CN105372356B - 一种n‑糖链固相富集并质谱分析的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属糖蛋白质组学和糖组学分析领域,涉及一种用氨基磷酸盐衍生N‑糖链并用Ti4+修饰磁性纳米材料富集衍生后的N‑糖链的方法,其包括:首先通过对N‑糖链的还原端进行氨基磷酸盐的衍生在N‑糖链上引入磷酸根,再将Ti4+修饰的磁性纳米材料Fe3O4@Ti4+置于衍生后的糖链溶液中,通过Ti4+和糖链中的磷酸根之间的螯合反应,将糖链固定在磁性纳米材料上,随后将未和纳米材料结合的非糖链分子(如蛋白质、多肽、无机盐等)清洗除去,最后再在碱性条件下将捕获的糖链从材料上解离下来,送入质谱分析糖链。本发明方法步骤简单、操作方便、快速高效,能实现N‑糖链的高灵敏、高选择性质谱分析。
Description
技术领域
本发明属糖蛋白质组学和糖组学分析领域,涉及一种N-糖链衍生、固相富集并质谱分析的方法。本发明方法能显著地提高N-糖链质谱分析的选择性,并且具有步骤简单、操作方便、快速等特点。
背景技术
蛋白质N-糖基化是生物体内普遍存在的一种翻译后修饰,据研究报道,生物体内约有1/2以上的蛋白质会发生N-糖基化。糖蛋白的N-糖链具有重要的生物学功能,在细胞识别和分子识别,蛋白质折叠,维持蛋白质正确构象中起到重要作用。研究同时表明,许多重大疾病的发生发展往往伴随着N-糖链组成、结构等的改变。高灵敏地鉴定生物体内的N-糖链是进一步研究其组成和结构的首要前提。然而,N-糖链研究面临着如下困难:首先,糖基化修饰的蛋白质种类虽然很多,但其丰度通常较低,因此,N-糖链的含量相对较低;第二,N-糖链由于缺乏疏水性基团以及缺少可带电的基团,因此在质谱中的离子化效率往往比蛋白质或肽段低,不易被质谱鉴定;第三,N-糖链本身的微观不均一性导致糖链在质谱中的信号分散和减弱,更加难以被质谱高灵敏鉴定;第四,目前尽管已有亲水富集柱,石墨化碳柱等固相富集方法,但这些方法由于固相载体和N-糖链之间的相互作用较弱,存在选择性较差的问题。
鉴于此现状,本申请的发明人拟提供一种更加特异和更加便于固液分离的N-糖链的固相富集方法,该方法有利于实现N-糖链的高选择性富集和高灵敏度质谱鉴定,从而进一步促进糖蛋白质组学和糖组学的研究。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术存在的缺陷,提供一种步骤简单、操作方便、快速高效的实现N-糖链选择性富集和高灵敏度质谱鉴定的方法。
本发明提供了一种利用氨基磷酸盐对N-糖链进行衍生,并采用Ti4+修饰的磁性纳米材料Fe3O4@Ti4+富集N-糖链并质谱分析的方法。本发明利用氨基磷酸盐的氨基和N-糖链还原端的醛基间的还原胺化反应将磷酸根引入到N-糖链中,再利用Fe3O4@Ti4+上的Ti4+和衍生后N-糖链中磷酸根之间的螯合作用,将N-糖链固定在磁性纳米材料上,而非糖链则被清洗除去,最后再利用氨水将N-糖链从材料上解离下来,从而实现N-糖链的选择性富集并质谱分析。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案如下:
1.对蛋白质样品进行去糖链酶PNGase F处理,将N-糖链从蛋白质上解离下来;
2.用氨基磷酸盐对其中的N-糖链进行衍生并用Ti4+修饰的磁性纳米材料进行富集;
3.将N-糖链从磁性纳米材料上洗脱下来送入质谱分析。
具体的,本发明的一种固相富集N-糖链并质谱分析的方法,其特征在于,采用氨基磷酸盐对N-糖链进行衍生后,、以磁性纳米材料Fe3O4@Ti4+为吸附剂,实现N-糖链的选择性富集,其包括步骤:
(1)对蛋白质样品进行去糖链酶PNGase F处理,将N-糖链从蛋白质上解离下来;
(2)对蛋白质样品进行碱性磷酸酶CIP处理,去除蛋白质样品中的磷酸根;
(3)用氨基磷酸盐对其中的N-糖链进行衍生;
(4)加入Fe3O4@Ti4+材料与样品溶液充分混合;
(5)外加磁场,使得磁性材料和溶液分离,收集下层固体相;
(6)用缓冲液清洗材料,清洗后外加磁场将材料和溶液分开,收集材料;
(7)用氨水重新混匀材料;
(8)外加磁场再次将材料从溶液中分离后,取上清液与有机基质混合,进行基质辅助激光解吸离子化质谱分析。
更具体的,本发明的方法中,采用Ti4+修饰的磁性纳米材料Fe3O4@Ti4+为吸附剂,利用材料上的Ti4+和经氨基磷酸盐衍生后的N-糖链上的磷酸根之间的反应,将N-糖链固定在磁性纳米材料上,经外加磁场作用使得磁性材料与溶液分离,最终实现N-糖链的富集和质谱分析;
本发明中,蛋白质样品浓度为10ng/μL—1000ng/μL;
所述步骤(1)中,将蛋白质样品溶于10-50mM碳酸氢铵水溶液中,按照每mg蛋白质加入1μL的PNGase F,在37摄氏度下混合12-16小时,使样品中的N-糖链从蛋白质上解离下;
所述步骤(2)中,在上述蛋白质样品中按照每mg样品加入1μL碱性磷酸酶CIP,在37摄氏度下混合12-16小时,使样品中磷酸化蛋白质上的磷酸根从蛋白质上解离下来;
所述步骤(3)中,将上述蛋白质样品冻干,并用甲醇使蛋白质浓度保持在10ng/μL-1000ng/μL;再加入氨基磷酸盐,使氨基磷酸盐浓度保持为0.5-2.5mg/mL;二者在60℃-90℃反应1-3小时;
所述步骤(4)中,将上述蛋白质样品冻干,再加入50%乙腈水溶液(含1-5%的三氟乙酸TFA),使蛋白质浓度保持在10ng/μL-1000ng/μL;再加入Fe3O4@Ti4+磁性纳米粒子,使纳米粒子浓度保持为1mg/mL-10mg/mL;二者在25-37摄氏度混合0.5-2小时;
所述步骤(5)中,外加磁场,使得磁性材料和溶液分离,收集下层固体相;
所述步骤(6)中,对步骤(3)中得到的下层固体相,用50μL-1mL 50%乙腈(ACN)水溶液(含1-5%的三氟乙酸TFA)清洗材料1-3次;每次清洗后外加磁场将材料和溶液分开,收集材料;
所述步骤(7)中,将(6)中收集的材料中用用5-10μL的5%NH3·H2O溶液重新混匀材料,将N-糖链从材料上解离下来;
所述步骤(8)中,外加磁场再次将材料从上清液中分离后,取上清液与有机基质含有2,5-二羟基苯甲酸(DHB)混合,进行基质辅助激光解吸离子化飞行时间质谱MALDI-TOF-MS分析;
本发明的N-糖链固相富集并质谱分析的方法具有如下优点:
由于磷酸根和Ti4+之间的螯合作用强,螯合反应速度快,能显著地提高N-糖链的质谱分析选择性,并且具有步骤简单、操作方便、快速等特点。
附图说明
图1为本发明富集方法的流程图。
图2为100ng/μL标准糖链麦芽七糖DP7的MALDI-TOF-MS谱图,MALDI-TOF-MS谱图纵坐标为质谱峰的相对强度(%Intensity),横坐标为质荷比(m/z);(a)是衍生前,(b)是经AMS衍生后,上样量和衍生前相同;对比图(a)和图(b)显示出,DP7被完全衍生,未衍生峰没有被检测到。
图3为质量比为1:100的AMS衍生后的DP7和牛血清白蛋白BSA酶解肽段的MALDI-TOF-MS谱图,MALDI-TOF-MS谱图纵坐标为质谱峰的相对强度(100%Intensity),横坐标为质荷比(m/z);(a)是富集前;(b)是富集后;“﹒”为来自BSA的酶解肽段,“*”为AMS衍生后的DP7;对比图(a)和图(b)显示出,经过富集后,N-糖链能被选择性的富集下来,实现高灵敏质谱鉴定。
图4为从复杂人血清样品中衍生和固相富集得到的N-糖链,图中显示出,经过衍生和富集后,有32条N-糖链被成功富集和质谱鉴定。
具体实施方式
通过下面的实例对本发明的N-糖链衍生、固相富集并质谱分析方法进一步说明。
实施例1
N-糖链衍生的实验
用甲醇配制100μL 100ng/μL的标准糖链麦芽七糖(DP7),加入0.5-2.5mg/mL的氨基磷酸盐4-氨基苯磷酸钠盐(AMS),在60-90摄氏度孵育1-3小时;冻干上述样品,并在其中加入50μL-1mL 50%ACN水溶液(含1-5%TFA)混合0.5-2小时;在外加磁场作用下将磁性纳米材料从溶液中分离出来;弃除上清液,然后取50μL-1mL 50%ACN水溶液(含1-5%TFA)清洗材料1-3次,每次收集固相材料;再用5-10μL的NH3·H2O溶液重新混匀材料;在外加磁场作用下将磁性纳米材料从溶液中分离出来,取上清液(最终的含有N-糖链的溶液)1μL点样于MALDI靶板上,待干燥后再点样等体积的DHB基质溶液,干燥结晶后进行MALDI-TOF-MS分析,结果如图2所示。
实施例2
Fe3O4@Ti4+对N-糖链选择性富集能力的实验
用甲醇配制100μL 10ng/μL级别的标准糖链麦芽七糖(DP7)和1μg/μL的牛血清白蛋白(BSA)酶解肽段,得到糖链和多肽的混合物,加入0.5-2.5mg/mL的氨基磷酸盐4-氨基苯磷酸钠盐(AMS),在60-90摄氏度孵育1-3小时;冻干上述样品,并在其中加入50μL-1mL50%ACN水溶液(含1-5%TFA)混合0.5-2小时;在外加磁场作用下将磁性纳米材料从溶液中分离出来;弃除上清液,然后取50μL-1mL 50%ACN水溶液(含1-5%TFA)清洗材料1-3次,每次收集固相材料;再用5-10μL氨水溶液重新混匀材料;在外加磁场作用下将磁性纳米材料从溶液中分离出来,取上清液(最终的含有N-糖链的溶液)1μL点样于MALDI靶板上,待干燥后再点样等体积的DHB基质溶液,干燥结晶后进行MALDI-TOF-MS分析,结果如图3所示。
实施例3
Fe3O4@Ti4+对复杂样品人血清中N-糖链衍生和固相富集选择性能力的实验
用10-50mM碳酸氢铵水溶液配制100ng/μL级别的人血清酶解肽段混合物10μL,加入1μL的PNGase F酶,在37摄氏度下孵育12-16小时,再加入1μL的碱性磷酸酶CIP在37摄氏度下孵育12-16小时;冻干上述样品,用甲醇重溶样品至终浓度为100ng/μL,加入0.5-2.5mg/mL的氨基磷酸盐4-氨基苯磷酸钠盐(AMS),在60-90摄氏度孵育1-3小时;冻干上述样品,并在其中加入50μL-1mL50%ACN水溶液(含1-5%TFA)混合0.5-2小时;在外加磁场作用下将磁性纳米材料从溶液中分离出来;弃除上清液,然后取50μL-1mL 50%ACN水溶液(含1-5%TFA)清洗材料1-3次,每次收集固相材料;再用5-10μL氨水溶液重新混匀材料;在外加磁场作用下将磁性纳米材料从溶液中分离出来,取上清液(最终的含有N-糖链的溶液)1μL点样于MALDI靶板上,待干燥后再点样等体积的DHB基质溶液,干燥结晶后进行MALDI-TOF-MS分析,结果如图4所示。
Claims (1)
1.一种N-糖链固相富集并质谱分析的方法,其特征在于,采用氨基磷酸盐对N-糖链的还原端进行衍生,再采用Ti4+修饰的磁性纳米材料Fe3O4@Ti4+为吸附剂对衍生后的N-糖链进行吸附,实现N-糖链的选择性富集;其包括步骤:
(1)对蛋白质样品进行PNGase F去糖基化处理,使糖蛋白质上的糖链释放;
所述的蛋白质样品浓度为10ng/μL—1000ng/μL,溶于10-50mM碳酸氢铵缓冲液中,其中,蛋白质样品按照每mg蛋白加入1μL的PNGase F酶;
(2)加入碱性磷酸酶,去除蛋白质样品中磷酸化蛋白质上的磷酸根;
所述的蛋白质样品按照每mg蛋白加入1μL的碱性磷酸酶;
(3)冻干去除溶液后,再加入氨基磷酸盐溶液对糖链的还原末端进行衍生,
所加入的氨基磷酸盐终浓度为0.5-2.5mg/mL;反应溶液为甲醇,反应时间为1-3小时,反应温度为60-90摄氏度;
(4)冻干去除溶液后,再加入Fe3O4@Ti4+纳米材料及富集溶液,混匀,其中,
加入的Fe3O4@Ti4+材料浓度为1mg/mL-10mg/mL;Fe3O4@Ti4+磁性纳米材料进行样品富集的温度是25-37摄氏度,样品富集的时间是0.5-2小时,溶液为50%乙腈水溶液,其中含1-5%的三氟乙酸TFA;
(5)外加磁场,使磁性材料和溶液分离,收集下层固体相;
(6)用50μL-1mL 50%乙腈水溶液,其中含1-5%的三氟乙酸,清洗材料1-3次,清洗后外加磁场将材料和溶液分开,收集材料;
(7)加入氨水溶液,用5-10μL的5%NH3·H2O溶液混匀材料,将糖链从材料上解离;
(8)外加磁场再次将材料从溶液中分离后,取上清液与有机基质混合,进行基质辅助激光解吸离子化质谱分析。
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