CN105154426B - 一种木聚糖酶的固定化方法 - Google Patents

一种木聚糖酶的固定化方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105154426B
CN105154426B CN201510575355.8A CN201510575355A CN105154426B CN 105154426 B CN105154426 B CN 105154426B CN 201510575355 A CN201510575355 A CN 201510575355A CN 105154426 B CN105154426 B CN 105154426B
Authority
CN
China
Prior art keywords
bacteria cellulose
preparation
cellulose
chitosan
fixation
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201510575355.8A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105154426A (zh
Inventor
汤卫华
殷海松
魏纪平
陈珊
张乐
龙尾
程秀玮
苑鹏
黄艳玲
高芦宝
闫雪冰
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tianjin Modern Vocational Technology College
Original Assignee
Tianjin Modern Vocational Technology College
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tianjin Modern Vocational Technology College filed Critical Tianjin Modern Vocational Technology College
Priority to CN201510575355.8A priority Critical patent/CN105154426B/zh
Publication of CN105154426A publication Critical patent/CN105154426A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105154426B publication Critical patent/CN105154426B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

本发明提供一种木聚糖酶的固定化方法,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,主要步骤包括细菌纤维素种子培养,细菌纤维素的制备,细菌纤维素的打浆,细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备;将细菌纤维素/壳聚糖微球和戊二醛进行交联,将含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖微球和木聚糖酶溶液在4℃下进行交联反应,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶。本发明制备得到的固定化酶其活力回收率达75.3%,相对酶活力达到80.5%,该固定化酶连续使用5次后,酶活力保持83.6%,具有较好的稳定性,该固定化酶具有较高的应用价值。

Description

一种木聚糖酶的固定化方法
技术领域
本发明涉及一种酶的固定化方法,尤其涉及一种木聚糖酶的固定化方法。
背景技术
木聚糖酶是一类降解木聚糖分子的复杂酶系,组成比较复杂,是木聚糖水解酶系中最关键的水解酶,通过水解木糖分子β-1,4-糖苷键,将木聚糖水解为木寡糖和木二糖等低木聚糖以及少量木糖和阿拉伯糖。木聚糖酶包括内切β-1,4-木聚糖酶、β-D-木糖苷酶、α-L-呋喃型阿拉伯糖苷酶、乙酰木聚糖酯酶、酚酸酯酶等。木聚糖酶在自然界中分布相当广泛,在海洋及陆地细菌、海洋藻类、真菌等中存在,已报道的能产木聚糖酶的微生物有细菌、链霉菌、曲霉和青霉等,目前使用的木聚糖酶主要是利用米曲酶、黑曲酶、芽孢杆菌和酵母菌等发酵后,经提取、浓缩等工艺加工而成。但是游离的木聚糖酶稳定性差,保质期短,重复利用率低,应用成本高,因此木聚糖酶的广泛应用受到限制。
酶的固定化是通过物理或者化学的方法,将酶分子束缚在载体上,使其既保持酶的天然活性,又便于与反应液分离,可以反复使用。固定化酶具有较高的酶活性、稳定性高,可反复使用,耐一定强度的酸、碱、热及有机溶剂。作为固定化酶的一部分,固定化酶的载体材料对固定化酶的各种性能都有着巨大的影响,壳聚糖因其分子中存在丰富的羟基和氨基使其易于进行化学反应而赋予独特性能,特别是丰富的氨基与各种蛋白质的亲和力非常高,是一种良好的酶固定化载体,并且不存在残存单体,使得其作为载体较其他高聚物有更大的优越性,但是现有技术中以壳聚糖为载体并配合交联剂及选择合适的固定化酶制备工艺,虽然固定化木聚糖酶的转化率、活力回收率均有所提高,但是固定化酶的力学性能、稳定性差,并且现有技术中没有涉及细菌纤维素/壳聚糖复合微球为载体来实现酶的固定化的技术。
发明内容:
针对上述现有技术中的存在的问题,本发明提供一种新型复合固定化酶载体,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为载体,通过交联剂交联木聚糖酶与细菌纤维素/壳聚糖复合微球,增强复合凝胶的机械强度、亲水性和稳定性。
为达到上述目的,本发明通过如下技术方案来实现:
