CN106591493B - 鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用 - Google Patents

鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用。本发明提供的引物组合由序列1至序列6所示的6种DNA分子组成。所述引物组合可应用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒，还可应用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒。本发明成功建立了鸭肝炎病毒的RT‑LAMP检测方法。本发明所建立的检测方法准确性高、灵敏度高、特异性强，具有极大的应用前景。

Description

鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用
技术领域
本发明涉及生物检测技术应用领域，具体涉及一种鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用。
背景技术
鸭肝炎病毒(Duck Hepatitis Virus，DHV)是小RNA病毒科、肠道病毒属的一种。可感染2周龄以下的小鸭，死亡率高达90％以上，是危害养鸭业最为严重的传染病之一。成年鸭、鸡、鹅都不感染。
传统的病原鉴定方法包括中和试验和血清保护试验，这两种方法实用性强、特异性高，但所需时间较长，是目前用于诊断或血清流行病学调查的常规方法。其他血清学诊断方法还包括酶联免疫吸附试验(ELISA)和斑点酶联免疫吸附试验(Dot-ELISA)，胶体金免疫电镜技术检测DHV，但这些检测存在耗时长、敏感性较低、不易标准化等缺点，结果可靠性并不是很高，且价格较为昂贵。目前已建立的DHV RT-PCR和荧光定量RT-PCR检测方法，虽然敏感性较高，但是需要使用昂贵的仪器和试剂等。
环介导等温扩增技术(loop-mediated isothermal amplification，LAMP)通过识别靶序列上6个特异区域的引物，在一种具有链置换特性的DNA聚合酶——Bst酶(BstDNApolymerase)的作用下，能够在恒温条件下高效、快速、特异地扩增DNA靶序列。在反应体系中加入逆转录酶，即可检测RNA靶序列。在LAMP体系中加入荧光染料，可根据反应体系中的荧光信号强度来判断反应的进行情况。目前，LAMP技术已经被广泛应用于病原微生物的检测中，包括人类致病微生物、动植物病毒以及寄生虫所致疾病的诊断。对LAMP技术而言，引物设计是其核心。
发明内容
本发明的目的是提供一种鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用。
本发明提供了一种引物组合，由引物F3-1、引物B3-1、引物FIP-1、引物BIP-1、引物LF-1和引物LB-1组成；
所述引物F3-1为如下(a1)或(a2)：
(a1)序列表的序列1所示的单链DNA分子；
(a2)将序列1经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列1具有相同功能的DNA分子；
所述引物B3-1为如下(a3)或(a4)：
(a3)序列表的序列2所示的单链DNA分子；
(a4)将序列2经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列2具有相同功能的DNA分子；
所述引物FIP-1为如下(a5)或(a6)：
(a5)序列表的序列3所示的单链DNA分子；
(a6)将序列3经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列3具有相同功能的DNA分子；
所述引物BIP-1为如下(a7)或(a8)：
(a7)序列表的序列4所示的单链DNA分子；
(a8)将序列4经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列4具有相同功能的DNA分子；
所述引物LF-1为如下(a9)或(a10)：
(a9)序列表的序列5所示的单链DNA分子；
(a10)将序列5经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列5具有相同功能的DNA分子；
所述引物LB-1为如下(a11)或(a12)：
(a11)序列表的序列6所示的单链DNA分子；
(a12)将序列6经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列6具有相同功能的DNA分子。
所述引物组合的用途为如下(b1)或(b2)或(b3)或(b4)：
(b1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(b2)制备用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的试剂盒；
(b3)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒；
(b4)制备用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的试剂盒。
本发明还保护所述引物组合的应用，为如下(b1)或(b2)或(b3)或(b4)：
