绿色道中。
图22显示在具有单一连接系统的PLA芯片的原位斑点测序读数，其中：a)显示具有单一连接系统的PLA芯片的图解，其中一组共轭发夹结构寡核苷酸的三个抗体充当解折叠邻近探针。在三个探针中，一个探针通过杂交附着在载玻片上的长寡核苷酸而固定在玻璃载玻片上，其后来充当RCA引物；一旦探针全部解折叠，一个携带条码序列，并且另一个充当连接模板；b)说明首先怎样采用简化版本验证该系统，在所述简化版本中仅仅一个探针需要解折叠反应。使用VEGF和小鼠IgG作为靶蛋白，并且以1∶1(c)和1∶10(d)和0蛋白(e)的比例掺入缓冲液中。在芯片上邻近连接和RCA之后，通过使用Illumina测序试剂调用第一个碱基显影扩增产物。编码小鼠VEGF的碱基‘T’在红色和绿色道中都出现，而编码小鼠IgG的碱基‘G’仅出现在绿色道中。
图23显示使用具有单一分子分辨率的解折叠邻近探针的RNA检测，其中a)显示通过解折叠探针进行RNA检测的图解。使用合成模板作为验证系统。当使用UNG时检测斑点(b)；相反，当在反应混合物(c)中不存在UNG时，不用检测斑点。
图24显示一组靶向单独的核酸分子(a)和蛋白质(e)的三个解折叠邻近探针。在酶消化之后，探针解折叠，其余链允许基于序列互补性(b)彼此杂交。报导体DNA分子通过DNA连接(c)环化，接着进行RCA和原位检测(d)。在模板和酶(f)的存在下，用于检测合成DNA的探针诱导检测信号，而当模板(g)或酶(h)不存在时，没有观察到任何信号。
图25显示定向靶向细胞中单独的mRNA分子的解折叠邻近探针的结果。在细胞系SKOV3(a)中观察到HER2(圆形)的转录本，但是在细胞系BJhTERT(b)中没有检测到该转录本。在携带融合转录本(c)的靶形式的细胞系K562(圆形)中检测到BCR-ABL融合转录本b3a2，但是在携带一种形式的所述融合转录本(缺乏解折叠邻近探针(d)之一的目标序列)的细胞系BV173中没有检测到该BCR-ABL融合转录本b3a2。
图26显示一个分析的结果，其中三个蛋白质分析物即重组PSA、GDF15和小鼠IgG被俘获且用三组解折叠邻近探针报道及原位斑点测序，(a)所有三种蛋白质都存在，在缓冲液中稀释，(b-d)分别掺入蛋白质，(e)没有掺入三种蛋白质的任一种。
实施例
实施例1
如上所述，本文描述的方法是基于修饰的原位邻近连接分析(PLA)的发展。下述实施例描述了针对PDI(蛋白质-DNA相互作用)的原位分析开发原位PLA的方法，其中评估三个分析，并且比较每个分析的效率和选择性。所述比较包括研究组蛋白H3蛋白质与作为模型系统的基因组Alu-副本的邻近性。该模型系统的优点是大量存在组蛋白H3，因此，通常存在与Alu-副本连接；基因组中的序列丰富。我们选择作为目标序列的26bp Alu-共有序列存在于人类中，但是不精确的拷贝存在于老鼠中。我们比较了使用杂交的设计与基于针对DNA目标识别的锁式探针的连接的更严格设计。本文给出的研究提供了原位研究表观修饰变化的新方法，并且如上所述，已经开发的方法和探针用于检测样品中分析物的多种分析中。
方法
细胞培养
将人类TERT无限增殖的成纤维细胞(BJhTert)和小鼠成纤维细胞(NIH3T3)接种在8-孔胶原蛋白涂层的腔室载玻片(BD Bioscience)上，在修饰的Eagle培养基(Gibco，针对BJhTert细胞)或Dulbecco′s修饰的Eagle培养基(Sigma，针对NIH3T3细胞)+10％胎牛血清(FCS，加热灭活的，Sigma)中33000个细胞/孔，并且在37℃下培养过夜。
固定和透化作用
将细胞放置在冰上10分钟，接着用冰冷的PBS洗涤两次，每次5分钟(900μl/孔)。在冰上，用2％(w/v)低聚甲醛(PFA，Sigma)的PBS中固定细胞30分钟。在用900μl冰冷的PBS/孔短暂洗涤之后，将细胞在冰上用冰冷的70％乙醇渗透化处理30分钟。接着，除去腔室载玻片的硅掩膜，将载玻片在室温下干燥。接着，将载玻片在PBS中再水化10分钟，在37℃下，在37℃温的0.1M HCl(Sigma)中的2.9μM胃蛋白酶(Sigma，由580μM原液新稀释的)中渗透化处理细胞65秒。在37℃下，在1M NaCl、0.1Tris-HCl pH7.5中洗涤之前和之后，将载玻片在PBS中洗涤两次，每次约1分钟，最后通过乙醇系列(70％/85％/99.6％，每次2分钟)和在台式离心机中短暂旋转干燥。将疏水性屏障笔应用于各孔的边缘，并且将8-室安全密封(直径9mm，深0.8mm；Grace Bio-Labs)连接至载玻片。在37℃下，将细胞在洗涤缓冲液(100mM Tris-HCl(pH7.6)、150mM NaCl、0.05％吐温20(Sigma))中再水化10分钟。此后，在湿润室中进行所有的培养，当培养时间超过30分钟时用q-PCR胶带密封各孔。在37℃下，用在1x NEB-缓冲液-4中的0.5U/μl的AluI(New England Biolabs(NEB))和0.2μg/μl的BSA(NEB)消化基因组DNA10分钟。所有后续洗涤都是通过首先从各孔移除培养溶液，然后用约500μl合适的洗涤缓冲液吹扫各孔。在AluI-处理之后，将细胞在洗涤缓冲液中洗涤，之后在37℃下，用在1xλ-核酸外切酶缓冲液(NEB)中的0.2U/μl的λ-核酸外切酶(NEB)、0.2μg/μl的BSA和10％的甘油(Sigma)处理制备部分单链的DNA。在冰上用在PBS中的1％(w/v)PFA后固定5分钟的步骤之前和之后，将细胞在洗涤缓冲液中洗涤。
免疫荧光
如上所述处理细胞。在37℃下，在包含2.5mM的L-半胱氨酸(Sigma)和2.5ng/μl超声处理的鲑鱼精DNA(Invitrogen)的Starting Block T20 PBS(Pierce)中阻断细胞1小时。然后，在4℃下的阻断缓冲液中2.5ng/μl的一级兔子-抗组蛋白H3抗体(#1791，Abcam)过夜。将各孔在含有0.05％吐温20(TBS+T，1000μl/孔)的TBS(10mM Tris-HCl，150mMNaCl，pH7.7)中洗涤，之后加入在2xSSC、0.25μg/μl的BSA、7.5ng/μl的聚(A)(Sigma)、0.05％吐温20中的7.5ng/μl的驴-抗兔子-FITC F(ab’)2片段(Jackson Immunoresearch)，并且在37℃下培养30分钟。最后，将载玻片在TBS中洗涤一次，除去安全密封，并且将载玻片在TBS中洗涤2x 10分钟，之后旋转干燥，固定在包含100ng/ml的DAPI的Vectashield封固剂(Vector)中。
抗兔子PLA探针的共轭
在4℃下，在透析杯(Slide-A-lyzer Mini透析元件7,000MWCO，Pierce)中将100μg的驴-抗兔子(Jackson ImmunoResearch)逆着PBS渗析过夜。接着，通过在PBS中预洗涤的Amicon Ultra 0.5ml 10K；Ultracell 10K膜(Millipore)中离心，将抗体浓缩至约20μl。然后，在室温下，以～25x摩尔加入新溶于DMSO(Sigma)中的SMCC(Pierce)接触抗体2小时。在80℃下，使PLA寡核苷酸(5′硫醇-GTC TTA ACT ATT AGC GAT ACG GTC TCG CAG ATC GCTGAC AGA ACT AGA CAC 3′(SEQ ID NO：1)，HPLC-纯，Biomers)脱气5分钟，冷冻，并在37℃下用50mM的DTT(PLA寡核苷酸的最终浓度50μM)培养1h进行还原。之后，通过加入缓冲液A(55mM的磷酸盐缓冲液、150mM的NaCl、20mM的EDTA，pH 7.0)使体积填充至约50μl。也使用缓冲液A预洗涤G-50柱(GE Healthcare)。然后，经三个这样的柱纯化抗体和寡核苷酸，以除去活化的试剂。此后立即混合抗体和寡核苷酸，并在4℃下逆着PBS渗析过夜。
基于杂交的原位PLA