一种木聚糖酶的固定化方法,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,其中固定化载体的制备包括种子培养、细菌纤维素的制备、细菌纤维素的打浆和细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备。
进一步,固定化载体的制备通过以下步骤实现:
(1)种子培养:取活化的木醋杆菌CGMCC No.1.1812斜面种子,接入在HS培养基中,在30℃下,转速为160r/min,振荡培养24h;
(2)细菌纤维素的制备:细菌纤维素为膜式细菌纤维素或絮状细菌纤维素,当细菌纤维素为膜式细菌纤维素,则制备方法为:以2~10%的接种量接入HS发酵培养基中,30℃下培养2~6d,形成细菌纤维素凝胶,用0.1mol/l的NaOH溶液煮沸处理6h,用蒸馏水清洗至细菌纤维素凝胶的pH为7.0,将该细菌纤维素凝胶在105℃下干燥至恒重,得到细菌纤维素干膜;当细菌纤维素为絮状细菌纤维素,则制备方法为:以2~10%的接种量接入HS发酵培养基中,30℃下培养2~6d,形成细菌纤维素凝胶;
(3)细菌纤维素的打浆:当细菌纤维素为膜式细菌纤维素时,将步骤(2)中制备得到的细菌纤维素干膜与4%醋酸溶液置于打浆机中,细菌纤维素干膜的质量与4%醋酸溶液的体积之比为1:40,转速为300~1000r/min,时间5~15min,形成混悬液;当细菌纤维素为絮状细菌纤维素时,将步骤(2)中制备得到的细菌纤维素凝胶浸泡于0.1mol/l的NaOH溶液中,100℃煮沸6h,用蒸馏水或0.1M的醋酸溶液冲洗,至pH值为7.0,将细菌纤维素凝胶与4%醋酸溶液置于打浆机中,其中细菌纤维素湿重与4%醋酸溶液的体积之比为1:4,转速为300~1000r/min,时间5~15min,形成混悬液;
(4)细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备:称取2~4g壳聚糖,加入步骤(3)中制备得到的细菌纤维素混悬液25~100ml,充分溶解得壳聚糖-细菌纤维素混合液,用注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应1h以上,用PH值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,备用。
进一步,固定化木聚糖酶的制备通过以下步骤实现:
(1)称取细菌纤维素/壳聚糖复合微球1~2g,加入0.5%戊二醛10~20ml,缓慢搅拌30分钟,室温下静置12小时,离心去上清液,用pH值为6.0的Tris-HCl 缓冲液洗去多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球;
(2)称取步骤(1)中得到的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1~2g,加入10~20ml木聚糖酶溶液,搅拌均匀,4℃下交联反应12小时,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶。
进一步,固定化载体的制备方法中步骤(4)细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备方法为:称取2~3g壳聚糖,加入步骤(3)中制备得到的细菌纤维素混悬液25~50ml,充分溶解得壳聚糖-细菌纤维素混合液,用注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用PH值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,备用。
进一步,固定化载体的制备方法中步骤(4)细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备方法为:称取2g壳聚糖,加入步骤(3)中制备得到的细菌纤维素混悬液25ml,充分溶解得壳聚糖-细菌纤维素混合液,用注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用PH值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,备用。
进一步,固定化木聚糖酶的制备方法中:步骤(2):称取步骤(1)中制备得到的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1.5~2g,加入15~20ml木聚糖酶溶液,搅拌均匀,4℃下交联反应12小时,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶。
进一步,固定化木聚糖酶的制备方法步骤(2)中木聚糖酶的浓度为0.25~2.0mg/ml。
本发明还提供一种固定化木聚糖酶,是以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,该固定化木聚糖酶是用上述木聚糖酶的固定化方法制备得到。
本发明的有益效果:
(1)细菌纤维素/壳聚糖微球的制备过程中,不需要采用特殊的添加方法,直接将打浆后的细菌纤维素添加至壳聚糖中,从而提高固定化酶的亲水性、稳定性和机械强度。
(2)木聚糖酶经细菌纤维素/壳聚糖微球固定化后,其活力回收率达75.3%,相对酶活力达到80.5%,该固定化酶连续使用5次后,酶活力保持83.6%,具有 较好的稳定性,该固定化酶具有较高的应用价值。
具体实施方式:
下面结合具体实施例对本发明的内容进一步说明。
实施例1
本实施例的一种木聚糖酶的固定化方法,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,步骤如下:
(1)固定化载体的制备:
a.种子培养:将购自中国工业微生物菌种保藏管理中心的木醋杆菌CGMCCNo.1.1812斜面种子接入装有100ml HS种子培养液中,在30℃下转速为160rpm下振荡培养24h,得到种子培养液;