(b1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(b2)制备用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的试剂盒；
(b3)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒；
(b4)制备用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的试剂盒。
本发明还保护含有所述引物组合的试剂盒；所述试剂盒的用途为如下(c1)或(c2)：
(c1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(c2)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒。
本发明还保护所述试剂盒的制备方法，包括将各条引物单独包装的步骤。
本发明还保护一种鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的方法，包括如下步骤：提取待测病毒的总RNA；以总RNA为模板，采用所述引物组合进行RT-LAMP扩增反应，如果采用所述引物组合可以实现以所述总RNA为模板的阳性扩增、待测病毒为或候选为鸭肝炎病毒，如果采用所述引物组合不能实现以所述总RNA为模板的阳性扩增、待测病毒为或候选为非鸭肝炎病毒。
本发明还保护一种鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的方法，包括如下步骤：检测待测病毒的总RNA是否含有所述引物组合的靶序列相应的RNA，如果所述总RNA中含有所述引物组合的靶序列相应的RNA、待测病毒为或候选为鸭肝炎病毒，如果所述总RNA中不含有所述引物组合的靶序列相应的RNA、待测病毒为或候选为非鸭肝炎病毒。
本发明还保护一种检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的方法，包括如下步骤：提取待测样本的总RNA；以总RNA为模板，采用所述引物组合进行RT-LAMP扩增反应，如果所述采用引物组合可以实现以所述总RNA为模板的阳性扩增、待测样本感染或疑似感染了鸭肝炎病毒，如果采用所述引物组合不能实现以所述总RNA为模板的阳性扩增、待测样本未感染或疑似未感染鸭肝炎病毒。
本发明还保护一种检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的方法，包括如下步骤：检测待测样本的总RNA是否含有所述引物组合的靶序列相应的RNA，如果所述总RNA中含有所述引物组合的靶序列相应的RNA、待测样本感染或疑似感染了鸭肝炎病毒，如果所述总RNA中不含有所述引物组合的靶序列相应的RNA、待测样本未感染或疑似未感染鸭肝炎病毒。
以上任一所述RT-LAMP扩增反应体系中F3-1的终浓度为0.3-0.5μM，B3-1的终浓度为1-2μM，FIP-1的终浓度为2.4-3.4μM，BIP-1的终浓度为2.4-3.4μM，LF-1的终浓度为1-2μM，LB-1的终浓度为1-2μM。
所述F3-1的终浓度具体可为0.3μM，B3-1的终浓度具体可为2μM，FIP-1的终浓度具体可为2.4μM，BIP-1的终浓度具体可为2.4μM，LF-1的终浓度具体可为1μM，LB-1的终浓度具体可为1μM。
以上任一所述RT-LAMP扩增反应体系中还含有荧光染料Eva-Green。
以上任一所述RT-LAMP扩增的反应体系具体组成可为：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。
所述混合引物即为所述引物组合I中的各条引物组成的混合物。
以上任一所述RT-LAMP扩增的反应程序具体可为：62.5℃恒温60min。反应过程中，采用荧光PCR仪检测荧光信号。
本发明还保护引物组合II或引物组合III。
所述引物组合II由引物F3-2、引物B3-2、引物FIP-2、引物BIP-2、引物LF-2和引物LB-2组成；
所述引物F3-2为如下(d1)或(d2)：
(d1)序列表的序列7所示的单链DNA分子；
(d2)将序列7经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列7具有相同功能的DNA分子；
所述引物B3-2为如下(d3)或(d4)：
(d3)序列表的序列8所示的单链DNA分子；
(d4)将序列8经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列8具有相同功能的DNA分子；
所述引物FIP-2为如下(d5)或(d6)：
(d5)序列表的序列9所示的单链DNA分子；
(d6)将序列9经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列9具有相同功能的DNA分子；
所述引物BIP-2为如下(d7)或(d8)：
(d7)序列表的序列10所示的单链DNA分子；
(d8)将序列10经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列10具有相同功能的DNA分子；
所述引物LF-2为如下(d9)或(d10)：
(d9)序列表的序列11所示的单链DNA分子；
(d10)将序列11经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列11具有相同功能的DNA分子；
所述引物LB-2为如下(d11)或(d12)：
