CN105158125B - 一种端粒长度测量方法 - Google Patents
一种端粒长度测量方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105158125B CN105158125B CN201510318821.4A CN201510318821A CN105158125B CN 105158125 B CN105158125 B CN 105158125B CN 201510318821 A CN201510318821 A CN 201510318821A CN 105158125 B CN105158125 B CN 105158125B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- sers
- particle
- cell
- telomere
- centromere
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种端粒长度测量方法,该方法需使用到两种表面增强拉曼散射探针粒子,一种为能与端粒序列杂交的端粒SERS探针粒子,另一种为能与着丝粒序列杂交的着丝粒SERS探针粒子。将端粒SERS探针和着丝粒SERS探针加入到用固定剂固定好的细胞样品上,使端粒SERS探针和着丝粒SERS探针能分别通过它们表面修饰的DNA序列杂交到染色体中的端粒和着丝粒上。利用端粒SERS探针的SERS信号强度与着丝粒SERS探针的SERS信号强度之比表征端粒的相对长度。RT/C越大表示细胞的端粒越长,RT/C越小表示细胞的端粒越短。采用原位杂交表面增强拉曼散射法,具有实验成本低、周期短、特异性好、准确度高的优点。
Description
技术领域
本发明涉及纳米材料制备及生物分子检测技术,尤其涉及一种单细胞内高灵敏度的端粒长度测量方法,借助表面增强拉曼散射(SERS)的高灵敏度以及光谱信息丰富的特点,通过原位杂交技术实现单细胞内的端粒长度测量,该方法也可称为原位杂交表面增强拉曼散射法。
背景技术
端粒是位于真核细胞线性染色体末端的一小段DNA-蛋白质复合体,其作用是保护染色体DNA的末端,避免染色体DNA的降解、末端融合以及非正常重组等。在哺乳动物细胞中,端粒DNA由TTAGGG序列重复串联组成。由于DNA的末端复制问题,细胞的每次分裂都伴随着端粒DNA一小段序列的丢失。细胞的每次分裂都会伴随着染色体末端端粒的缩短,细胞也因此逐渐老化、直至丧失增殖能力而死亡。端粒长度的变化与多种疾病密切相关,如癌症、早衰综合征等。因此测量端粒长度能提供与疾病相关的重要信息。
目前已有的端粒长度测量方法包括:Southern印迹法、杂交保护法(HPA)、实时荧光定量PCR法(qPCR)和荧光原位杂交(FISH)法。用Southern印迹法分析的DNA是没有被打碎和纯度较高的,但该方法得到的数据还包括了部分亚端粒区长度,因此Southern印迹法不能提供端粒的实际长度。HPA法中,直接将基因组DNA与端粒特异性的吖啶酯探针杂交,通过化学发光法测定端粒长度。该方法中不需要用到放射性同位素,大大降低了对实验操作人员的伤害,同时对基因组完整性和纯度没有苛刻要求。但HPA法没有给出详细的细胞或染色体水平的端粒信息,也不能直接测定端粒长度。PCR法使用PCR扩增的方式,有效降低了细胞基因组DNA的用量。FISH法利用端粒特异性肽核酸荧光探针,结合荧光显微镜技术,能实现单细胞水平的端粒长度分析。尽管这些方法在端粒研究中做出了重要的贡献,但它们或多或少具有一些不足,比如灵敏度低、程序复杂、成本高等,因此,目前仍需设计出灵敏度高、准确性好、适用性广泛、可操作性强的端粒长度测量技术。
在生物研究中,除传统生物学检测方法外,光学检测技术以其简单、可靠的特点获得了较为广泛的应用。现有的光学测试方法以荧光技术为主流获得了较为广泛的应用。作为另一种光谱技术,拉曼光谱携带有被测分子的结构“指纹”信息,因而具有更重要的生物学应用价值。但由于其光谱信号强度太弱,限制了它的应用。表面增强拉曼散射(SERS)现象的发现彻底解决了这个问题,从而使得它成为一种强有力的技术分析手段。SERS一方面继承了拉曼光谱的诸多优点,如对生物组织损伤小、光谱信息丰富等;另一方面,它弥补了传统拉曼散射信号强度弱、不利于检测的缺点。其巨大的增强作用使得基于SERS的光谱检测具有超高的灵敏度,甚至可实现单分子水平的分析研究。SERS光谱的“指纹”特性使人们能在复杂的生物环境中跟踪、检测目标分子。SERS效应产生在纳米尺度粗糙的金属表面,纳米技术的飞速发展为构筑多功能化的SERS纳米探针/基底提供了丰富的技术途径。这些基于SERS光谱技术的纳米探针/基底在生物成像、核酸或蛋白检测、肿瘤识别、药物输运等诸多生物医学领域展现出了优异的应用前景。
