CN105699653B - 一种超敏感超顺磁性纳米免疫微球及其检测gp73抗原的方法 - Google Patents

Abstract

本发明涉及诊断试剂技术领域，特别涉及一种磁性免疫体外诊断试剂。为了解决传统酶联免疫方法中固定的抗体容量较小、反应时间较长、灵敏度相对较低和固定的抗体稳定性较低的技术问题，本发明提供一种GP73单克隆抗体及一种表面偶联有GP73单克隆抗体的超顺磁性纳米免疫微球，及利用该微球采用双抗体夹心酶免法或化学发光法检测人血清或血浆中GP73抗原的方法。用于产生所述GP73单克隆抗体的抗原具有下述氨基酸序列：AAAERGAVELKK。本发明提供的超顺磁性纳米免疫微球具有偶联更多抗体、免疫反应速度较快、特异性高、重复性好、成本低、实验条件要求简单等特点。

Description

一种超敏感超顺磁性纳米免疫微球及其检测GP73抗原的方法

技术领域

[0001] 本发明属于诊断试剂技术领域，涉及磁性免疫体外诊断试剂，特别涉及一种表面 偶联有GP73单克隆抗体的超顺磁性纳米免疫微球，及利用该微球采用双抗体夹心酶免法或 化学发光法检测人血清或血浆中GP73抗原的方法。

背景技术

[0002] 肝癌是常见的恶性肿瘤之一，“早诊、早治”是防治肝癌的关键。目前临床上对肝癌 的诊断方法主要是影像学和血清标志物甲胎蛋白（AFP)的检测，早期肝癌直径小，影像学几 乎检测不到，AFP诊断敏感性较低(25%)，会漏检一部分早期肝癌患者。

[0003] 高尔基体蛋白73 (GP73)被认为是目前最好的肝癌早期诊断血清学标志物之一，其 检测敏感性和特异性均高于AFP。国内外已有的GP73试剂均为传统的酶联免疫方法，该方法 的不足之处在于检测灵敏度较低，反应时间较长。

[0004] 磁性纳米微球具有超顺磁性，具有巨大的比表面积和可以偶联多种生物分子的特 点。在无外加磁场时磁性纳米微球均勾分散在溶液中，使抗原-抗体快速、高效反应，在外加 磁场的作用下，超顺磁性纳米微球可快速移动，通过吸附、洗涤、解吸附等操作步骤从复杂 的生物化学混合物体系中分离得到目标分子;传统的酶联免疫方法是通过物理吸附将生物 分子固定在酶标板表面，因而限制了该方法的敏感性和稳定性。磁性纳米微球有巨大的比 表面积，可偶联更大量的生物分子，并且通过双功能化学试剂将生物分子共价偶联在其表 面，因而大大提高反应速度、检测灵敏度和稳定性。

发明内容

[0005] 为了解决现有技术中肝癌诊断试剂检测用时长、抗体固定容量小、灵敏度较低和 稳定性较差的技术问题，为了解决传统酶联免疫方法中固定的抗体容量较小、反应时间较 长、灵敏度相对较低和固定的抗体稳定性较低的技术问题，本发明提供一种GP73单克隆抗 体及一种表面偶联有GP73单克隆抗体的超顺磁性纳米免疫微球，及利用该微球采用双抗体 夹心酶免法或化学发光法检测人血清或血浆中GP73抗原的方法。用于产生所述GP73单克隆 抗体的抗原具有下述氨基酸序列:AAAERGAVELKK。本发明提供的超顺磁性纳米免疫微球具 有偶联更多抗体、免疫反应速度较快、特异性高、重复性好、成本低、实验条件要求简单等特 点。本发明提供的超顺磁性纳米免疫微球，及利用该微球检测GP73抗原的方法，能够用于肝 癌早期诊断。

[0006] 为达到上述目的，本发明的技术解决方案是：

[0007] 本发明提供一种用于检测GP73抗原的单克隆抗体，用于产生所述单克隆抗体的抗 原具有下述氨基酸序列：

[0008] AAAERGAVELKK (参见序列 1)。

[0009] 进一步的，所述单克隆抗体是CGMCC保藏编号9806的GP73单克隆抗体杂交瘤细胞 产生的抗体。

[0010] 用于检测GP73抗原的抗体称为GP73抗体。所述GP73单克隆抗体具有高免疫活性。

[0011] GP73抗体针对GP73抗原的超保守部位(PC Site)，因此具有高度敏感性和特异性。

[0012] 本发明还提供一种超顺磁纳米免疫微球，所述纳米免疫微球包括纳米微球，所述 纳米微球上偶联有所述GP73单克隆抗体。

[0013] 所述超顺磁纳米免疫微球可简称为磁性免疫微球。

[0014] 所述GP73单克隆抗体通过双功能化学试剂共价偶联在磁性纳米微球表面。所述双 功能化学试剂是戊二醛，或，EDC (1 - (3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐)碳二亚胺。