b.细菌纤维素的制备:以2%(v/v)的接种量接入装有HS发酵培养基的锥形瓶中,30℃下在培养箱中静置培养6d,形成细菌纤维素凝胶;
c.细菌纤维素的打浆:取步骤b中制备的细菌纤维素凝胶浸泡于0.1mol/l的NaOH溶液中,100℃煮沸6h,用蒸馏水冲洗,至pH值为7.0,将细菌纤维素凝胶与4%醋酸溶液置于打浆机中,其中细菌纤维素湿重与4%醋酸溶液的体积之比为1:4,置于打浆机中,转速为300r/min,处理时间为15min,得到细菌纤维素混悬液;
d.细菌纤维素/壳聚糖微球的制备:称取壳聚糖2g,加入步骤c制备的细菌纤维素混悬液50ml,用玻璃棒搅拌混合均匀,制备得到壳聚糖-细菌纤维素混合液。用10ml的注射器吸取混合液滴入4mol/LNaOH溶液中,充分反应6h,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,得到细菌纤维素/壳聚糖微球微球;
(2)固定化木聚糖酶的制备:
a.称取步骤(1)制备的细菌纤维素/壳聚糖微球1g,加入0.5%戊二醛10ml,缓慢搅拌30min,室温下静置过夜,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗去多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖微球;
b.用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液溶解木聚糖酶,得浓度为0.25mg/ml的木聚糖酶溶液,量取木聚糖酶溶液10.0ml,加入步骤a制备的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖微球1.0g,4℃交联反应12h,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木 聚糖酶;
(3)对制备得到的细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的酶活力、酶活力回收率进行测定,测得细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的相对酶活力为78%,酶活力回收率为70%,连续使用5次后,酶活力仍保持80%。
实施例2
本实施例的一种木聚糖酶的固定化方法,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,步骤如下:
(1)固定化载体的制备:
a.种子培养:将购自中国工业微生物菌种保藏管理中心的木醋杆菌CGMCCNo.1.1812斜面种子接入装有100ml HS种子培养液中,在30℃下转速为160rpm下振荡培养24h,得到种子培养液;
b.细菌纤维素的制备:以10%(v/v)的接种量接入装有HS发酵培养基的锥形瓶中,30℃下在培养箱中静置培养2d,形成细菌纤维素凝胶;
c.细菌纤维素的打浆:取步骤b中制备的细菌纤维素凝胶浸泡于0.1mol/l的NaOH溶液中,100℃煮沸6h,用0.1mol/l的醋酸溶液冲洗,至pH值为7.0,将细菌纤维素凝胶与4%醋酸溶液置于打浆机中,其中细菌纤维素湿重与4%醋酸溶液的体积之比为1:4,置于打浆机中,转速为1000r/min,处理时间为5min,得到细菌纤维素混悬液;
d.细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备:称取壳聚糖2g,加入步骤c制备的细菌纤维素混悬液25ml,用玻璃棒搅拌混合均匀,制备得到壳聚糖-细菌纤维素混合液。用10ml的注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,得到细菌纤维素/壳聚糖微球微球;
(2)固定化木聚糖酶的制备
a.称取步骤(1)制备的细菌纤维素/壳聚糖复合微球2g,加入0.5%戊二醛20ml,缓慢搅拌30min,室温下静置过夜,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗去多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖微球;
b.用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液溶解木聚糖酶,得浓度为2mg/ml的木聚 糖酶溶液,量取木聚糖酶溶液20ml,加入步骤a制备的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1g,4℃交联反应12h,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶;
(3)对制备得到的细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的酶活力、酶活力回收率进行测定,测得细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的相对酶活力为80.5%,酶活力回收率为75.3%,连续使用5次后,酶活力仍保持83.6%。
实施例3
本实施例的一种木聚糖酶的固定化方法,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,步骤如下:
(1)固定化载体的制备:
a.种子培养:将购自中国工业微生物菌种保藏管理中心的木醋杆菌CGMCCNo.1.1812斜面种子接入装有100ml HS种子培养液中,在30℃下转速为160rpm下振荡培养24h,得到种子培养液;
b.细菌纤维素的制备:以5%(v/v)的接种量接入装有HS发酵培养基的锥形瓶中,30℃下在培养箱中静置培养4d,形成细菌纤维素凝胶;