发明内容
发明目的:为解决目前端粒长度测量方法灵敏度不高、操作复杂、成本高的问题,,本发明提供一种用于细胞端粒长度测量的原位杂交SERS法,借助SERS的高灵敏度以及光谱信息丰富的特点,通过原位杂交技术实现单细胞内的端粒长度测量。
技术方案:为实现上述目的,本发明采用的技术方案为:
一种端粒长度测量方法,使用端粒SERS探针粒子与着丝粒SERS探针粒子分别标记待测细胞的端粒与着丝粒,并使用端粒SERS探针粒子与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,即使用长度保持不变的端粒序列作为内部参照,消除SERS探针、染色体或细胞的浓度的影响;该方法具体为:将端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子加入到用固定剂固定好的待测细胞上,使端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子分别通过它们表面修饰的DNA序列杂交到待测细胞的端粒和着丝粒上,利用端粒SERS探针粒子的SERS信号强度与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,RT/C越小表示待测细胞的端粒长度越短;所述端粒SERS探针粒子是一种能与细胞的端粒序列杂交的SERS探针粒子,所述着丝粒SERS探针粒子是一种能与细胞的着丝粒序列杂交的SERS探针粒子。
上述方法具体包括如下步骤:
步骤一:制备球形金纳米粒子A;
步骤二:在粒子A表面修饰与细胞的端粒互补的DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTCCCTAACCCTAACCCTAA-3',得到能与细胞的端粒序列杂交的金纳米粒子B1;在粒子A表面修饰与细胞的着丝粒互补的DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTTAGCTTCTGTCTAGTTT-3',得到能与细胞的着丝粒序列杂交的金纳米粒子B2;
步骤三:在粒子B1表面的空位上修饰拉曼报告分子,得到能产生SERS信号且能与细胞的端粒序列杂交的金纳米粒子C1;在粒子B2表面的空位上修饰拉曼报告分子,得到能产生SERS信号且能与细胞的着丝粒序列杂交的金纳米粒子C2;要求在粒子B1和粒子B2表面修饰的拉曼报告分子不同,使得粒子C1和粒子C2产生的SERS信号不同;
步骤四:在粒子C1表面包覆一层银壳形成端粒SERS探针粒子D1,银壳将粒子D1上的拉曼报告分子和富T碱基的一段DNA序列(即SH(CH2)6TTTTTTTTTTT)包埋在内,而用于杂交的一段DNA序列(即CCCTAACCCTAACCCTAA)仍旧暴露在银壳外;在粒子C2表面包覆一层银壳形成着丝粒SERS探针粒子D2,银壳将粒子D2上的拉曼报告分子和富T碱基的一段DNA序列(即SH(CH2)6TTTTTTTTTTT)包埋在内,而用于杂交的一段DNA序列(即AGCTTCTGTCTAGTTT)仍旧暴露在银壳外;银壳的厚度为2~3nm(厚度不可超过3.4nm),通过银壳进一步增强SERS信号,但同时又不影响DNA序列的杂交功能;
步骤五:用固定剂固定好待测的细胞;
步骤六:将粒子D1和粒子D2同时加入到用固定剂固定好的待测细胞中,使粒子D1和粒子D2分别通过它们表面修饰的DNA序列杂交到待测细胞的端粒和着丝粒上;
步骤七:洗去待测细胞上多余的粒子D1和粒子D2;
步骤八:利用共焦拉曼显微镜分析待测细胞上的SERS光谱信号,进行SERS光谱和图像的采集;
步骤九:利用端粒SERS探针粒子的SERS信号强度与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,RT/C越小表示待测细胞的端粒长度越短。
所述步骤二中,DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTCCCTAACCCTAACCCTAA-3'和DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTTAGCTTCTGTCTAGTTT-3'的5'端均修饰了巯基,以使得两种DNA序列能够通过金硫键牢固地、共价地连接到粒子A的表面。
所述步骤三中,两种拉曼报告分子均含巯基,以使得拉曼报告分子能够通过金硫键牢固地、共价地连接到粒子A的表面;要求使用的两种拉曼报告分子的拉曼散射截面较大,便于产生强SERS信号。