(d11)序列表的序列12所示的单链DNA分子；
(d12)将序列12经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列12具有相同功能的DNA分子。
所述引物组合III由引物F3-3、引物B3-3、引物FIP-3、引物BIP-3、引物LF-3和引物LB-3组成；
所述引物F3-3为如下(e1)或(e2)：
(e1)序列表的序列13所示的单链DNA分子；
(e2)将序列13经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列13具有相同功能的DNA分子；
所述引物B3-3为如下(e3)或(e4)：
(e3)序列表的序列14所示的单链DNA分子；
(e4)将序列14经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列14具有相同功能的DNA分子；
所述引物FIP-3为如下(e5)或(e6)：
(e5)序列表的序列15所示的单链DNA分子；
(e6)将序列15经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列15具有相同功能的DNA分子；
所述引物BIP-3为如下(e7)或(e8)：
(e7)序列表的序列16所示的单链DNA分子；
(e8)将序列16经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列16具有相同功能的DNA分子；
所述引物LF-3为如下(e9)或(e10)：
(e9)序列表的序列17所示的单链DNA分子；
(e10)将序列17经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列17具有相同功能的DNA分子；
所述引物LB-3为如下(c11)或(c12)：
(e11)序列表的序列18所示的单链DNA分子；
(e12)将序列18经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列18具有相同功能的DNA分子。
所述引物组合II的用途为如下(b1)或(b2)或(b3)或(b4)：
(b1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(b2)制备用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的试剂盒；
(b3)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒；
(b4)制备用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的试剂盒。
所述引物组合III的用途为如下(b1)或(b2)或(b3)或(b4)：
(b1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(b2)制备用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的试剂盒；
(b3)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒；
(b4)制备用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的试剂盒。
本发明还保护所述的引物组合II或引物组合III的应用，为如下(b1)或(b2)或(b3)或(b4)：
(b1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(b2)制备用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的试剂盒；
(b3)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒；
(b4)制备用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的试剂盒。
本发明还保护含有所述引物组合II的试剂盒；所述试剂盒的用途为如下(c1)或(c2)：
(c1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(c2)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒。
本发明还保护含有所述引物组合III的试剂盒；所述试剂盒的用途为如下(c1)或(c2)：
(c1)鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
(c2)检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒。
以上任一所述待测病毒具体可为鸭肝炎病毒(DHV)、甲型流感病毒(IAV)或肠道病毒71型(EV71)。
本发明成功建立了鸭肝炎病毒的RT-LAMP检测方法。本发明所建立的检测方法准确性高、灵敏度高、特异性强。由于设计了一对环引物，极大地加速了反应的进程，缩短了反应所需的时间。在本发明检测方法中加入了荧光染料Eva-Green。该染料能够在反应液配制时加入，反应过程中，能够通过采集的荧光值变化来检测反应情况，无需开盖，极大地降低了污染的可能性，具有极大的应用前景。
附图说明
图1为实施例3反应温度为62.5℃时得到的扩增曲线。
