CN105232477B - 一种注射用利巴韦林及其制备方法 - Google Patents
一种注射用利巴韦林及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105232477B CN105232477B CN201510528945.5A CN201510528945A CN105232477B CN 105232477 B CN105232477 B CN 105232477B CN 201510528945 A CN201510528945 A CN 201510528945A CN 105232477 B CN105232477 B CN 105232477B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- injection
- ribavirin
- liquid
- water
- filling
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Apparatus For Disinfection Or Sterilisation (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
本发明涉及一种注射用利巴韦林的制备方法,注射用利巴韦林的制备原料包括利巴韦林、甘露醇,注射用水和药用炭;步骤如下:1)预先向配液罐中加入注射用水,再加入利巴韦林、甘露醇,然后用注射用水进行溶解,搅拌使其充分混匀;2)搅拌20~40分钟后,开启循环泵经钛棒过滤器打循环4~6分钟;3)将药液经循环管道的钛棒过滤器滤至分液器后进行灌装,并半加塞;4)上述的药液从配制到灌装结束≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干,5)压塞:冻干结束,在真空状态下压塞,搁板复位后对前后箱进行放空。本发明的制备方法制得的利巴韦林注射液具有纯度高、产品稳定性好及药用效果好等优点。
Description
技术领域
本发明涉及医药领域,尤其涉及一种注射用利巴韦林及其制备方法。
背景技术
利巴韦林为合成的核苷类抗病毒药。体外细胞培养试验表明,利巴韦林对呼吸道合胞病毒(RSV)具有选择性抑制作用。利巴韦林是一种前体药物,当微生物遗传载体类似于嘌呤RNA的核苷酸时,它会干扰病毒复制所需的RNA的代谢。
【化学名】1-β-D-呋喃核糖基-1H-1,2,4,-三氮唑-3-羧酰胺
【标示】CAS编码:36791-04-5
利巴韦林化学结构式如下:
【分子式】C8H12N4O5
【分子量】244.21。
利巴韦林注射剂有多种规格,也是临床抗病毒治疗中最常选用的给药方法。临床认为,利巴韦林治疗病毒性疾患具有疗效高、使用安全、价廉等优点。但是由于在利巴韦林注射液生产工艺中,容易造成色素和杂质的沉淀,从而影响药品的稳定性,进而影响药用效果。
发明内容
为了解决上述的技术问题,本发明的目的是提供一种注射用利巴韦林的制备方法,该方法制备方法制得的利巴韦林注射液具有纯度高、产品稳定性好及药用效果好等优点。
为了实现上述的目的,本发明采用了以下的技术方案:
一种注射用利巴韦林的制备方法,每1000支注射用利巴韦林的制备原料包括利巴韦林100g、甘露醇25~35g,800~1200g注射用水和药用炭0.4~0.65g;该注射用利巴韦林制备方法包括以下的步骤:
1)预先向配液罐中加入注射用水,再加入利巴韦林、甘露醇,然后用注射用水进行溶解,搅拌使其充分混匀,并控制药液pH至4.0~4.5,加入剩余注射用水水量减去调药液pH所用NaOH溶液和HCl溶液的量以及药用炭;
2)搅拌20~40分钟后,开启循环泵经钛棒过滤器打循环4~6分钟,取药液测pH值;
3)将药液经循环管道的钛棒过滤器、0.45um、0.2um过滤器及终端0.2um过滤器滤至分液器后进行灌装,并半加塞;
4)上述的药液从配制到灌装结束≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干,冻干工艺如下:
①制冷阶段:将制品降至-40℃,并保温120min;
②升华、干燥阶段:150min升至-8℃;180min升至-4℃,保温120min;120min升至0℃,保温30min;60min升至2℃;90min升至15℃;120min升至37℃,并保温130min;
5)压塞:冻干结束,在真空状态下压塞,搁板复位后对前后箱进行放空。
作为优选,所述的调药液pH所用为1.0MNaOH和1.0MHCl。
作为优选,所述的药液从配制到灌装结束≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干。
一种注射用利巴韦林的制备方法,每1000支注射用利巴韦林的制备原料包括利巴韦林500g、甘露醇120~180g,2500~3000g注射用水和药用炭1.5~2.0g;该注射用利巴韦林制备方法包括以下的步骤:
1)预先向配液罐中加入注射用水,再加入利巴韦林、甘露醇,然后用注射用水进行溶解,搅拌使其充分混匀,并控制药液pH至4.0~4.5,加入剩余注射用水水量减去调药液pH所用NaOH溶液和HCl溶液的量以及药用炭;
2)搅拌20~40分钟后,开启循环泵经钛棒过滤器打循环4~6分钟,取药液测pH值;
3)将药液经循环管道的钛棒过滤器、0.45um、0.2um过滤器及终端0.2um过滤器滤至分液器后进行灌装,并半加塞;
4)冻干,冻干工艺如下:
①制冷阶段:将制品降至-40℃,并保温270min;
②升华、干燥阶段:270min升至-9℃,保温270min;90min升至-5℃,保温570min;150min升至0℃;90min升至5℃;80min升至15℃;130min升至40℃,保温360min;
5)压塞:冻干结束,在真空状态下压塞,搁板复位后对前后箱进行放空。
作为优选,所述的调药液pH所用为1.0MNaOH和1.0MHCl。
作为优选,所述的药液从配制到灌装结束≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干。
本发明还公开了采用上述的方法制备得到的一种注射用利巴韦林。
本发明的工艺筛选过程:从甘露醇、药用炭、注射用水的用量及冻干时间四个方面对工艺进行了筛选,列表如下:
表一、辅料用量的筛选
序号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
配制量 | 1000支 | 1000支 | 1000支 | 1000支 | 1000支 |