[0015] 进一步的，所述超顺磁纳米免疫微球中，所述纳米微球包括微球核心和无机小分 子，所述无机小分子覆盖在微球核心的表面形成无机小分子层，所述纳米微球通过无机小 分子偶联所述抗体。

[0016] 所述微球核心表面覆盖薄层无机小分子，可减少非特异性吸附。所述微球表面利 用-NH2,-COOH，或PEI (聚醚酰亚胺)进行表面化学修饰。

[0017] 所述微球核心的材质是四氧化三铁，所述微球核心的直径尺寸为6-12nm;所述微 球的直径为10〜30nm。进一步的，所述微球核心的直径尺寸为8nm 〇

[0018] 所述的超顺磁纳米免疫微球中，所述无机小分子是二氧化硅(SiO2)。

[0019] 本发明还提供一种用于检测GP73的多克隆抗体，用于产生所述多克隆抗体的抗原 选自下述氨基酸序列的片段：

[0025] TINLLDQREKRNHTL (参见序列5)。

[0026] 用于检测GP73抗原的多克隆抗体称为GP73多克隆抗体。所述GP73多克隆抗体上偶 联酶标记物。

[0027] 进一步的，用于产生所述多克隆抗体的抗原为下述氨基酸序列中至少两种氨基酸 序列的组合：

[0028] MKEVKEQCE (参见序列2);

[0029] EAVASRDLS (参见序列 3);

[0030] PERDQLVIP (参见序列4)。

[0031] 本发明还提供一种制备上述纳米免疫微球的方法，所述方法包括下述步骤：

[0032] (1)取50_200μ1超顺磁性纳米微球；

[0033] (2)对微球表面进行化学修饰；

[0034] (3)将双功能化学试剂共价偶联在磁性纳米微球表面；

[0035] ⑷用洗涤液进行洗涤；

[0036] a.将超顺磁性纳米微球加入400_800μ1洗涤液，并使之分散；

[0037] b.磁性分离，弃上清液；

[0038] (5)加入浓度为0.5〜3mg/ml的GP73单克隆抗体溶液，恒温振荡反应；

[0039] ⑶磁性分离，弃上清液；

[0040] ⑵用相同洗涤液进行洗涤；

[0041] a.每次加入洗涤液400-800μ1，并使之分散；

[0042] b.磁性分离，弃上清液；

[0043] c.重复以上洗涤步骤2-3次；

[0044] d.加入0.5〜2ml贮存液，4 °C保存备用。

[0045] 所述洗涤液为0.01〜0.2M的碳酸盐缓冲液，PH= 8.0〜9.5;或0.01〜0.2M的三羟 甲基氨基甲烷-盐酸盐缓冲液，PH=7.0〜7.6。

[0046] 所述GP73单克隆抗体的溶液采用碳酸盐缓冲液，PH= 8.0〜9.5;或0.01〜0.2M的 三羟甲基氨基甲烷-盐酸盐缓冲液，PH=7.0〜7.6。

[0047] 所述贮存液为0 · 01〜0 · 2M的PB，PH = 7 · 0〜8 · 0;或0 · 01 〜0 · 2M的Tris-HCl，PH = 7.0〜8.0 ;所述贮存液中均加入防腐剂，所述防腐剂为0.01〜0.2 %的NaN3或者0.01〜 0.2%的硫柳汞。

[0048] 所述防腐剂的浓度单位为重量(克)体积比（毫升）。

[0049] 所述第（5)步中恒温振荡反应的温度为4〜40°C，反应时间为10〜60分钟，振动速 度为 180 〜200rpm。

[0050] 本发明还提供一种杂交瘤细胞株，其是CGMCC保藏编号9806的GP73单克隆抗体杂 交瘤细胞株。

[0051] 本发明还提供一种利用所述的超顺磁性纳米免疫微球检测GP73抗原的方法(简称 显色检测法），所述方法包括下述步骤：

[0052] (1)将试管置于试管架上，设阳性对照试管孔2孔，阴性对照试管孔3孔，空白对照 孔1孔；

[0053] (2)在待检样品试管中加入10〜50μ1样品稀释液和5〜ΙΟΟμΙ的待检样品，阳性对 照管和阴性对照管中分别加入阳性对照样品和阴性对照样品50〜ΙΟΟμΙ;

