CN106093437B - 一种DNA pulldown方法及试剂盒 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种DNA pulldown方法及试剂盒。所述方法包含以下步骤:S1、磁珠预处理:使用BSA(牛血清白蛋白)和寡核苷酸随机引物封闭链霉亲和素标记的磁珠;S2、制备探针‑磁珠复合物;S3、提取并预处理细胞核蛋白:向提取核蛋白样品中加入脱氧核糖核酸酶孵育,再加入磁珠孵育,去除磁珠,收集上清;S4、pulldown;S5、蛋白样品的收集。本发明具有如下有益效果:本发明通过预先使用BSA、寡核苷酸随机引物封闭磁珠,降低了磁珠与蛋白、基因组DNA的非特异性结合。本发明通过系统性核酸酶防护,防止核酸酶的污染,增加了实验的稳定性和可靠性,重复性好,简化了实验流程。

Description

一种DNA pulldown方法及试剂盒
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种用于研究DNA与蛋白相互作用的DNApulldown方法及试剂盒。
背景技术
随着功能基因组学的兴起,蛋白质-DNA相互作用的研究变得越来越重要。蛋白质-DNA相互作用涉及很多生物学功能,如基因调节、DNA修复和DNA重组(ROHS R,JIN X,WEST SM,et al.2010.Origins of specificity in protein-DNA recognition.Annu RevBiochem[J],79:233-269)。现有研究DNA-蛋白相互作用的技术方案有多种,如酵母单杂交(Y1H)方法、ChIP-seq方法、凝胶迁移实验(EMSA)和DNA pulldown方法。
DNA pulldown方法是一种非常重要的蛋白质-DNA相互作用的研究方法。该方法可以在同一个样品中分离DNA-蛋白复合体。通常,是通过高亲和性的标签(如生物素)标记DNA,标签的目的是固定DNA,通过琼脂糖珠子或磁珠可以分离出生物素化的DNA,从而分离出细胞裂解液中的DNA-蛋白复合体。分离出的蛋白进行洗脱后可以通过Western Blot进行检测,或通过质谱进行筛选(DENG W G,ZHU Y,MONTERO A,et al.2003.Quantitativeanalysis of binding of transcription factor complex to biotinylated DNA probeby a streptavidin-agarose pulldown assay.Anal Biochem[J],323:12-18)。
DNA pulldown方法具有很多优点,如可以富集低丰度的靶标,可以通过多种方法构建尾端标记的DNA,可以分离出完整的DNA-蛋白复合体,可以联合Western Blot或质谱进行分析等。随着DNA pulldown技术的不断完善,其在生命科学研究及医学领域中扮演的角色愈加重要。
Kazuhito Yamashita等报道在血管内皮细胞中,通过DNA pulldown实验发现,在低氧情况下HIF-1结合ET-1基因的启动子区域,启动ET-1的表达。进一步的研究发现ET-1启动子中的HIF-1结合区不足以应答低氧反应,还需要附近额外的50bp的序列帮助,此区域包括AP-1、GATA-2、NF-1的结合区。证实了AP-1、GATA-2、NF-1可以稳定HIF-1与ET-1启动子的结合,进一步招募p300/CBP形成ET-1低氧应答复合体(YAMASHITA K,DISCHER D J,HU J,etal.2001.Molecular regulation of the endothelin-1gene by hypoxia.Contributionsof hypoxia-inducible factor-1,activator protein-1,GATA-2,AND p300/CBP.J BiolChem[J],276:12645-12653)。