利巴韦林 | 100g | 100g | 100g | 100g | 100g |
甘露醇 | 10g | 20g | 25g | 35g | 45g |
晶形 | 萎缩 | 萎缩 | 完好 | 完好 | 完好 |
溶解速度 | 难溶 | 难溶 | 快 | 快 | 慢 |
综合晶形与溶解速度,辅料甘露醇用量在25-35g为最优。
表二、药用炭用量的筛选
综合滤后药液含量与浊度,药用炭用量在0.4-0.65g为最优。
表三、注射用水用量的筛选
配制量 | 1000支 | 1000支 | 1000支 | 1000支 | 1000支 |
利巴韦林 | 100g | 100g | 100g | 100g | 100g |
甘露醇 | 30g | 30g | 30g | 30g | 30g |
注射用水 | 600g | 800g | 1000g | 1200g | 1400g |
晶形 | 萎缩 | 完好 | 完好 | 完好 | 完好 |
冻干时间 | 10h | 15h | 18h | 23h | 30h |
综合晶形与冻干所需时间,注射用水用量在800-1000g为最优。
表四、冻干时间的筛选
序号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
配制量 | 1000支 | 1000支 | 1000支 | 1000支 | 1000支 |
甘露醇 | 30g | 30g | 30g | 30g | 30g |
注射用水 | 1000g | 1000g | 1000g | 1000g | 1000g |
冻干时间 | 12h | 15h | 19h | 23h | 25h |
晶形 | 萎缩 | 完好 | 完好 | 完好 | 完好 |
水分 | 3.40% | 1.60% | 1.40% | 1.30% | 1.30% |
综合冻干后的晶形与水分,冻干时间在15-23h为最优。
本发明由于采用了上述的技术方案,该方法制备方法制得的利巴韦林注射液具有纯度高、产品稳定性好及药用效果好等优点。
附图说明
图1为注射用利巴韦林0天HPLC图。
图2为注射用利巴韦林5天HPLC图。
图3为注射用利巳韦林光照10天HPLC图。
图4为注射用利巴,韦林60℃5天HPLC图。
图5为注射用利巴韦林60℃1O天HPLC图。
具体实施方式
实施例1
1.1处方
1.2投料量的计算
1.3批量:88000瓶。
1.4所用原辅料清单
2.1注射用水、纯化水、纯蒸汽制备
纯化水、注射用水应符合《中国药典2010版》二部要求。制备过程应按照《工艺用水管理规程》定时监测。纯化水贮罐及管道每月清洁、用巴氏消毒法消毒一次。注射用水贮罐、管道每月清洗、灭菌一次,用过热水灭菌。注射用水储存采用70℃以上保温循环。使用前应对纯蒸汽的电导率进行在线检测,每季度对纯蒸汽发生器上的纯蒸汽冷凝水出口进行全检。
2.2洗瓶岗位:使用经0.22μm滤芯过滤的注射用水,用500ml锥形瓶取300ml检查注射用水可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/300ml标准;取5只洗净后玻瓶做可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/瓶标准;取2只洗净后玻瓶,悬空倒置,3秒钟后残留水应小于1滴;灭菌温度≥315℃(不超过350℃),并保温5min以上,灭菌后瓶子在A级层流保护下存放时间≤4h。超过存放时间的已灭菌的瓶子作报废处理。
2.3胶塞清洗、灭菌、干燥岗位:用注射用水洗涤胶塞,并检查胶塞洗涤水可见异物,应符合无色点,毛、细点≤5个/300ml标准,取20ml胶塞最终洗涤水送中化测细菌内毒素,每ml洗涤水应小于0.125EU;灭菌温度为121℃并保温30min,胶塞灭菌后在密封条件下存放时间≤48h。当批剩余的已灭菌胶塞最多可重新清洗灭菌一次。
2.4器具洗涤灭菌岗位:洗净后的器具应在4小时内灭菌,湿热灭菌温度为121℃并保温30min;干热灭菌温度为250℃并保温45min;器具灭菌后存放时间≤48h。超过存放时间的器具应重新进行清洗灭菌后方可使用。
2.5配液岗位:原辅料严格按双人复核制度进行操作,复核所有原辅料的品名、批号、数量是否与生产指令要求一致;控制药液pH值为4.0-4.5;取100ml溶解完全后过滤前的药液检查微生物限度(每轮生产时的第一批取样送中化检测,不得过10CFU/100ml)。药液从配制到灌装结束≤10h。
2.6灌装岗位:对终端过滤器进行生产后的完整性检测,其起泡点≥0.3660MPa,如果完整性检测不合格,产品应作不合格品报废处理;检查5只灭菌管制瓶可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/瓶标准;用2支已灭菌的肉汤培养基试管,分别取2只灭菌西林瓶送中化培养检测无菌,应符合规定;取3支灭菌西林瓶盖塞后送中化检细菌内毒素,每ml洗涤水应小于0.125EU。检查50只灭菌后胶塞可见异物,应符合无色点,毛、细点≤10个/50只;用2支已灭菌的肉汤培养基试管,分别取3只灭菌后胶塞送中化培养检测无菌,应符合规定;检查精滤液可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/150ml标准,取20ml精滤液送中化测细菌内毒素,取30ml精滤液送中化测含量,并符合规定;检查灌装液可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/瓶标准;每30分钟抽查装量一次(装量范围:不得过±2%),如出现装量超出控制范围的制品,调整装量,同时追查至上一次抽查后灌装的制品为止,按不合格品处理规定处理,同时进行偏差处理;药液从配制到灌装结束≤10h,灌装结束后应在1小时内进行冻干,超过时限的药液应按报废处理。
2.7铝盖消毒岗位:消毒温度≥120℃保温1h,不得过130℃,铝盖消毒后存放时间≤48h。超过存放时间的铝盖最多可重新消毒一次。
2.8冻干岗位:按0.1g利巴韦林的冻干曲线进行冻干,冻干时间约21小时。
2.9出箱岗位:按《制品转移出箱标准操作规程》进行操作。
2.10轧盖岗位:随时抽查并用三指法转动检查其严密度。
2.11灯检岗位:无破瓶、冷爆、畸形瓶、无轧破、不平整等不合格制品。
2.12贴签岗位:随时查看批号、有效期至打印,应打印在规定位置且字迹清晰。
2.13包装岗位:检查说明书、中盒、大箱、合格证符合质量标准。仔细检查中盒、大箱打印(有效期至、生产日期、批号)内容是否正确,并按规定装盒、装箱;正确使用监管码,确保监管码的有效唯一性。包装规格:10瓶/中盒×50中盒/箱。