图2为实施例3反应温度为63℃时得到的扩增曲线。
图3为实施例3反应温度为63.5℃时得到的扩增曲线。
图4为实施例3反应温度为64℃时得到的扩增曲线。
图5为实施例3反应温度为64.5℃时得到的扩增曲线。
图6为实施例4反应体系1-3的扩增结果。
图7为实施例5中鸭肝炎病毒为模板的扩增结果。
图8为实施例5中甲型流感病毒(IAV)为模板的扩增结果。
图9为实施例5中人疱疹病毒(EBV)为模板的扩增结果。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明，但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料，如无特殊说明，均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。以下实施例中的RT-LAMP扩增中使用的Reaction Mix.和酶Mix.均来自Loopamp RNA扩增反应试剂盒。
Loopamp RNA扩增反应试剂盒：日本荣研化学。
鸭肝炎病毒减毒疫苗：南京天邦生物科技有限公司。
实施例1、引物设计及制备
进行大量序列分析、比对获得了用于鉴定鸭肝炎病毒的若干引物。将各个引物进行预实验，比较灵敏度、特异性等性能，最终得到用于鉴定鸭肝炎病毒的三套引物组合。
用于鉴定鸭肝炎病毒的引物组合I，包括一对外引物(F3-1、B3-1)，一对内引物(FIP-1、BIP-1)和一对环引物(LF-1、LB-1)，各条引物序列如下所示(5’→3’)：
F3-1(序列表的序列1)：ATGTGGCAACAGCCATGAGA；
B3-1(序列表的序列2)：GCCTCACCTTAGACTGGTTC；
FIP-1(序列表的序列3)：GGATTCCAACATTCAAGGCCTCGGAAGCTTGCAGGGAGGAAC；
BIP-1(序列表的序列4)：TGGCCAAACCCTGATTGATGAAATAAAGGAAGCTACTTCTTGC；
LF-1(序列表的序列5)：CTATATCCCTTTCCCAGCAA；
LB-1(序列表的序列6)：ATGAGTGAGTTGCAGGTTAG。
用于鉴定鸭肝炎病毒的引物组合II，包括一对外引物(F3-2、B3-2)，一对内引物(FIP-2、BIP-2)和一对环引物(LF-2、LB-2)，各条引物序列如下所示(5’→3’)：
F3-2(序列表的序列7)：TGTGGTTCTACAGTCTTCC；
B3-2(序列表的序列8)：AGGTCTCACAGTTTTCATCA；
FIP-2(序列表的序列9)：TTCTCCTGCTTGATTGTGACTTCCATGGACTCAGAGAACATCC；
BIP-2(序列表的序列10)：TGGAATGGCAATTGGAAACCATTTCGGCATAGTCTGTGATT；
LF-2(序列表的序列11)：ACCATTTAATGCTGACTCA；
LB-2(序列表的序列12)：AGTCAACGGCCAGCCTGTAT。
用于鉴定鸭肝炎病毒的引物组合III，包括一对外引物(F3-3、B3-3)，一对内引物(FIP-3、BIP-3)和一对环引物(LF-3、LB-3)，各条引物序列如下所示(5’→3’)：
F3-3(序列表的序列13)：TCTACAGTCTTCCACATGG；
B3-3(序列表的序列14)：AGGTCTCACAGTTTTCATCAA；
FIP-3(序列表的序列15)：CCATTCCACTTCTCCTGCTTGAGAGAACATCCTTGAGTCAGC；
BIP-3(序列表的序列16)：AATTGGAAACCAGCAGGTGATAGTGAATTTCGGCATAGTCTG；
LF-3(序列表的序列17)：TGTGACTTCACCATTTAA；
LB-3(序列表的序列18)：CATGCAGTCAACGGCCAG。
实施例2、引物优化
1、提取鸭肝炎病毒减毒疫苗的RNA。
2、以步骤1得到的RNA作为模板，分别采用实施例1中制备的引物组合I、引物组合II和引物组合III进行RT-LAMP扩增。
当采用引物组合I时，RT-LAMP扩增的反应体系(10μL)：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。混合引物即引物组合I中的各条引物组成的混合物。反应体系中，F3-1的终浓度为0.3μM，B3-1的终浓度为2μM，FIP-1的终浓度为2.4μM，BIP-1的终浓度为2.4μM，LF-1的终浓度为1μM，LB-1的终浓度为1μM。
当采用引物组合II时，RT-LAMP扩增的反应体系(10μL)：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。混合引物即引物组合II中的各条引物组成的混合物。反应体系中，F3-2的终浓度为0.3μM，B3-2的终浓度为2μM，FIP-2的终浓度为2.4μM，BIP-2的终浓度为2.4μM，LF-2的终浓度为1μM，LB-2的终浓度为1μM。
当采用引物组合III时，RT-LAMP扩增的反应体系(10μL)：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。混合引物即引物组合III中的各条引物组成的混合物。反应体系中，F3-3的终浓度为0.3μM，B3-3的终浓度为2μM，FIP-3的终浓度为2.4μM，BIP-3的终浓度为2.4μM，LF-3的终浓度为1μM，LB-3的终浓度为1μM。
LAMP扩增的反应程序：63℃恒温60min。反应过程中，采用荧光PCR仪检测荧光信号。