[0054] (3)充分混匀已加贮存液的含有GP73单克隆抗体的超顺磁性纳米免疫微球溶液 后，用加样器向各反应试管中加入5〜50μ1该微球溶液，混匀，4〜40 °C反应0.5〜2小时；

[0055] (4)各试管加入5〜50μ 1已偶联GP73多克隆抗体的酶标记物，混匀，4〜40 °C反应 0.5〜2小时；

[0056] (5)用相同洗涤液洗涤各管至少2次：

[0057] a.每次加入洗涤液400_800μ1，并使之分散，

[0058] b.磁性分离，弃上清液；

[0059] (6)各管加入50〜200μ1 3,3’，5,5’-四甲基联苯胺(TMB)显色液，混匀，4〜40°C反 应10〜30分钟；

[0060] (7)各管加入50〜200μ1终止液，混匀，磁性分离，将上清液移至专用于酶标仪上进 行吸光度值(OD)测量的酶标板孔中，在酶标仪上用450nm和630nm进行双波长测定各孔OD 值。

[0061] 本发明还提供另一种利用上述的超顺磁性纳米免疫微球检测GP73抗原的方法(简 称化学发光检测法），所述方法包括下述步骤：

[0062] (1)将试管置于试管架上，设阳性对照试管孔2孔，阴性对照试管孔3孔，空白对照 孔1孔；

[0063] (2)在待检样品试管中加入10〜50μ1样品稀释液和5〜ΙΟΟμΙ的待检样品，阳性对 照管和阴性对照管中各加入阳性对照样品和阴性对照样品50〜ΙΟΟμΙ;

[0064] (3)充分混匀已加贮存液的上述的含有GP73单克隆抗体的超顺磁性纳米免疫微球 溶液后，各管加入5〜50μ1该微球溶液，混匀，4〜40°C反应0.5〜2小时；

[0065] (4)各管加入5〜50μ1已偶联上述的GP73多克隆抗体的酶标记物，混匀，4〜40°C反 应0.5〜2小时；

[0066] (5)用相同洗涤液洗涤各管至少2次：

[0067] a.每次加入洗涤液400_800μ1，并使之分散；

[0068] b.磁性分离，弃上清液；

[0069] (6)各管加入50〜200μ1化学发光物质溶液，该化学发光物质是：3_ (2-螺旋金刚 烧)-4-甲氧基-4- (3-磷氧酰)-苯基-1，2-二氧环乙烷二钠盐(AMPPD);

[0070] ⑵用化学发光仪器检测各孔的信号值。

[0071] 上述检测6?73抗原的方法中，所述样品稀释液为0.01〜0.21的1^31'，？!1 = 5.0〜 8.0;S0.01〜0.2i^9Tris-HCl，PH = 4.0〜7.8;S0.001〜10i^9CBS，PH = 9.0〜11.0;S 0 · 001〜IOM的醋酸盐缓冲液，PH= 3 · 0〜7 · 0 ;或0 · 001〜IOM的柠檬酸缓冲液，PH = 3 · 0〜 8.0〇

[0072] 所述洗涤液为0 · 01 〜0 · 2M的PBST，PH=7 · 0〜8 · 0;或0 · 01 〜0 · 2M的Tris-HCl，PH= 7.0〜7.6〇

[0073] 所述终止液为0.01〜4M的H2SO4,或0.01〜4M的HCl，或0.01〜4M的柠檬酸。

[0074] 上述检测GP73抗原的方法中，所述超顺磁性纳米免疫微球上偶联的GP73单克隆抗 体与酶标记物上偶联的GP73多克隆抗体识别不同的GP73抗原表位。

[0075] 上述检测GP73抗原的方法中，酶标记物偶联的GP73多克隆抗体与GP73抗原可溶性 切割片段特异性结合。

[0076] 因此，本发明提供的GP73多克隆抗体针对血浆中游离的GP73具有高度特异性和敏 感性。

[0077] 本发明提供的GP73多克隆抗体是利用酶标记的多克隆抗体，能够多方位地与GP7 3 抗原的不同表位相结合，因此提高检测的灵敏度。

[0078] 本发明还提供一种用于检测GP73抗原的试剂盒，所述试剂盒包括上述的超顺磁纳 米免疫微球，和上述的GP73多克隆抗体。

[0079] 上述试剂盒利用纯化的大肠杆菌表达的GP73全长融合蛋白作为标准品，系列稀释 后定量检测血浆中GP73。

[0080] 本发明提供的超顺磁纳米微球上偶联的GP73单克隆抗体针对GP73超保守部位(PC Site)下游，例如下游的12个氨基酸，该表位在不同种属生物进化过程中仍然保守，而且在 GP73被裂解后，作为细胞外部分可在血浆中检测到。因此，针对该部位的单克隆抗体具有最 佳的敏感性，大大提高了人群自然变异GP73的检出率。