Deng WG等使用双生物素化的环氧化酶2(COX-2)的启动子作为探针,开展DNApulldown,检测了经过不同处理的人类成纤维细胞的细胞核提取物,发现佛博尔酯或肿瘤坏死因子alpha处理后DNA探针与p300和PCAF的结合增加,但是不影响与Srb7、Med7或TFII(B)的结合,证实在肿瘤中p300和PCAF通过结合COX-2的启动子启动COX-2的表达。
但是,DNA pulldown实验还存在很多缺点,如DNA探针与蛋白结合的特异性不高,实验过程还会受到核酸酶污染的影响。
发明内容
有鉴于此,有必要针对上述的问题,提供一种DNA pulldown方法及试剂盒。
为了实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一种DNA pulldown方法,包含以下步骤:
S1、磁珠预处理:使用BSA(牛血清白蛋白)和寡核苷酸随机引物封闭链霉亲和素标记的磁珠;
S2、制备探针-磁珠复合物:将步骤S1预处理的磁珠与生物素标记的DNA探针结合;
S3、提取并预处理细胞核蛋白:向提取的核蛋白样品中加入脱氧核糖核酸酶孵育,再加入未预处理的磁珠孵育,去除磁珠,收集上清;
S4、pulldown:将步骤S3收集的上清加入到步骤S2制备的探针-磁珠复合物中,加入DNA precipitation buffer及脱氧核糖核酸酶抑制剂孵育,收集磁珠,用DNAprecipitation buffer洗涤磁珠,得到蛋白-探针-磁珠复合物;
S5、探针-蛋白复合物的收集:将步骤S4制得的蛋白-探针-磁珠复合物加入UreaCHAPS buffer孵育,去除磁珠,收集上清即得探针-蛋白复合物。
优选地,所述步骤S1磁珠预处理的方法为:用1mL 1×TES洗涤80μL链霉亲和素标记的磁珠,去除TES洗涤液,再向磁珠中加入1mL含BSA和寡核苷酸随机引物的1×TES,室温孵育30min后去除TES溶液。
优选地,所述TES中BSA的浓度为0.05-0.5wt%,寡核苷酸随机引物的浓度为10-20μmol/L。
优选地,所述步骤S1中寡核苷酸随机引物为20bp以内的DNA序列。
优选地,所述步骤S2制备探针-磁珠复合物的方法为:向2-5μg DNA探针中加入DNAstructure buffer至100μL,再将其加入步骤S1预处理后的磁珠中,并加入100μL 2×TES,25℃温和旋转混合30-60min,去上清;用1×TES洗涤磁珠两次,去除TES。
优选地,所述步骤S3中预处理细胞核蛋白的方法为:向1.5×107个细胞提取获得的核蛋白提取物中加入5μL DNase和1.6μL DNase Buffer,25℃温和孵育1h;再加入40μL未预处理的磁珠,4℃温和旋转30min;收集上清液为预处理的核蛋白。
优选地,所述步骤S3提取细胞核蛋白的方法为:用含0.5mM PMSF的PBS洗涤1.5×107个细胞两次,每次4℃、1000rpm离心5min,弃上清;加入390μL预冷Buffer 1、4μL 10mg/ml的PMSF溶液、4μL protease inhibitor cocktail和2μL100mM DTT溶液,重悬细胞后,剧烈涡旋10秒钟充分混匀,冰浴10min;4℃、1400g-2500g离心5min,弃上清;加入390μL冷Buffer 2、4μL 10mg/ml的PMSF溶液、4μL protease inhibitor cocktail和2μL 100mM DTT溶液,涡旋充分重悬沉淀,冰浴20min,每隔2min高速剧烈涡旋15-30秒钟充分混匀;4℃、12,000g-16,000g离心10min,弃沉淀,上清为核蛋白提取物;所述Buffer1的配方为:10mMHEPES-KOH(pH 7.9)、1.5mM MgCl2、10mM KCl、0.1mMEDTA和0.4wt%NP-40;所述Buffer 2的配方为50mM HEPES-KOH(pH 7.9)、5mM MgCl2、420mM NaCl、0.1mM EDTA和2wt%glycerol(丙三醇)。