结果显示，采用引物组合I、引物组合II或引物组合III对模板进行扩增均可以得到扩增曲线，采用引物组合I时，反应体系的出峰时间早于采用引物组合II或引物组合III时反应体系的出峰时间，引物组合I为最优引物组合。
实施例3、反应温度优化
1、提取鸭肝炎病毒减毒疫苗的RNA。
2、以步骤1得到的RNA作为模板，采用实施例1中制备的引物组合I进行RT-LAMP扩增。
RT-LAMP扩增的反应体系(10μL)：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。混合引物即引物组合I中的各条引物组成的混合物。反应体系中，F3-1的终浓度为0.3μM，B3-1的终浓度为2μM，FIP-1的终浓度为2.4μM，BIP-1的终浓度为2.4μM，LF-1的终浓度为1μM，LB-1的终浓度为1μM。
RT-LAMP扩增的反应程序：一定温度下恒温60min。反应过程中，采用荧光PCR仪检测荧光信号。
分别设置如下反应温度：
反应温度I：62.5℃；
反应温度II：63℃；
反应温度III：63.5℃；
反应温度IV：64℃；
反应温度V：64.5℃。
每个温度重复3次。
结果如图1-图5所示。图1为反应温度为62.5℃时得到的扩增曲线。图2为反应温度为63℃时得到的扩增曲线。图3为反应温度为63.5℃时得到的扩增曲线。图4为反应温度为64℃时得到的扩增曲线。图5为反应温度为64.5℃时得到的扩增曲线。图1-图5中，横坐标为循环数，纵坐标为ΔRn。
结果表明，反应温度为62.5℃时，检测效果最好。
实施例4、灵敏度
1、提取鸭肝炎病毒减毒疫苗的RNA。
2、用ddH2O10倍梯度稀释步骤1得到的RNA，得到各个稀释液。
3、以步骤2的各稀释液作为模板，采用实施例1中制备的引物组合I进行RT-LAMP扩增。
RT-LAMP扩增的反应体系(10μL)：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。混合引物即引物组合I中的各条引物组成的混合物。反应体系中，F3-1的终浓度为0.3μM，B3-1的终浓度为2μM，FIP-1的终浓度为2.4μM，BIP-1的终浓度为2.4μM，LF-1的终浓度为1μM，LB-1的终浓度为1μM。
RT-LAMP扩增的反应程序：62.5℃恒温60min。反应过程中，采用荧光PCR仪检测荧光信号。
由于采用的稀释液的稀释度不同，形成如下不同的反应体系：
反应体系1中，鸭肝炎病毒RNA的初始含量为1×106个拷贝；
反应体系2中，鸭肝炎病毒RNA的初始含量为1×105个拷贝；
反应体系3中，鸭肝炎病毒RNA的初始含量为1×104个拷贝；
每个反应体系重复2次。
结果如图6所示。图6中，横坐标为循环数，纵坐标为ΔRn。
结果表明，本方法最低检出限为1×104个拷贝的病毒核酸。
实施例5、特异性
待测样本为鸭肝炎病毒减毒疫苗、人工制备的肠道病毒71型(EV71)装甲RNA标准品溶液(RNA序列如序列表的序列19所示)、人工制备的甲型流感病毒(IAV)装甲RNA标准品溶液(RNA序列如序列表的序列20所示)。
1、提取待测样本的总RNA。
2、以步骤1提取的总RNA作为模板，分别采用实施例1中制备的引物组合I进行RT-LAMP扩增。
RT-LAMP扩增的反应体系(10μL)：5μL Reaction Mix.，0.4μL酶Mix.，1.09μL混合引物，0.24μL Eva-Green，2μL模板RNA，1.27μL ddH2O。混合引物即引物组合I中的各条引物组成的混合物。反应体系中，F3-1的终浓度为0.3μM，B3-1的终浓度为2μM，FIP-1的终浓度为2.4μM，BIP-1的终浓度为2.4μM，LF-1的终浓度为1μM，LB-1的终浓度为1μM。
RT-LAMP扩增的反应程序：62.5℃恒温60min。反应过程中，采用荧光PCR仪检测荧光信号。
每个反应体系设置3次重复。
结果如图7-图9所示。图7为鸭肝炎病毒减毒疫苗的扩增结果，图8为甲型流感病毒(IAV)装甲RNA标准品溶液的扩增结果，图9为肠道病毒71型(EV71)装甲RNA标准品溶液的扩增结果。图7-图9中，横坐标为时间(min)，纵坐标为荧光强度。
结果表明，只有鸭肝炎病毒的样本可以得到阳性扩增曲线，甲型流感病毒或肠道病毒71型的样本均未得到阳性扩增曲线，本方法具有良好的特异性。
SEQUENCE LISTING
<110> 博奥生物集团有限公司
<120> 鉴定鸭肝炎病毒的引物组合及其应用
<160> 20
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 1
atgtggcaac agccatgaga 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 2
gcctcacctt agactggttc 20
<210> 3
<211> 42
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 3
ggattccaac attcaaggcc tcggaagctt gcagggagga ac 42
<210> 4
<211> 43
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 4
tggccaaacc ctgattgatg aaataaagga agctacttct tgc 43
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 5
