CN105602927B - 一种改性柚皮固定化糖化酶的方法 - Google Patents

一种改性柚皮固定化糖化酶的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105602927B
CN105602927B CN201610048622.0A CN201610048622A CN105602927B CN 105602927 B CN105602927 B CN 105602927B CN 201610048622 A CN201610048622 A CN 201610048622A CN 105602927 B CN105602927 B CN 105602927B
Authority
CN
China
Prior art keywords
pomelo peel
carbohydrase
modified pomelo
shaddock ped
modified
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201610048622.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105602927A (zh
Inventor
肖安风
余倩
姜泽东
许彩云
朱艳冰
倪辉
蔡慧农
杜希萍
杨秋明
吴昌正
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jimei University
Original Assignee
Jimei University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jimei University filed Critical Jimei University
Priority to CN201610048622.0A priority Critical patent/CN105602927B/zh
Publication of CN105602927A publication Critical patent/CN105602927A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105602927B publication Critical patent/CN105602927B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2408Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2411Amylases
    • C12N9/2428Glucan 1,4-alpha-glucosidase (3.2.1.3), i.e. glucoamylase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01003Glucan 1,4-alpha-glucosidase (3.2.1.3), i.e. glucoamylase

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种改性柚皮固定化糖化酶的方法。该方法包括:(1)将切成丁状的柚皮进行酸处理和碱处理,以除去柚皮中的果胶、木质素和半纤维素等组分,得到预处理柚皮;(2)预处理后的柚皮用琥珀酸酐进行改性,在柚皮纤维上引入羧基,得到改性柚皮载体;(3)以改性柚皮为固定化载体,在酸性条件下对糖化酶进行吸附交联固定化,将游离的糖化酶固定在改性柚皮上;(4)通过调节游离酶浓度、固定化温度、吸附时间、戊二醛浓度等一系列因素优化改性柚皮固定化糖化酶实验工艺。本发明的优点为将柚皮变废为宝,达到了糖化酶重复使用的效果,工艺简单,产物易于分离,可操作性高,对环境的污染小,具有良好的应用前景。

Description

一种改性柚皮固定化糖化酶的方法
技术领域
本发明涉及固定化酶技术领域,尤其涉及一种固定化糖化酶的方法。
背景技术
糖化酶又称葡萄糖淀粉酶,学名α-1,4葡萄糖水解酶,主要分布在霉菌中,是一种外切酶,除了能从淀粉链的非还原性端水解α-1,4葡萄糖苷键,也能缓慢水解α-1,6葡萄糖苷键,在制糖、酿酒、发酵方面广泛应用,是一种十分重要的酶制剂,工业生产上都以微生物发酵法大规模生产糖化酶。
酶固定化技术是采用吸附、交联、包埋或共价结合的方式将游离酶固定在载体上,从而提高酶的稳定性和重复使用性,便于生产的连续化、自动化,降低酶的使用成本。目前糖化酶的固定化应用较多的方法有海藻酸铝吸附固定、具磁响应的聚乙二醇吸附-交联固定、聚乙烯醇复合凝胶固定、磁性壳聚糖固定、糊精包埋固定等多种方法。然而这些固定化方法步骤大多较为复杂,固定化载体需经复杂的处理后才能获取,且固定化过程中使用的试剂对人体存在一定的伤害,从而限制了其应用。
柚皮一方面具有丰富的多孔结构,利于形成空间,另一方面富含纤维素,含有大量的羟基、多酚基团,通过不同的机制如静电吸附、络合、氢键等方式,具有交强的吸附性能,此外,基于柚子皮的可食用性,利用柚皮改性后吸附固定化糖化酶具有较强的可行性和应用性。
发明内容
本发明的目的在于提供一种简单、行之有效的固定化糖化酶的方法,通过分析固定化底物浓度、溶液pH、吸附时间、吸附温度、戊二醛浓度、对固定化糖化酶活力及酶活回收率的影响,确定最佳固定化条件,并对固定化糖化酶的重复使用次数进行研究,为固定化糖化酶及糖化酶的应用奠定理论基础。另一方面利用柚皮的多纤维疏松结构对其进行改性,使得利用柚皮这种天然原料固定化糖化酶成为可能。
本发明的目的通过如下技术方案实现:
一种改性柚皮固定化糖化酶的方法,包括以下步骤:
步骤一、游离酶制备:
将粉末状糖化酶用乙酸-乙酸钠缓冲液溶解混匀后,纱布过滤,取滤液即为游离糖化酶溶液;
步骤二、固定化载体制备:
1)、取干燥的柚皮内层白色部分,切成丁状;2)、将柚皮按1:10(w/v)加入到pH 4的蒸馏水中,持续搅拌3.5h,结束后抽滤,滤渣用蒸馏水洗至中性;将滤渣按固液比1:10加入到质量分数为3%的氢氧化钠溶液中,持续搅拌3.5h,结束后抽滤,滤渣用蒸馏水洗至中性,再用无水乙醇洗涤数次,60℃干燥;3)、将干燥的柚皮加入琥珀酸酐,吡啶回流24h,结束后用2M的盐酸溶液洗脱,再用蒸馏水洗涤数次,干燥得到改性柚皮载体,作为后续的固定化载体;
步骤三、固定化酶的制备:
将游离糖化酶与步骤二中制得的改性柚皮载体混匀直接固定化,再用戊二醛交联固定化糖化酶,待固定化完全后,采用纱布过滤,改性柚皮载体用缓冲液或蒸馏水洗涤数次直至表面无残留游离糖化酶为止,即得改性柚皮固定化糖化酶。
作为实施例的优选方式,所述步骤一中乙酸-乙酸钠缓冲液的pH为5.0,浓度为0.2mol/L,体积为10mL;溶解的糖化酶采用4层纱布过滤。
作为实施例的优选方式,所述步骤二中柚皮大小为2mm×2mm×2mm的立方体。
作为实施例的优选方式,所述步骤三中将浓度为20U/mL的游离糖化酶与改性柚皮载体按20:1的比例混匀,于25℃直接吸附游离的糖化酶,吸附时间为1.5h,再用10mL浓度为1%的戊二醛溶液交联固定化糖化酶20min;待固定化完全后,纱布过滤,改性柚皮载体用pH4.6浓度为0.2mol/L的乙酸-乙酸钠缓冲液或蒸馏水洗涤数次直至表面无残留游离糖化酶为止,即得改性柚皮固定化糖化酶。
作为实施例的优选方式,所述步骤三中固定化糖化酶重复使用4次后残余酶活力为38%。
本发明的有益效果为将柚皮变废为宝,达到了糖化酶重复使用的效果,工艺简单,产物易于分离,可操作性高,对环境的污染小,具有良好的应用前景。
附图说明
图1游离酶浓度对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响;
图2不同pH对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响;
图3不同吸附温度对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响;
图4不同吸附时间对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响;
图5不同戊二醛浓度对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响;
图6改性柚皮载体固定糖化酶的重复利用性。
具体实施方式
下面结合附图与具体实施例进一步说明本发明的技术方案,但本发明的保护范围并不局限于此。
实施例中采用的检测方法:
游离糖化酶活力测定:取400μL浓度为2%的可溶性淀粉溶液,加入100μL游离糖化酶溶液,于40℃条件下反应20min,反应结束后加入0.5mL的DNS溶液,立即沸水浴显色5min,冷却后加蒸馏水10mL,测540nm处的吸光度,根据以葡萄糖绘制的标准曲线计算反应液中还原糖的生成量。上述条件下,每小时水解可溶性淀粉产生1mg葡萄糖作为一个酶活力单位(U)。
固定化糖化酶活力测定:取改性柚皮固定化糖化酶0.5g,于10mL浓度为2%的可溶性淀粉溶液中,在40℃pH 4.6条件下反应20min,采用游离酶的测定方法测定固定化酶反应过程中还原糖的生成量。
酶活回收率(%)=固定化酶总活力/加入游离酶总活力×100%。
实施例1:改性柚皮载体的制备
取干燥的柚皮内层白色部分,切成丁状,按1:10(w/v)加入到pH 4的蒸馏水中,持续搅拌3.5h,结束后抽滤,滤渣用蒸馏水洗至中性,按固液比1:10加入到3%的氢氧化钠溶液中,持续搅拌3.5h,结束后抽滤,再用蒸馏水洗至中性,无水乙醇洗涤数次,60℃干燥;将干燥的柚皮加入琥珀酸酐,吡啶回流24h,结束后用2M的盐酸溶液洗脱,再用蒸馏水洗涤数次,干燥得到改性柚皮载体,作为后续的固定化载体。
实施例2:游离酶浓度对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响
将粉状的糖化酶用pH为4.6的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解后,采用纱布过滤制成游离糖化酶溶液,取0.5g改性柚皮载体,加入到10mL浓度分别为10~30U/mL的游离酶溶液中,于室温条件下吸附2h,固定化结束后用0.02M的乙酸-乙酸钠缓冲液冲洗数次,洗尽表面残留的游离酶。加入10mL 2%的可溶性淀粉,40℃水解反应20min,测定固定化酶总活力及酶活回收率。根据图1结果所示,确定较优固定化酶浓度为20U/mL。
实施例3:不同pH对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响
将粉状的糖化酶用pH为3.5~5.5的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解后,纱布过滤制成游离糖化酶溶液,取0.5g改性柚皮载体,加入到10mL浓度为20U/mL的游离酶溶液中,于室温条件下吸附2h,固定化结束后采用0.02M的乙酸-乙酸钠缓冲液冲洗数次,洗尽表面残留的游离酶。加入10mL 2%的可溶性淀粉,40℃水解反应20min,测定固定化酶总活力及酶活回收率。根据图2结果所示,确定较优底物溶液pH为5.0.
实施例4:不同吸附温度对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响
将粉状的糖化酶用pH为5.0的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解后,纱布过滤制成游离糖化酶溶液,取0.5g改性柚皮载体,加入到10mL浓度为20U/mL的游离酶溶液中,分别在4℃、25℃、40℃、60℃条件下吸附2h,固定化结束后采用0.02M的乙酸-乙酸钠缓冲液冲洗数次,洗尽表面残留的游离酶。加入10mL2%的可溶性淀粉,40℃水解反应20min,测定固定化酶总活力及酶活回收率。根据图3结果所示,确定较优吸附固定化温度为25℃。
实施例5:不同吸附时间对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响
将粉状的糖化酶用pH为5.0的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解后,纱布过滤制成游离糖化酶溶液,取0.5g改性柚皮载体,加入到10mL浓度为20U/mL的游离酶溶液中,于25℃条件下分别吸附0.5~3.0h,固定化结束后采用0.02M的乙酸-乙酸钠缓冲液冲洗数次,洗尽表面残留的游离酶。加入10mL 2%的可溶性淀粉,40℃水解反应20min,测定固定化酶总活力及酶活回收率。根据图4结果所示,在吸附1.5h后固定化酶活力已基本达到稳定。
实施例6:不同戊二醛浓度对改性柚皮载体固定糖化酶活力的影响
将粉状的糖化酶用pH为5.0的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解后,纱布过滤制成游离糖化酶溶液,取0.5g改性柚皮载体,加入到10mL浓度为20U/mL的游离酶溶液中,于25℃条件下吸附1.5h,过滤掉剩余游离酶后,加入10mL浓度为0.5%~2.5%的戊二醛溶液,交联20min,交联结束后采用0.02M的乙酸-乙酸钠缓冲液冲洗数次,洗尽表面残留的戊二醛溶液。加入10mL 2%的可溶性淀粉,40℃水解反应20min,测定固定化酶总活力及酶活回收率。根据图5结果所示,戊二醛浓度为1%时固定化酶活力相对较高。
实施例7:改性柚皮载体固定糖化酶的重复利用性
将粉状的糖化酶用pH为5.0的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解后,纱布过滤制成游离糖化酶溶液,取0.5g改性柚皮载体,加入到10mL浓度为20U/mL的游离酶溶液中,于25℃条件下吸附1.5h,过滤掉剩余游离酶后,加入10mL浓度为0.5%~2.5%的戊二醛溶液,交联20min,交联结束后采用0.02M的乙酸-乙酸钠缓冲液冲洗数次,洗尽表面残留的戊二醛溶液。加入10mL 2%的可溶性淀粉,40℃水解反应20min,同样步骤测酶活力,以测定其酶活回收率。根据图6结果所示,重复使用4次后,酶活回收率为38%。
本领域的普通技术人员从本发明公开内容直接导出或联想到的所有变形,均应认为是本发明的保护范围。

Claims (4)

1.一种改性柚皮固定化糖化酶的方法,其特征在于:包括以下步骤:
步骤一、游离酶制备:
将粉末状糖化酶用乙酸-乙酸钠缓冲液溶解混匀后,纱布过滤,取滤液即为游离糖化酶溶液;
步骤二、固定化载体制备:
1)、取干燥的柚皮内层白色部分,切成丁状;2)、将柚皮按质量体积比1:10加入到pH 4的蒸馏水中,持续搅拌3.5 h,结束后抽滤,滤渣用蒸馏水洗至中性;将滤渣按固液比1:10加入到质量分数为3%的氢氧化钠溶液中,持续搅拌3.5 h,结束后抽滤,滤渣用蒸馏水洗至中性,再用无水乙醇洗涤数次,60℃干燥;3)、将干燥的柚皮加入琥珀酸酐,吡啶回流24 h,结束后用2 M的盐酸溶液洗脱,再用蒸馏水洗涤数次,干燥得到改性柚皮载体,作为后续的固定化载体;
步骤三、固定化酶的制备:
将浓度为20 U/mL的游离糖化酶与步骤二中制得的改性柚皮载体按20:1的比例混匀,于25℃直接吸附游离的糖化酶,吸附时间为1.5 h,再用10 mL浓度为1%的戊二醛溶液交联固定化糖化酶20 min;待固定化完全后,纱布过滤,改性柚皮载体用pH 4.6浓度为0.2 mol/L的乙酸-乙酸钠缓冲液或蒸馏水洗涤数次直至表面无残留游离糖化酶为止,即得改性柚皮固定化糖化酶。
2.如权利要求1中所述的一种改性柚皮固定化糖化酶的方法,其特征在于:所述步骤一中乙酸-乙酸钠缓冲液的pH为5.0,浓度为0.2 mol/L,体积为10 mL;溶解的糖化酶采用4层纱布过滤。
3.如权利要求1中所述的一种改性柚皮固定化糖化酶的方法,其特征在于:所述步骤二中柚皮切成丁的大小为2 mm×2 mm×2 mm的立方体。
4.如权利要求1中所述的一种改性柚皮固定化糖化酶的方法,其特征在于:所述步骤三制备的固定化糖化酶重复使用4次后残余酶活为38%。
CN201610048622.0A 2016-01-25 2016-01-25 一种改性柚皮固定化糖化酶的方法 Expired - Fee Related CN105602927B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610048622.0A CN105602927B (zh) 2016-01-25 2016-01-25 一种改性柚皮固定化糖化酶的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610048622.0A CN105602927B (zh) 2016-01-25 2016-01-25 一种改性柚皮固定化糖化酶的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105602927A CN105602927A (zh) 2016-05-25
CN105602927B true CN105602927B (zh) 2019-05-10

Family

ID=55983273

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610048622.0A Expired - Fee Related CN105602927B (zh) 2016-01-25 2016-01-25 一种改性柚皮固定化糖化酶的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105602927B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109464990B (zh) * 2018-12-13 2021-08-17 辽东学院 纤维素二元酸酯吸附剂、其制备方法和其印染废水净化应用
CN114295446A (zh) * 2021-12-28 2022-04-08 中国林业科学研究院木材工业研究所 一种利用包埋剂改善木质文物脆裂的徒手切片方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102154255A (zh) * 2010-12-17 2011-08-17 云南大学 一种糖化酶固定化的方法
CN102553544A (zh) * 2012-02-20 2012-07-11 华南理工大学 一种植物型吸附材料及其应用

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102154255A (zh) * 2010-12-17 2011-08-17 云南大学 一种糖化酶固定化的方法
CN102553544A (zh) * 2012-02-20 2012-07-11 华南理工大学 一种植物型吸附材料及其应用

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Evaluation of man-tailored cellulose-based carriers in glucoamylase immobilization;Jolanta Bryjak et al.;《Carbohydrate Research》;20070212;1105-1109
介孔分子筛MCM-41固定糖化酶的研究;王家东 等;《中国酿造》;20131231;第32卷(第1期);116-119
改性柚皮纤维素对Pb2+的吸附动力学研究;罗均 等;《食品科学》;20101231;第31卷(第3期);87-90
柚皮纤维素的提取工艺研究;罗均 等;《食品工业科技》;20101231;第31卷(第4期);273-276

Also Published As

Publication number Publication date
CN105602927A (zh) 2016-05-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bissett et al. Immobilization of Aspergillus beta-glucosidase on chitosan
Cao et al. Cellulose hydrolysis using zinc chloride as a solvent and catalyst
Periyasamy et al. Carrier-free co-immobilization of xylanase, cellulase and β-1, 3-glucanase as combined cross-linked enzyme aggregates (combi-CLEAs) for one-pot saccharification of sugarcane bagasse
CN101899484B (zh) 一种京尼平的制备方法
Hung et al. Immobilization of cellulase onto electrospun polyacrylonitrile (PAN) nanofibrous membranes and its application to the reducing sugar production from microalgae
CN105524909B (zh) 用于酶固定化的磁性壳聚糖微球、其制备方法及应用
Sóti et al. Of enzyme use in cost-effective high solid simultaneous saccharification and fermentation processes
CN105602927B (zh) 一种改性柚皮固定化糖化酶的方法
Karagulyan et al. Immobilization of fungal β-glucosidase on silica gel and kaolin carriers
CN106282150A (zh) 一种以细菌纤维素为载体的固定化酶及其制备方法
CA2781090A1 (en) Process for production of monosaccharide
CN101974570A (zh) 燃料乙醇生产中回收再利用纤维素酶全组份的方法
CN107828756A (zh) 一种Sn‑1,3专一性固定化脂肪酶的制备方法
CN103849665A (zh) 羧基功能化离子液体溶液预处理木质纤维素的方法
Halliwell et al. The action on cellulose and its derivatives of a purified 1, 4-β-glucanase from Trichoderma koningii
CN102533711A (zh) 一种d-塔格糖3-差向异构酶固定化方法
CN106400466A (zh) 一种碳纤维改性方法制备固定化载体材料
CN102453707A (zh) 一种固定化纤维素酶的制备方法
CN104480096B (zh) 交联聚合固载β-葡萄糖苷酶的方法
CN101712951A (zh) 一种基于固定化方法的脂肪酶固定方法及其在阿魏酸酯化反应中的应用
CN109487561A (zh) 一种基于贻贝蛋白仿生改性的疏水竹纤维及其制备方法
CN105238828B (zh) 一种利用分子网布包埋β-葡萄糖苷酶提高纤维素水解效率并降低纤维素乙醇成本的方法
Woodward et al. Affinity Chromatography of B-Glucosidase and Endo-B-Glucanase from Aspergillus Niger on Concanavalin A-Sepharose: Implications for Cellulase Component Purification and Immobilization
CN101613723A (zh) 利用含纤维素的废弃植物生产燃料乙醇的方法
CN102363776A (zh) 一种用高碘酸钠氧化法固定化脂肪酶的方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20190510

Termination date: 20220125