优选地,所述步骤S4pulldown的具体方法为:将步骤S3制备的核蛋白加入到探针-磁珠复合物中,并加入465μL DNA precipitation buffer、5μL protease inhibitorcocktail、15μg poly(dI·dC)、5μL 10mg/ml的PMSF(苯甲基磺酰氟)溶液、2.5μL 100mMDTT(二硫苏糖醇)、5μL 0.5M EDTA(乙二胺四乙酸)溶液和2.5μL 0.5M EGTA(乙二醇二乙醚二胺四乙酸)溶液;4℃旋转混合孵育30-60min,收集磁珠,4℃,加入975μL DNAprecipitation buffer、10μL 10mg/ml的PMSF溶液、10μL protease inhibitor cocktail和5μL 100mM DTT溶液,洗涤磁珠,再重复洗涤四次。本发明中选用EDTA作为脱氧核糖核酸酶的抑制剂。
优选地,所述步骤S5探针-蛋白复合物的收集方法为:向蛋白-探针-磁珠复合物中加入40μL Urea CHAPS buffer和0.4μL 100mM DTT溶液,4℃孵育5-10h,上清即为探针-蛋白复合物。
一种DNA pulldown试剂盒,包含下述试剂:
磁珠及其处理试剂:2×TES溶液,链霉亲和素标记的磁珠,寡核苷酸随机引物;所述寡核苷酸随机引物的浓度为10-20μmol/L;
DNA处理试剂:DNase,DNase Buffer;
蛋白提取及处理试剂:Buffer 1,Buffer 2,Urea CHAPS buffer,proteaseinhibitor cocktail、DTT溶液、PMSF溶液;所述DTT溶液的浓度为100mM,所述PMSF溶液的浓度为10mg/mL;
探针及结合处理试剂:DNA structure buffer,DNA precipitation buffer,poly(dI·dC);
所述Buffer1的配方为:10mM HEPES-KOH(pH 7.9)、1.5mM MgCl2、10mM KCl、0.1mMEDTA和0.4wt%NP-40;所述Buffer 2的配方为50mM HEPES-KOH(pH 7.9)、5mM MgCl2、420mM NaCl、0.1mM EDTA和2wt%glycerol。
本发明针对目标区域设计特异性DNA探针,探针经过脱硫生物素标记;链霉亲和素偶联在磁珠上,并和脱硫生物素亲和结合;细胞核提取物与磁珠-探针复合物孵育,作用蛋白分子可以和DNA探针特异性结合;经过洗涤可以将非特异性结合蛋白分子去除;最后,在洗脱液(针对链霉亲和素)进行洗脱,得到目的探针-蛋白复合物,再经过Western Blot或质谱鉴定蛋白质类型。
与现有技术相比,本发明具有如下有益效果:
①本发明通过预先使用BSA封闭磁珠,降低了磁珠与蛋白的非特异性结合;本发明通过预先使用寡核苷酸随机引物封闭磁珠,降低了磁珠与基因组DNA的非特异性结合。BSA和寡核苷酸随机引物的大小正合适,既能封闭磁珠增强实验的特异性,又不会过大而影响探针与蛋白的结合。
②本发明采用脱氧核糖核酸酶预处理蛋白样品,采用未预处理的磁珠对蛋白样品进行预洗涤,除去蛋白样品内的基因组DNA,防止其缠绕磁珠从而影响耦连在磁珠上的DNA探针与蛋白质的结合,再采用脱氧核糖核酸酶抑制剂灭活脱氧核糖核酸酶。本发明通过系统性核酸酶防护,防止核酸酶的污染,增加了实验的稳定性和可靠性,重复性好,简化了实验流程。
③本发明中磁珠首先与探针孵育,去除多余探针后再与蛋白孵育,较传统探针先与蛋白孵育再与磁珠孵育或探针、蛋白和珠子同时孵育极大的节约了磁珠的使用量,节约实验成本。本发明采用磁珠取代了琼脂糖珠,省掉离心的步骤,节约试验时间。同时,采用磁珠法洗涤取代了琼脂糖珠离心的步骤,可以使上清液去除的更加彻底,提高反应的特异性。
附图说明
图1为不同方法pulldown效果图。
具体实施方式
为了更好的说明本发明,下面结合附图和具体实施方式做进一步说明。本发明中所用试剂或仪器均可由市场购得,使用的检测方法等都是本领域所熟知的,在此不再赘述。