ctatatccct ttcccagcaa 20
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 6
atgagtgagt tgcaggttag 20
<210> 7
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 7
tgtggttcta cagtcttcc 19
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 8
aggtctcaca gttttcatca 20
<210> 9
<211> 43
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 9
ttctcctgct tgattgtgac ttccatggac tcagagaaca tcc 43
<210> 10
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 10
tggaatggca attggaaacc atttcggcat agtctgtgat t 41
<210> 11
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 11
accatttaat gctgactca 19
<210> 12
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 12
agtcaacggc cagcctgtat 20
<210> 13
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 13
tctacagtct tccacatgg 19
<210> 14
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 14
aggtctcaca gttttcatca a 21
<210> 15
<211> 42
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
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ccattccact tctcctgctt gagagaacat ccttgagtca gc 42
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<211> 42
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 16
aattggaaac cagcaggtga tagtgaattt cggcatagtc tg 42
<210> 17
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 17
tgtgacttca ccatttaa 18
<210> 18
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 18
catgcagtca acggccag 18
<210> 19
<211> 891
<212> RNA
<213> 肠道病毒71型
<400> 19
ggagauaggg uggcagaugu aauugaaagu uccauaggag auagcgugag cagagcccuc 60
acucacgcuc uaccagcacc cacaggccag aacacacagg ugagcaguca ucgacuggau 120
acaggcaagg uuccagcacu ccaagcugcu gaaauuggag caucaucaaa ugcuagugac 180
gagagcauga uugagacacg cuguguucuu aacucgcaca guacagcuga gaccacucuu 240
gauaguuucu ucagcagggc gggauuaguu ggagagauag aucucccucu uaagggcaca 300
acuaacccaa augguuaugc caacugggac auagacauaa cagguuacgc gcaaaugcgu 360
agaaagguag agcuauucac cuacaugcgc uuugaugcag aguucacuuu uguugcgugc 420
acacccaccg gggaaguugu cccacaauug cuccaauaua uguuugugcc accuggagcc 480
ccuaagccag auucuaggga aucccuugca uggcaaaccg ccacuaaccc cucaguuuuu 540
gucaagcugu cagacccucc agcgcagguu ucagugccau ucaugucacc ugcgagugcu 600
uaucaauggu uuuaugacgg auaucccaca uucggagaac acaaacagga gaaagaucuu 660
gaauacgggg cauguccuaa uaacaugaug ggcacguucu cagugcggac uguggggacc 720
uccaagucua aguacccuuu agugguuagg auuuacauga ggaugaagca cgucagggcg 780