[0081] 酶标记物上偶联的GP73多克隆抗体，针对胞浆内游离GP73酸性区末端的序列。因 此，对血浆中游离的GP73具有高度特异性和敏感性;利用多克隆抗体针对多个表位，使酶标 信号获得扩大，提高了检测的灵敏度。

[0082] 本发明以超顺磁性纳米微球作为反应和分离的固相载体，合成表面偶联GP73单克 隆抗体的超顺磁性免疫微球，该微球与被检人血清或血浆中GP73抗原特异性结合，形成抗 原-抗体复合物，再和标记物标记的GP73多克隆抗体特异性抗体结合，应用相应的检测系 统，定性或定量检测人血清或血浆中GP73特异性抗原。

[0083] 本发明所获得的细胞株能够特异性的分泌针对GP73抗原的单克隆抗体，所产生的 抗体具有较好的灵敏度和较高的特异性。

[0084] 本发明提供的GP73单克隆抗体，具有较好的灵敏度和较高的特异性。

[0085] 与现有技术相比，本发明将磁性纳米微球与效价高、特异性强的GP73单克隆抗体 结合，解决了传统酶联免疫方法中固定的抗体容量较小、反应时间较长、灵敏度相对较低和 固定的抗体稳定性较低的技术问题，具有偶联更多抗体、免疫反应速度较快、特异性高、重 复性好、成本低、实验条件要求简单等特点。

[0086] 具体的，本发明具有下述优点：

[0087] 1、检测速度快，约1小时左右，特异性高，稳定性和重复性好。

[0088] 2、采用超顺磁性纳米微球作为反应和分离载体，明显提高了检测的灵敏度和稳定 性，可检测的最低抗原浓度为l〇〇pg/ml，灵敏度达90.5%，特异性84%41^0(：:0.909。4°(：储 存，稳定性好。

[0089] 检测过程中：（1)在无外加磁场时，磁性纳米微球均勾分散在溶液中，使抗原和抗 体的反应类似于均相反应，加速了抗原-抗体复合物的形成；（2)在外加磁场的作用下，超顺 磁性纳米微球可快速移动，通过吸附、洗涤、解吸附等操作步骤从复杂的生物化学混合物体 系中分离得到目标分子；（3)磁性纳米微球有巨大的比表面积，可偶联更大量的生物分子， 检测灵敏度高，范围宽，对于高浓度的标本无需稀释可直接定量测定，避免了稀释误差和基 质效应；（4) GP73单克隆抗体通过双功能化学试剂共价偶联在磁性纳米微球表面，偶联条件 温和，最大限度保持了 GP73单克隆抗体的免疫活性，大大提高了检测敏感性和方便性，易于 实现大规模制备GP73单克隆抗体的磁性纳米免疫微球并应用于检测人血清或血浆中的 GP73抗原。

[0090] 3、本发明采用针对GP73保守部位的单克隆抗体偶联磁性纳米微球，可明显提高检 测的特异性和敏感性;采用针对GP73可溶性片段的多克隆抗体偶联酶作为检测抗体，可大 大提高血浆中GP73的检出率，并充分扩大检测信号，使GP73的检测有很好的特异性和敏感 性。