实施例1
本实施例中针对目标区域P53蛋白设计特异性DNA探针,探针经过脱硫生物素8-oxoG标记。探针的设计和标记方法是本领域技术人员所熟知的,在此不再赘述。链霉亲和素偶联在磁珠(BeaverBeadsTM Streptavidin,海狸生物科技有限公司)上,并和脱硫生物素亲和结合;细胞核提取物与磁珠-DNA探针孵育,作用蛋白分子可以和探针特异性结合;经过洗涤可以将非特异性结合蛋白分子去除;最后,再用洗脱液(针对链霉亲和素)进行洗脱,得到目的探针-蛋白复合物,再经过Western Blot鉴定蛋白质类型。具体步骤如下:
S1、磁珠预处理
①取80μL链霉亲和素标记的磁珠置于EP管中,加入1mL 1×TES洗涤磁珠;
②置于磁力架上去除TES洗涤液,向磁珠加入1mL含0.5wt%BSA和10μmol/L寡核苷酸随机引物的1×TES,室温孵育30min后置于磁力架上去除TES溶液。所述寡核苷酸随机引物为20bp以内的DNA序列。
S2、制备探针-磁珠复合物
①向2-5μg DNA探针中加入DNA structure buffer至100μL,再将其加入步骤S1预处理的磁珠中,并加入100μL 2×TES,25℃旋转温和混合30min-60min,置于磁力架上去上清;
②加入0.35mL 1×TES,25℃温和旋转洗涤磁珠5min,置于磁力架上去除洗涤液;
③重复步骤②一次。
S3、提取并预处理细胞核蛋白
S31、提取核蛋白
①用含0.5mM PMSF的PBS洗涤1.5×107个Hela细胞两次,每次4℃1000rpm离心5min,弃上清;
②加入390μL预冷Buffer 1、4μL 10mg/mL的PMSF(Thermo Fisher)溶液、4μLprotease inhibitor cocktail(Thermo Fisher)和2μL 100mM DTT(Thermo Fisher)溶液,重悬细胞后,剧烈涡旋10秒钟充分混匀,冰浴10min;所述Buffer1的配方为:10mM HEPES-KOH(pH 7.9)、1.5mM MgCl2、10mM KCl、0.1mMEDTA和0.4wt%NP-40;
③4℃,1400g-2500g离心5min,弃上清;
④加入390μL预冷Buffer 2、4μL 10mg/mL的PMSF溶液、4μL protease inhibitorcocktail和2μL 100mM DTT溶液,涡旋充分重悬沉淀,冰浴20min,每隔2min高速剧烈涡旋15-30秒钟充分混匀;所述Buffer 2的配方为50mM HEPES-KOH(pH 7.9)、5mM MgCl2、420mMNaCl、0.1mM EDTA和2wt%glycerol;
⑤4℃,12,000g-16,000g离心10min,弃沉淀,上清为核蛋白提取物;
⑥考马斯亮蓝或BCA试剂盒测定蛋白质浓度;
⑦蛋白样品-80℃保存备用。
S32、预处理核蛋白
①向上述制备的核蛋白提取物中加入5μL DNase(TURBOTM DNase)、1.6μL DNaseBuffer(TURBOTM DNase Buffer),室温25℃温和孵育1h;
②向蛋白样品中加入40μL未预处理的磁珠,4℃温和旋转30min;
③磁力架上收集磁珠,将上清液预处理的核蛋白转移到新的EP管中。
S4、pulldown
①将制备的核蛋白加入到探针-磁珠复合物中,并加入465μL DNA precipitationbuffer、15μg poly(dI·dC)、5μL 10mg/mL的PMSF溶液、5μL protease inhibitorcocktail、2.5μL 100mM DTT溶液、5μL 0.5M EDTA溶液和2.5μL 0.5M EGTA溶液;
②4℃旋转混合孵育30min;
③磁力架上收集磁珠,去除上清液;
④4℃,加入975μL DNA precipitation buffer、10μL 10mg/mL的PMSF溶液、10μLprotease inhibitor cocktail和5μL 100mM DTT溶液,洗涤磁珠,去除非特异性结合的蛋白,再重复洗涤四次,得到蛋白-探针-磁珠复合物。