uggauaccuc gcccgaugcg uaaccagaac uaccuauuca aagccaaccc aaauuaugcu 840
ggcaacucca uuaagccaac uggugccagu cgcacagcga ucaccacucu u 891
<210> 20
<211> 982
<212> RNA
<213> 甲型流感病毒
<400> 20
augagucuuc uaaccgaggu cgaaacguac guucuuucua ucaucccguc aggcccccuc 60
aaagccgaga ucgcgcagag acuggaaagu gucuuugcag gaaagaacac agaucuugag 120
gcucucaugg aauggcuaaa gacaagacca aucuugucac cucugacuaa gggaauuuua 180
ggauuugugu ucacgcucac cgugcccagu gagcgaggac ugcagcguag acgcuuuguc 240
caaaaugccc uaaaugggaa uggggacccg aacaacaugg auagagcagu uaaacuauac 300
aagaagcuca aaagagaaau aacguuccau ggggccaagg aggugucacu aagcuauuca 360
acuggugcac uugccaguug caugggccuc auauacaaca ggaugggaac agugaccaca 420
gaagcugcuu uuggucuagu gugugccacu ugugaacaga uugcugauuc acagcaucgg 480
ucucacagac agauggcuac uaccaccaau ccacuaauca ggcaugaaaa cagaauggug 540
cuggcuagca cuacggcaaa ggcuauggaa cagauggcug gaucgaguga acaggcagcg 600
gaggccaugg agguugcuaa ucagacuagg cagaugguac augcaaugag aacuauuggg 660
acucauccua gcuccagugc uggucugaaa gaugaccuuc uugaaaauuu gcaggccuac 720
cagaagcgaa ugggagugca gaugcagcga uucaagugau ccucucguca uugcagcaaa 780
uaucauuggg aucuugcacc ugauauugug gauuacugau cgucuuuuuu ucaaauguau 840
uuaucgucgc uuuaaauacg guuugaaaag agggccuucu acggaaggag ugccugaguc 900
caugagggaa gaauaucaac aggaacagca gagugcugug gauguugacg auggucauuu 960
ugucaacaua gagcuagagu aa 982

Claims (5)

1.引物组合，由引物F3-1、引物B3-1、引物FIP-1、引物BIP-1、引物LF-1和引物LB-1组成；
所述引物F3-1为序列表的序列1所示的单链DNA分子；
所述引物B3-1为序列表的序列2所示的单链DNA分子；
所述引物FIP-1为序列表的序列3所示的单链DNA分子；
所述引物BIP-1为序列表的序列4所示的单链DNA分子；
所述引物LF-1为序列表的序列5所示的单链DNA分子；
所述引物LB-1为序列表的序列6所示的单链DNA分子。
2.权利要求1所述的引物组合的应用，为如下（b1）或（b2）或（b3）:
（b1）鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
（b2）制备用于鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的试剂盒；
（b3）制备用于检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒的试剂盒；
所述应用为非疾病诊断和治疗的应用。
3.含有权利要求1所述引物组合的试剂盒；所述试剂盒的用途为如下（c1）或（c2）：
（c1）鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒；
（c2）检测待测样本是否感染了鸭肝炎病毒。
4.权利要求3所述试剂盒的制备方法，包括将各条引物单独包装的步骤。
5.一种鉴定或辅助鉴定待测病毒是否为鸭肝炎病毒的方法，为方法甲或方法乙：
所述方法甲包括如下步骤：提取待测病毒的总RNA；以总RNA为模板，采用权利要求1所述引物组合进行RT-LAMP扩增反应，如果采用所述引物组合可以实现以所述总RNA为模板的阳性扩增、待测病毒为或候选为鸭肝炎病毒，如果采用所述引物组合不能实现以所述总RNA为模板的阳性扩增、待测病毒为或候选为非鸭肝炎病毒；
所述方法乙包括如下步骤：检测待测病毒的总RNA是否含有权利要求1所述引物组合的靶序列相应的RNA，如果所述总RNA中含有权利要求1所述引物组合的靶序列相应的RNA、待测病毒为或候选为鸭肝炎病毒，如果所述总RNA中不含有权利要求1所述引物组合的靶序列相应的RNA、待测病毒为或候选为非鸭肝炎病毒；
所述方法为非疾病诊断和治疗的方法。
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