附图说明

[0091] 图1是GP73的超保守部位结构示意图；

[0092] 图2是GP73胞外区结构示意图；

[0093] 图3是利用本发明提供的免疫微球及GP73多克隆抗体检测样品中的GP73抗原的 ROC曲线图；

[0094] 图4是制备超顺磁纳米免疫微球及利用该免疫微球及GP73多克隆抗体检测样品中 的GP73抗原的方法的流程示意图。

[0095] 图5是本发明提供的超顺磁性纳米免疫微球的稳定性检测结果示意图；

[0096] 图6是GP73单克隆抗体腹水肝癌细胞染色免疫荧光图。

具体实施方式

[0097] 为了更易理解本发明提供的技术方案，下文将本发明的较佳的实施例，并配合图 式做详细说明如下：

[0098] 如图1所示，GP73超保守部位(PC Site)下游12个氨基酸:EGRVRRAAAERG，该表位在 不同种属生物进化过程中仍然保守。

[0104] 酶标记物上偶联的GP73多克隆抗体，针对胞浆内游离GP73酸性区末端的序列， GP73酸性区如图2所示。

[0105] 评价GP73是否可以作为HCC的早期诊断指标，试验用的HCC标本应为初诊病例标 本，未经任何干预治疗。目前试验中的大多数HCC标本均进行过干预治疗，所以本申请选取 所有标本中诊断为HCC而未有干预治疗记录的病例标本共150例绘制ROC曲线。如图3所示， 利用本发明提供的磁性免疫微球、及GP73多克隆抗体检测GP73抗原的方法具有较高的准确 率。

[0106] 如图4所示，本发明提供的制备超顺磁纳米免疫微球及利用该微球及GP73多克隆 抗体检测GP73抗原的方法包括下述步骤：

[0107] 1、制备磁性纳米微球，

[0108] 2、利用-NH2、-COOH或PEI进行表面化学修饰，

[0109] 3、偶联GP73单克隆抗体，

[0110] 4、抗原-抗体孵育，

[0111] 5、加入酶标多克隆抗体，洗涤并磁性分离，

[0112] 6、加入化学发光底物，

[0113] 7、化学发光检测。

[0114] 已偶联GP73单克隆抗体的纳米磁珠、裂解液和HRP稀释液于4°C、室温（20°C〜25 °C)放置6天、8天和10天后，测定阳性对照、HCAg-NS3阳性标本和正常人标本各1例。其OD值 无显著性变化，如图5所示。说明本发明提供的超顺磁纳米免疫微球，及GP73多克隆抗体稳 定性较好。

[0115] 本发明的原理：

[0116] 1、通过双功能化学试剂(戊二醛，或EDC(l-(3_二甲氨基丙基)-3_乙基碳二亚胺盐 酸盐）碳二亚胺）将GP73单克隆抗体共价偶联在磁性纳米微球表面，制备磁性免疫微球 (MIB)。

[0117] 2、待检样品与磁性免疫微球在37 °C反应，若待检样品中含有GP73，则其将与MIB表 面的GP73单抗进行特异性免疫反应，被捕获在MIB表面。

[0118] 3、加入酶标记的GP73多抗，该GP73多抗将与被捕获在MIB表面的GP73进行特异性 免疫反应，形成抗体-抗原-抗体三明治夹心复合物，通过洗涤除去游离的未参与反应的抗 原、抗体等其他杂质。

[0119] 4、加入显色液A、B或化学发光底物，在三明治夹心复合物中的酶的催化作用下，产 生的有色产物在波长450nm处有最高吸收峰，可用酶标仪进行测量或用化学发光检测仪检 测产生的光学信号。测量值与被检GP73的浓度成正相关。

[0120] 实施例1:

[0121] 1、制备 GP73 单抗。

[0122] (1)、合成多肽AAAERGAVELKK (序列1)，偶联BSA件血清白蛋白）。

[0123] (2)、动物免疫:将步骤⑴得到的合成多肽(GP73抗原）与完全福氏佐剂等量混合 制成乳化剂，共免疫Balb/c小鼠5只。第1次免疫IOOyg/只，4周后用不完全福氏佐剂第2次免 疫，50yg/只。第2次免疫2周后（共6周）取尾静脉血测定效价，5只小鼠抗体效价均达到1: 32000。第2次免疫4周后(共8周）用不完全福氏佐剂第3次免疫，剂量、途径与第2次相同。第3 次免疫2周后(共10周)尾静脉取血再次测定效价，5只小鼠的GP73抗体效价分别为1:64000、 1:64000、1:128000、1:64000、1:128000，取3 号和 5 号小鼠做融合。

[0124] (3)、GP73单抗阳性细胞株筛选

[0125] 用免疫过的Balb/c小鼠制备脾细胞悬液后，吸取脾细胞和骨髓瘤细胞悬液按5:1 体积比混合，置于离心管内充分混匀，离心使沉淀细胞松散均匀成糊状。

[0126] 取50%的聚乙二醇I .Oml加入混合细胞中促进融合。加入45ml HAT培养液制成细 胞悬液，并加入已铺成饲养细胞层的96孔板中，每孔0. Iml，置37 °C 5 % CO2培养箱中培养。分 别于第3、6天后换液HAT 1次，10天时取上清液，用ELISA法测GP73抗体效价，进行初筛，阳性 孔准备进行亚克隆。杂交瘤细胞的克隆化采用有限稀释法。用滴管反复吹打24孔板细胞，使 细胞充分混匀，进行细胞计数，将混匀细胞液进行系列稀释至10个细胞/ml，将稀释好的细 胞悬液每孔0. Iml接种于已铺有饲养细胞层的96孔板中，显微镜下观察细胞克隆生长情况。 反复克隆多次，确定阳性单克隆细胞株后扩大培养。