3操作过程的环境控制
3.1生产环境按照《工艺卫生管理规程》进行控制。
3.2生产环境监控实施按照《工艺卫生监控管理规程》《洁净区尘埃粒子监测标准操作规程》、《洁净区表面微生物监测标准操作规程》、《洁净区沉降菌监测标准操作规程》、《洁净区浮游菌监测标准操作规程》进行监控。对关键区域灌装区B级背景下的A级区域进行在线动态监控。
附件一:尘埃粒子数、表面微生物、沉降菌、浮游菌各项指标监测标准及监测周期
3.3在洁净区内出现在线监测系统报警、故障处理、设备维修或突然停电时,应马上停止生产,对在线的产品经质量风险全面评估后按有关规定处理。如洁净度或无菌状态遭到破坏,应当对该区域进行必要的清洁,消毒或灭菌,待监测合格后方可重新开始生产操作。
3.4生产步骤及工艺参数说明
3.4.1领料:根据领料单从仓库中领出合格的物料,核对品名、批号、数量、规格与报告单是否相符。通过气锁间进入D、C级,分别按照《物品、物料进入D级洁净区标准操作规程》、《物品、物料进入C级洁净区标准操作规程》进行脱外包、75%乙醇溶液或0.2%新洁尔灭溶液消毒容器表面、贴上标签后物料传入D、C级洁净区,及时记录台账。
3.4.2生产前各岗位检查设备、工作场所没有上批遗留产品和文件或与本批生产无关的物料;操作间有“清场合格”状态标识牌,设备有“己清洁”状态标识牌并在有效期内。
3.4.3理瓶
3.4.3.1理瓶:操作人员按生产指令量领用的管制瓶,用平板车运至暂存间拆外包,通过传送带送入洗瓶间。
3.4.3.2清场:按《洗瓶、洗塞工序清场标准操作规程》进行清场,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.4洗瓶
3.4.4.1操作人员开空车检查压缩空气、注射用水压力是否正常,注射用水压力≥0.2MPa,压缩空气压力≥0.3MPa,循环水压力≥0.15MPa,降级水压力≥0.15MPa;检查注射用水的可见异物;瓶子经KQCL20/5超声波洗瓶机清洗,检查可见异物后进入隧道烘箱灭菌,灭菌段温度≥315℃且不得超过350℃,时间≥5min,冷却段温度≤40℃,隧道烘箱走带变频20Hz,灭菌后瓶在A级层流保护下存放有效时间≤4小时。
3.4.4.2清场:按《洗瓶、洗塞工序清场标准操作规程》进行清场、按《KQCL20/5超声波洗瓶机的清洁标准操作规程》对KQCL20/5超声波洗瓶机进行清洁、按《KSZ920/100A-L隧道烘箱的清洁标准操作规程》对KSZ920/100A-L隧道烘箱进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.5胶塞清洗、灭菌、干燥
3.4.5.1操作人员按生产指令量领用的胶塞,用平板车经气锁间传入洗塞间;用真空吸料斗将胶塞桶中的胶塞吸入KJQS-12ES胶塞清洗灭菌机,启动程序进行清洗灭菌;喷淋冲洗、粗洗时间各为3min,精洗6min,随时检查压缩空气压力≥0.4MPa,纯蒸汽压力≥0.2MPa,从进样口取水样,检查洗涤水可见异物;合格后按胶塞灭菌程序进行灭菌干燥,121℃灭菌30min;胶塞灭菌后在密封情况下存放时间≤48h。
3.4.5.2清场:按《洗瓶、洗塞工序清场标准操作规程》进行清场、按《KJQS-12ES胶塞清洗灭菌机清洁标准操作规程》对KJQS-12ES胶塞清洗灭菌机进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.6器具洗涤灭菌
3.4.6.1操作人员将B级区使用的已清洗好的器具放入相应的灭菌柜中,XG1.DTE-0.6脉动真空灭菌器,灭菌温度为121℃并保温30min;DMH1器具干热灭菌柜,灭菌温度在250℃保温45min;器具灭菌后存放时间≤48h。
3.4.6.2清场:按《器具洗涤灭菌工序清场标准操作规程》对器具洗涤灭菌工序进行清场、按《DMH1器具干热灭菌柜清洁标准操作规程》对DMH1器具干热灭菌柜进行清洁、按《XG1.DTE-0.6脉动真空灭菌柜清洁标准操作规程》对XG1.DTE-0.6脉动真空灭菌柜进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.7配液
3.4.7.1操作人员使用前检查配液系统是否处于“已灭菌”状态,并确保配液系统在有效期内;按《200L、500L罐标准操作规程》对配液罐称重模块进行自校,并检查配制罐底阀处于关闭状态。
3.4.7.2检查衡器在校验有效期内,按《天平台秤自校标准操作规程》对电子台秤进行自校。
3.4.7.3严格按双人复核制度进行操作,复核所有原辅料的品名、批号、数量是否与生产指令单要求一致;检查各原辅料是否有检验合格报告单,投料时有不同批号原料需同时投料的,需在记录上注明。
3.4.7.4原辅料0.1g注射用利巴韦林:每1000支利巴韦林按100g(折纯折干)投料;赋形剂为甘露醇,每1000支按30g(折纯折干)投料,每1000支加1056g注射用水定容,每1000支加药用炭0.575g。
3.4.7.5双人复核无误后,预先向配液罐中加入约46464g的注射用水,再加入利巴韦林折纯折干的投料量约8800g,甘露醇约2640g,然后用注射用水定容至约103368g进行溶解,搅拌使其充分混匀,用25ml烧杯取15ml药液测pH值,控制药液pH至4.0—4.5,加入剩余注射用水水量1kg减去调药液pH所用1.0M NaOH和1.0M HCl的量及已称量好的药用炭50.6g,并锁紧投料口。
3.4.7.6搅拌30分钟后,开启循环泵经钛棒过滤器打循环5分钟,取药液测pH值。
3.4.7.7将药液经循环管道的钛棒过滤器、0.45um、0.2um过滤器及终端0.2um过滤器滤至分液器后进行灌装。
3.4.7.8清场:按《配液工序清场标准操作规程》对配液工序进行清场、按《配液系统的清洁灭菌标准操作规程》对配液系统进行清洁、灭菌,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.8灌装
3.4.8.1灌装前用喷雾型乙醇对灌装机、进出料平台及输送带进行消毒。
3.4.8.2胶塞无菌转运:在胶塞无菌转运系统隔离箱内,胶塞机下料后,将热封机前移点触开关释放内袋,操作人员进行一折二扎法扎袋;再次踏动左脚踏开关,气动夹自动打开,机构自动将外带拉平并热封;将合格的胶塞转移到胶塞自净区,自净5分钟后,去掉第一层无菌袋,再自净3分钟,打开第二层无菌袋,取50只胶塞并加入注射用水,检查可见异物,合格后把胶塞放入灌装机理塞槽内。
3.4.8.3瓶子经过隧道烘箱有序的进入转盘,开启转盘,并调节速度,使瓶子紧靠绞龙。
3.4.8.4在A级层流保护下,按灌针-硅胶管-陶瓷泵顺序连接固定在灌装机上。