S5、蛋白样品收集
①向蛋白-探针-磁珠复合物中加入40μL Urea CHAPS buffer和0.4μL 100mM DTT溶液,4℃孵育5-10h。
②磁力架上收集磁珠,上清即为探针-蛋白复合物,将上清转移到新的管子中。
③产物置于-80℃保存,供进一步Western Blot分析。
为了更好的说明本发明的效果,发明人还进行了两组对比实验。
对比例1使用的方法简述为:取200μg的细胞核提取物在DNA沉淀缓冲液(20mMHepes-KOH(pH7.9)、1mM MgCl2、80mM KCl、0.2mM EDTA、10wt%glycerol、0.5mMdithiothreitol、0.1wt%Triton X-100、1mM phenylmethylsulfonyl fluoride和protease inhibitor mixture)中重悬,在体系中加入15μg poly(dI·dC),加入生物素化的寡核苷酸探针,4℃混匀30min,然后加入50μL亲和素的磁珠(Dynal),4℃混匀30min,通过磁铁收集磁珠,再通过DNA沉淀缓冲液洗2次,捕获的蛋白用Western Blot检测(TAKAKI H,ICHIYAMA K,KOGA K,et al.2008.STAT6Inhibits TGF-beta1-mediated Foxp3inductionthrough direct binding to the Foxp3promoter,which is reverted by retinoicacid receptor.J Biol Chem[J],283:14955-14962)。
对比例2使用的方法简述为:通过加入生物素化的引物(Invitrogen)PCR扩增的方法获得生物素化的DNAs。向蛋白中加入免疫纯化的亲和素-琼脂糖珠子(Pierce)孵育1h,然后加入1μg生物素化的DNA通过转动摇床混匀12h。200×g离心60s,再把沉淀用预冷的TBS缓冲液(20mM Tris,150mM NaCl)洗三次,最后进行Western Blot检测(XIE Y,ZHANG Y,ZHAOX,et al.2016.A CAPS-based binding assay provides semi-quantitative validationof protein-DNA interactions.Sci Rep[J],6:21030)。
使用本实施例和对比例的方法分别验证8-oxoG-DNA探针对P53蛋白的pulldown效果。泳道1为10%input组;泳道2为LacZ组,使用LacZ DNA探针,此孔作为阴性对照;泳道3为pulldown组,使用实验组DNA探针。图1A为本发明方法pulldown效果图;图1B为按照对比例1所述方法pulldown效果图;图1C为按照对比例2所述方法pulldown效果图。可见本发明相对于Takaki报道方法和Xie报道方法的Western Blot的条带拖尾现象更少,说明本试剂盒蛋白富集效率更高,特异性更好。相对于Xie报道的方法中的几乎不能检出的结果,本发明具有更高的灵敏度。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

Claims (5)

1.一种DNA pulldown方法,其特征在于,包含以下步骤:
S1、磁珠预处理:使用BSA和寡核苷酸随机引物封闭链霉亲和素标记的磁珠;
所述步骤S1磁珠预处理的方法为:用1mL 1×TES洗涤80μL链霉亲和素标记的磁珠,去除TES洗涤液,再向磁珠中加入1mL含BSA和寡核苷酸随机引物的1×TES,室温孵育30min后去除TES溶液;
所述TES中BSA的浓度为0.05-0.5wt%,寡核苷酸随机引物的浓度为10-20μmol/L;
所述步骤S1中寡核苷酸随机引物为20bp以内的DNA序列;
S2、制备探针-磁珠复合物:将步骤S1预处理的磁珠与生物素标记的DNA探针结合;
S3、提取并预处理细胞核蛋白:向提取核蛋白样品中加入脱氧核糖核酸酶孵育,再加入未预处理的磁珠孵育,去除磁珠,收集上清;
所述步骤S3提取细胞核蛋白的方法为:用含0.5mM PMSF的PBS洗涤1.5×107个细胞两次,每次4℃、1000rpm离心5min,弃上清;加入390μL预冷Buffer 1、4μL 10mg/mL 的PMSF溶液、4 μL protease inhibitor cocktail和2 μL100mM DTT溶液,重悬细胞后,剧烈涡旋10秒钟充分混匀,冰浴10min;4℃、1400g-2500g离心5min,弃上清;加入390μL冷Buffer 2、4μL10mg/mL 的PMSF溶液、4μL protease inhibitor cocktail和2μL 100mM DTT溶液,涡旋充分重悬沉淀,冰浴20min,每隔2min高速剧烈涡旋15-30秒钟充分混匀;4℃、12,000g-16,000g离心10min,弃沉淀,上清为核蛋白提取物;所述Buffer1的配方为:10 mM HEPES-KOH、1.5 mM MgCl2、10 mMKCl、0.1mMEDTA和0.4wt% NP-40;所述Buffer 2的配方为50 mMHEPES-KOH、5 mM MgCl2、420 mMNaCl、0.1 mM EDTA和2wt% glycerol;
S4、pulldown:将步骤S3制备的蛋白样品加入到步骤S2制备的探针-磁珠复合物中,加入DNA precipitation buffer及脱氧核糖核酸酶抑制剂孵育,收集磁珠,用DNAprecipitation buffer洗涤磁珠,得到蛋白-探针-磁珠复合物;
S5、探针-蛋白复合物的收集:将步骤S4制得的蛋白-探针-磁珠复合物加入Urea CHAPSbuffer孵育,去除磁珠,收集上清即得探针-蛋白复合物。
2.根据权利要求1所述的DNA pulldown方法,其特征在于,所述步骤S2制备探针-磁珠复合物的方法为:向2-5μg DNA探针中加入DNA structure buffer至100μL,再将其加入步骤S1中预处理的磁珠中,并加入100μL 2×TES,25℃温和旋转混合30-60min,去上清;用1×TES洗涤磁珠两次,去除TES。
3.根据权利要求1所述的DNA pulldown方法,其特征在于,所述步骤S3中预处理细胞核蛋白的方法为:向1.5×107个细胞提取获得的核蛋白提取物中加入5μL DNase和1.6μLDNase Buffer,25℃温和孵育1h;再加入40 μL未预处理的磁珠,4℃温和旋转30 min;上清液为预处理的核蛋白。
4.根据权利要求1所述的DNA pulldown方法,其特征在于,所述步骤S4 pulldown的具体方法为:将步骤S3制备的核蛋白加入到探针-磁珠复合物中,并加入465μL DNAprecipitation buffer、5μL protease inhibitor cocktail、15μg poly(dI•dC)、5μL10mg/mL 的PMSF溶液、2.5μL 100mM DTT溶液、5μL 0.5 M EDTA溶液和2.5μL 0.5M EGTA溶液;4℃旋转混合孵育30-60min,收集磁珠,4℃,加入975μL DNA precipitation buffer、10μL 10mg/mL 的PMSF溶液、10μL protease inhibitor cocktail和5μL 100mM DTT溶液,洗涤磁珠,再重复洗涤四次。
5.根据权利要求1所述的DNA pulldown方法,其特征在于,所述步骤S5蛋白样品的收集方法为:向蛋白-探针-磁珠复合物中加入40μL Urea CHAPS buffer 和0.4μL 100mM DTT溶液,4℃孵育5-10h,上清即为探针-蛋白复合物。
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