[0127] ⑷、腹水制备:接种杂交瘤细胞前10天Balb/c小鼠腹腔注射0.5ml石蜡油，每只小 鼠腹腔注射〇.5ml杂交瘤细胞。2周内小鼠腹部明显膨大，处死后吸出腹水，离心后低温保存 上清。

[0128] 应用B淋巴细胞杂交瘤技术融合细胞，共用11块96孔板，融合率100%，阳性率 20 %。初筛阳性孔进行2-4次克隆，阳性率达100 %。共获得11株能稳定分泌GP73 McAb的杂 交瘤细胞株，分别命名，如表1第一列所示。经扩大培养后，分别制备腹水。培养上清液和腹 水中GP73抗体的效价见表1。

[0129] 表I 1株GP73 McAb效价测定

[0132] 产生本发明GP73单抗的是小鼠杂交瘤细胞株GDA124。

[0133] 上述杂交瘤细胞株GDAl 24提交保藏，

[0134] 保藏单位是：中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC)。

[0135] 提交保藏的目的是:用于专利程序的生物材料保存。

[0136] 提交保藏的日期是:2014年10月16日。

[0137] 保减编号是:9806。

[0138] (5)、采用纯化GP73表达抗原和其他蛋白（人血清白蛋白似5、85六、651\大肠杆菌 BL-21菌体、HCV和HDV重组蛋白）分别包被酶标板，检测GP73单抗对不同蛋白的反应性。抗体 特异性检测:无菌爬片置于6孔板的孔中，向孔中接种HepG2细胞(HepG2属于肝癌细胞，天然 状态下即有较为丰富的GP73蛋白表达），以普通骨髓瘤细胞接种的小鼠产生的腹水作为阴 性对照，其结果见表2。细胞融合率达70%后用免疫荧光检测GP73表达水平。DAPI细胞核染 色(参见图6)。

[0139] 表2 11株杂交瘤细胞接种小鼠产生的腹水的特异性检测(0D值）

[0140]

[0141]

[0142] 2、制备纳米微球。

[0143] 称取0.30g FeCl2 · 4H2〇和0.85g FeCl3 · 6H2O,溶解于IOmL二次蒸溜水中配制混 合溶液，取250mL置于三口瓶内，置于65°C的恒温水浴锅中，强烈的磁力搅拌下，滴加浓NaOH 溶液至PH=7，此时有棕色颗粒生成。再滴加稀NaOH溶液至pH=8，继续搅拌，加入无水乙醇， 静置IOmin后，将温度升高进行熟化，调节酸度。搅拌的同时加入表面活性剂十二烷基苯磺 酸钠，整个反应过程在氮气保护下进行。30min后，用强磁铁来沉降，分离上层清液，用蒸馏 水和无水乙醇反复洗涤沉淀物，直至洗水的pH为7左右，将沉淀物置于真空干燥箱中，在75 。(:下干燥5h，得磁性纳米Fe3O4粉体。

[0144] 所得Fe3〇4粉体是微球核心，所述微球核心的直径尺寸为6_12nm;Fe3〇4微球核心外 表面包覆二氧化硅，所得微球的直径为I 〇〜30nm。

[0145] 3、制备纳米免疫微球：

[0146] (1)取超顺磁性纳米微球；

[0147] (2)对微球表面进行化学修饰；

[0148] (3)将双功能化学试剂共价偶联在磁性纳米微球表面；

[0149] ⑷取IOOyl步骤⑶所得磁性纳米微球于2ml离心管中，磁性分离，弃上清液，

[0150] (5)每次用洗涤液(0 · 02M Tris-HCl，含0 · 02 % 吐温20，PH = 7 · 4) 300μ1 洗涤，至少 洗2次后，磁性分离，弃上清液，

[0151] (6)加入200μ1浓度为lmg/ml的GP73单抗，混匀，室温振荡反应20〜30分钟，振荡速 度为 180rpm。

[0152] (7)磁性分离，弃上清液，用上述洗涤液洗3次，加入0.5〜2ml贮存液(0.2M PBS，含 10 % BSA，0.2 %硫柳汞，PH=7.4)，得到免疫微球。

[0153] 所得到的免疫微球置4 °C保存备用。

[0154] 上述方法中偶联效率参见表3,表3显示了 GP73单抗溶液在偶联磁性纳米微球前后 在波长280nm处吸光度值的变化。

[0155] 表3磁性纳米微球与GP73单抗的偶联

[0157] 表3中：1.偶联前GP73单抗溶液用0. IM PBS (PH = 7.4)稀释5倍后测得280nm处吸光 度值为0.346。

[0158] 2.偶联后上清液用0. IM PBS (PH=7.4)稀释5倍后测得280nm处吸光度值为0.075。

[0160] 表3数据显示本发明中制备的磁性纳米微球对GP73单抗有较高的偶联效率。

[0161] 实施例2

[0162] 利用实施例1提供的超敏感超顺磁性纳米免疫微球及本发明所述检测GP73抗原的 方法检测402例健康献血者样品中的GP73抗原。

[0163] 血清或血浆中GP73的检测：

[0164] (1)各试管中分别加入50μ1 样品稀释液(0.02M PBS，含0.1%Tween 20，ΡΗ=7·4)，

[0165] (2)再加入50μ1待检样品，

[0166] (3)阳性对照孔中加入50μ1基因工程GP73溶液(缓冲液为0. IM PBS)，

[0167] ⑷阴性对照孔中加入50μ1正常人血清，

[0168] (5)空白孔中不加样品稀释液。

[0169] ⑶将试管或孔中的不同物质混匀，37°C反应15分钟后取出，

[0170] (7)各试管分别加入50μ1磁性免疫微球溶液(空白孔不加），混匀，37°C反应15分钟 后取出，

[0171] ⑶各试管分别加入50μ1酶标GP73多抗(空白孔不加），混匀，37°C反应15分钟，

[0172] ⑶磁性分离，弃上清液，每管加入400μ1洗涤液(0.02M Tris-HCl，含0.02 % Tween 20,PH=7.4)，如此洗3次。

[0173] (10)每试管中分别加入50μ1显色液A和50μ1显色液Β，混匀后置37°C避光反应5分 钟，

[0174] (11)每试管中均加入ΙΟΟμΙ 2M H2SO4进行终止反应，

[0175] (12)磁性分离2分钟，取各试管上清液ΙΟΟμΙ移至酶标板孔中，

[0176] (13)用酶标仪在波长450nm处测量各孔的吸光度(OD)值(参考波长为630nm)。

[0177] 综合对402例健康献血者样品检测的原始数据(0D值)结果进行分析，依据《医学科 研中的统计方法》(第二版马斌荣主编科学出版社），402例体检标本的平均值X = O.080,标 准差30 = 0.0173，正常值范围=乂±1.9630,0^(^€ = 0.114，得出结论:本研究中以标本的 ODXh 114判为GP73阳性。

[0178] 实施例3

[0179] 利用实施例1提供的超敏感超顺磁性纳米免疫微球及本发明所述检测GP73抗原的 方法检测153例肝癌患者样品中的GP73抗原。

[0180] 1、具体检测方法同实施例2

[0181] 2、对153例肝癌病例血清标本的检测结果的原始数据(0D值)进行分析，所得结论 如表4所示。

[0182] 表4 153例肝癌病例血清标本的检测结果统计表

[0185] 上面表4的结果表明，利用本发明提供的GP73抗体及其检测方法与AFP方法相比， 本发明提供的方法对肝癌患者的检出率更高，具有更好的灵敏度。

[0186] 实施例4

[0187] 利用实施例1提供的超敏感超顺磁性纳米免疫微球及本发明所述检测GP73抗原的 方法检测528例肝硬化患者样品中的GP73抗原。

[0188] 1、血清或血浆中GP73检测方法见实施例。

[0189] 2、对528例肝硬化患者检测结果的原始数据(0D值)进行分析，分析结果如表5所示

[0190] 表5 528例肝硬化病例血清标本检测结果分析统计表

[0192] 总结:在已查病历的51例中，48例后期诊断为HCC，GP73阳性率70.6 (36/51)明显高 于AFP阳性率43.5% (20/46)，表明GP73是较AFP好的HCC预测指标。

[0193] 实施例2,3,4中所用的酶标GP73多抗用辣根过氧化物酶(HRP)标记GP73多克隆抗 体制备而得。GP73多克隆抗体通过常规免疫方法采用GP73抗原免疫新西兰大白兔而获得。

[0194] 具体采用下述方法制备GP73多抗：

[0195] ⑴分别制备具有下述氨基酸序列的多肽：

[0196] MKEVKEQCE (参见序列2);

[0197] EAVASRDLS (参见序列 3);

[0198] PERDQLVIP (参见序列4)。

[0199] (2)将步骤（1)中制备的三种多肽以1:1:1的质量比混合，用该混合物免疫新西兰 大白兔。免疫动物为体重3kg的新西兰成年雌性白兔2只。免疫3次后静脉采血并分离血清， 采用间接ELISA法测定效价，结果显示血清效价达1:200000以上。处死动物，收集血清。将两 只兔子的血清混合后，纯化血清，获得上述GP73多抗。

[0200] 采用下述方法制备上述酶标GP73多克隆抗体：

[0201] a)以NaKk-乙二醇法进行HRP的氧化，达到终浓度10mg/ml;

[0202] b)在碱性碳酸盐缓冲液(0.05M，Ph9.5的碳酸盐缓冲液）中透析5小时，实现HRP对 多克隆抗体的标记，反应结束后用NaBH4溶液终止反应，再对PBS透析过夜。

[0203] c)用饱合硫酸铵沉淀，获得纯化的HRP酶标抗GP73多克隆抗体。

[0204] 实施例2,3,4中作为阳性对照使用的基因工程GP73抗原为现有市场上可得到的商 品。

[0205] 实施例2,3,4中所用纳米免疫微球可检测的最低抗原浓度为100pg/ml (参见表6)。

[0206] 表6实施例2中所用纳米免疫微球可检测的GP73抗原浓度范围

[0208] 注：以GST蛋白作为阴性抗原对照，按照健康对照样本中获得的cutoff值，大于 0.114认为是阳性结果。

[0209] 由表6的结果可以得出，本发明提供的纳米免疫微球可检测GP73抗原的最低抗原 浓度为l〇〇pg/ml，灵敏度较高。

[0210] 参见表7，表7显示了本发明提供的检测GP73的方法的特异性和灵敏度。

[0211] 表7本发明提供的超敏感超顺磁性纳米免疫微球检测GP73的特异性和灵敏度

[0213] 注:表7中的Cutoff值是0.114,是根据实施例2中的402例体检者标本的检测结果 计算出来的。

[0214] 以上所述，仅为本发明的较佳实施例而已，并非用于限定本发明的保护范围。凡是 根据本发明内容所做的均等变化与修饰，均涵盖在本发明的专利范围内。

Claims (4)

1. 一种用于检测GP73抗原的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒包括超顺磁纳米免疫微 球，所述纳米免疫微球包括纳米微球，所述纳米微球上偶联有GP73单克隆抗体;所述单克隆 抗体是CGMCC保藏编号9806的GP73单克隆抗体杂交瘤细胞产生的抗体，用于产生所述单克 隆抗体的抗原为下述氨基酸序列： AAAERGAVELKK； 所述试剂盒还包括GP73多克隆抗体，产生所述多克隆抗体的抗原为下述氨基酸序列中 至少两种氨基酸序列的组合： MKEVKEQCE， EAVASRDLS， PERDQLVIP。

2. 根据权利要求1所述的用于检测GP73抗原的试剂盒，其特征在于，所述纳米微球包括 微球核心和无机小分子，所述无机小分子覆盖在微球核心的表面形成无机小分子层，所述 纳米微球通过无机小分子偶联所述抗体。

3. 根据权利要求2所述的用于检测GP73抗原的试剂盒，其特征在于，所述无机小分子是 二氧化硅(SiO2)。

4. 一种制备权利要求1所述的用于检测GP73抗原的试剂盒的方法，其特征在于，纳米免 疫微球的制备方法包括下述步骤： (1)取50-200μ1超顺磁性纳米微球； ⑵对微球表面进行化学修饰； ⑶将双功能化学试剂共价偶联在磁性纳米微球表面； ⑷用洗涤液进行洗涤； a. 将超顺磁性纳米微球加入400-800μ1洗涤液，并使之分散； b. 磁性分离，弃上清液； ⑸加入浓度为0.5〜3mg/ml的GP73单克隆抗体溶液，恒温振荡反应； ⑹磁性分离，弃上清液； ⑺用相同洗涤液进行洗涤； a. 每次加入洗涤液400-800μ1，并使之分散； b. 磁性分离，弃上清液； c. 重复以上洗潘步骤2_3次； d. 加入0.5〜2ml贮存液，4°C保存备用。