3.4.8.5微开药液循环管上的放液阀门进行精滤液取样,用灭菌过的250ml锥形瓶接150ml精滤液做可见异物,合格后取20ml精滤液送中化测细菌内毒素,取30ml精滤液送中化测含量。
3.4.8.6开动灌装机,调节好装量,把药液装入管制瓶中,并半加塞。液位自动监控系统控制分液器内的药液量,确保灌装平稳。
3.4.8.7药液从配制到灌装结束≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干。
3.4.8.8自动进出料系统将灌装后的制品按从上至下,依次转入冻干箱,密闭冻干箱。
3.4.8.9清场:按《无菌灌装工序清场标准操作规程》对无菌灌装工序进行清场、按《KGS12-X6型抗生素瓶灌装加塞机清洁标准操作规程》对KGS12-X6型抗生素瓶灌装加塞机进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.9冻干
3.4.9.1冻干操作前检查水压及电源电压是否正常,制冷压缩机润滑油油位、真空泵油位油质、硅油液位是否正常;并开启冷却水。
3.4.9.2打开0.1g注射用利巴韦林冻干工艺处方,确认冻干工艺如下:制冷阶段:将制品降至-40℃,并保温120min。升华、干燥阶段:150min升至-8℃;180min升至-4℃,保温120min;120min升至0℃,保温30min;60min升至2℃;90min升至15℃;120min升至37℃,并保温130min。确认无误后启动冻干自动程序。
3.4.9.3压塞:冻干结束,在真空状态下压塞,搁板复位后对前后箱进行放空。
3.4.9.4做好冻干记录,打印清洗灭菌及冻干曲线。
3.4.10出箱
3.4.10.1打开冻干箱门出箱。
3.4.10.2通过自动进出料系统将冻干好的制品按从下至上,由输送带送入轧盖间。3.4.10.3清场:按《制品转移出箱工序清场标准操作规程》对制品转移出箱工序进行清场,按《Lyo-30(CIP、SIP)药用真空干燥机清洁标准操作规程》对Lyo-30(CIP、SIP)药用真空干燥机进行清洁、并填写清场记录、批生产记录;清场合格后方可进行下一批次的生产。
3.4.11铝盖消毒
3.4.11.1操作人员按生产指令量领用铝盖,转入铝盖处理间,把铝盖放入已清洁的DMH0.84烘箱内消毒,烘箱温度≥120℃保温1h,消毒温度不得过130℃,铝盖消毒后存放时间≤48h。
3.4.11.2清场:按《轧盖工序清场标准操作规程》对铝盖处理工序进行清场,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.12轧盖
3.4.12.1轧盖前,用75%乙醇溶液消毒机器工具、器具及台面等。
3.4.12.2将烘好的铝盖取出,放入ZG400D(A)抗生素瓶轧盖机振荡器内,进行轧盖。
3.4.12.3每班随时检查制品外观、严密度(三指法,不得转动),将轧盖不合格的作不合格品处理。
3.4.12.4清场:按《轧盖工序清场标准操作规程》对轧盖工序进行清场、按《ZG400D(A)抗生素瓶轧盖机清洁标准操作规程》对ZG400D(A)抗生素瓶轧盖机进行清洁、按《DMH0.84铝盖烘箱清洁标准操作规程》对DMH0.84铝盖烘箱进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.13灯检、贴签
3.4.13.1根据内包装指令单,车间统计员开据包装材料领料单,由专人从仓库领取规定数量的0.1g注射用利巴韦林标签,经双人复核,并按标签类材料管理,存放于标签室。
3.4.13.2操作工根据内包装指令单组装生产日期、产品批号、有效期至字模并检查内容及打印清晰度,经另一人复核无误后方可开始打印标签。
3.4.13.3灯检人员挑出破瓶、冷爆、畸形瓶、轧破及不平整等不合格品放于指定盘,并记录数量。
3.4.13.4贴标机温度设定:180℃;气压调整至0.35MPa-0.4MPa。
3.4.13.5将灯检合格的制品输至贴标机进行贴标,操作过程中,操作人员随时检查打印内容、清晰度、贴签端正、适中、牢固。
3.4.13.4将贴签好的制品用塑料筐装,暂存在规定位置,并建立相应的货位卡。
3.4.13.7清场:按《贴标工序清场标准操作规程》对灯检工序进行清场、按《DNDJ-500灯检机清洁标准操作规程》对灯检机进行清洁、按《贴标工序清场标准操作规程》对贴标工序进行清场、按《SHL-2570贴标机的清洁标准操作规程》对贴标机进行清洁、并填写清场记录、批生产记录。
试验例1
本试验重点考察了性状、pH值、澄清度、澄明度、有关物质、利巴韦林的含量。有关物质和利巴韦林含量测定采用高效液相色谱法。
一、仪器和测定条件
日本ShimadzuLC-10A高效液相色谱仪,配有SPD-10A紫外检测器和Attech工作站,VPODS色谱柱150mm*4.6mm、粒度为O.5μm。
色谱条件用十八炕基硅炕键合硅胶为填充剂,以水为流动相:检测波长207nm。理论板数按利巴韦林峰计算应不低于3000。
其它项目按《中国药典))2000版和质量标准(草案)中规定的方法进行测定。
二、试验及结果
(一)加速试验
仪器:WS/08-01型调温调湿箱
条件:温度40℃±2℃,相对湿度75%±5%
实施例1制备的注射用利巴韦林,批号:000414、000416、000418
取本品,按市售包装,置调温调湿箱中,定期取样测定各项指标,结果见表1。
表l注射用利巴韦林加速试验结果
(二)长期试验考察
条件:温度25℃±2℃,相对湿度60%±10%
批号:000414000416000418
包装:市售包装
本品以市售包装,在第0、3、6、9、12个月,按稳定性重点考察项目性状、pH值、澄清度、澄明度、有关物质、含量等进行检测,结果见表2。
表2注射用利巴韦林长期试验结果
(三)影响因素试验
取本品(批号000414),除去外包装,分别进行了强光照射试验和高温试验,对样品外观色泽、酸度、澄清度、澄明度、有关物质和利巴韦林含量进行了考察。
1.强光照射试验
仪器:光橱、照度计
取本品,除去外包装,置可调高度的光橱(安装日光灯两支),调节高度至照度为4500Lx条件下放置10天,于第5天和第10天取样,检测以上主要指标,结果见下表及图1、图2、图3。
2.高温试验
仪器:AXGZ-10型医用干燥箱
耳又本品,除去外包装,60℃条件下放置10天,于第5天和第10天取样,检测主要指标。结果见下表及图1、图4、图5。
注射用利巴韦林影响因素考察结果
3.引湿性试验
取本品内容物约19,精密称定,置于恒重的扁形称量瓶中,开盖于25℃,相对湿度为92.5%的密闭容器中,于3、6、12、24小时取样称重,计算吸水率,结果见下表。
注射用利巴韦林引湿性试验结果
湿度 | 放置时间 | 3小时 | 6小时 | 12小时 | 24小时 |
92.5% | 吸水率 | 5.80% | 6.22% | 6.34% | 6.41% |
以上结果表明:本品原料及辅料虽不具有引湿性,但经冷冻干燥工艺制成的本品,具有一定的引湿性。本品在强光照射及高温条件下较为稳定,采用抗生素玻璃瓶、丁基橡胶抗生素瓶盖和抗生素玻璃瓶盖作内包装材料,可以保证本品主要质量监测指标如性状、pH、澄清度、澄明度、有关物质92.5%及主成分含量等保持稳定,从而保证产品质量。
实施例2
1.1处方
1.2投料量的计算
1.3批量:61000瓶。
1.4所用原辅料清单
2.1注射用水、纯化水、纯蒸汽制备
纯化水、注射用水应符合《中国药典2010版》二部要求。制备过程应按照《工艺用水管理规程》定时监测。纯化水贮罐及管道每月清洁、用巴氏消毒法消毒一次。注射用水贮罐、管道每月清洗、灭菌一次,用过热水灭菌。注射用水储存采用70℃以上保温循环。使用前应对纯蒸汽的电导率进行在线检测,每季度对纯蒸汽发生器上的纯蒸汽冷凝水出口进行全检。
2.2洗瓶岗位:使用经0.22μm滤芯过滤的注射用水,用500ml锥形瓶取300ml检查注射用水可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/300ml标准;取5只洗净后玻瓶做可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/瓶标准;取2只洗净后玻瓶,悬空倒置,3秒钟后残留水应小于1滴;灭菌温度≥315℃(不超过350℃),并保温5min以上,灭菌后瓶子在A级层流保护下存放时间≤4h。超过存放时间的已灭菌的瓶子作报废处理。
2.3胶塞清洗、灭菌、干燥岗位:用注射用水洗涤胶塞,并检查胶塞洗涤水可见异物,应符合无色点,毛、细点≤5个/300ml标准,取20ml胶塞最终洗涤水送中化测细菌内毒素,每ml洗涤水应小于0.125EU;灭菌温度为121℃并保温30min,胶塞灭菌后在密封条件下存放时间≤48h。当批剩余的已灭菌胶塞最多可重新清洗灭菌一次。
2.4器具洗涤灭菌岗位:洗净后的器具应在4小时内灭菌,湿热灭菌温度为121℃并保温30min;干热灭菌温度在250℃并保温45min;器具灭菌后存放时间≤48h。超过存放时间的器具应重新进行清洗灭菌后方可使用。
2.5配液岗位:原辅料严格按双人复核制度进行操作,复核所有原辅料的品名、批号、数量是否与生产指令要求一致;控制药液pH值为4.0-4.5。检查药液溶解完全后过滤前的微生物限度(每轮生产时的第一批取样送中化检测,不得过10CFU/100ml)。应符合规定。药液从溶解到灌装结束间隔≤10h。
2.6灌装岗位:对终端过滤器进行生产后的完整性检查,其气泡点≥0.3660MPa;如果完整性检测不合格,产品应作不合格报废处理;检查5只灭菌管制瓶可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/瓶标准,用2支已灭菌的肉汤培养基试管,分别取2只灭菌西林瓶送中化培养检测无菌,应符合规定;取3支灭菌西林瓶盖塞后送中化检细菌内毒素,每ml洗涤水应小于0.125EU。检查50只灭菌后胶塞可见异物,应符合无色点,毛、细点≤10个/50只;用2支已灭菌的肉汤培养基试管,分别取3只灭菌后胶塞送中化培养检测无菌,应符合规定;检查精滤液可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/150ml标准,取20ml精滤液送中化测细菌内毒素,取30ml精滤液送中化测含量,并符合规定;检查灌装液可见异物,应符合无色点,毛、细点≤3个/瓶标准;每30分钟抽查装量一次(装量范围:不得过±2%),如出现装量超出控制范围的制品,调整装量,同时追查至上一次抽查后灌装的制品为止,按不合格品处理规定处理,同时进行偏差处理;药液从溶解到灌装结束间隔≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干,超过时限的药液应按报废处理。
2.7铝盖消毒岗位:消毒温度≥120℃保温1h,不得过130℃,铝盖消毒后存放时间≤48h。超过存放时间的铝盖最多可重新消毒一次。
2.8冻干岗位:按0.5g利巴韦林的冻干曲线进行冻干,冻干时间约41小时。
2.9出箱岗位:按《制品转移出箱标准操作规程》进行操作。
2.10轧盖岗位:随时抽查并用三指法转动检查其严密度。
2.11灯检岗位:无破瓶、冷爆、畸形瓶、无轧破、不平整等不合格制品。
2.12贴签岗位:随时查看批号、有效期至打印,应打印在规定位置且字迹清晰。
2.13包装岗位:检查说明书、中盒、大箱、合格证符合质量标准。仔细检查中盒、大箱打印(有效期至、生产日期、批号)内容是否正确,并按规定装盒、装箱;正确使用监管码,确保监管码的有效唯一性。包装规格:10瓶/中盒×50中盒/箱。
3.5.3操作过程的环境控制
3.1生产环境按照《工艺卫生管理规程》进行控制。
3.2生产环境监控实施按照《工艺卫生监控管理规程》、《洁净区尘埃粒子监测标准操作规程》、《洁净区表面微生物监测标准操作规程》、《洁净区沉降菌监测标准操作规程》、《洁净区浮游菌监测标准操作规程》进行监控。对关键区域灌装区B级背景下的A级区域进行在线动态监控。
附件一:尘埃粒子数、表面微生物、沉降菌、浮游菌各项指标监测标准及监测周期
注:冻干线环境监测点见附录5。
3.3在洁净区内出现在线监测系统报警、故障处理、设备维修或突然停电时,应马上停止生产,对在线的产品经质量风险全面评估后按有关规定处理。如洁净度或无菌状态遭到破坏,应当对该区域进行必要的清洁,消毒或灭菌,待监测合格后方可重新开始生产操作。
3.4生产步骤及工艺参数说明
3.4.1领料:根据领料单从仓库中领出合格的物料,核对品名、批号、数量、规格与报告单是否相符。通过气锁间进入D、C级,分别按照《物品、物料进入D级洁净区标准操作规程》、《物品、物料进入C级洁净区标准操作规程》进行脱外包,用75%乙醇溶液或0.2%新洁尔灭溶液消毒容器表面;贴上物料标签后物料传入D、C级洁净区,及时记录台账。
3.4.2生产前各岗位检查设备、工作场所没有上批遗留产品和文件或与本批生产无关的物料;操作间有“清场合格”状态标识牌,设备有“己清洁”状态标识牌并在有效期内。
3.4.3理瓶
3.4.3.1理瓶:操作人员按生产指令量领用的管制瓶,用平板车运至暂存间拆外包,通过传送带送入洗瓶间。