有益效果:本发明提供的端粒长度测量方法,相对于现有技术,具有如下优势:1、本发明中的探针粒子能提供SERS信号,具有超高的灵敏度,可用于单细胞水平的分析研究;2、本发明中采用长度不变的着丝粒作为内部参考,能有效避免探针、细胞、染色体浓度等因素的影响,提高端粒长度测量的准确性;3、本发明采用SERS探针原位杂交实现端粒长度测量,具有实验成本低、周期短、特异性好、定位准确的优点。
附图说明
图1为本发明提出的原位杂交SERS法测量端粒长度的示意图;
图2为本发明中使用的SERS探针的结构示意图;
图3为实施例1中端粒SERS探针的SERS光谱;
图4为实施例1中着丝粒SERS探针的SERS光谱。
具体实施方式
下面结合附图对本发明作更进一步的说明。
如图1所示为一种端粒长度测量方法,将端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子加入到用固定剂固定好的待测细胞上,使端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子分别通过它们表面修饰的DNA序列杂交到待测细胞的端粒和着丝粒上,利用端粒SERS探针粒子的SERS信号强度与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,RT/C越小表示待测细胞的端粒长度越短;如图2所示,所述端粒SERS探针粒子是一种能与细胞的端粒序列杂交的SERS探针粒子,所述着丝粒SERS探针粒子是一种能与细胞的着丝粒序列杂交的SERS探针粒子。该方法包括如下步骤:
步骤一:制备球形金纳米粒子A;
步骤二:在粒子A表面修饰与细胞的端粒互补的DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTCCCTAACCCTAACCCTAA-3',得到能与细胞的端粒序列杂交的金纳米粒子B1;在粒子A表面修饰与细胞的着丝粒互补的DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTTAGCTTCTGTCTAGTTT-3',得到能与细胞的着丝粒序列杂交的金纳米粒子B2;两种DNA序列的5'端均修饰了巯基,以使得两种DNA序列能够通过金硫键牢固地、共价地连接到粒子A的表面;
步骤三:在粒子B1表面的空位上修饰拉曼报告分子,得到能产生SERS信号且能与细胞的端粒序列杂交的金纳米粒子C1;在粒子B2表面的空位上修饰拉曼报告分子,得到能产生SERS信号且能与细胞的着丝粒序列杂交的金纳米粒子C2;要求在粒子B1和粒子B2表面修饰的拉曼报告分子不同,使得粒子C1和粒子C2产生的SERS信号不同;两种拉曼报告分子均含巯基,以使得拉曼报告分子能够通过金硫键牢固地、共价地连接到粒子A的表面。
步骤四:在粒子C1表面包覆一层银壳形成端粒SERS探针粒子D1,银壳将粒子D1上的拉曼报告分子和富T碱基的一段DNA序列包埋在内,而用于杂交的一段DNA序列仍旧暴露在银壳外;在粒子C2表面包覆一层银壳形成着丝粒SERS探针粒子D2,银壳将粒子D2上的拉曼报告分子和富T碱基的一段DNA序列包埋在内,而用于杂交的一段DNA序列仍旧暴露在银壳外;银壳的厚度为2~3nm,通过银壳进一步增强SERS信号,但同时又不影响DNA序列的杂交功能;
步骤五:用固定剂固定好待测的细胞;
步骤六:将粒子D1和粒子D2同时加入到用固定剂固定好的待测细胞中,使粒子D1和粒子D2分别通过它们表面修饰的DNA序列杂交到待测细胞的端粒和着丝粒上;
步骤七:洗去待测细胞上多余的粒子D1和粒子D2;
步骤八:利用共焦拉曼显微镜分析待测细胞上的SERS光谱信号,进行SERS光谱和图像的采集;
步骤九:利用端粒SERS探针粒子的SERS信号强度与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,RT/C越小表示待测细胞的端粒长度越短。
下面结合实施例对本发明作出进一步的说明。
实施例1:
以3,5-二氯苯硫酚(3,5-DCT)分子为着丝粒SERS探针粒子的拉曼报告分子,以5,5'-二硫代双(2-硝基苯甲酸)分子为端粒SERS探针粒子的拉曼报告分子,以人子宫颈癌细胞(HeLa)为待测细胞,利用本发明的方法进行端粒长度测量。
1)制备球形金纳米粒子
在200mL去离子水中加入200μL 10%HAuCl4溶液,剧烈搅拌并加热至沸腾。随后加入8mL 1%柠檬酸钠水溶液,继续加热搅拌15min。停止加热,搅拌至溶液冷却至室温,即得到酒红色的金纳米粒子溶液。
2)制备SERS探针粒子
端粒SERS探针粒子:在1mL球形金纳米粒子溶液中加入140μL10μM溶解在PBS缓冲液中的DNA序列(5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTCCCTAACCCTAACCCTAA-3'),该混合溶液室温静置12h后,加入1μL 10mM DTNB溶液,该混合溶液继续静置6h,随后每隔1h加入100μL含有0.3MNaCl和0.1%十二烷基硫酸钠(SDS)的PBS缓冲液,共加5次。该混合液继续静置12h,随后用7500rpm,30min离心清洗1次,沉淀分散至1mL去离子水中。
在得到的1mL连有DNA序列和DTNB分子的纳米粒子中加入10μL 10mM的硝酸银溶液,包裹银壳层,搅拌30分钟后加入22μL 10mM的抗坏血酸溶液反应6h,随后用7000rpm,30min离心清洗1次,沉淀分散在1mL含有0.4μg/mL鲑鱼精DNA的PBS缓冲液中,4℃保存待用,即得到端粒SERS探针。
着丝粒SERS探针粒子的制备与端粒SERS探针粒子类似,仅将DNA序列替换为(5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTTAGCTTCTGTCTAGTTT-3'),将DTNB替换为3,5-DCT,其余步骤用量相同。即得到着丝粒SERS探针粒子。
3)原位杂交细胞样品准备
将HeLa细胞接种于35mm玻底培养皿,培养24小时。用4%多聚甲醛溶液室温固定细胞20分钟。用PBS缓冲液轻轻冲洗两次。加入1mL 100μg/mL RNase并于37℃孵育20分钟,用PBS轻轻冲洗两次。加入2mL 0.005%胃蛋白酶(溶剂为10mM HCl,使用前预热至45℃)并于37℃孵育5分钟,用PBS轻轻冲洗两次。向两个样品中加入2mL含0.4μg/mL鲑鱼精DNA的PBS溶液4℃封闭4h,随后用PBS轻轻冲洗3次。
5)SERS探针原位杂交
各取200μL端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子加入到1.6mL含0.4μg/mL鲑鱼精DNA的PBS溶液中混合均匀,于85℃预热5分钟。向两个玻底培养皿样品中分别加入2mL预热好的SERS探针,使其均匀覆盖玻底。85℃加热10分钟后,室温杂交6小时。用清洗溶液(2×SSC,0.1%吐温20)室温清洗两次,每次清洗15分钟,以去除未杂交的SERS探针粒子。去离子水清洗一次后用氩气将玻底培养皿吹干。
6)端粒长度测量
使用具有mapping功能的共焦拉曼显微镜采集细胞内的着丝粒SERS探针和端粒SERS探针的SERS光谱和图像,并分析端粒SERS探针与着丝粒SERS探针的SERS信号之比,获取端粒相对长度的信息。
该实施例中制备出的端粒SERS探针的SERS光谱如图3所示,着丝粒SERS探针的SERS光谱如图4所示。
实施例2:
按照实施例1中的方法制备端粒SERS探针粒子与着丝粒SERS探针粒子。使用HeLa细胞和MRC-5细胞,按照实施例1中的方法制备细胞样品。按照实施例1中的方法进行原位杂交以及SERS光谱和图像的采集。分析结果发现,MRC-5细胞的RT/C大于HeLa细胞的RT/C,说明MRC-5细胞的端粒比HeLa细胞的端粒长。
实施例3:
按照实施例1中的方法制备端粒SERS探针粒子与着丝粒SERS探针粒子。使用HeLa细胞进行实验。一组HeLa细胞与0.8mM端粒酶抑制剂叠氮胸苷(AZT)共培养2周,一组HeLa细胞未与端粒酶抑制剂共培养。按照实施例1中的方法制备细胞样品并进行原位杂交以及SERS光谱和图像的采集。分析结果发现,未与AZT共培养的HeLa细胞的RT/C大于与AZT共培养的HeLa细胞的RT/C,说明前者的端粒比后者长,即AZT有效地抑制了端粒酶的功能从而是的HeLa细胞的端粒发生缩短。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出:对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 东南大学
<120> 一种端粒长度测量方法
<130> 2015
<160> 2
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 28
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> 端粒互补的DNA序列
<400> 1
tttttttttt ccctaaccct aaccctaa 28
<210> 2
<211> 27
<212> DNA
<213> 人工序列
<223> 端粒互补的DNA序列
<400> 2
tttttttttt tagcttctgt ctagttt 27
Claims (3)
1.一种端粒长度测量方法,其特征在于:利用原位杂交SERS法实现端粒长度测量,将端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子加入到用固定剂固定好的待测细胞上,使端粒SERS探针粒子和着丝粒SERS探针粒子分别通过它们表面修饰的DNA序列原位杂交到待测细胞的端粒和着丝粒上,利用端粒SERS探针粒子的SERS信号强度与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,RT/C越小表示待测细胞的端粒长度越短;所述端粒SERS探针粒子是一种能与细胞的端粒序列杂交的SERS探针粒子,所述着丝粒SERS探针粒子是一种能与细胞的着丝粒序列杂交的SERS探针粒子;方法包括如下步骤:
步骤一:制备球形金纳米粒子A;
步骤二:在粒子A表面修饰与细胞的端粒互补的DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTCCCTAACCCTAACCCTAA-3',得到能与细胞的端粒序列杂交的金纳米粒子B1;在粒子A表面修饰与细胞的着丝粒互补的DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTTAGCTTCTGTCTAGTTT-3',得到能与细胞的着丝粒序列杂交的金纳米粒子B2;
步骤三:在粒子B1表面的空位上修饰拉曼报告分子,得到能产生SERS信号且能与细胞的端粒序列杂交的金纳米粒子C1;在粒子B2表面的空位上修饰拉曼报告分子,得到能产生SERS信号且能与细胞的着丝粒序列杂交的金纳米粒子C2;要求在粒子B1和粒子B2表面修饰的拉曼报告分子不同,使得粒子C1和粒子C2产生的SERS信号不同;
步骤四:在粒子C1表面包覆一层银壳形成端粒SERS探针粒子D1,银壳将粒子D1上的拉曼报告分子和富T碱基的一段DNA序列包埋在内,而用于杂交的一段DNA序列仍旧暴露在银壳外;在粒子C2表面包覆一层银壳形成着丝粒SERS探针粒子D2,银壳将粒子D2上的拉曼报告分子和富T碱基的一段DNA序列包埋在内,而用于杂交的一段DNA序列仍旧暴露在银壳外;银壳的厚度为2~3nm,通过银壳进一步增强SERS信号,但同时又不影响DNA序列的杂交功能;
步骤五:用固定剂固定好待测的细胞;
步骤六:将粒子D1和粒子D2同时加入到用固定剂固定好的待测细胞中,使粒子D1和粒子D2分别通过它们表面修饰的DNA序列杂交到待测细胞的端粒和着丝粒上;
步骤七:洗去待测细胞上多余的粒子D1和粒子D2;
步骤八:利用共焦拉曼显微镜分析待测细胞上的SERS光谱信号,进行SERS光谱和图像的采集;
步骤九:利用端粒SERS探针粒子的SERS信号强度与着丝粒SERS探针粒子的SERS信号强度之比RT/C表征待测细胞的端粒长度,RT/C越小表示待测细胞的端粒长度越短。
2.根据权利要求1所述的端粒长度测量方法,其特征在于:所述步骤二中,DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTCCCTAACCCTAACCCTAA-3'和DNA序列5'-SH(CH2)6TTTTTTTTTTTAGCTTCTGTCTAGTTT-3'的5'端均修饰了巯基,以使得两种DNA序列能够通过金硫键牢固地、共价地连接到粒子A的表面。
3.根据权利要求1所述的端粒长度测量方法,其特征在于:所述步骤三中,两种拉曼报告分子均含巯基,以使得拉曼报告分子能够通过金硫键牢固地、共价地连接到粒子A的表面。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510318821.4A CN105158125B (zh) | 2015-06-11 | 2015-06-11 | 一种端粒长度测量方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510318821.4A CN105158125B (zh) | 2015-06-11 | 2015-06-11 | 一种端粒长度测量方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105158125A CN105158125A (zh) | 2015-12-16 |
CN105158125B true CN105158125B (zh) | 2018-01-05 |
Family
ID=54799061
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201510318821.4A Active CN105158125B (zh) | 2015-06-11 | 2015-06-11 | 一种端粒长度测量方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN105158125B (zh) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105950760A (zh) * | 2016-06-21 | 2016-09-21 | 南开大学 | 同时检测单细胞mRNA表达水平和端粒长度的方法 |
CN108913754A (zh) * | 2018-07-26 | 2018-11-30 | 苏州呼呼健康科技有限公司 | 精子端粒长度的检测试剂、试剂盒及应用与检测方法 |
CN112592963A (zh) * | 2021-01-04 | 2021-04-02 | 东南大学 | 一种端粒和着丝粒超分辨成像方法及其探针 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102066941A (zh) * | 2008-05-07 | 2011-05-18 | 首尔大学校产学协力财团 | 用于生物传感器的新型Au/Ag核-壳复合材料 |
EP2511231A2 (en) * | 2009-12-11 | 2012-10-17 | Korea Research Institute Of Chemical Technology | Heterodimer core-shell nanoparticle in which raman-active molecules are located at a binding portion of a nanoparticle heterodimer, use thereof, and method for preparing same |
CN103173560A (zh) * | 2013-04-10 | 2013-06-26 | 北京博海通达生物科技有限公司 | 一种基于荧光定量pcr的端粒长度检测方法 |
CN103233071A (zh) * | 2013-04-27 | 2013-08-07 | 南京优而生物科技发展有限公司 | 一种测量端粒绝对长度的方法 |
CN104062276A (zh) * | 2014-06-06 | 2014-09-24 | 上海交通大学 | 基于dna快速组装技术的核壳拉曼探针的制备方法 |
-
2015
- 2015-06-11 CN CN201510318821.4A patent/CN105158125B/zh active Active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102066941A (zh) * | 2008-05-07 | 2011-05-18 | 首尔大学校产学协力财团 | 用于生物传感器的新型Au/Ag核-壳复合材料 |
EP2511231A2 (en) * | 2009-12-11 | 2012-10-17 | Korea Research Institute Of Chemical Technology | Heterodimer core-shell nanoparticle in which raman-active molecules are located at a binding portion of a nanoparticle heterodimer, use thereof, and method for preparing same |
CN103173560A (zh) * | 2013-04-10 | 2013-06-26 | 北京博海通达生物科技有限公司 | 一种基于荧光定量pcr的端粒长度检测方法 |
CN103233071A (zh) * | 2013-04-27 | 2013-08-07 | 南京优而生物科技发展有限公司 | 一种测量端粒绝对长度的方法 |
CN104062276A (zh) * | 2014-06-06 | 2014-09-24 | 上海交通大学 | 基于dna快速组装技术的核壳拉曼探针的制备方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
Assessing Telomere Length Using Surface Enhanced Raman Scattering;Shenfei Zong et al.;《Scientific Reports》;20141110;第4卷;第1-4、7页 * |
Quantifying Telomere Lengths of Human Individual Chromosome Arms by Centromere-Calibrated Fluorescence in Situ Hybridization and Digital Imaging;Sven Perner et al.;《American Journal of Pathology》;20031130;第163卷(第5期);第1751-1756页 * |
Trace analysis of mercury(II) ions using aptamer-modified Au/Ag core–shell nanoparticles and SERS spectroscopy in a microdroplet channel;Eunsu Chung et al.;《Lab on a Chip》;20131231;第13卷(第2期);第260-266页 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN105158125A (zh) | 2015-12-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103529023B (zh) | 一种端粒酶活性检测方法 | |
CN104388543B (zh) | 长链非编码rna loc401317的原位杂交探针、试剂及其应用 | |
Shi et al. | A supersmall single-cell nanosensor for intracellular K+ detection | |
CN104383559B (zh) | 长链非编码rnaloc401317的表达载体、抑瘤试剂及其应用 | |
CN101392286B (zh) | 基于纳米探针直接检测肺癌样品中p53基因突变的方法 | |
CN107860912B (zh) | 一种双功能化核酸适体介导的a549肿瘤细胞检测方法 | |
CN105158125B (zh) | 一种端粒长度测量方法 | |
CN108663354A (zh) | 一种基于dna-银纳米簇构建电致化学发光传感器、制备及其应用 | |
CN110243891A (zh) | 一种检测癌细胞的免标记均相电化学生物传感方法 | |
Zhou et al. | Color resolution improvement of the dark-field microscopy imaging of single light scattering plasmonic nanoprobes for microRNA visual detection | |
CN106591423A (zh) | 一种基于银纳米探针的端粒酶活性比色检测方法 | |
Shao et al. | Phycocyanin-carbon dots nanoprobe for the ratiometric fluorescence determination of peroxynitrite | |
CN111948391A (zh) | 基于纳米金属有机框架的阵列传感器用于结肠癌的组织学诊断 | |
CN106940372A (zh) | 检测端粒酶的亚甲基蓝、上转换纳米粒修饰纤维化纸传感器及其制备方法 | |
Qian et al. | Combined SERS microfluidic chip with gold nanocone array for effective early lung cancer prognosis in mice model | |
Ameer-Beg et al. | Special issue on fluorescence lifetime imaging (FLIM): from fundamentals to applications | |
CN105210750B (zh) | 一种基于叶绿素荧光动力筛选广适性水稻的方法 | |
CN105506154A (zh) | 原位杂交检测鼻咽癌组织中长链非编码rna loc284454试剂的应用 | |
CN108998503A (zh) | 一种Oligo探针及其制备方法与应用 | |
CN101666805A (zh) | 特异性蛋白检测芯片的制备方法 | |
WO2017114010A1 (zh) | Top2a基因检测探针及其制备方法和试剂盒 | |
CN113567402B (zh) | 一种cAMP荧光探针G-Flamp1的应用 | |
CN114350755B (zh) | 基于半导体聚合物点的高灵敏度microRNA荧光原位杂交定量标记探针及其制备方法 | |
CN118240921B (zh) | 一种靶标循环放大触发的核-卫星纳米组装体系及其制备方法和应用 | |
CN105483273A (zh) | 检测鼻咽癌患者血清中长链非编码rna loc284454表达量的试剂的应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |