CN105158465B - 一种人类免疫缺陷病毒ⅰ型p24抗体检测elisa试剂盒 - Google Patents
一种人类免疫缺陷病毒ⅰ型p24抗体检测elisa试剂盒 Download PDFInfo
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Abstract
本发明涉及人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒,有效解决现有ELISA检测HIV‑1抗体的方法检测窗口期长,易漏检及HIV‑1 P24抗体检测的试剂盒假阳性率高,特异性低的问题,该试剂盒内设有预包被HIV‑1 P24抗原酶标板,阴性对照液血清、阳性对照液血清、辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体、抗体稀释液、显色剂TMB A液和显色剂TMB B液、终止液、洗涤液、封板膜,本发明利获取到新的HIV‑1 P24基因序列,并用此序列基因重组表达抗原蛋白包被ELISA,经间接法检测样本HIV‑1 P24抗体,有效用于HIV‑1感染的早期辅助诊断。
Description
技术领域
本发明涉及一种人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒。
背景技术
人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)是艾滋病的病原体能攻击人体免疫系统的病毒,它把人体免疫系统中最重要的T淋巴细胞作为主要攻击目标,大量破坏该细胞,使人体丧失免疫功能。因此,人体易于感染各种疾病,并可发生恶性肿瘤,病死率较高。由于其基因易突变,到目前为止还未有特效的防治疫苗,所以防治艾滋病仍是以早发现缩小隐形感染传播范围,早治疗防止病情进一步恶化。虽然自1983发现HIV病毒以来,HIV病毒相关检测指标的研究一直没有停息过,研究从HIV抗体检测到p24抗原检测、HIV核酸检测以及T淋巴细胞计数等检测项目。但目前在国内的初筛实验依然以HIV抗体检测为主,窗口期较长容易漏检。目前HIV分为1型和2型,但是国内主要流行HIV-1,而在HIV-1病毒中,gag基因所编码的结构蛋白是该病毒含量最丰富的蛋白,对于HIV-1颗粒的组装及释放至关重要且相对稳定不易突变。gag基因全长表达产物P55经蛋白酶水解后成为P24/P17/P15蛋白,而p24是HIV-1病毒颗粒的主要结构蛋白,在病毒的包装和成熟过程中起重要作用。p24蛋白的氨基酸序列在HIV-1各毒株之间高度保守,缺失p24会导致病毒无法正常组装。衣壳蛋白p24特异性很强,与多数其他逆转录病毒无交叉反应,并且HIV-1 P24抗体出现较其他抗体早,所以可用于HIV-1感染的早期辅助诊断,但目前的HIV-1 P24抗体检测的试剂盒假阳性率高,特异性低,至今未能得到广泛应用。
发明内容
针对上述情况,为克服现有技术缺陷,本发明之目的就是提供一种人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒,可有效解决现有ELISA检测HIV-1抗体的方法检测窗口期长,易漏检及HIV-1 P24抗体检测的试剂盒假阳性率高,特异性低的问题。
本发明解决的技术方案是,该试剂盒内设有预包被HIV-1 P24抗原酶标板,阴性对照液血清、阳性对照液血清、辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体(即酶标二抗,购买于生工生物工程有限公司)、抗体稀释液、显色剂TMB A液和显色剂TMB B液、终止液、洗涤液、封板膜;其中,阴性对照液血清为正常人血清;阳性对照液血清为含HIV-1 P24抗体的人血清;HIV-1 P24抗原为纯化的重组P24蛋白,P24蛋白由以下P24基因序列构成:
所述的HIV-1 P24抗原的制备方法是:选择HIV-1阳性样本,提取RNA反转录为cDNA;分别设计三轮引物,其中第一轮引物为:
gag_A_ 5’-TCTGGCTGTGTGCCCTTCTTTGCCACAATTGAAACACTT-3’
gag_S_ 5’-CGCCAAAAATTTTGACTAGCGGAGGCTAGAAGGAGAGAG-3’
第二轮引物为:
P24_S1:5’-AGCGGAGGCTAGAAGGAGAGAGATG-3’
P24_A1:5’-TTTGTTACTTGGCTCATTGCTTCAG-3’
第三轮引物为:
P24_NCO Ⅰ-2:5’-TTAACATGCCATGGGCCCTATAGTGCAAAACCT-3’,其5’端设计有NCO Ⅰ酶切位点;
P24_XHO Ⅰ-2:5’-AACCGCTCGAGTGGCAAGATTCTTGCTTTGT-3’,其5’端设计有XHO Ⅰ酶切位点;
利用上述引物,扩增模板cDNA,扩增后片段大小为693bp,利用omega胶回收试剂盒切胶回收,得切胶纯化的P24基因片段(P24 DNA),扩增DH5a-PET32a菌株,得PET32a质粒,将获得的PET32a质粒和切胶纯化的P24基因片段利用NCO Ⅰ和XHO Ⅰ分别双酶切,酶切后的产物分别用omega胶回收试剂盒进行纯化回收,得酶切PET32a质粒和酶切P24基因片段;酶切P24基因片段和酶切PET32a质粒连接,构建PET32a-P24重组质粒,提取PET32a-P24质粒转入BL21菌株中,构成BL21-PET32a-P24菌株,通过IPTG诱导表达P24抗原,利用镍柱填料初次纯化P24抗原后,再经SDS-PAGE电泳切胶回收再次纯化P24抗原,置于磷酸盐缓冲液中,透析,经聚乙二醇8000浓缩得浓缩蛋白,即为纯化的重组P24蛋白;
所述的预包被HIV-1 P24抗原酶标板的制备方法是:
(1)将纯化的重组P24蛋白用碳酸盐包被液稀释至2ug/ml,得稀释液,每孔100ul稀释液包被96孔聚苯乙烯微孔板,封膜,4℃,16-18小时;
(2)微孔板洗涤:弃去96孔聚苯乙烯微孔板中液体,用PBS(即磷酸盐缓冲液)洗涤3次,拍干96孔聚苯乙烯微孔板;
(3)封闭微孔板:在96孔聚苯乙烯微孔板的各个孔中加入200ul封闭液,封膜,置于37℃水浴箱,2h;
(4)微孔板洗涤:弃去96孔聚苯乙烯微孔板中液体,用PBS洗涤3次,拍干96孔聚苯乙烯微孔板;
(5)预包板的保存:装封闭袋中,置于4℃保存备用;
其中,碳酸盐包被液的配制:碳酸钠(Na2CO3)0.8g,碳酸氢钠(NaHCO3)1.45g,加纯水溶解后定容至500ml,调PH至9.6,4℃保存;
PBS的配制:氯化钠(NaCl)8g,氯化钾(KCl)0.2g,KH2PO4(磷酸二氢钾)0.24g,Na2HPO4(磷酸氢二钠)1.44g,纯水定容至1000ml,调PH至7.2;
封闭液的配制:含5%体积浓度的胎牛血清的PBS;
所述的检测人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒的检测方法:
(1)实验设计:根据待测样本的数量选择相应的预包被HIV-1 P24抗原酶标板的微孔数量,另设空白对照、阴性对照、阳性对照各一孔;
(2)试剂配制:使用抗体稀释液稀释辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体,抗体稀释液和辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体的体积比为1:6000,即得酶标二抗工作液;
(3)加样:将待测样本用抗体稀释液按体积比1:20稀释,每个待测样本的微孔中待测样本加入量为50ul、阴性对照的微孔中阴性对照液血清加入量为50ul、阳性对照的微孔中阳性对照液血清加入量为50ul,空白对照的微孔中不加样;
(4)温育:用封板膜封盖反应板,置于37℃水浴箱,温育1h;
(5)洗板:撕去封板膜,弃去微孔中液体,注满洗涤液,浸泡至少5s,反复洗板5次,最后在吸水纸上拍干;
(6)加酶:空白对照的微孔除外,其余每孔加入酶标二抗工作液50ul;
(7)温育:用封板膜封盖反应板,置于37℃水浴箱,30min;
(8)洗板:撕去封板膜,弃去微孔中液体,注满洗涤液,浸泡至少5s,反复洗板5次,最后在吸水纸上拍干;
(9)加底物液:待测样本的微孔、阴性对照的微孔、阳性对照的微孔和空白对照的微孔内均加入显色剂TMB A液和显色剂TMB B液各50ul,震荡仪震荡混匀,置于37℃水浴箱,温育15min;
(10)加终止液:待测样本的微孔、阴性对照的微孔、阳性对照的微孔和空白对照的微孔内均加入50ul终止液,震荡仪震荡混匀;
(11)检测:取波长450nm(参考波长630nm,建议使用双波长的酶标仪检测)设定酶标仪检测,以空白对照的微孔校零,再读取各孔OD值;
(12)结果判断:阴性对照(A值)*2.5=临界值(cut off值),阴性对照高于0.05时按实际OD值算,阴性对照小于0.05按0.05计算,凡待测样本的A值大于临界值即为阳性,反之,则为阳性;
其中,抗体稀释液:100ml PBS中加入5ml胎牛血清和50ul Tween-20,调pH值至7.2;洗涤液:含0.15%Tween-20的PBS,pH值为7.2;显色剂TMB A、B液:购买于北京泰天河生物技术有限公司;终止液:2mol/L H2SO4溶液;
本发明利获取到新的HIV-1 P24基因序列,并用此序列基因重组表达抗原蛋白包被ELISA,经间接法检测样本HIV-1 P24抗体,因为衣壳蛋白p24特异性很强,与多数其他逆转录病毒无交叉反应,并且HIV-1 P24抗体出现较其他抗体早,所以具有较高的特异性和敏感性,有效用于HIV-1感染的早期辅助诊断。
具体实施方式
以下结合实际情况对本发明具体实施方式作进一步详细说明;
1、获取HIV-1 P24基因
(1)获取经WB(免疫印记法)确证过的HIV-1阳性样本;利用Trizol法提取HIV-1P24 RNA模板,方法是,复苏液氮冻存的HIV-1阳性样本PBMC(单个核细胞),取HIV-1阳性样本PBMC 500ul加1ml Trizol(RNA抽提试剂),混匀,18-30℃放置5min,按200ul氯仿/mlTrizol(即1ml Trizol中加入200ul氯仿)加入氯仿,振荡混匀15s,18-30℃放置2-3min,4℃,12000g离心15min,吸取上层水相,按0.5ml异丙醇/ml Trizol加入异丙醇,混匀,18-30℃放置5-10min,4℃12000g离心10min,弃上清,RNA沉于管底,按1ml质量浓度75%的乙醇/ml Trizol加入质量浓度75%的乙醇,振荡离心管,悬浮沉淀,4℃8000g离心5min,弃上清,18-30℃晾5-10min,得RNA样品,用50ul 0.1%DEPC处理水(DEPC为焦碳酸二乙酯)溶解(0.1%DEPC处理水的配制方法:在1000ml的纯水中加入1ml DEPC,混匀,室温避光静置过夜,121℃高压蒸汽灭菌20min)RNA样品,55-60℃,溶解5-10min,-70℃保存,即得HIV-1 P24RNA模板;
(2)选用随机引物反转录RNA为cDNA(Takara反转录试剂盒):反应体系:HIV-1 P24RNA模板1ul,Oligo primer(引物)1ul,5×reaction buffer 4ul,Ribolock RNaseInhibitor(20U/ul)1ul,10mM dNTP Mix 2ul,RevertAid M-MuLV Reverse Transcriptase(200U/ul)1ul,Water 10ul,总体系20ul,混匀;反应条件:混匀体系,放于PCR仪,42℃孵育60min,70℃孵育5min,4℃保存1小时,取出后-70℃保存,得模板cDNA;
(3)利用巢式PCR获得P24基因(Takara PCR试剂盒):根据NCBI Blast数据库已公布的gag蛋白基因序列设计特异性引物,第一轮引物:P24_gag-A:5’-TCTGGCTGTGTGCCCTTCTTTGCCACAATTGAAACACTT-3’和P24_gag-S:5’-CGCCAAAAATTTTGACTAGCGGAGGCTAGAAGGAGAGAG-3’,PCR反应体系:Takara Taq(5U/ul)0.25ul,10×PCR buffer 5ul,dNTP Mixture(各2.5mM)4ul,模板cDNA1ul,上述引物P24_gag-A 2ul,引物P24_gag-S 2ul,蒸馏水加至50ul;PCR反应条件:95℃3min,95℃1min,59.8℃2min,72℃1min30s,35循环,72℃10min,4℃保存,作为第二轮模板DNA;第二轮引物:P24_S15’-AGCGGAGGCTAGAAGGAGAGAGATG-3’和P24_A15’-TTTGTTACTTGGCTCATTGCTTCAG-3’,PCR反应体系:Takara Taq(5U/ul)0.25ul,10×PCR buffer 5ul,dNTP Mixture(各2.5mM)4ul,第二轮模板DNA 1ul,P24_A1 2ul,P24_S1 2ul,蒸馏水加至50ul;PCR反应条件:95℃3min,95℃1min,54.7℃1min,72℃1min20s,35循环,72℃10min,4℃保存,作为第三轮模板DNA;第三轮引物:P24_NCO Ⅰ ‐2 5’‐TTAACATGCCATGGGCCCTATAGTGCAAAACCT‐3’其5’端设计有NCOⅠ酶切位点和P24_XHO Ⅰ ‐2 5’‐AACCGCTCGAGTGGCAAGATTCTTGCTTTGT‐3’其5’端设计有XHOⅠ酶切位点,PCR反应体系:Takara Taq(5U/ul)0.25ul,10×PCR buffer 5ul,dNTP Mixture(各2.5mM)4ul,第三轮模板DNA 1ul,P24_NCO Ⅰ‐2 2ul,P24_XHO Ⅰ‐2 2ul,蒸馏水加至50ul;PCR反应条件:95℃3min,95℃1min,54.7℃1min,72℃1min,35次循环,72℃10min,4℃保存,扩增后片段大小为693bp,PCR产物经在1%琼脂糖凝胶中电泳,条带与目的片段大小相符;
(4)切胶回收(利用omega胶回收试剂盒):在紫外灯箱中用小刀切取凝胶上的目的基因条带;称量空EP管重量,把切取带有目的基因的胶装入称好的EP管中,称量出胶的重量;根据1g/1ml Buding Buffer(即每1g胶加入1ml的Buding Buffer)加入Buding Buffer;置于55-60℃预热的水浴锅中7min溶解,震荡混匀,得胶液;处理过滤柱(处理过滤柱的步骤为:a、在过滤中加入200ul GPS溶液,静置2-3min,10000g离心1min弃滤液;b、在过滤中加入700ul蒸馏水,10000g离心1min弃滤液):向过滤柱中加入200ul GPS(omega胶回收试剂盒内试剂),18-30℃放置2-3min,10000g离心1min,弃滤液;再加入700ul蒸馏水,10000g离心1min,弃去滤液;加入700ul溶解后的胶液,10000g离心1min,弃去滤液;加入300ul BudingBuffer,10000g离心1min,弃去滤液;加入700ul SPW wash buffer(omega胶回收试剂盒内试剂),10000g离心1min,弃去滤液,再加入700ul SPW wash buffer,10000g离心1min,弃去滤液;将过滤柱放入空收集管中,13000g离心2min,弃去滤液;将过滤柱放入另取的EP管中,在过滤柱中加入30-50ul Elution Buffer,18-30℃放置1min;13000g离心1min,吸取EP管内滤液再次加入过滤柱中,13000g离心1min,即得切胶纯化的P24基因片段(P24 DNA);
2、构建PMD-18-T-P24质粒载体
(1)构建T-P24质粒:将上述切胶纯化的P24基因片段连接于PMD-18-T载体(宝生物工程有限公司):反应体系:PMD18-T载体4ul,P24 DNA 16ul,Solution 20ul,混匀;反应条件:放置于PCR仪,16℃,16-18小时。
(2)将(1)步骤连接好的T-P24质粒转入菌株DH5a感受态细胞中,即得DH5a-T-P24菌;其方法是,取菌株DH5a接种于LB琼脂培养基平板,37℃培养16-18小时;挑取单菌落接种于3ml LB液体培养基中,200r/min,37℃培养16-18小时,得菌液;接种菌液到LB液体培养基中,菌液和LB液体培养基的体积比为1:100,250r/min,37℃培养至OD值为0.4-0.5;转入50ml离心管中,冰浴10min;4℃,4000r/min离心10min,弃上清,倒扣于滤纸1min,加入30ml预冷至4℃的0.1mol/L CaCl2(氯化钙)溶液(0.1mol/L CaCl2溶液配方::称取1.11g CaCl2,溶于100ml纯水中,0.22um滤膜过滤除菌,4℃保存)重悬沉淀,冰浴10min;4℃,4000r/min离心10min,弃上清,倒扣于滤纸1min,加入300ml预冷至4℃的0.1mol/L CaCl2溶液重悬沉淀,放入冰盒中,得感受态细胞悬液;细菌质粒转化方法:用无菌枪头吸取感受态细胞悬液100ul转移到1.5ml无菌离心管中,加T-P24质粒30ul,混匀,将离心管插入浮漂中并放于冰盒中45min;再放入预热至42℃的水浴中,放置90s,转移至另取的冰盒中,使细胞冷却15min;得到已转化的感受态细胞,加入800ul LB液体培养基,混匀,150r/min,37℃培养1h,得菌液A,取200ul菌液A转移至氨苄抗性的LB琼脂培养基平板,用灭菌过的玻璃棒涂匀;将氨苄抗性的LB琼脂培养基平板置于18-30℃直至液体被吸收;倒置氨苄抗性的LB琼脂培养基平板,37℃培养16-18小时,得DH5a-PMD-18-T-P24菌;所述的LB液体培养基的配制方法:在100ml水中加入2g LB肉汤,混匀,121℃高压蒸汽灭菌,20min,待冷却到18-30℃,4℃保存,以下同;所述氨苄抗性的LB琼脂培养基平板的配制方法:在100ml水中加入2g LB肉汤和1.5g琼脂粉,混匀,121℃高压蒸汽灭菌,20min,待冷却到50-60℃,加入100ul氨苄青霉素(浓度为100mg/ml),混匀,每个培养板中倒入20-30ml,4℃保存,以下同;
(3)DH5a-PMD-18-T-P24菌中PMD-18-T-P24质粒基因测序:方法是,将上述步骤(2)培养出的产物由测序公司进行测序,得出其中P24基因序列为:
上述P24基因与NCBI Blast数据库比较未检索出相同序列,在P24基因序列中602位点处突变位点未检索出,经验证此突变不影响P24蛋白的抗原性;
3、表达载体重组
(1)扩增DH5a-PET32a菌株;使用Axygen质粒提取试剂盒提取DH5a-PET32a菌株中的PET32a质粒,提取方法是:
所述扩增DH5a-PET32a菌株方法为:取DH5a-PET32a菌株乳化于5ml氨苄抗性的LB液体培养基,放置于摇床200r/min,16-18h,得扩增DH5a-PET32a菌株菌液;取扩增DH5a-PET32a菌株菌液5ml,4℃12000g离心1min,弃上清;加250ml Buffer S1悬浮细菌沉淀;加250ml Buffer S2上下翻转4-6次,混合均匀,使菌体充分裂解,直至形成透亮的溶液,翻转时间不超过5min;加350ul Buffer S3上下翻转6-8次,4℃,12000g离心,10min;吸取离心上清液转移至制备管,12000g,离心1min,弃滤液;将制备管置回离心管,加500ul BufferW1,4℃,12000g,离心1min,弃滤液;将制备管置回离心管,加700ul BufferW2,4℃,12000g,离心1min,弃滤液,再加700ul BufferW2,4℃,12000g,离心1min,弃滤液;将制备管置回2ml离心管中,4℃,12000g,离心1min;将制备管移入1.5ml离心管中,在制备管膜中央加40ulELuent,18-30℃静置1min,4℃,12000g,离心1min;即得PET32a质粒,-70℃保存;所述的氨苄抗性的LB液体培养基的配制方法:在100ml水中加入2g LB肉汤,混匀,121℃高压蒸汽灭菌,20min,待冷却至18-30℃,加入100ul氨苄青霉素(浓度为100mg/ml),4℃保存,以下同;
(2)将获得的PET32a质粒和另取上述1步骤中(4)所得的切胶纯化的P24基因片段利用NCO Ⅰ和XHO Ⅰ分别双酶切,PET32a质粒酶切的反应体系:PET32a质粒32ul,NCO Ⅰ 2ul,XHO Ⅰ 2ul 10×K 4ul,总体积共40ul,混匀;PET32a质粒反应条件:放于PCR仪37℃,16-18小时;切胶纯化的P24基因片段酶切的反应体系:切胶纯化的P24基因片段32ul,NCO Ⅰ 2ul,XHO Ⅰ 2ul 10×K 4ul,总体积共40ul,混匀;切胶纯化的P24基因片段酶切的反应条件:放于PCR仪37℃,16-18小时;酶切后的产物分别用omega胶回收试剂盒进行纯化回收,得酶切PET32a质粒和酶切P24基因片段;
(3)用T4连接酶连接(2)步骤所得酶切PET32a质粒和酶切P24基因片段构建PET32a-P24重组质粒,方法是,把酶切P24基因片段插入酶切PET32a质粒:反应体系:酶切P24基因片段21.5ul,酶切PET32a质粒21.5ul,10×T4 DNA ligase buffer 5ul,T4 DNAligase 2ul,共50ul;反应条件:放置于PCR仪中,16℃,16-18小时,即得PET32a-P24重组质粒;
4、构建表达菌株:将10ul PET32a-P24重组质粒转入100ul BL21(DE3)感受态细胞,得BL21(DE3)-PET32a-P24菌液,取100ul BL21(DE3)-PET32a-P24菌液接种于氨苄抗性的LB琼脂培养基平板中,37℃,培养16-18小时,取200ul培养好的BL21(DE3)-PET32a-P24菌液接种至5ml氨苄抗性的LB液体培养基中,提取PET32a-P24质粒,经测序鉴定为目的质粒,转入BL21菌株中,成功构建P24抗原表达菌株即BL21-PET32a-P24菌株;
5、蛋白表达
用IPTG(诱导剂)诱导BL21-PET32a-P24菌株表达P24抗原:吸取氨苄抗性的LB液体培养基5ml加入20ml摇菌管中,沾取单个BL21-PET32a-P24菌落,加入20ml摇菌管中,混匀,置于37℃,250r/min摇床16-18小时,得菌液B,取5ml菌液B加入200ml氨苄抗性的LB液体培养基,37℃,250r/min摇床2h;再加入2ml IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷)溶液(IPTG溶液为IPTG加水制成,每毫升水中含有0.2g IPTG),混匀,放置于37℃,250r/min摇床3h,得诱导表达后的菌液;
6、蛋白纯化
(1)利用镍柱填料初次纯化P24抗原;a、将诱导表达后的菌液4000r/min,10min 4℃离心,弃去上清;b、加入10ml缓冲液(缓冲液为500ml水中加入NaH2PO43g和Nacl 8.77g,调PH为7.4)重悬,超声破菌:300V,1s超声,4s冷却,60个循环为一次,至菌液澄清为止;c、再将澄清的菌液在4000r/min,10min 4℃离心,上清经0.22um滤膜过滤,与4ml镍柱填料(购买于life science公司)结合,混匀30min,3000r/min 2min离心,弃上清;d、加入30ml 20mM咪唑洗涤液(20mM咪唑洗涤液为:500ml水中加入NaH2PO43g、Nacl 8.77g和咪唑0.544g,调PH为7.4),混匀,3000r/min 2min离心,弃上清;重复上述d步骤两次;再加入3ml 250mM咪唑脱洗液(250mM咪唑脱洗液为:500ml水中加入NaH2PO43g、Nacl 8.77g和咪唑6.8g,调PH为7.4),混匀,3000r/min 2min离心,吸取上清,即P24抗原溶液,-70℃保存;
(2)SDS-PAGE电泳切胶回收再次纯化P24抗原:将P24抗原溶液用蛋白上样Buffer(缓冲液)100℃10min预处理,将制胶板装好,加入12%分离胶;再加入2ml蒸馏水,静置30分钟,弃去蒸馏水,再加入5%浓缩胶,插入梳子,静置1h,拔出梳子,放入电泳仪,加入预处理的P24抗原溶液,调电压60v,跑胶;切胶回收:将电泳好的胶片取下置于预冷至4℃的0.1mol/L KCL溶液(0.745g KCL加100ml水配成浓度为0.1mol/L KCL溶液)中,再置于-20℃,放置1min;切割呈灰白色的目的蛋白条带并分成0.5cm长的小段;电渗:将上述小段装入透析袋内置于电渗槽中电渗,60v,电渗出蛋白,至凝胶变透明为止;所述的12%分离胶:在10ml烧杯中依次加入灭菌水1.6ml、30%Acrytamide2ml、1.5M Tris HCL(PH8.8)1.3ml、10%SDS 0.05ml、10%过硫酸铵0.05ml、TEMED 2ul,混匀,即得;所述的5%浓缩胶:在5ml烧杯中依次加入灭菌水1.4ml、30%Acrytamide 0.33ml、1.5M Tris HCL(PH8.8)0.25ml、10%SDS 0.02ml、10%过硫酸铵0.02ml、TEMED 2ul,混匀,即得;
(3)蛋白复性及浓缩:置于PBS中,4℃透析24h;用聚乙二醇8000覆盖1h,得浓缩蛋白,-70℃保存,即为纯化的重组P24蛋白;
检测人HIV-1 P24抗体检测ELISA试剂盒的制备
1、检测人HIV-1 P24抗体检测ELISA试剂盒预包被HIV-1 P24抗原酶标板的制备;
(1)购买96孔聚苯乙烯微孔板,将纯化的重组P24蛋白用碳酸盐包被液稀释至2ug/ml,得稀释液,每孔100ul稀释液包被96孔聚苯乙烯微孔板,封膜,4℃,16-18小时;
(2)微孔板洗涤:弃去96孔聚苯乙烯微孔板中液体,用PBS洗涤3次,拍干96孔聚苯乙烯微孔板;
(3)封闭微孔板:在96孔聚苯乙烯微孔板的各个孔中加入200ul封闭液,封膜,置于37℃水浴箱,2h;
(4)微孔板洗涤:弃去96孔聚苯乙烯微孔板中液体,用PBS洗涤3次,拍干96孔聚苯乙烯微孔板;
(5)预包板的保存:装封闭袋中,置于4℃保存备用;
2、检测人HIV-1 P24抗体检测ELISA试剂盒试剂组分:
(1)酶标二抗:HRP兔抗人IgG二抗(购买于生工生物工程有限公司)
(2)抗体稀释液(PH7.2):含5%胎牛血清和0.05%Tween-20的PBS;
(3)洗涤液(PH7.2):含0.15%Tween-20的PBS;
(4)显色剂TMB A、B液:购买于北京泰天河生物技术有限公司;
(5)终止液:2mol/L H2SO4溶液;
(6)阴性对照血清:正常人血清;
(7)阳性对照血清:含P24抗体的人血清;
检测人HIV-1 P24抗体检测ELISA试剂盒使用说明:
(1)实验设计:根据待测样本的数量选择相应的预包被HIV-1 P24抗原酶标板的微孔数量,另设空白对照、阴性对照、阳性对照各一孔;
(2)试剂配制:使用抗体稀释液稀释酶标二抗,抗体稀释液和酶标二抗的体积比为1:6000,即得酶标二抗工作液;
(3)加样:将待测样本用抗体稀释液按体积比1:20稀释,每个待测样本的微孔中待测样本加入量为50ul、阴性对照的微孔中阴性对照液血清加入量为50ul、阳性对照的微孔中阳性对照液血清加入量为50ul,空白对照的微孔中不加样;
(4)温育:用封板膜封盖反应板,置于37℃水浴箱,温育1h;
(5)洗板:撕去封板膜,弃去微孔中液体,注满洗涤液,浸泡至少5s,反复洗板5次,最后在吸水纸上拍干;
(6)加酶:空白对照的微孔除外,其余每孔加入酶标二抗工作液50ul;
(7)温育:用封板膜封盖反应板,置于37℃水浴箱,30min;
(8)洗板:撕去封板膜,弃去微孔中液体,注满洗涤液,浸泡至少5s,反复洗板5次,最后在吸水纸上拍干;
(9)加底物液:待测样本的微孔、阴性对照的微孔、阳性对照的微孔和空白对照的微孔内均加入显色剂TMB A液和显色剂TMB B液各50ul,震荡仪震荡混匀,置于37℃水浴箱,温育15min;
(10)加终止液:待测样本的微孔、阴性对照的微孔、阳性对照的微孔和空白对照的微孔内均加入50ul终止液,震荡仪震荡混匀;
(11)检测:取波长450nm(参考波长630nm,建议使用双波长的酶标仪检测)设定酶标仪检测,以空白对照的微孔校零,再读取各孔OD值;
(12)结果判断:阴性对照(A值)*2.5=临界值(cut off值),阴性对照高于0.05时按实际OD值算,阴性对照小于0.05按0.05计算,凡待测样本的A值大于临界值即为阳性,反之,则为阳性;
该试剂盒采用间接法检测人血清/血浆中的HIV-1 P24抗体,若待测样本中含有HIV-1 P24抗体,则会与预包被HIV-1 P24抗原酶标板上的P24抗原结合形成固相抗原-P24抗体复合物,再用辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体于固相抗原-P24抗体复合物中的抗体结合,形成固相抗原-P24抗体-HRP酶标二抗复合物,如待测样本中含有HIV-1 P24抗体,则加入显色剂TMB A液和显色剂TMB B液后颜色变蓝,并且随着待测样本中抗体量的增加,颜色越来越深;
需要指出的是,上述实施方式仅为本发明的优选实施方式,但不能以此来限定本发明保护的范围,对于本领域的技术人员来说,在本发明的基础上做出的等同或等效的变化及替换,均属于本发明所要求保护的范围;
本发明的试剂盒的性能试验如下:
1、特异性和敏感性
按照本发明的方法研制人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒,分别对275份经WB确证实验确定的HIV-Ⅰ P24抗体阳性样本、310份非HIV-Ⅰ阳性样本进行检测(其中非HIV-Ⅰ阳性样本包括:正常人血清、丙肝抗体阳性血清、乙肝阳性血清、梅毒抗体阳性血清、类风湿抗体阳性血清);
用本发明检测试剂盒检测结果如下:275份HIV-Ⅰ P24抗体阳性样本均为阳性;310份非HIV-Ⅰ阳性样本中有307份为阴性,3份为阳性,由此可得:特异性为99.03%,敏感性为100%;假阳性率为0.971%,假阴性率为0%;
2、重复性试验
使用人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒检测60份HIV-Ⅰ P24抗体阳性样本、10份正常人样本、20份类风湿抗体阳性样本;
1)批间可重复性试验:
分别使用三批人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒检测60份HIV-Ⅰ P24抗体阳性样本、10份正常人样本、20份类风湿抗体阳性样本。其检测结果见表1:
表1批间可重复性试验
2)批内可重复试验:
使用同一批次人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒重复检测3次上述60份HIV-Ⅰ P24抗体阳性样本,其检测结果见表2
表2批内可重复试验
批次 | 第一次 | 第二次 | 第三次 | 变异系数 |
阳性数 | 60 | 60 | 60 | 0 |
由表1和表2可知本人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒有较好的重复性。
Claims (4)
1.一种人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒,其特征在于,试剂盒内设有预包被HIV-1 P24抗原酶标板,阴性对照液血清、阳性对照液血清、辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体、抗体稀释液、显色剂TMB A液和显色剂TMB B液、终止液、洗涤液、封板膜;其中,阴性对照液血清为正常人血清;阳性对照液血清为含P24抗体的人血清;HIV-1 P24抗原为纯化的重组P24蛋白,P24蛋白由以下P24基因序列SEQ ID NO:1构成。
2.根据权利要求1所述的人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒,其特征在于,所述的HIV-1 P24抗原的制备方法是:选择HIV-1阳性样本,提取RNA反转录为cDNA;分别设计三轮引物,其中第一轮引物为:
gag_A_ SEQ ID NO:2,gag_S_ SEQ ID NO:3;第二轮引物为:P24_S1:SEQ ID NO:4,P24_A1 :SEQ ID NO:5;第三轮引物为:P24_NCOⅠ-2:SEQ ID NO:6,其5’端设计有NCOⅠ酶切位点;P24_XHOⅠ-2:SEQ ID NO:7,其5’端设计有XHOⅠ 酶切位点;
利用上述引物,扩增模板cDNA,扩增后片段大小为693bp,利用omega胶回收试剂盒切胶回收,得切胶纯化的P24基因片段,扩增DH5a-PET32a菌株,得PET32a质粒,将获得的PET32a质粒和切胶纯化的P24基因片段利用NCOⅠ和XHOⅠ分别双酶切,酶切后的产物分别用omega胶回收试剂盒进行纯化回收,得酶切PET32a质粒和酶切P24基因片段;酶切P24基因片段和酶切PET32a质粒连接,构建PET32a-P24重组质粒,提取PET32a-P24质粒转入BL21菌株中,构成BL21-PET32a-P24菌株,通过IPTG诱导表达P24抗原,利用镍柱填料初次纯化P24抗原后,再经SDS-PAGE电泳切胶回收再次纯化P24抗原,置于磷酸盐缓冲液中,透析,经聚乙二醇8000浓缩得浓缩蛋白,即为纯化的重组P24蛋白。
3.根据权利要求1所述的人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒,其特征在于,所述的预包被HIV-1 P24抗原酶标板的制备方法是:
(1)将纯化的重组P24蛋白用碳酸盐包被液稀释至2μg/ml,得稀释液,每孔100μl稀释液包被96孔聚苯乙烯微孔板,封膜,4℃,16-18小时;
(2)微孔板洗涤:弃去96孔聚苯乙烯微孔板中液体,用PBS洗涤3次,拍干96孔聚苯乙烯微孔板;
(3)封闭微孔板:在96孔聚苯乙烯微孔板的各个孔中加入200μl封闭液,封膜,置于37℃水浴箱,2h;
(4)微孔板洗涤:弃去96孔聚苯乙烯微孔板中液体,用PBS洗涤3次,拍干96孔聚苯乙烯微孔板;
(5)预包板的保存:装封闭袋中,置于4℃保存备用。
4.根据权利要求1或2或3所述的人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测ELISA试剂盒,其特征在于,其检测方法是:
所述的检测人类免疫缺陷病毒Ⅰ型P24抗体检测试剂盒的检测方法:
(1)实验设计:根据待测样本的数量选择相应的预包被HIV-1 P24抗原酶标板的微孔数量,另设空白对照、阴性对照、阳性对照各一孔;
(2) 试剂配制:使用抗体稀释液稀释辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体,抗体稀释液和辣根过氧化物酶标记兔抗人IgG抗体的体积比为1:6000,即得酶标二抗工作液;
(3)加样:将待测样本用抗体稀释液按体积比1:20稀释,每个待测样本的微孔中待测样本加入量为50μl、阴性对照的微孔中阴性对照液血清加入量为50μl、阳性对照的微孔中阳性对照液血清加入量为50μl,空白对照的微孔中不加样;
(4)温育:用封板膜封盖反应板,置于37℃水浴箱,温育1h;
(5)洗板:撕去封板膜,弃去微孔中液体,注满洗涤液,浸泡至少5s,反复洗板5次,最后在吸水纸上拍干;
(6)加酶:空白对照的微孔除外,其余每孔加入酶标二抗工作液50μl;
(7)温育:用封板膜封盖反应板,置于37℃水浴箱,30min;
(8)洗板:撕去封板膜,弃去微孔中液体,注满洗涤液,浸泡至少5s,反复洗板5次,最后在吸水纸上拍干;
(9)加底物液:待测样本的微孔、阴性对照的微孔、阳性对照的微孔和空白对照的微孔内均加入显色剂TMB A液和显色剂TMB B液各50μl,震荡仪震荡混匀,置于 37℃水浴箱,温育15min;
(10)加终止液:待测样本的微孔、阴性对照的微孔、阳性对照的微孔和空白对照的微孔内均加入50μl终止液,震荡仪震荡混匀;
(11)检测:取波长450nm设定酶标仪检测,以空白对照的微孔校零,再读取各孔OD值;
(12)结果判断:阴性对照A值*2.5=临界值,阴性对照的OD值高于0.05时,阴性对照A值按实际OD值计算,阴性对照的OD值小于0.05时,阴性对照A值按0.05计算,凡待测样本的A值大于临界值即为阳性,反之,则为阴性。
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EP1072888A2 (en) * | 1999-07-28 | 2001-01-31 | Fujirebio Kabushiki Kaisha | Immunoassay method and reagent for HIV-1p24 antigen |
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Non-Patent Citations (3)
Title |
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An ELISA-inhibition assay for antibody to human immunodeficiency virus core antigen (p24);J Povolotsky et al.;《Journal of Virological Methods》;19901231;第30卷(第1期);第109-114页 * |
Assessment of an ELISA for the detection of antibodies against HIV-1 protein p24;MA Ribas Antúnez et al.;《Revista Cubana De Medicina Tropical》;19991230;第51卷(第2期);第130-132页 * |
Differences in Human Immunodeficiency Virus Type 1 (HIV-1) Anti-p24 Reactivities in Serum of HIV-1-Infected and Uninfected Subjects: Analysis of Indeterminate Western Blot Reactions;Jacob Povolotsky et al.;《The Journal of Infectious Diseases》;19910228;第163卷(第2期);第247-251页 * |
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