3.4.3.2清场:按《洗瓶、洗塞工序清场标准操作规程》进行清场,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.4洗瓶
3.4.4.1操作人员开空车检查压缩空气、注射用水压力是否正常,注射用水压力≥0.2MPa,压缩空气压力≥0.3MPa,循环水压力≥0.15MPa,降级水压力≥0.15MPa;检查注射用水的可见异物;瓶子经KQCL20/5超声波洗瓶机清洗,检查可见异物后进入隧道烘箱灭菌,灭菌段温度≥315℃且不得超过350℃,时间≥5min,冷却段温度≤40℃,隧道烘箱走带变频20Hz,灭菌后瓶在A级层流保护下存放有效时间≤4小时。
3.4.4.2清场:按《洗瓶、洗塞工序清场标准操作规程》进行清场;按《KQCL20/5超声波洗瓶机的清洁标准操作规程》对KQCL20/5超声波洗瓶机进行清洁、按《KSZ920/100A-L隧道烘箱的清洁标准操作规程》对KSZ920/100A-L隧道烘箱进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.5胶塞清洗、灭菌、干燥
3.4.5.1操作人员按生产指令量领用的胶塞,用平板车经气锁间传入洗塞间;用真空吸料斗将胶塞桶中的胶塞吸入KJQS-12ES胶塞清洗灭菌机,启动程序进行清洗灭菌;喷淋冲洗、粗洗时间各为3min,精洗6min,随时检查压缩空气压力≥0.4MPa,纯蒸汽压力≥0.2MPa,从进样口取水样,检查洗涤水可见异物;合格后按胶塞灭菌程序进行灭菌干燥,121℃灭菌30min;胶塞灭菌后在密封情况下存放时间≤48h。
3.4.5.2清场:按《洗瓶、洗塞工序清场标准操作规程》进行清场、按《KJQS-12ES胶塞清洗灭菌机清洁标准操作规程》对KJQS-12ES胶塞清洗灭菌机进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.6器具洗涤灭菌
3.4.6.1操作人员将B级区使用的已清洗好的器具放入相应的灭菌柜中,XG1.DTE-0.6脉动真空灭菌器,灭菌温度为121℃并保温30min;DMH1器具干热灭菌柜,灭菌温度在250℃保温45min;器具灭菌后存放时间≤48h。
3.4.6.2清场:按《器具洗涤灭菌工序清场标准操作规程》对器具洗涤灭菌工序进行清场、按《DMH1器具干热灭菌柜清洁标准操作规程》对DMH1器具干热灭菌柜进行清洁、按《XG1.DTE-0.6脉动真空灭菌柜清洁标准操作规程》对XG1.DTE-0.6脉动真空灭菌柜进行清洁,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.7配液
3.4.7.1操作人员使用前检查配液系统是否处于“已灭菌”状态,并确保配液系统在有效期内;按《200L、500L罐标准操作规程》对配液罐称重模块进行自校,并检查配制罐底阀处于关闭状态。
3.4.7.2检查衡器在校验有效期内,按《天平台秤自校标准操作规程》对电子台秤进行自校。3.4.7.3原辅料0.5g注射用利巴韦林:每1000支按500g(折纯折干)投料;赋形剂为甘露醇,每1000支按150g(折纯折干)投料,每1000支加2795g注射用水定容。每1000支加药用炭1.63g。3.4.7.4严格按双人复核制度进行操作,复核所有原辅料的品名、批号、数量是否与生产指令单要求一致;检查各原辅料是否有检验合格报告单,投料时有不同批号原料需同时投料的,需在记录上注明。
3.4.7.5双人复核无误后,预先向配液罐中加入约85247g的注射用水,再加入原料30500g,甘露醇9150g,然后用注射用水定容至209145g进行溶解,搅拌使其充分混匀,用25ml烧杯取15ml药液测pH值,控制药液pH值为4.0-4.5,加入剩余注射用水水量1kg减去调药液pH所用1.0M NaOH和1.0M HCl的量及已称量好的药用炭99.4g,并锁紧投料口。
3.4.7.6搅拌30分钟后,开启循环泵经钛棒过滤器打循环5分钟,取药液测pH值。
3.4.7.7将药液经循环管道的钛棒过滤器、0.45um、0.2um过滤器及终端0.2um过滤器滤至分液器后进行灌装。
3.4.7.8清场:按《配液工序清场标准操作规程》对配液工序进行清场、按《配液系统的清洁灭菌标准操作规程》对配液系统进行清洁、并填写清场记录、批生产记录。
3.4.8灌装
3.4.8.1灌装前用喷雾型乙醇对灌装机、进出料平台及输送带进行消毒。
3.4.8.2胶塞无菌转运:在胶塞无菌转运系统隔离箱内,胶塞机下料后,将热封机前移点触开关释放内袋,操作人员进行一折二扎法扎袋;再次踏动左脚踏开关,气动夹自动打开,机构自动将外带拉平并热封;将合格的胶塞转移到胶塞自净区,自净5分钟后,去掉第一层无菌袋,再自净3分钟,打开第二层无菌袋,取50只胶塞并加入注射用水,检查可见异物,合格后把胶塞放入灌装机理塞槽内。
3.4.8.3瓶子经过隧道烘箱有序的进入转盘,开启转盘,并调节速度,使瓶子紧靠绞龙。检查5只灭菌管制瓶可见异物合格,取3只灭菌管制瓶送中化测细菌内毒素。
3.4.8.4在A级层流保护下,按灌针-硅胶管-陶瓷泵顺序连接固定在灌装机上。
3.4.8.5微开药液循环管上的放液阀门进行精滤液取样,用灭菌过的250ml锥形瓶接150ml精滤液做可见异物,合格后取20ml精滤液送中化测细菌内毒素,取30ml精滤液送中化测含量。
3.4.8.6开动灌装机,调节好装量,把药液装入管制瓶中,并半加塞。液位自动监控系统控制分液器内的药液量,确保灌装平稳。
3.4.8.7药液从溶解到灌装结束间隔≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干。
3.4.8.8自动进出料系统将灌装后的制品按从上至下,依次转入冻干箱,密闭冻干箱门。
3.4.8.9清场:按《无菌灌装工序清场标准操作规程》对无菌灌装工序进行清场、按《KGS12-X6抗生素瓶灌装加塞机清洁标准操作规程》对KGS12-X6抗生素瓶灌装加塞机进行清洁、并填写清场记录、批生产记录。
3.4.9冻干
3.4.9.1冻干操作前检查水压及电源电压是否正常,制冷压缩机润滑油油位、真空泵油位油质、硅油液位是否正常;并开启冷却水。
3.4.9.2打开0.5g注射用利巴韦林冻干工艺处方,确认冻干工艺如下:制冷阶段:将制品降至-40℃,并保温270min。升华、干燥阶段:270min升至-9℃,保温270min;90min升至-5℃,保温570min;150min升至0℃;90min升至5℃;80min升至15℃;130min升至40℃,保温360min。确认无误后启动冻干自动程序。
3.4.9.3压塞:冻干结束,在真空状态下压塞,搁板复位后对前后箱进行放空。
3.4.9.4做好冻干记录,打印清洗灭菌及冻干曲线。
3.4.10出箱
3.4.10.1打开冻干箱门出箱。
3.4.10.2通过自动进出料系统将冻干好的制品按从下至上,由输送带送入轧盖间。3.4.10.3清场:按《制品转移出箱工序清场标准操作规程》对制品转移出箱工序进行清场、按《Lyo-30(CIP、SIP)药用真空干燥机清洁标准操作规程》对Lyo-30(CIP、SIP)药用真空干燥机进行清洁、并填写清场记录、批生产记录。
3.4.11铝盖消毒
3.4.11.1操作人员按生产指令量领用铝盖,转入铝盖处理间;把铝盖放入已清洁的DMH0.84烘箱内消毒。
3.4.11.2烘铝盖温度≥120℃保温1h,消毒温度不得过130℃,铝盖消毒后存放时间≤48h。
3.4.11.3清场:按《轧盖工序清场标准操作规程》对铝盖处理工序进行清场,并填写清场记录、批生产记录。
3.4.12轧盖
3.4.12.1轧盖前,用75%乙醇溶液消毒机器工具、器具及台面等。
3.4.12.2将烘好的铝盖取出,放入ZG400D(A)抗生素瓶轧盖机振荡器内,进行轧盖。
3.4.12.3每班随时检查制品外观、严密度(三指法,不得转动),将轧盖不合格的作不合格品处理。
3.4.12.4清场:按《轧盖工序清场标准操作规程》对轧盖工序进行清场、按《ZG400D(A)抗生素瓶轧盖机清洁标准操作规程》对ZG400D(A)抗生素瓶轧盖机进行清洁、按《DMH0.84铝盖烘箱清洁标准操作规程》对DMH0.84铝盖烘箱进行清洁、并填写清场记录、批生产记录。
3.4.13灯检、贴签
3.4.13.1根据内包装指令单,车间统计员开据包装材料领料单,由专人从仓库领取规定数量的0.5g注射用利巴韦林标签,经双人复核,并按标签类材料管理,存放于标签室。
3.4.13.2操作工根据内包装指令单组装生产日期、产品批号、有效期至字模并检查内容及打印清晰度,经另一人复核无误后方可开始打印标签。
3.4.13.3灯检人员挑出破瓶、冷爆、畸形瓶、轧破及不平整等不合格品放于指定盘,并记录数量。
3.4.13.4贴标机温度设定:180℃;气压调整至0.35MPa-0.4MPa。
3.4.13.5将灯检合格的制品输至贴标机进行贴签,操作过程中,操作人员随时检查打印内容、清晰度、贴签端正、适中、牢固。
3.4.13.4将贴签好的制品用塑料筐装,暂存在规定位置,并建立相应的货位卡。
3.4.13.7清场:按《贴标工序清场标准操作规程》对灯检工序进行清场、按《DNDJ-500灯检机清洁标准操作规程》对灯检机进行清洁、按《贴标工序清场标准操作规程》对贴标工序进行清场、按《SHL-2570贴标机的清洁标准操作规程》对贴标机进行清洁、并填写清场记录、批生产记录。
试验例2
本品稳定性试验依据《新药稳定性考察项目要求》,《新药审批学习班资料药物的稳定性研究》和《新药申报资料形式审查要点》进行。
1.样品来源
注射用利巴韦林由实施例2的方法制得,共3批(011101、011102和011103),作为稳定性试验用。
2.考察项目
本品稳定性重点考察:性状、PH值、澄清度、有关物质、含量和不溶性微粒等项目,各项目的检查,参照注射用利巴韦林(O.1g)试行标准CWS-221CX-188)-2002)进行。
3.有关物质及含量测定的方法
3.1有关物质照高效液相色谱法(中国药典2000年版二部附录VD)测定。
色谱条件与系统适应性试验均照含量测定项下的方法操作。
测定法取本品,加水制成每1ml中含利巴韦林O.4mg的溶液作为供试品溶液:精密量取适量,加水稀释成每1ml中含4μg的溶液作为对照溶液。照含量测定项下的色谱条件进行试验,取对照溶液10μl注入液相色谱仪,调节检测灵敏度,使主成分色谱峰的峰高为满量程的20~25%;再精密量取上述两种溶液各10μl,分别注入液相色谱仪,记录色谱图至主成分峰保留时间的2倍,供试品溶液的色谱图中如显杂峰,量取各杂质峰峰面积的和,不得大于对照溶液主成分峰的峰面积(1.0%)。
3.2含量测定照高效液相色谱法(中国药典2000版二部附录VD)测定。
色谱条件与系统适用性试验用十八烧基硅皖键合硅胶为填充剂:以水为流动相;检测波长为207nm。理论板数按利巴韦林峰计算,应不低于3000。
测定法取装量差异项下的内容物,混合均匀,精密称取适量,加水溶解并稀释制成每1ml中约含利巴韦林50μg的溶液,精密量取10μ1,注入液相色谱仪,记录色谱图。
另取利巴韦林对照品适量,同法测定。按外标法以峰面积计算,即得。
5.加速试验(温度+湿度)
依据新药研究规定,取注射用利巴韦林(O.5g)(011101、011102和011103)3批供加速试验用。
试验方法:取本品实施例2药品包装,置40℃±2℃、RH75%±5%的条件下,放置6个月,按0、1、2、3和6个月取样,测定各项指标与0月时样品进行比较,结果见表3。
表3注射用利巴韦林(O.5g)加速试验考察结果
试验结果表明,本品在上市药品包装条件下,于40℃±2℃相对湿度阳75%±5%的条件下,放置6个月,外观色泽等没有明显变化,液相色谱检查,杂质峰<1.0%,其他各项指标与0月时进行比较,没有明显变化。
6.室温留样考察
取实施例2药品包装(铝塑)(011101、011102和011103批),在室温自然条件下放置,定期于0、3、6、9,12、18个月取样,测定各项指标与0月时样品进行比较,结果见表4。
表4注射用利巴韦林(O.5g)室温留样考察结果
Claims (3)
1.一种注射用利巴韦林的制备方法,其特征在于:每1000支注射用利巴韦林的制备原料包括利巴韦林100g、甘露醇25~35g,800~1200g注射用水和药用炭0.4~0.65g;该注射用利巴韦林制备方法包括以下的步骤:
1)预先向配液罐中加入注射用水,再加入利巴韦林、甘露醇,然后用注射用水进行溶解,搅拌使其充分混匀,并控制药液pH至4.0~4.5,加入剩余注射用水水量减去调药液pH所用NaOH溶液和HCl溶液的量以及药用炭;
2)搅拌20~40分钟后,开启循环泵经钛棒过滤器打循环4~6分钟,取药液测pH值;
3)将药液经循环管道的钛棒过滤器、0.45μm、0.2μm 过滤器及终端0.2μm过滤器滤至分液器后进行灌装,并半加塞;
4)冻干,冻干工艺如下:
①制冷阶段:将制品降至-40℃,并保温120min;
②升华、干燥阶段:150min升至-8℃;180min升至-4℃,保温120min;120min升至0℃,保温30min;60min升至2℃;90min升至15℃;120min升至37℃,并保温130min;
5)压塞:冻干结束,在真空状态下压塞,搁板复位后对前后箱进行放空。
2.根据权利要求1所述的一种注射用利巴韦林的制备方法,其特征在于:调药液pH所用为1.0M NaOH和1.0M HCl。
3.根据权利要求1所述的一种注射用利巴韦林的制备方法,其特征在于:药液从配制到灌装结束≤10h,灌装后的中间产品应在1小时内进行冻干。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510528945.5A CN105232477B (zh) | 2015-08-25 | 2015-08-25 | 一种注射用利巴韦林及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510528945.5A CN105232477B (zh) | 2015-08-25 | 2015-08-25 | 一种注射用利巴韦林及其制备方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105232477A CN105232477A (zh) | 2016-01-13 |
CN105232477B true CN105232477B (zh) | 2018-08-17 |
Family
ID=55030482
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201510528945.5A Active CN105232477B (zh) | 2015-08-25 | 2015-08-25 | 一种注射用利巴韦林及其制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN105232477B (zh) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108434095A (zh) * | 2018-06-19 | 2018-08-24 | 吉林百年汉克制药有限公司 | 一种利巴韦林注射液药物组合物及其制备方法和应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104000778A (zh) * | 2014-06-18 | 2014-08-27 | 海南通用康力制药有限公司 | 利巴韦林注射液及其制备方法 |
-
2015
- 2015-08-25 CN CN201510528945.5A patent/CN105232477B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104000778A (zh) * | 2014-06-18 | 2014-08-27 | 海南通用康力制药有限公司 | 利巴韦林注射液及其制备方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响研究;刘继馨等;《现代药物与临床》;20150731;第30卷(第7期);784-789 * |
利巴韦林口腔崩解片的制备及质量评价;胡盛松等;《中国药师》;20101231;第13卷(第5期);665-667 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN105232477A (zh) | 2016-01-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kaufman et al. | Compliance issues in manufacturing of drugs | |
CN102895182B (zh) | 注射用头孢西丁钠的制备方法 | |
CN205187828U (zh) | 一种放射性同位素药剂自动灌装系统 | |
CN114588106A (zh) | 一种地氯雷他定口服溶液制剂及其制备生产工艺 | |
CN105232477B (zh) | 一种注射用利巴韦林及其制备方法 | |
Jobard et al. | Qualification of a chemotherapy-compounding robot | |
JP2009530363A (ja) | 抗芽球薬の希釈および調合の装置および方法 | |
CN109833330B (zh) | 一种葡萄糖氯化钠注射液生产工艺 | |
CN103371969A (zh) | 重酒石酸间羟胺注射液及其制剂工艺 | |
CN100551380C (zh) | 不含抑菌剂的注射用水溶性维生素组合物冻干制剂 | |
EP2236199A2 (de) | Verfahren und Einrichtung zum automatischen sterilen Dosieren und Mischen von Infusionen | |
CN108042564A (zh) | 一种亚硒酸钠维生素c注射液及其制造方法 | |
CN103629895B (zh) | 一种高压蒸汽灭菌后的口服液瓶快速烘干方法及其设备 | |
US20080319694A1 (en) | Methods of monitoring acceptance criteria of vaccine manufacturing systems | |
CN202342511U (zh) | 负压脉动式臭氧灭菌箱 | |
CN209382391U (zh) | 一种过氧化氢真空低温灭菌系统 | |
CN108414763B (zh) | 盐酸金霉素细菌内毒素检验设备和方法 | |
CN111939278A (zh) | 一种盐酸去甲乌药碱注射液的灭菌工艺 | |
KR102277180B1 (ko) | 미생물 오염 검사 시스템 | |
CN206684064U (zh) | 一种兽药生产包装人工外观检测装置 | |
EP3453031B1 (en) | Systems and methods for sterility testing of radionuclide generator column assemblies | |
CN114377056A (zh) | 一种银黄提取物注射液及其制备方法 | |
CN108670968A (zh) | 一种注射用美洛西林钠舒巴坦钠处方及工艺 | |
Edwards et al. | Hydrogen peroxide vapor sterilization: Applications in the production environment | |
CN108939008A (zh) | 化积口服液及其制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |