荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的引物对、探针、试剂盒
及方法
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,更具体地,本发明涉及一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的引物对、探针、试剂盒及方法。
背景技术
鼠脑心肌炎病毒(Encephalomyocarditis virus,EMV)属于小RNA病毒科心病毒属成员,只有1个血清型。鼠是EMV的天然储存宿主,EMV可感染多种宿主动物,包括哺乳动物、啮齿类动物、节肢动物和人,其中猪的感染最普遍,也是最严重的动物。小鼠对EMV极为易感,主要表现为急性脑炎、心肌炎、糖尿病、睾丸炎、眼结膜炎等。EMV为单股正链的RNA病毒,基因组全长约7.8kb,有一个大的开放性阅读框(ORF),其基因组结构与其他微小RNA病毒相似。猪源和鼠源毒株基因组同源性高达99.93%。有此可见,该病毒可在鼠和猪之间跨物种传播,能引致母猪繁殖障碍和仔猪致死性心肌炎,致死率可达100%。目前EMV流行范围越来越广,EMV也是一种重要的人兽共患病致病因子,有研究发现人类食用感染的猪肉,血清中检测到了EMV的病毒抗体。此病给养猪业造成严重经济损失,有研究表明猪与猪之间基本不会发生病原的传播,或者说传播能力极其的有限,基本都是通过跨种间传播,而小鼠便是EMV的天然储存宿主,所以从小鼠的源头扼杀EMV的传播,最为理想,可以大大的减少EMV在猪及其他有经价值的饲养动物中的流行和感染,从而减少经济损失。
在各种生物医学实验研究中,大鼠和小鼠是使用量最大、用途最多的实验动物。建立一种小鼠脑心肌炎病毒的可靠检测方法,对及时发现并监测动物的健康状况,降低因感染造成严重的经济损失,防止工作人员感染十分重要。目前,国内和国际上常用的鼠脑心肌炎病毒(EMV)感染的检测方法是血清学ELISA检测,其中鼠的采血,血清分离都是特别繁琐和耗时的,特别是在大型的实验动物饲养机构,每年的实验鼠的检测,采用传统ELISA方法太过于繁琐了,且现如今市场上有的鼠脑心肌炎病毒感染检测ELISA试剂盒,大部分为进口试剂盒,价格都在2000-3000元左右,而且仅可以检测96乘以2个样。因此,传统的方法存在着繁琐、局限性、灵敏度低、价格高等不足。
本发明拟建立一种快速、简便、敏感、特异的EMV荧光定量PCR检测方法,旨在为监测EMV提供方法支持。
发明内容
基于此,为了克服上述现有技术的缺陷,本发明提供了一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的引物对、探针、试剂盒及方法。
为了实现上述发明目的,本发明采取了以下技术方案:
一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的引物对,所述引物对具有如SEQ IDNo:1和SEQ ID No:2所示的碱基序列。
本发明还提供了一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的探针,采取了以下技术方案:
一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的探针,所述探针具有如SEQ ID No:3所示的碱基序列。
在其中一些实施例中,所述探针的5’结合有FAM,所述探针的3’结合有BHQ1。
本发明还提供了一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的试剂盒,采取了以下技术方案:
一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的试剂盒,所述试剂盒包括如SEQ IDNo:1和SEQ ID No:2所示的引物对、以及SEQ ID No:3所示的探针。
本发明还提供了一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的方法,采取了以下技术方案:
一种荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的方法,包括以下步骤:以鼠的脑组织的cDNA为模板,SEQ ID No:1和SEQ ID No:2为引物,SEQ ID No:3为探针,进行荧光定量RT-PCR扩增,采集荧光信号。
在其中一些实施例中,所述荧光定量RT-PCR扩增的反应体系为:Premix Ex Taq10μL、ROX Reference Dye II0.2μL、cDNA模板2μL、SEQ ID No:1引物0.4μL、SEQ ID No:2引物0.4μL、SEQ ID No:3探针0.8μL、加灭菌蒸馏水至20μL。
在其中一些实施例中,所述荧光定量RT-PCR扩增的反应条件为:95℃预变性30sec;95℃变性5sec,60℃退火延伸34sec,40个循环。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
1、本发明通过设计出特异性的引物对和探针,优化荧光定量RT-PCR检测方法的反应条件,从而快速、准确、特异性地针对小鼠体内鼠脑心肌炎病毒核酸(EMV)进行检测,不仅可以实现对实验鼠的大样本筛查,也可以对细胞系和生物原材料进行外源因子检测;
2、本发明的荧光定量RT-PCR检测方法只需收集能提取到微量的cDNA的组织即可,EMV主要在小鼠的脑、心、胰腺等器官大量复制,为了更好的监测效果,应该尽量收集脑、心、胰腺等组织样本进行cDNA的提取,且本发明仅需要合成引物对,探针,染料试剂盒,便可方便快捷精确的检测几千个样本,便捷廉价;
3、本发明的荧光定量RT-PCR检测方法的最低检测限为3个拷贝数/μL,约10fgDNA,高于普通PCR方法1000倍,常见的小鼠病毒株均无特异性扩增,没发现交叉反应,批内和批间变异系数均小于2%,灵敏度、重复性和特异性都可以保证。
附图说明
图1为本发明实施例1的临床样本的检测结果(X-轴表示PCR循环数,Y-轴表示扩增反应的荧光值);
图2为本发明试验例1中荧光定量PCR检测方法的标准曲线图(X-轴表示PCR循环数,Y-轴表示扩增反应的荧光值);
图3为本发明试验例1中荧光定量PCR检测方法的动力学曲线图;其中,1-8号对应模板浓度依次为:3×107、3×106、3×105、3×104、3×103、3×102、3×101、3×100拷贝数/μL;9为阴性对照;
图4为本发明试验例1中普通PCR的检测结果,其中1-6号孔的模板浓度依次为3×106、3×105、3×104、3×103、3×102、3×101拷贝数;
图5为本发明试验例1中荧光定量PCR检测方法的特异性结果图。
具体实施方式
以下结合附图和具体实施例对本发明作进一步详细的说明。
下列实施例中,未注明具体条件的实验方法,通常按常规条件,如《精编分子生物学实验指南》(F.M.奥斯伯,R.E.金斯顿,J.G.塞德曼等主编,马学军,舒跃龙的译.北京:科学出版社,2004)中所述的方法进行。
实施例1荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒
1、实验样品
来自上海实验动物研究中心的小鼠的脑样品病料120份。
2、cDNA合成
取一小块小鼠的脑组织,加PBS加钢珠放入震荡器中震荡1min左右,离心4000rpm,2min,吸去上清,提取RNA。提取方法参照TIANamp Virus RNA Kit提取盒说明书,提取的核酸RNA进行反转录合成cDNA。
模板为提取的病毒RNA,引物对为OligdT18,进行反转录合成cDNA,反转录体系(40μL)为:RNA模板20μL,引物对2μL,5×反转录Buffer 8μL,dNTP(10mmol/L)4μL,Ribonuclease Inhibitor(40U/μL)1μL,Prime Script反转录酶(200U)1μL,DEPC水4μL。42℃水浴1h,70℃水浴10min,冰浴4min。-20℃保存备用。
3、设计引物对和探针
根据NCBI上发表的鼠脑心肌炎病毒PEC9毒株全基因组序列(DQ288856.1),在其保守特异区域919-1022nt处,设计了引物对和探针:
上游引物对qRT-EMV-F,其序列为:
5’-CCACCTCCTCAGACAAGAATAAC-3’(SEQ ID No:1)
下游引物对qRT-EMV-R,其序列为:
5’-GCAGAGAG GTCAATGGAGTTT-3’(SEQ ID No:2),
Taqman探针FAM-EMV,其序列为:
5’-FAM-CCTCGGAAGGCAATGAAGGTGTGA-3’-BHQ1(SEQ ID No:3)。
4、TaqMan荧光定量PCR检测
荧光定量PCR扩增反应总体系为20μL,其中:
Premix Ex Taq(Probe qPCR)(2×)10μL
ROX Reference Dye II(50×)0.2μL
cDNA模板2μL
引物SEQ ID No:1(10μmol/L)0.4μL
引物SEQ ID No:2(10μmol/L)0.4μL
探针SEQ ID No:3(10μmol/L)0.8μL
加灭菌蒸馏水至20μL。
荧光定量PCR扩增反应的反应条件为:95℃预变性30sec;95℃变性5sec,60℃退火延伸34sec,40个循环,采集荧光。
5、检测结果
检测结果如图1所示。结果表明,上海实验动物研究中心的小鼠中未出现鼠脑心肌炎病毒(EMV)的感染,利用本实施例的检测方法可以实现针对鼠脑心肌炎病毒的监控目的。在图1中,1:EMV标准品;2:小鼠微小病毒;3:小鼠细小病毒;4:小鼠肺炎病毒;5:小鼠肝炎病毒A59株;6:仙台病毒;7:鼠呼肠孤病毒3型;8:鼠痘病毒;9:阴性对照。
试验例1荧光定量RT-PCR的标准曲线的绘制及最佳线性范围的确定
本试验例检测了实施例1建立的EMV的TaqMan探针荧光定量RT-PCR方法的特异性,敏感性和稳定性。
1、标准曲线和动力学曲线的绘制
人工合成鼠脑心肌炎病毒PEC9毒株(DQ288856.1)全基因组的919-1022nt DNA序列,合成并连接pUC57质粒中,构建EMV的质粒标准品pUC-EMV,作为EMV标准质粒。按EMV质粒标准品3×108拷贝数/μL为起始模板浓度,以倍比稀释次数(分别为3×107、3×106、3×105、3×104、3×103、3×102、3×101、3×100拷贝数/μL)和相应的Ct值绘制出标准曲线和动力学曲线,标准曲线如图2所示,从图2可知,当EMV的最终浓度分别在3×107~3×100拷贝数/μL时,其相关系数R2=0.9974,标准曲线都具有良好的线关系,各个稀释度相关性好,误差较小;反应的扩增效率E=2.28,说明扩增体系和条件优化的较好。动力学曲线如图3所示,EMV灵敏度可以达到30个拷贝/μL,且动力学扩增曲线指数增长阶段和平台期都完整,荧光定量PCR的结果是可靠的。
2、敏感性试验
将EMV的质粒标准品分别做8个稀释度从3×107~3×100拷贝数/μL,以倍比稀释为模板分别进行荧光定量PCR扩增,Ct值大于35,视为阴性,同时利用引物对SEQ ID No:1和SEQ ID No:2进行常规RT-PCR扩增。
检测结果如图3和图4所示,结果表明,利用本发明的方法检测EMV标准质粒的灵敏度可达3×100拷贝数/μL,而普通PCR最低可以检测到3×103拷贝数/μL,说明本发明的方法高于普通PCR方法1000倍。
3、特异性试验
通过本发明实施例1的检测方法,分别对小鼠通常感染的病毒,小鼠微小病毒(MVM)、小鼠肺炎病毒(PVM)、小鼠肝炎病毒A59株(MHV-A59)、仙台病毒(SEV)、小鼠呼肠孤病毒3型(Reo-3)和鼠痘病毒(ECT)均由上海实验动物研究中心提供。MVM和ECT提取病毒DNA,PVM、MHV-A59、SEV和Reo-3提取病毒总RNA,再反转录为DNA。在调整浓度后,分别作为模板进行EMV的实时荧光定量PCR反应,进行检测,验证方法的特异性。结果如图5所示,结果表明,除EMV标准品会有特征性的扩增曲线外,其他病毒均没有特征性的扩增曲线,证明本发明建立的荧光定量PCR检测方法特异性强,与其他常见的鼠类病毒株均无交叉反应。
4、重复性试验
以EMV质粒标准品中的3×106和3×104拷贝数/μL两个稀释度的作为模板,对这两个稀释度在不同时间段进行2次重复测定,每次对同一模板同时进行3次重复测定及设置3个重复孔,按照本发明实施例1所述的方法进行实时荧光定量PCR。其中:变异系数(β)=标准偏差(SD)/平均数(X),结果见表1。
表1.荧光定量PCR检测方法的重复性
表1结果表明批内和批间变异系数均小于2%,说明本发明建立的荧光定量PCR检测方法具有较好的重复性,结果稳定可靠。
以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合,为使描述简洁,未对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述,然而,只要这些技术特征的组合不存在矛盾,都应当认为是本说明书记载的范围。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
序列表
<110>中国农业科学院上海兽医研究所
<120>荧光定量RT-PCR检测鼠脑心肌炎病毒的引物对、探针、试剂盒及方法
<130> 3
<170>PatentIn version 3.1
<210> 1
<211> 23
<212>DNA
<213>人工序列
<400> 1
ccacctcctcagacaagaataac 23
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 2
gcagagaggtcaatggagtt t 21
<210> 3
<211> 24
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 3
cctcggaaggcaatgaaggtgtga 24