如上所述，将细胞固定并渗透化处理，之后在37℃下，用在1x T4DNA连接缓冲液(10mM的Tris-乙酸酯，pH 7.5，10mM的乙酸镁，50mM的乙酸钾)、250mM的NaCl、0.25μg/μl的BSA和0.05％的吐温20中的200nM的Hyboligonucleotide、“第一”邻近探针(5′ A AAA AAC ATG GAT GTT CTT GACATG GCA ATG ACG CTA A 3′(SEQ ID NO：2)，PAGE纯，整合DNA技术(IDT)，靶互补部分以斜体字显示，与小鼠序列的错配以粗体显示)培养30分钟。然后，在37℃下使用洗涤缓冲液洗涤载玻片，接着在2x SSC+0.1％吐温20中洗涤5分钟。此后，将缓冲液改变为TBS+T。在37℃下，在包含2.5mM的L-半胱氨酸和2.5ng/μl超声处理的鲑鱼精DNA的Starting BlockT20PBS中阻断细胞1小时。接着，在4℃下，在阻断缓冲液中施用2.5ng/μl的一级兔子-抗组蛋白H3抗体或兔子IgG(Jackson Immunoresearch)过夜。在TBS+T(1000μl/孔)中洗涤各孔，并且在室温下，在阻断缓冲液中预培养2.5ng/μl的二级抗兔子-PLA探针(“第二”邻近探针)30分钟，之后将其在37℃下施用于载玻片。在37℃下，在10mM的Tris-HCl pH 7.5，0.1％吐温20中洗涤和在TBS+T中短暂洗涤之后，在37℃下，以最终浓度125nM施用在1x T4DNA连接缓冲液、0.05U/μl的T4DNA连接酶(Fermentas)、1mM的ATP(Fermentas)、0.25μg/μl的BSA、250mM的NaCl和0.05％的吐温20中的两种寡核苷酸(5′磷酸酯-AGC GAT CTG CGA GAC AGTGAA TGC GAG TCC GTC TAA GAG AGT ACA GCA GCC GTC TTA GCG TCA TTG CCA T3′，(SEQID NO：3)PAGE纯，IDT；5′磷酸酯-GTC AAG AAC ATC CAT GAA AGT GTC TAG TTC TGT C 3′，(SEQ ID NO：4)PAGE纯，IDT)30分钟。所述寡核苷酸由锁式探针和间隔寡核苷酸组成，以便产生环状寡核苷酸的锁式探针的连接以hyboligonucleotide和抗兔子-PLA探针的核酸域作为模板，如图17Aiii中描述的。用TBS+T洗涤各孔，之后，在37℃下，用1U/μl的phi29DNA聚合酶(Fermentas)、1x phi29缓冲液(Fermentas)、0.25mM的dNTP(Fermentas)、0.2μg/μl的BSA、5％甘油和1∶1000的小鼠抗组蛋白H3(phospho S10)(Abcam)进行RCA 1.5小时。使用第一邻近探针的核酸域作为RCA的引物。在37℃下用TBS+T洗涤30分钟之后，进行检测，所述TBS+T含有在2x SSC、0.25μg/μl的BSA，7.5ng/μl的poly(A)、0.05％的吐温20和6.5ng/μl的驴-抗小鼠-FITC F’ab2-片段(Jackson Immunoresearch)中的250nM检测寡核苷酸(5′Alexa Fluor 555-CAG TGA ATG CGA GTC CGT CT 3′，(SEQ ID NO：5)HPLC纯，TriLink)。最后，在TBS中洗涤载玻片一次，除去安全密封，并在TBS中洗涤该载玻片2x10分钟，之后将其旋转干燥，固定在包含100ng/mL的DAPI的Vectashield封固剂中。
通过锁式探针检测杂交寡核苷酸
如针对基于杂交的原位PLA描述的处理细胞，直到已经阻断载玻片。然后，施用在1x T4DNA-连接缓冲液、0.25μg/μl的BSA、0.05U/μl的T4DNA连接酶、0.05％的吐温20、1mM的ATP和250mM的NaCl中的125nM锁式寡核苷酸(5′磷酸酯-TGT CAA GAA CAT CCA TGT CAGTGA ATG CGA GTC CGT CTA AGA GAG TAG TAC AGC AGC CGT TTA GCG TCA TTG CCA 3′，(SEQ ID NO：6)HPLC pure，IDT)-一种针对Hyb-寡核苷酸的游离部分的锁式探针，并且在37℃下培养30分钟。如上所述进行RCA、检测和固定。
以基因组DNA作为模板的原位PLA
将细胞固定并渗透化处理，之后阻断载玻片，用一级抗体和二级PLA探针(“第一”邻近探针)培养，如针对基于杂交的原位PLA描述的。在洗涤之后，施用在1x T4DNA连接缓冲液、0.25μg/μl的BSA、0.05％的吐温20和250mM的NaCl中的200nM基因组模板寡核苷酸1(5′磷酸酯- AA AAA AAG AGT GTC TAG TTC TGT C3′，(SEQ ID NO：7)PAGE纯，IDT，靶互补部分以斜体字显示，与小鼠序列的错配以粗体显示)和200nM的基因组模板-寡核苷酸2(5′磷酸酯-CGC TAA TAG TTA AGA CGC TCA GTG AAT GCG AGT CCG TCTAAA AAA A 3′，(SEQ ID NO：8)PAGE纯，IDT，靶互补部分以斜体字显示，与小鼠序列的错配以粗体显示，用于MutY-裂解的G/A错配用下划线显示)，并在37℃下培养30分钟。两个寡核苷酸形成两部分锁式探针，其可以看作是“第二”邻近探针。在用洗涤缓冲液洗涤步骤之后，在37℃下，施用在T4DNA-连接缓冲液、1mM的ATP、0.25μg/μl的BSA、250mM的NaCl和0.05％的吐温20中的0.05U/μl T4DNA连接酶。在37℃下，将载玻片在2xSSC+0.05％的吐温20中洗涤5分钟，接着在TBS+T中洗涤。接着，使用0.64μM的MutY蛋白质(USB)、在MutY缓冲液(20mM的Tris-HCl pH7.6、30mM的NaCl、1mM的EDTA、100mM的KCl、1mM的DTT)中的0.1U/μl的EndoIV(Fermentas)和0.5μg/μlBSA，用MutY/核酸内切酶IV(EndoIV)消化所述探针30分钟，产生能够启动环化锁式探针的RCA的基因组DNA的游离3′末端。在TBS+T中的另一个洗涤步骤之后，在37℃下，在0.05U/μl的T4DNA连接酶、1x T4-连接缓冲液、1mM的ATP、0.25μg/μl的BSA、0.05％的吐温20和250mM的NaCl中培养125nM的另一种间隔寡核苷酸(5′磷酸酯-AGC GAT CTG CGA GAC CGT AT 3′，(SEQ ID NO：9)HPLC纯，Biomers)30分钟。第一邻近探针的核酸域充当经由间隔寡核苷酸连接锁式探针的模板，如图18A所示。如上所述进行RCA(通过基因组DNA启动)、检测和固定，不同在于向混合物中加入250nM的另一种检测寡核苷酸(5′Cy5-AGC GAT CTG CGA GAC CGT AT 3′，(SEQ ID NO：10)HPLC纯，IDT)。
基于喇叭探针的原位PLA
通过两个部分A(5′磷酸酯-AA AAA AAG AGT GTC TAGTTC TGT CUT AAA AAA ATA AGA CAG AAC UAG ACA CUC TAA AAA AAG CGT CUT AA 3′(SEQID NO：11)-PAGE纯，IDT，靶互补部分以斜体显示，与小鼠序列的错配以粗体显示)和B(5′磷酸酯-CTA UTA GCG ACA AAA AAG UCG CTA ATA GTT AAG ACG CTC AGT GAA TGC GAG TCCGTC TAA AAA AA3′(SEQ ID NO：12)-PAGE纯，IDT，靶互补部分以斜体显示，与小鼠序列的错配以粗体显示，用于MutY-裂解使用的G/A错配用下划线显示)的连接制备喇叭探针。将两种寡核苷酸以最终浓度4.4μM混合，加入1x T4DNA-连接缓冲液和2mM的ATP。首先，将该寡核苷酸混合物在90℃下培养，然后在65℃下培养10分钟。在室温下冷却之后，加入0.025U/μl的T4DNA连接酶。在37℃下，使样品连接30分钟，然后在65℃下培养10分钟以使连接酶失活。
如上所述，将细胞固定并渗透化处理，之后在37℃下，用在1x T4DNA连接缓冲液、250mM的NaCl、0.25μg/μl的BSA和0.05％的吐温20中的200nM喇叭探针(“第一”邻近探针)培养30分钟。此后，在洗涤缓冲液中洗涤载玻片，并且在45℃下，用在1x Amp-连接酶缓冲液(20mM Tris-HCl(pH 8.3)、75mM的KCl、10mM的MgCl2、0.5mM的NAD(Sigma)、0.01％的TritonX-100(PlusOne))、0.25μg/μl的BSA和5％的甘油中的0.25U/μl的Amp-连接酶(Epicentre)连接喇叭探针30分钟。然后，如上所述，将载玻片洗涤，并用一级抗体和二级PLA探针(“第二”邻近探针)处理。接着，用MutY/EndoIV和尿嘧啶-DNA糖基化酶(UNG)消化探针，以在37℃下，用在MutY缓冲液和0.5μg/μl的BSA中的0.64μM的MutY糖基化酶、0.1U/μl的EndoIV、0.05的U/μlUNG(Fermentas)进行PDI检测30分钟。加入UNG引起喇叭探针解折叠，如图19A所示。对于其中仅使用锁式探针作为DNA-检测探针的样品，从该步骤中省略UNG。如上述对于以基因组DNA作为模板的原位PLA，进行所有后续步骤。
图像获取和预处理
使用Zeiss Axioplan 2落射荧光显微镜、AxioCam MRm CCD检测器和40x 1.3 OilPlanNeofluar物镜与过滤器一起，获取DAPI、FITC、Cy3和Cy5的图像。使用FITC通道选择图像位置，避免显示对有丝分裂标记物磷组蛋白(phosphohistone)H3S10染色的细胞。对于每个条件，在孔的四个不同位置获取间隔0.275μm的7个图像的z-堆叠。因为分裂间期的细胞相对扁平，通过采集单独的z-切片的最大强度投影摧毁z-堆叠，同时多于一个焦平面的图像的目的是为了避免纵向色差。使用刚性几何变换矫正横向色差。分别减去来自Cy3和Cy5通道的中值强度来减少背景照度。
图像分析
为了定量基于每个细胞的PDI，鉴定单独的细胞以及点-源信号。通过强度阈值处理从图像背景分割DAPI中成像的细胞核，并且基于形状分离接触核的掩蔽物。此后，使用点-源信号检测方法，分别在Cy3(红色)和Cy5(绿色)通道中检测单独的信号。所述方法由两个部件组成：检测器，其是增强信号的余弦滤波器，和检验器，其是验证来自检测器的结果的正弦滤波器。将Cy3和Cy5通道中信号检测的结果组合，从每个检测信号提取来自两种颜色染料的荧光强度的比例。此后，基于绿色至红色强度的比例分布，将信号归类为红色、绿色或双色的。与基于强度阈值处理的分类法相比，这类基于比例的分裂确保了强信号和弱信号归属于相同的类。针对基于杂交的原位PLA，单一颜色的Cy3信号被认为是检测的PDI，而针对以基因组DNA作模板的原位PLA和基于喇叭探针的原位PLA，仅双色(Cy3和Cy5)信号被认为是真实的PDI。对于在新条件下进行的每个实验，将图像数据分成训练组和试验组。训练组用于精调图像分析管线中与信号大小和强度有关的参数，接着对较大的实验组应用算法以便对每个细胞群给出结果。
结果
使用上述邻近连接分析检测单独固定细胞中DNA-结合蛋白和特定短的基因组DNA-序列的协同定位，对于这些分析的选择性来评估这些不同的分析(如图17-19中图示的)。将对于特异性PDI所研究的细胞进行PFA-固定，并用乙醇渗透化处理，接着进行胃蛋白酶处理和在高盐中洗涤，以使细胞核更容易探测。然后，通过AluI限制性内切酶处理消化基因组DNA。由于杂交检测基因组序列需要单链DNA，则用λ-核酸外切酶，利用其5′-3′活性处理细胞，以便产生在消化位点具有释放3′末端的单链悬垂部分。作为原理的证实，我们选择研究组蛋白H3和26bp Alu-共有序列(5′CCTTAATCCCAGCACTGGGAGGC 3′(SEQ ID NO：13))之间的邻近性，如通过搜索理想序列-与人类基因组序列(NCBI 36，2006年3月的组装)匹配来确定的在人类中约60,000个拷贝/细胞。尽管在小鼠中不存在正合序列，但是它们的基因组包含与在约6,000个拷贝(理想序列匹配每个小鼠的基因组，NCBI 36，2006年3月组装)中人类26bp Alu-共有序列(5′CCTTAATCCCAGCACTGGGAGGC 3′(SEQ ID NO：14)，与人类序列的差异以粗体指示)类似的序列，其在人类中不存在。这提供了一个研究探测选择性的良好模型。我们证实在人类(BJhTert)和小鼠(NIH3T3)成纤维细胞上使用免疫荧光，用于靶向组蛋白H3的抗体近似同样地染色类人和小鼠细胞核(图17Bi)。
基于杂交的原位PLA
以前使用原位PLA检测单独的蛋白质-蛋白质相互作用。为了将其应用延伸至特异性PDI，我们研究了一种检测基因组DNA序列的简单杂交方法。在该设计中，我们使用与作为探针的寡核苷酸共轭的抗兔子免疫球蛋白抗体来检测针对组蛋白H3的一级兔子抗体(即，邻近探针间接地结合分析物)。另一个PLA探针是与目标序列互补且采用PLA反应所需的序列延伸的寡核苷酸(图17A)。为了研究DNA-定向PLA-探针的特异性，我们使用其杂交携带目标序列的人类细胞和携带类似的但不相同序列少约10倍拷贝的小鼠细胞。然后，通过RCA，使用针对杂交探针的游离3′末端的锁式探针显影结合的探针。锁式探针是单链寡核苷酸，其杂交具有彼此相对的其5′和3′末端的目标序列。在完美杂交时，末端可以通过连接结合，得到环状DNA-分子，然后其可以通过phi29DNA聚合酶局部扩增进行RCA。得到的单链DNA分子由约1000个原始环的互补复制物组成，形成低于μm大小的DNA束。我们通过杂交荧光标记的寡核苷酸检测这些RCA产物。由于荧光团以非常小体积集中，它们容易与本底荧光区分，且由荧光显微镜以亮点呈现。每个检测的RCA产物都得到一个清楚的点，能够在单细胞定量这些点的计数。显著的检测信号证实探针实际上杂交在人类细胞的细胞核中的DNA。然而，信号强度如此高，不能区分单独的RCA产物。在小鼠细胞中也观察到反应产物，尽管它们缺乏精确的目标序列(小鼠序列与人类序列在探针靶向区域的c.4G＞C、c.18delT和c.19T＞C位点不同)(图17Bii)。
为了检测组蛋白H3与基因组DNA中Alu-副本的协同定位，一起使用DNA-定向PLA探针与一级抗体和上述的二级PLA-探针。在加入寡核苷酸之后，这两个探针以其作为模板的邻近结合、杂交和连接，产生环状DNA分子，然后通过RCA将其复制，并且使用上述荧光杂交探针检测(图17C和D)。在人类细胞中，基于杂交的原位PLA产生～160个信号/细胞，与在缺乏该精确基因组序列的小鼠细胞中观察的～30个信号/细胞相比，提高了超过5倍(图20)。当用无关的兔子IgG代替一级抗体时，或者当省略一级抗体或DNA-结合PLA探针时，则检测到可忽略数量的信号(中值＝0，上限百分数≤1)，与使用的细胞系无关(数据没有显示)。
以基因组DNA作为模板的原位PLA
为了提高靶基因组DNA序列的检测选择性，我们决定使用基因组DNA序列本身作为寡核苷酸探针的连接酶-依赖性环化的模板。因此，在该方案中，单链基因组DNA充当PLA探针。对于第二个方案，将一级抗体和二级PLA-探针施用于具有固定和部分消化的DNAs的细胞。该基因组DNA提供寡核苷酸对(两部分锁式探针)的环化所需的两个模板之一，另一个模板是连接PLA-探针的寡核苷酸(图18A)。使用错配-特异性MutY糖基化酶(MutY)和核酸内切酶IV(EndoIV)，使用探针-靶杂交体中故意的G/A错配来酶裂解探针结合位点的基因组序列。这得到可用于启动RCA的基因组DNA序列中的游离3′末端。为了保证信号实际上反映真实的蛋白质-DNA相互作用，我们设计反应，使得短的所谓“间隔”寡核苷酸包括在环状DNA分子中，其以连接于抗兔子免疫球蛋白抗体的寡核苷酸作为模板。该序列提供了RCA产物中的第二检测位点，除了已经并入锁式探针寡核苷酸的RCA产物之外。包含该另外的DNA片段能够使我们区分已经环化的任何锁式探针，而无需加入抗组蛋白抗体。我们保证通过使用具有不同荧光的杂交探针检测这两个基序，可同时反映出RCA产物中的两个片段。因此，仅采用同时针对两个片段的探针可检测RCA产物被认为指示PDI(图18B和C)。正如所料，与信号降低至5个信号/细胞的小鼠细胞相比，使用基因组DNA作为PLA-探针提高了人类细胞中的信号比例13倍(图20)。然而，采用该更严格的探测，在人类细胞中发现的信号总数降低至～80个信号/细胞。当使用无关的兔子代替一级抗体时，或者当不加入一级抗体或环化寡核苷酸时，在两个细胞系中都观察到0个信号的中值(上限百分数≤1)。
基于喇叭探针的原位PLA
即使以基因组DNA作为模板的原位PLA改善了信号检测选择性，在不存在精确目标序列的小鼠细胞中仍然产生了假阳性信号。如上讨论的，环化寡核苷酸(两部分锁式探针)杂交至类似而不是相同序列可能允许连接，因此，我们想要用更严格的连接酶，即Amp-连接酶代替T4DNA连接酶，所述Amp-连接酶耐受更高的温度且提供更特异性的目标识别。然而，抗体很可能对实质上高于37℃的温度敏感。因此，为了使用更特异性的Amp-连接酶，必须改变反应方案。首先，在45℃的更高温度下，使锁式探针(在该情况下，喇叭探针，如下讨论的)杂交且连接，之后在37℃下进行抗体培养。DNA环由使用一部分锁式探针代替使用两部分锁式探针形成，如上所述。因此，两个靶-互补序列连接形成一个分子。然而，当使用一部分锁式探针时，所述锁式探针必须与用于检测PDI的蛋白质组分的PLA探针具有部分互补性，但是由于该互补性这些试剂在培养期间不必与PLA-探针结合在一起。
为了克服该障碍，我们发现了一般方法，其中DNA试剂之一，此处是锁式探针，包括两个发夹结构，其屏蔽与用于蛋白质检测的PLA-探针(所谓的喇叭探针)的互补性。将一些尿嘧啶碱基并入各个发夹结构的一个链中，以提供给基质进行酶消化。这允许我们在两个探针独立地结合它们的靶标之后释放与PLA探针互补的锁式探针的序列(图19A)。因此，通过Amp-连接酶，锁式探针可以杂交到基因组DNA上且连接，而不会影响随后的一级抗体和二级PLA-探针的培养。只有当所有探针都结合时，通过用尿嘧啶-DNA糖基化酶(UNG)消化除去发夹结构中的补体，以除去尿嘧啶碱基，并且通过EndoIV-处理在碱性位点裂解DNA-骨架。这释放了相邻PLA-探针的杂交模板，其作为喇叭探针的其余部分连接的模板以产生环状(现在，稍小)DNA分子。在同一步骤中，基因组DNA和环化的探针之间的G/A-错配被MutY/EndoIV-裂解，在基因组DNA中结合环化探针的位点产生游离3’末端。如对于以基因组DNA作为模板的原位PLA描述的，为了区分正确反应的探针，需要将另一个序列元件(间隔寡核苷酸)引入喇叭探针中。这次，引入间隔寡核苷酸-引起双色RCA产物-也起控制UNG/EndoIV裂解的作用，因为单独的喇叭探针也可以通过RCA扩增，即使没有被UNG/EndoIV消化。在那种情况下，其充当规则的锁式探针，检测基因组DNA但独立于蛋白结合(图19B)，而双色信号表示在DNA-序列和靶蛋白的邻近性(图19B)。
以这种方式，以高选择性显影Alu序列和与DNA相互作用的组蛋白蛋白质之间的邻近性，得到～25个PDI信号/每个人类细胞，而在小鼠细胞中观察到可忽略数量的信号，致使在人类细胞中检测的信号高于在小鼠细胞中信号的500倍(图19C和20)如上，在任何细胞类型中，利用无关兔子IgG、省略一级抗体或DNA-结合PLA-探针的技术控制中没有一个产生信号(中值和上限百分数都等于零)(数据没有显示)。与使用不含发夹片段的规则的锁式探针相比，当使用包含发夹的锁式探针(喇叭探针)检测基因组DNA时，结果类似，因此发夹结构没有影响检测或扩增(数据没有显示)。
讨论
在描述的分析中靶向的Alu序列在人类基因组中存在～60,000个拷贝，而组蛋白H3(核小体的一种组分)确定位于邻近大多数或所有的这些拷贝。为了使细胞核能够接近检测所需的所有试剂，必须对核膜进行渗透化处理且除去某些蛋白质。此处，我们内必须找到接触目标序列和将感兴趣的蛋白保留在适当位置之间的平衡。因此，固定和渗透化处理步骤需要仔细地滴定，对于每个感兴趣的新蛋白质和序列可能需要重新进行上述步骤。
我们选择从我们的分析中排除被有丝分裂标记物抗组蛋白H3(磷酸S10)染色的细胞，以避免研究细胞之间的变异来源。当用锁式探针靶向Alu-序列时，～0.13％的检测效率暗示在我们使用的条件下，大部分的DNA不易探测。为了改善本文提出的方法检测蛋白结合单拷贝基因的效率，将需要增加DNA的接近性的其它研究。
正如所料，本文显示用于检测靶DNA序列的基于杂交的方法具有最小的选择性，产生～160个信号/人类细胞，以及产生～30个信号/小鼠细胞。使用基因组DNA直接作为形成可扩增DNA环需要的两个连接反应之一模板而代替将寡核苷酸杂交至目标序列且利用其作为连接的模板，在人类和小鼠细胞中检测到信号之间的里比例增加至～13。同时，与基于杂交的原位PLA相比，在人类细胞中的信号数量下降约50％。我们推测大部分信号丢失是假阳性信号，因为来自阴性对照小鼠细胞的信号下降了80％。由于限制性裂解和核酸外切产生大量的单链DNA，环状探针交叉杂交的风险增加，我们保证仅仅由同时识别基因组目标序列和结合的蛋白质得到的RCA产物被评分。这是通过组蛋白H3结合PLA-探针引导另外的“间隔”寡核苷酸并入环化的(锁式或喇叭探针)DNA分子中来实现。因此，可以使用不同荧光团标记的两个探针检测RCA产物。一个识别来自对基因组DNA特异性的环化(锁式或喇叭)探针的基序，并且一个显示出存在由抗组蛋白抗体提供的另一个“间隔”寡核苷酸。在数据分析中，仅仅双色RCA产物被认为是真实信号。也从所述分析中忽略在细胞核外、细胞质中或细胞外发现的信号。
为了进一步提高分析区分密切相关的序列的选择性，我们转向热稳定的Amp-连接酶，迫切需要一种更精心设计的探针方案。与T4DNA连接酶相比，Amp-连接酶需要更高的温度，并且在连接位点更易于错配。因此，DNA-结合探针的连接将需要在检测蛋白质之前进行，因为抗体不能耐受在实质上高于37℃的温度下培养。然而，如果使用环化(锁式探针)寡核苷酸并且在结合PLA-探针之前连接，则预期用于蛋白质检测的PLA-探针携带的寡核苷酸可以杂交DNA结合环化寡核苷酸并且变得邻近，与合适的靶蛋白的存在无关。因此，我们必须通过引入遮掩寡核苷酸的互补部分的两个发夹结构掩蔽DNA-结合探针的PLA-探针互补部分。采用该基于喇叭探针的原位PLA，我们观察到与小鼠细胞相比，在人类细胞中的信号计数增加500倍。比较基于锁式探针的原位PLA检测的PDI信号数和Alu-序列，所有检测的Alu序列的40％似乎非常接近于组蛋白H3。
因此，用于DNA检测的喇叭探针与用于蛋白质检测的寡核苷酸-共轭抗体的组合经由邻近连接反应导致蛋白质-DNA复合物的选择性检测。这样的方法将有助于鉴定具有特异性PDI和某些序列的表观修饰变化的细胞，以及其在组织切片中的位置。然而，显而易见的是，一般而言，本文描述的方法和探针将用于分析物的检测，而不仅限于PDI的检测。因此，将以更加详细分析细胞功能的单细胞水平检测基因、转录本和蛋白质的相关方法的组合变得可能。在一个进一步的前景中，可以来源于以单细胞水平调节基因表达的研究的新诊断时机成为可能。
实施例2
采用解折叠探针和原位斑点测序读数的芯片内邻近连接分析(PLA)通过连接在载玻片表面(图21a)上的寡核苷酸或杂交(图22a)，将第一邻近探针(或俘获探针)固定在玻璃载玻片上。顺序加入靶蛋白(分析物)和邻近探针对，该邻近探针对共轭包括发夹结构和六个核苷酸条码基序的核酸域。在形成分析物-探针复合物之后，使用识别发夹结构中特定序列的切口酶。解折叠寡核苷酸，如果邻近存在，则能够形成环状DNA分子。然后，固定在固体载体上的寡核苷酸充当滚环扩增(RCA)的引物。在一小时之内，DNA环扩增至高达约1000个拷贝。RCA产物保持连接玻璃载玻片。在与测序引物杂交之后，通过连续引入用不同荧光团标记的核苷酸重新编码位于测序引物结合位下游的条码序列。荧光信号的检测对应于分析物的存在。
方法&材料
在玻璃载玻片上的抗体固定
将胺修饰的寡核苷酸(biomers)印迹在TRIDIATM codelink载玻片(SurModics)上。每个载玻片印迹14个20x20特征的子阵列。阵列印迹和阻断方案为由Ericsson等人描述的。在使用之前，将Secure Seal 16(Grace Bio-labs)连接至载玻片。将40μl的50nM俘获共轭物加入到各个反应室中，并且在4℃下培养过夜。接着，用1ml的1x PBS轻轻地吹扫各孔，并干燥。在通过连接方法固定中(图21a)，加入40μl的连接混合物(如之前描述的)，并且在37℃下培养10分钟，之后干燥。此后，将玻璃载玻片贮存在4℃下，备用于PLA。
玻璃载玻片上的PLA
通过用PLA缓冲液将抗原稀释至有用的浓度制备样品。向每个反应室加入40μl，并在37℃下培养1.5小时。用1ml的1x PBS轻轻地吹扫各孔，并干燥。接着，加入40μl的包含5nM每个邻近探针的PLA探针混合物，并且在37℃下再培养1.5小时。然后，洗涤各孔，加入40μl的切口混合物(1x NEB缓冲液(New England Biolabs)、0.1μg/μl纯化的BSA(New EnglandBiolabs)、0.5单位的Nb.BtsI(New England Biolabs))，并在37℃下培养30分钟。在洗涤之后。加入40μl的连接混合物(1x PCR缓冲液(Invitrogen)、2.5mM MgCl2(Invitrogen)、1单位的T4DNA连接酶(Fermentas)、100nM的两个夹板寡核苷酸和0.08mM的ATP(Fermentas))，并在37℃下培养10分钟。洗涤各孔，之后加入40μl的UNG混合物(1x PCR缓冲液(Invitrogen)、2.5mM的MgCl2(Invitrogen)、1单位的UNG(Fermentas))。在37℃下培养5分钟之后，洗涤各孔，用40μl的RCA混合物1x phi29缓冲液(Fermentas)、0.5μg/μl纯化的BSA(New England Biolabs)、0.2mM的dNTPs(Fermentas)、6单位的phi29(Fermentas))重构。在37℃下，进行RCA反应60分钟。
通过测序读数
在37℃下进行1h RCA反应之后，洗涤各孔，加入包含100nM的序列引物和1x杂交缓冲液的杂交混合物。在37℃下培养玻璃载玻片30分钟。之后，用1x结合缓冲液(Illumina)平衡各孔。将各孔干燥，加入40μl的结合混合物(Illumina)，并在55℃下培养10分钟。最后，洗涤各孔，并再次干燥。加入封固剂，用盖玻片盖上玻璃载玻片，准备在显微镜下观察。用BlobFinder分析显微图像，并对斑点计数。
实施例3
用于具有单分子分辨率的RNA检测的解折叠探针
感兴趣的RNA作为一组三个寡核苷酸的靶标，并转化到环状DNA报导体分子中(图23a)。寡核苷酸探针包括与靶RNA区域互补的序列，侧接可以通过尿嘧啶-DNA糖基化酶(UNG)除去尿嘧啶碱基和在碱性位点被核酸内切酶例如EndoIV或Fpg裂解而解折叠的发夹结构。在三个解折叠探针中，一个携带可以杂交环化成第二探针的寡核苷酸，并且第三探针充当RCA的引物，在37℃下1小时之后得到1000个环状DNA的拷贝。然后，可以通过杂交荧光标记的检测寡核苷酸使RCA产物显影。
方法&材料
解折叠探针的目标识别
使用在杂交缓冲液(150mM的NaCl、5mM的EDTA、1x PBS和0.05％的吐温20)的60nM的三个解折叠探针培养20nM合成DNA模板。然后，用杂交缓冲液将寡核苷酸混合物稀释100倍。在室温下，将50μl的稀释混合物铺开在聚L-赖氨酸-涂层的显微镜载玻片(Sigma-A1drich)上，在RT下用时约15分钟，该显微镜载玻片连接secure-Seal 8(Grace Bio-labs)。将载玻片在1×PBS中洗涤，并且在乙醇系列之后干燥。
向各孔中加入50μl的UNG混合物(1x PCR缓冲液(Invitrogen)、2.5mM的MgCl2(Invitrogen)、1单位的UNG(Fermentas)、1单位的EndoIV(New England Biolabs))。在37℃下培养30分钟之后，洗涤和干燥，加入50μl的连接混合物(1x PCR缓冲液r(Invitrogen)、2.5mM的MgCl2(Invitrogen)、1unit的T4DNA连接酶(Fermentas)和0.08mM的ATP(Fermentas))。将连接反应物在37℃下培养30分钟，接着在1×PBS中洗涤，并加入50μl的RCA混合物(1x phi29缓冲液(Fermentas)、0.5μg/μl纯化的BSA(New England Biolabs)、0.2mM的dNTPs(Fermentas)、6单位的phi29(Fermentas))。在37℃下进行RCA反应60分钟。
通过杂交10nM荧光标记的探针，在37℃下培养15分钟，接着在1×PBS和乙醇系列中洗涤，使RCA产物显影。此后，旋转干燥载玻片，用约10μl的VectaShield(Immunkemi)和盖玻片固定，并成像。用BlobFinder分析显微图像，并计数斑点。
实施例4
用于测量单独的核酸和蛋白质分子并使其成像的解折叠邻近连接分析
将使用两个或三个亲和试剂的邻近连接分析物加入到包括靶核酸分子或蛋白质分子的生物样品中。在同步靶结合时，使探针进行酶“解折叠”以显示互相互补序列，其引发一系列反应，即杂交、连接和启动RCA-局部扩增。结果证实这提供了一种在各种环境中对核酸或蛋白质的快速有效、灵敏的多重检测。
每个探针组由三个双功能试剂组成，即u锁式(uPadlock)(一种包括核酸域的邻近探针，其折叠产生两个部分杂交的单链核酸分子的，其中一个核酸链包括保持杂交至连接分析物-结合域的母体核酸链的一部分的中间区域，其中所述链可以参与分子内连接以产生环状寡核苷酸)、u隔板(uSplint)(一种包括核酸域的邻近探针，其解折叠产生能够作为解折叠uPadlock的连接模板的连接模板)和u引物(uPrimer)(一种包括核酸域的邻近探针，其解折叠产生能够扩增uPadlock的环化核酸的引物)(图24a和e)。每个试剂都具有分析物-结合域，其起识别靶核酸或蛋白质分子的作用，和一个报导体区域，当加入酶时其有助于信号放大。亲和力区域设计用于识别特定靶分子，例如用于检测DNA或RNA分子或使用蛋白质检测的抗体的互补核苷酸序列。报导体区域折叠成发夹-环核酸结构，在一组探针内各自起不同作用。uPadlock包括与uSplint互补的两个基序，和与uPrimer互补的一个基序。uSplint和uPrimer各自包括在其发夹茎专用的基序，其与upadlock互补，设计使得它们在探针结合它们的靶标之后可以经由酶消化而得到单链。
在目标识别之后，接着进行酶消化，诱导所有的核酸发夹结构解折叠。这引起upadlock释放一个DNA链，其中间区域保持与连接亲和试剂的母体链杂交。现在，锁式探针的游离链的两个末端可以杂交uSplint的暴露基序，而解折叠的uPrimer碱基对杂交锁式探针的另一片段(图24b)。接着，由DNA连接酶结合锁式探针的末端(图24c)。然后，通过由uPrimer引发的RCA扩增环化的DNA报导体。在培养1小时之后，每个RCA产物包括高达1000个环化探针的交联体互补物。这一长DNA链形成具有直径至多1μm的无规卷曲，位于uPrimer的结合位点(图24d)。针对杂交RCA产物的寡核苷酸，可以通过各种手段，例如经由杂交荧光标记的检测寡核苷酸连接荧光标记的短DNA标记或聚合酶-辅助结合荧光标记的核苷酸，在荧光显微镜下鉴定形成的RCA产物。
材料和方法
设计uPLA探针
用于DNA和mRNA检测的uPLA(解折叠邻近连接分析)探针的序列显示在表1中。靶向mRNA的亲和区域设计为具有杂交片段，其具有的Tm为约60℃，最佳尺寸为约20个核苷酸，最小不需要的二级结构，和与无关基因组序列的相似性最小。最初，使用引物3(http://frodo.wi.mit.edu/primer3/)和针对人类基因组的″blasted″(http://genome.ucsc.edu/cgi-bin/hgBlat)设计该序列。用于蛋白质检测的uPLA探针的报导体区域显示在表2中。经由双功能接头Sulfo-SMCC用硫醇基在共轭抗体的一个末端修饰寡核苷酸(表3)。所有的DNA探针都购自Integrated DNA Technologies(IDT)，抗体都购自R&D Systems。
采用uPLA探针探测合成DNA
将50μl20pM的生物素化合成DNA模板加入到在1xPBS中的链霉亲和素-涂层的Codelink载玻片(SurModics)，并在37℃下培养15分钟。在含有0.05％Tween 20的1xPBS中洗涤两次之后，将50μl探针混合物(包含在1xPBS中的5pmol每个uPLA探针)加入到载玻片，在37℃下培养30分钟。在含有0.05％Tween 20的1xPBS中洗涤两次之后，向细胞中加入包含在1x解折叠缓冲液(MutY缓冲液)中的5U尿嘧啶-DNA糖基化酶(UNG)(Fermentas)、5UEndoIV(Fermentas)、1μg/μl的BSA的50μl uPLA探针混合物，并在37℃下培养30分钟。然后加入50μl的连接混合物(1x PCR缓冲液(Invitrogen)、2.5mM的MgCl2(Invitrogen)、1单位的T4DNA连接酶(Fermentas)和0.08mM的ATP(Fermentas))。在37℃下培养连接反应物30分钟，接着在1×PBS中洗涤，加入50μl的RCA混合物(1x phi29缓冲液(Fermentas)、0.5μg/μl纯化的BSA(New England Biolabs)、0.2mM的dNTPs(Fermentas)、6单位的phi29(Fermentas))。在37℃下进行RCA反应60分钟。接着，通过用10nM荧光标记的探针杂交，在37℃下培养15分钟，接着在1×PBS和乙醇系列中洗涤来显影RCA产物。此后，旋转干燥载玻片，用～10μl的VectaShield(Immunkemi)和盖玻片固定，并成像。
细胞培养物和制备
在补充有2mM的L-谷氨酰胺(Gibco)、10％FBS(Sigma)和1×青霉素链霉素(PEST，Sigma)的RPMI培养介质(Sigma)中培养细胞系K562BV173和SKOV3。在不含酚红和L-谷氨酰胺(Gibco)的、补充有10％FBS(Sigma)、1×非必需氨基酸(Gibco)和1×PEST(Sigma)的MEM中培养BJhTERT细胞。以1500g，将BV173细胞连接在Supefrost Plus Gold载玻片上(ThermoScientific)5分钟。将K562、SKOV3和BJhTERT细胞接种在载玻片上，并使其连接和展开至期望的融合。然后，在室温下，将细胞固定在PBS中的3％(w/v)低聚甲醛(Sigma)中30分钟。在固定之后，在DEPC-处理的PBS中洗涤载玻片两次，并且在使用之前贮存在4℃下的70％乙醇中至少8小时。
采用uPLA探针探测mRNA
在70℃下，用50μl的2×SSC(300mM的NaCl、30mM的柠檬酸钠)、50％的甲酰胺(Sigma)、5U RNase抑制剂(Fermentas)培养在载玻片上生长的固定细胞10分钟。在95℃下加入20pmol的每种探针90s，然后通过在benchtop上，在10μl的400mM的NaCl、50mM的NaHPO4中30分钟骤冷使其冷却至室温。接着，向细胞中加入50μl的探针混合物，所述探针混合物包含2×SSC、5URNase抑制剂、0.5μg/μl的鲑鱼精DNA(Invitrogen)、10％甲酰胺、0.2μg/μl的BSA(NEB)、5％的硫酸葡聚糖(Invitrogen)和5pmol的每种uPLA探针，并在37℃下培养3-4小时。在用50μl的2×SSC、10％甲酰胺洗涤两次之后，向细胞中加入50μl的解折叠混合物，并在37℃下培养30分钟，所述解折叠混合物包含在1×解折叠缓冲液(MutY buffer)中的5U的UNG(Fermentas)、5U的EndoIV(Fermentas)、5U的RNase抑制剂、1μg/μl的BSA。在用50μl的1×DEPC-PBS、0.05％吐温20洗涤两次之后，向细胞中加入50μl的连接混合物，所述连接混合物包含在1×Ampligase缓冲液(Epicenter)中的12.5U的Ampligase(Epicenter)、5U的RNase抑制剂、20％的甲酰胺、50mM的KCl、0.2μg/μl的BSA，并在45℃下培养45分钟。此后，通过加入50μl的RCA混合物进行RCA，所述RCA混合物包含在1×phi29缓冲液(Fermentas)中的25U的phi29DNA聚合酶(Fermentas)、5U的RNase抑制剂、5％的甘油(Invitrogen)、250nM的dNTP(Fermentas)、0.2μg/μl的BSA，并在37℃下培养1小时。在用50μl的1×DEPC-PBS、0.05％吐温20洗涤两次之后，向细胞中加入50μl的检测混合物，该检测混合物包含在2×SSC中的5pmol检测寡核苷酸、20％的甲酰胺，并在37℃下培养20分钟，接着在50μl的1×DEPC-PBS、0.05％吐温20中洗涤两次，并在乙醇系列中干燥。此后，旋转干燥载玻片，用～20μl的包含100ng/mL DAPI的VectaShield(Immunkemi)和25×40mm盖玻片固定，并成像。
抗体固定在载玻片上
将胺修饰的寡核苷酸(Biomers)印迹在TRIDIATM codelink载玻片(SurModics)上。每个载玻片印迹14个20x20特征的子阵列。在使用之前，将Secure Seal 16(Grace Bio-labs)连接至载玻片。将40μl的50nM俘获共轭物(共轭至寡核苷酸的抗体，其能够杂交载玻片上印迹的胺修饰的寡核苷酸)加入到各个反应室中，并且在1×PBS、0.1％BSA(Sigma)中4℃下培养过夜。接着，用1ml的1×PBS轻轻地吹扫各孔，并干燥。
采用uPLA探针探测蛋白质
通过用PLA缓冲液(0.1％BSA(Sigma)、5mM的EDTA、100nM的山羊IgG(Sigma)、10μg/μl的鲑鱼精DNA(Invitrogen)、0.05％的Tween 20(Sigma)和1×PBS)稀释各自或总共为1nM的重组蛋白、GDF15(957-GD-025，R&D)、小鼠IgG(I5381，Sigma)和PSA(1344-SE，R&D)制备样品。向各反应室中加入40μl，并且在37℃下培养1.5小时。用1ml的1×PBS吹扫各孔，并干燥。接着，加入40μl的包含5nM的三个探针对的PLA探针混合物，并在37℃下再培养1.5小时。然后，洗涤各孔，并根据在用于检测合成DNA的uPLA探针中描述的步骤使探针消化、连接和扩增。
经由RCA产物的测序原位读数
在37℃下RCA反应1小时时，洗涤各孔，并加入40μl包含100nM的序列引物和1×杂交缓冲液的杂交混合物。在37℃下，培养玻璃载玻片30分钟。此后，用1×结合缓冲液(Illumina)使各孔平衡。干燥各孔，加入40μl的结合混合物(Illumina)，并在55℃下培养10分钟。最后，洗涤各孔，并再次干燥。加入封固剂，用盖玻片盖住玻璃载玻片，接着在显微镜观察。
结果
解折叠的PLA探针靶向固定在玻璃载玻片上的合成DNA模板分子。可检测荧光点的出现显然取决于模板的结合存在和解折叠反应所需的酶(图24f-h。为了评估使用三个而不是两个探针的相对优点，我们还设计了一套方案，其中由足够产生信号的两个探针进行同步检测。在这些实验中，一起使用upadlock与另一种试剂，该试剂在解折叠之后可以通过作为连接的夹板和RCA的引物该实验的结果显示当使用三个而不是两个探针时信噪比增强。
接着，我们通过原位直接靶向单独的mRNA分子在生物系统中测试我们的探针。我们首先设计一组针对癌症相关转录本HER2特异性的三个探针，并将其应用于两个细胞系：人卵巢癌细胞系SKOV3和TERT-无限增殖的成纤维细胞(BJhTERT)。在SKOV3细胞(图25a)观察到信号(圆形)，而在BJhTERT细胞中没有观察到信号(图25b)。
为了进一步评估我们的探针的特异性，我们靶向称为b3a2BCR-ABL融合转录本的变体，所述b3a2存在于人类红细胞成髓细胞(erythromyeloblastoid)白血病细胞系K562中。人白血病细胞系BV173表达称为b2a2的BCR-ABL融合转录本的另一个变体。我们设计uPrimer和uSplint靶向两个融合变体中的两个共用区域，和对b3a2中独特断点特异性的upadlock，其在转录本b2a2中不存在。正如所料，在K562中观察到可检测水平的信号(圆形)，而在BV173中没有观察到信号(图25d)。
uPLA探针提供自身用于代表几个不同靶标的单分子的并行检测。我们研究了同时分析三种纯化的蛋白质的测定：生长分化因子(GDF)-15、前列腺-特异性抗原(PSA)和小鼠免疫球蛋白(IgG)，稀释在缓冲液中。我们设计了三组探针，其均包括在uPadlock探针报导体区域中的6-nt标记序列。对于每组探针，uPadlock和uSplint探针的报导体区域共价共轭不同等分试样的同批多克隆抗体，所述多克隆抗体对于靶蛋白具有特异性。其它等分试样的多克隆抗体也共轭固定在玻璃载玻片上的寡核苷酸，并且使uPrimers的亲和区域杂交这些固定的DNA链。
首先，用固定在载玻片上的具有连接的uPrimer的抗体俘获蛋白质。在洗涤之后，加入uPadlock和uSplint探针，接着重新开始洗涤。接着，通过酶消化解折叠探针，随后环化并由固定的引物进行锁式探针的RCA扩增。最后，通过使用合成法进行DNA测序的原理，解码标记序列的第一个核苷酸鉴定代表检测蛋白质分子的RCA产物(图)。实验通过单独的RCA产物的原位测序(一种可用于区分大量检测的蛋白质的技术)，证实了检测单独的蛋白质分子的可能性。
序列表
<110> 欧凌科公司
<120> 解折叠邻近探针及其使用方法
<150> GB1107863.1
<151> 2011-05-11
<160> 26
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 51
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> PLA 寡核苷酸
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 巯基
<400> 1
gtcttaacta ttagcgatac ggtctcgcag atcgctgaca gaactagaca c 51
<210> 2
<211> 64
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> "第一" 邻近探针
<400> 2
gcctcccaaa gtgctgggat tacaggaaaa aacatggatg ttcttgacat ggcaatgacg 60
ctaa 64
<210> 3
<211> 70
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 锁式探针
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 3
agcgatctgc gagacagtga atgcgagtcc gtctaagaga gtacagcagc cgtcttagcg 60
tcattgccat 70
<210> 4
<211> 34
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> Gap 寡核苷酸
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 4
gtcaagaaca tccatgaaag tgtctagttc tgtc 34
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 检测探针
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> Alexa fluor 555
<400> 5
cagtgaatgc gagtccgtct 20
<210> 6
<211> 75
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 锁式寡核苷酸
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 6
tgtcaagaac atccatgtca gtgaatgcga gtccgtctaa gagagtagta cagcagccgt 60
ttagcgtcat tgcca 75
<210> 7
<211> 37
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 基因组模板寡核苷酸 1
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 7
ctgggattac aggaaaaaaa gagtgtctag ttctgtc 37
<210> 8
<211> 59
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 基因组模板寡核苷酸 2
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 8
cgctaatagt taagacgctc agtgaatgcg agtccgtcta aaaaaagccg cccaaagtg 59
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 额外间隔寡核苷酸
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 9
agcgatctgc gagaccgtat 20
<210> 10
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 额外检测寡核苷酸
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> Cy5
<400> 10
agcgatctgc gagaccgtat 20
<210> 11
<211> 83
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 喇叭探针 A部分
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 11
ctgggattac aggaaaaaaa gagtgtctag ttctgtcuta aaaaaataag acagaacuag 60
acacuctaaa aaaagcgtcu taa 83
<210> 12
<211> 78
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 喇叭探针 B部分
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 12
ctautagcga caaaaaaguc gctaatagtt aagacgctca gtgaatgcga gtccgtctaa 60
aaaaagccgc ccaaagtg 78
<210> 13
<211> 26
<212> DNA
<213> 人类
<400> 13
cctgtaatcc cagcactttg ggaggc 26
<210> 14
<211> 25
<212> DNA
<213> 小鼠
<400> 14
cctttaatcc cagcactcgg gaggc 25
<210> 15
<211> 100
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 合成 DNA 模板
<220>
<221> 其它特点
<222> (100)..(100)
<223> 蛋白生物素
<400> 15
tctctatgag tctccggggc tctattctct ctctctctct gcagagttca aaagcccttc 60
agtctctctc tctctctttg agcctcaggg tctgagttct 100
<210> 16
<211> 100
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> BCRABL u锁式
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 16
cgacgctctt ccgatcttgg tcatgttgat cggcagtgat gcactctttc cctacaucac 60
tgccgatcaa catctctcct gaagggcttt tgaactctgc 100
<210> 17
<211> 67
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> BCRABL u引物
<400> 17
actcagaccc tgaggctcaa ctctctctct ctctctctct gaccaagatc gctctcgauc 60
uugguca 67
<210> 18
<211> 81
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> BCRABL u夹板
<400> 18
cccuacacga cgcucuuctc taagagcgtc gtgtagggaa atctctctct ctctctctct 60
catagagccc cggagactca t 81
<210> 19
<211> 98
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> HER2 u锁式
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<400> 19
cgacgctctt ccgatcttgg tcatgttgat cggcagtgat gcactctttc cctacaucac 60
tgccgatcaa catctctcct cctggatatc ctgcagga 98
<210> 20
<211> 67
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> HER2 u引物
<400> 20
gacctgcctc acttggttgt ctctctctct ctctctctct gaccaagatc gctctcgauc 60
uugguca 67
<210> 21
<211> 81
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> HER2 u夹板
<400> 21
cccuacacga cgcucuuctc taagagcgtc gtgtagggaa atctctctct ctctctctct 60
cgcaggtagg tgagttccag g 81
<210> 22
<211> 73
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> u锁式 1
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<220>
<221> 其它特点
<222> (73)..(73)
<223> 巯基
<400> 22
cgacgctctt ccgatctgat ctgtcggcag tgacactctt tccctacauu cactgccgac 60
agatccgttt ttt 73
<210> 23
<211> 73
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> u锁式 2
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<220>
<221> 其它特点
<222> (73)..(73)
<223> 巯基
<400> 23
cgacgctctt ccgatctatt ggctcggcag tgacactctt tccctacauu cactgccgag 60
ccaatcgttt ttt 73
<210> 24
<211> 73
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> u锁式 3
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 磷酸盐
<220>
<221> 其它特点
<222> (73)..(73)
<223> 巯基
<400> 24
cgacgctctt ccgatcttgg tcatcggcag tgacactctt tccctacauu cactgccgat 60
gaccacgttt ttt 73
<210> 25
<211> 49
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> u夹板
<220>
<221> 其它特点
<222> (49)..(49)
<223> 巯基
<400> 25
tacacgacgc uutttagcgt cgtgtagggt ctctctctct ctctctctc 49
<210> 26
<211> 58
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> u夹板
<220>
<221> 其它特点
<222> (1)..(1)
<223> 巯基
<400> 26
tttttttttt caagcagaag acggcatacg attttttttt tagatcgguu uccgaucu 58

Claims (16)

1.解折叠邻近探针，包括偶联核酸域的分析物-结合域，其中所述核酸域包括：
(i)至少一个与目标序列互补的区域；和
(ii)自身互补的区域，使得其形成发夹结构，该发夹结构抑制所述至少一个互补区域杂交目标序列；
其中所述发夹结构包括可裂解位点，且通过裂解所述位点解折叠该发夹结构获得部分双链核酸域，其包括游离5′和3′末端且能够使核酸域的所述至少一个互补区域杂交目标序列。
2.权利要求1所述的解折叠邻近探针，其中所述分析物-结合域与核酸不同。
3.权利要求1或2所述的解折叠邻近探针，其中所述可裂解位点通过酶催化裂解。
4.根据权利要求1-3中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述发夹结构包括能裂解核酸分子的一种或多种酶可识别的裂解识别位点。
5.根据权利要求4所述解折叠邻近探针，其中所述裂解位点是切口酶或限制性核酸内切酶可识别位点。
6.根据权利要求1至4中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述发夹结构包括一个或多个尿嘧啶残基。
7.根据权利要求1至6中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述目标序列包括连接模板的一部分。
8.根据权利要求7所述的解折叠邻近探针，其中所述连接模板是邻近探针的核酸域形式。
9.根据权利要求7所述的解折叠邻近探针，其中所述连接模板是游离寡核苷酸。
10.根据权利要求1至9中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述部分双链核酸域的游离5′和3′末端可以直接地或间接地连接形成环状寡核苷酸。
11.根据权利要求1至9中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述部分双链核酸域的5′末端可以直接地或间接地连接其它邻近探针的核酸域的3′末端。
12.根据权利要求1至9中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述部分双链核酸域的3′末端可以直接地或间接地连接其它邻近探针的核酸域的5′末端。
13.根据权利要求10至12中任一项所述的解折叠邻近探针，其中所述部分双链核酸域的游离5′和3′末端杂交至他们各自靶点，使得域的游离末端杂交一个或多个连接模板，该连接模板充当游离末端彼此直接或间接地连接的模板。
14.根据权利要求13所述解折叠邻近探针，其中所述可连接的核酸域的末端杂交彼此直接相邻的连接模板。
15.根据权利要求13所述解折叠邻近探针，其中可连接的核酸域的末端杂交连接模板，之间具有间隔。
16.在检测样品中分析物的方法中使用的试剂盒，所述试剂盒包括：
(a)至少一组的至少第一和第二邻近探针，其中探针各自包含分析物-结合域和核酸域且可以同时直接地或间接地结合所述分析物，其中至少一个所述邻近探针的核酸域包括发夹结构，该发夹结构可以被裂解产生至少一个可连接游离末端或与所述样品中另一个核酸分子互补的区域，其允许所述至少第一和第二邻近探针的核酸域直接地或间接地相互作用；
(b)任选地，调节所述第一和第二邻近探针的核酸之间相互作用的工具(例如，连接模板寡核苷酸和/或连接酶)；
(c)任选地，解折叠至少一个包括发夹结构的邻近探针的工具(例如，酶催化工具，比如切口酶、限制性核酸内切酶或尿嘧啶-DNA糖基化酶和核酸内切酶，例如核酸内切酶IV)；和
(d)任选地，用于检测所述相互作用的工具。
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