c.细菌纤维素的打浆:取步骤b中制备的细菌纤维素凝胶浸泡于0.1mol/l的NaOH溶液中,100℃煮沸6h,用0.1mol/l的醋酸溶液冲洗,至pH值为7.0,将细菌纤维素凝胶与4%醋酸溶液置于打浆机中,其中细菌纤维素湿重与4%醋酸溶液的体积之比为1:4,置于打浆机中,转速为500r/min,处理时间为10min,得到细菌纤维素混悬液;
d.细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备:称取壳聚糖2g,加入步骤c制备的细菌纤维素混悬液25ml,用玻璃棒搅拌混合均匀,制备得到壳聚糖-细菌纤维素混合液。用10ml的注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,得到细菌纤维素/壳聚糖复合微球;
(2)固定化木聚糖酶的制备:
a.称取步骤(1)制备的细菌纤维素/壳聚糖复合微球2g,加入0.5%戊二醛20ml,缓慢搅拌30min,室温下静置过夜,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗去 多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球;
b.用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液溶解木聚糖酶,得浓度为0.25mg/ml的木聚糖酶溶液,量取木聚糖酶溶液20ml,加入步骤a制备的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球2g,4℃交联反应12h,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶;
(3)对步骤(2)制备得到的细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的酶活力、酶活力回收率进行测定,测得细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的相对酶活力为80%,酶活力回收率为75%,连续使用5次后,酶活力仍保持83%。
实施例4
本实施例的一种木聚糖酶的固定化方法,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,步骤如下:
(1)固定化载体的制备:
a.种子培养:将购自中国工业微生物菌种保藏管理中心的木醋杆菌CGMCCNo.1.1812斜面种子接入装有100ml HS种子培养液中,在30℃下转速为160rpm下振荡培养24h,得到种子培养液;
b.细菌纤维素的制备:以2%(v/v)的接种量接入装有HS发酵培养基的锥形瓶中,30℃下在培养箱中静置培养6d,形成细菌纤维素凝胶,用0.1mol/l的NaOH溶液煮沸处理6h后,用蒸馏水清洗至细菌纤维素凝胶的pH为7.0,将该细菌纤维素凝胶在105℃下干燥至恒重,得到细菌纤维素干膜;
c.细菌纤维素打浆:称取步骤b中制备的细菌纤维素干膜,细菌纤维干膜质量与4%醋酸溶液的质量/体积之比为1:40的比例置于打浆机中,转速为1000r/min,处理时间为5min,得到细菌纤维素混悬液;
d.细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备:称取壳聚糖3g,加入步骤c制备的细菌纤维素混悬液75ml,用玻璃棒搅拌混合均匀,制备得到壳聚糖-细菌纤维素混合液。用10ml的注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,得到细菌纤维素/壳聚糖复合微球;
(2)固定化木聚糖酶的制备:
a.称取步骤(1)制备的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1.5g,加入0.5%戊二醛15ml,缓慢搅拌30min,室温下静置过夜,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗去多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球;
b.用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液溶解木聚糖酶,得浓度为1.5mg/ml的木聚糖酶溶液,量取木聚糖酶溶液15ml,加入步骤a制备的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1.5g,4℃交联反应12h,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶;
(3)对步骤(2)制备得到的细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的酶活力、酶活力回收率进行测定,测得细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的相对酶活力为79%,酶活力回收率为74%,连续使用5次后,酶活力仍保持82%。
实施例5
本实施例的一种木聚糖酶的固定化方法,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,步骤如下:
(1)固定化载体的制备:
a.种子培养:将购自中国工业微生物菌种保藏管理中心的木醋杆菌CGMCCNo.1.1812斜面种子接入装有100ml HS种子培养液中,在30℃下转速为160rpm下振荡培养24h,得到种子培养液;
b.细菌纤维素的制备:以8%(v/v)的接种量接入装有HS发酵培养基的锥形瓶中,30℃下在培养箱中静置培养2d,形成细菌纤维素凝胶,用0.1mol/l的NaOH溶液煮沸处理6h后,用蒸馏水清洗至细菌纤维素凝胶的pH为7.0,将该细菌纤维素凝胶在105℃下干燥至恒重,得到细菌纤维素干膜;
c.细菌纤维素的打浆:称取步骤b中制备的细菌纤维素干膜,细菌纤维干膜质量与4%醋酸溶液的质量/体积之比为1:40的比例置于打浆机中,转速为300r/min,处理时间为15min,得到细菌纤维素混悬液;
d.细菌纤维素/壳聚糖微球的制备:称取壳聚糖4g,加入步骤c中制备的细菌纤维素混悬液100ml,用玻璃棒搅拌混合均匀,制备得到壳聚糖-细菌纤维素 混合液。用10ml的注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用Tris-HCl缓冲液(pH 6.0)洗涤,离心,真空干燥,得到细菌纤维素/壳聚糖微球微球;
(2)固定化木聚糖酶的制备:
a.称取步骤(1)制备的细菌纤维素/壳聚糖微球1.5g,加入0.5%戊二醛15ml,缓慢搅拌30min,室温下静置过夜,用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液洗去多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖微球;
b.用PH为6.0的Tris-HCl缓冲液溶解木聚糖酶,得浓度为1.5mg/ml的木聚糖酶溶液,量取木聚糖酶溶液15ml,加入步骤a制备的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖微球1.5g,4℃交联反应12h,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶;
(3)对制备得到的细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶的酶活力、酶活力回收率进行测定,测得细菌纤维素/壳聚糖复合微球固定化木聚糖酶相对酶活力达到80.3%,活力回收率达75.1%,连续使用5次后,酶活力仍保持83.2%。
以上所述仅为本发明创造的较佳实施例而已,并不用以限制本发明创造,凡在本发明创造的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明创造的保护范围之内。

Claims (6)

1.一种木聚糖酶的固定化方法,其特征在于,以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体,包括固定化载体的制备和固定化木聚糖酶的制备,其中固定化载体的制备包括种子培养、细菌纤维素的制备、细菌纤维素的打浆和细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备;
固定化载体的制备通过以下步骤实现:
(1)种子培养:取活化的木醋杆菌CGMCC No.1.1812斜面种子,接入在HS培养基中,在30℃下,转速为160r/min,振荡培养24h;
(2)细菌纤维素的制备:细菌纤维素为膜式细菌纤维素或絮状细菌纤维素,当细菌纤维素为膜式细菌纤维素,则制备方法为:以2~10%的接种量接入HS发酵培养基中,30℃下培养2~6d,形成细菌纤维素凝胶,用0.1mol/l的NaOH溶液煮沸处理6h,用蒸馏水清洗至细菌纤维素凝胶的pH为7.0,将该细菌纤维素凝胶在105℃下干燥至恒重,得到细菌纤维素干膜;当细菌纤维素为絮状细菌纤维素,则制备方法为:以2~10%的接种量接入HS发酵培养基中,30℃下培养2~6d,形成细菌纤维素凝胶;
(3)细菌纤维素的打浆:当细菌纤维素为膜式细菌纤维素时,将步骤(2)中制备得到的细菌纤维素干膜与4%醋酸溶液置于打浆机中,细菌纤维素干膜的质量与4%醋酸溶液的体积之比为1:40,转速为300~1000r/min,时间5~15min,形成混悬液;当细菌纤维素为絮状细菌纤维素时,将步骤(2)中制备得到的细菌纤维素凝胶浸泡于0.1mol/l的NaOH溶液中,100℃煮沸6h,用蒸馏水或0.1mol/l的醋酸溶液冲洗,至pH值为7.0,将细菌纤维素凝胶与4%醋酸溶液置于打浆机中,其中细菌纤维素湿重与4%醋酸溶液的体积之比为1:4,转速为300~1000r/min,时间5~15min,形成混悬液;
(4)细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备:称取2~4g壳聚糖,加入步骤(3)中制备得到的细菌纤维素混悬液25~100ml,充分溶解得壳聚糖-细菌纤维素混合液,用注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应1 h以上,用PH 值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,备用;
固定化木聚糖酶的制备通过以下步骤实现:
(1)称取细菌纤维素/壳聚糖复合微球1~2g,加入0.5%戊二醛10~20ml,缓慢搅拌30分钟,室温下静置12小时,离心去上清液,用pH值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗去多余的戊二醛,留沉淀,离心、真空干燥,得含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球;
(2)称取步骤(1)中得到的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1~2g,加入10~20ml木聚糖酶溶液,搅拌均匀,4℃下交联反应12小时,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶。
2.根据权利要求1所述的一种木聚糖酶的固定化方法,其特征在于:固定化载体的制备中的步骤(4)中细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备方法为:称取2~3g壳聚糖,加入步骤(3)中制备得到的细菌纤维素混悬液25~50ml,充分溶解得壳聚糖-细菌纤维素混合液,用注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用pH 值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,备用。
3.根据权利要求2所述的一种木聚糖酶的固定化方法,其特征在于:固定化载体的制备中的步骤(4)中细菌纤维素/壳聚糖复合微球的制备方法为:称取2g壳聚糖,加入步骤(3)中制备得到的细菌纤维素混悬液25ml,充分溶解得壳聚糖-细菌纤维素混合液,用注射器吸取混合液滴入4mol/L NaOH溶液中,充分反应6h,用PH 值为6.0的Tris-HCl缓冲液洗涤,离心,真空干燥,备用。
4.根据权利要求1所述的一种木聚糖酶的固定化方法,其特征在于:固定化木聚糖酶的制备中步骤(2)为:称取步骤(1)中制备得到的含交联醛基的细菌纤维素/壳聚糖复合微球1.5~2g,加入15~20ml木聚糖酶溶液,搅拌均匀,4℃下交联反应12小时,离心,沉淀,真空干燥,得固定化木聚糖酶。
5.根据权利要求1或4任一项权利要求所述的一种木聚糖酶的固定化方法,其特征在于:固定化木聚糖酶的制备中的步骤(2)中所述木聚糖酶的浓度为0.25~2.0mg/ml。
6.一种固定化木聚糖酶,其特征在于以细菌纤维素/壳聚糖复合微球为固定化载体;通过如权利要求 1~5 任一项所述木聚糖酶的固定化方法制备而成。
CN201510575355.8A 2015-09-10 2015-09-10 一种木聚糖酶的固定化方法 Expired - Fee Related CN105154426B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510575355.8A CN105154426B (zh) 2015-09-10 2015-09-10 一种木聚糖酶的固定化方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510575355.8A CN105154426B (zh) 2015-09-10 2015-09-10 一种木聚糖酶的固定化方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105154426A CN105154426A (zh) 2015-12-16
CN105154426B true CN105154426B (zh) 2018-09-18

Family

ID=54795471

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201510575355.8A Expired - Fee Related CN105154426B (zh) 2015-09-10 2015-09-10 一种木聚糖酶的固定化方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105154426B (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107338239A (zh) * 2017-07-29 2017-11-10 宁夏大学 一种糠醛渣固定化载酶材料的制备方法及其应用和固定化酶的方法
CN110669754A (zh) * 2019-10-29 2020-01-10 华侨大学 一种3d打印木聚糖酶催化剂的方法及其应用
CN111359589B (zh) * 2020-03-22 2022-07-26 华南理工大学 一种壳聚糖/细菌纤维素复合气凝胶吸附剂及其制备方法与应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101967471A (zh) * 2009-11-10 2011-02-09 东华大学 一种以细菌纤维素小球/膜块为载体制备固定化酶的方法
CN103028117A (zh) * 2012-12-24 2013-04-10 深圳先进技术研究院 细菌纤维素凝胶复合材料的制备方法
CN103536954A (zh) * 2013-10-22 2014-01-29 山东颐诺生物科技有限公司 一种交联海藻酸-细菌纤维素海绵及其制备方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104711302A (zh) * 2015-03-17 2015-06-17 南京荣之盛生物科技有限公司 一种利用海藻酸钙小球调节细菌纤维素结构的方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101967471A (zh) * 2009-11-10 2011-02-09 东华大学 一种以细菌纤维素小球/膜块为载体制备固定化酶的方法
CN103028117A (zh) * 2012-12-24 2013-04-10 深圳先进技术研究院 细菌纤维素凝胶复合材料的制备方法
CN103536954A (zh) * 2013-10-22 2014-01-29 山东颐诺生物科技有限公司 一种交联海藻酸-细菌纤维素海绵及其制备方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Application of bacterial cellulose pellets in enzyme immobilization;Sheng-Chi Wu,Ying-Ke Lia;《Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic》;20080104;103-108 *
Immobilisation of heparin on bacterial cellulose-chitosan nano-fibres surfaces via the cross-linking technique;J. Wang Y.,Wan Y. Huang;《IET Nanobiotechnol》;20121231;第6卷(第2期);52-57 *
细菌纤维素微球固定化α淀粉酶的研究;赵昆 等;《四川大学学报(自然科学版)》;20110131;第48卷(第1期);213-218 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN105154426A (zh) 2015-12-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sanchez-Ramirez et al. Cellulases immobilization on chitosan-coated magnetic nanoparticles: application for Agave Atrovirens lignocellulosic biomass hydrolysis
Andriani et al. Immobilization of cellulase from newly isolated strain Bacillus subtilis TD6 using calcium alginate as a support material
Shinde et al. Immobilization and stabilization of alcohol dehydrogenase on polyvinyl alcohol fibre
Li et al. Preparation of immobilized lipase by modified polyacrylonitrile hollow membrane using nitrile-click chemistry
Han et al. Immobilization of lipase from pseudomonas fluorescens on porous polyurea and its application in kinetic resolution of racemic 1-phenylethanol
Zhou Immobilization of cellulase on a reversibly soluble− insoluble support: Properties and application
CN105154426B (zh) 一种木聚糖酶的固定化方法
Han et al. Recyclable soluble–insoluble upper critical solution temperature-type poly (methacrylamide-co-acrylic acid)–cellulase biocatalyst for hydrolysis of cellulose into glucose
CN102260662B (zh) 用于固定化酶的载体及其用途和固定有酶的载体
CN109554360A (zh) 一种利用海藻酸钠复合材料包埋菌体的方法
CN102732475A (zh) 一种用于细胞培养的微载体、其制备方法及检测方法
Zhou et al. Immobilization of cellulase in the non-natural ionic liquid environments to enhance cellulase activity and functional stability
CN103756992B (zh) 一种巧克力微杆菌磁性细胞及其制备方法和应用
CN106282150A (zh) 一种以细菌纤维素为载体的固定化酶及其制备方法
de Souza Lima et al. Functionalized kaolin as support for endoglucanase immobilization
CN106400466B (zh) 一种改性碳纤维在固定化中的应用
CN106434622A (zh) 一种共固定化酶的制备方法
Jiang et al. Production of (R)-(−)-mandelic acid with nitrilase immobilized on D155 resin modified by l-lysine
Zhou et al. Directly covalent immobilization of Candida antarctica lipase B on oxidized aspen powder by introducing poly‑lysines: An economical approach to improve enzyme performance
CN113308457B (zh) 一种共价有机骨架封装酶的制备方法
CN105154427B (zh) 一种β-半乳糖苷酶的固定化方法
CN104694454B (zh) 一种用于细胞培养的微载体及其制备方法和应用
Wu et al. Combination of adsorption and cellulose derivative membrane coating for efficient immobilization of laccase
Li et al. Functionalized poplar powder as a support material for immobilization of enoate reductase and a cofactor regeneration system
CN111303491A (zh) 细菌纤维素/聚合多巴胺复合纳米材料的制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20180918

Termination date: 20190910

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee