CN105092495A - 一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法 - Google Patents

一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105092495A
CN105092495A CN201510473242.7A CN201510473242A CN105092495A CN 105092495 A CN105092495 A CN 105092495A CN 201510473242 A CN201510473242 A CN 201510473242A CN 105092495 A CN105092495 A CN 105092495A
Authority
CN
China
Prior art keywords
algae
chlorophyll
biomass
preparation
sample
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201510473242.7A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105092495B (zh
Inventor
赵洋
李新荣
贾荣亮
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Northwest Institute of Eco Environment and Resources of CAS
Original Assignee
Cold and Arid Regions Environmental and Engineering Research Institute of CAS
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Cold and Arid Regions Environmental and Engineering Research Institute of CAS filed Critical Cold and Arid Regions Environmental and Engineering Research Institute of CAS
Priority to CN201510473242.7A priority Critical patent/CN105092495B/zh
Publication of CN105092495A publication Critical patent/CN105092495A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105092495B publication Critical patent/CN105092495B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法，涉及生物学领域。该方法包括藻类结皮样品采样、过筛、清洗、藻类培养、叶绿素a和b的测定、标准曲线绘制和藻类生物量（自然发育）测定步骤。其中藻类培养采用BG11培养基进行培养，所用藻中为混合藻类；叶绿素a和b的测定采用混合液法提取叶绿素（提取液：无水乙醇：丙酮：水=4.5:4.5:1）；标准曲线回归了藻类叶绿素a和b总量与藻类生物量间的关系；自然发育藻类生物量的测定通过叶绿素a和b总量与培养藻类生物量间的标准曲线进行换算。本发明实现了藻类结皮与维管束植物生物量间的直接比较，为更准确的计算藻类结皮生产力及其在生态系统中的作用提供了可靠途径。

Description

一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法
技术领域
本发明涉及一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法，适用于藻类结皮生物量的测定，其目的是实现藻类结皮与维管束植物生物量间的比较，属于生物学领域。
背景技术
生物土壤结皮是荒漠生态系统的主要构建者和生态系统工程师，是荒漠生态系统组成和地表景观的重要特征。他们是土壤表层微小颗粒被那些生存在浅层土壤里(或有时生活在土表层)，甚至到高出土表几毫米处的细菌、微小真菌、蓝藻、硅藻或绿藻、地衣和苔藓植物，以及许多景观中常见的非维管束植物成分利用菌丝体、假根和分泌物“胶结”形成的复杂而相对稳定团聚结构，厚度介于3-10mm。生物土壤结皮的覆盖在干旱区占活体覆盖面积的40%，在一些受干扰较少的极端环境群落中，生物土壤结皮甚至达到了70%的活体盖度。大多数荒漠生态系统是由非生物因素调控和胁迫的系统，尤其因受水分的限制，地表不可能支撑大面积、相对均一而连续分布的维管束植物群落；植物群落斑块状的分布为生物土壤结皮的拓殖和覆盖提供了空间和适宜的生态位，维管束植物和生物土壤结皮形成了镶嵌分别的格局。
在生物土壤结皮的研究中，采用叶绿素a+b的含量评估其生物量的方法被广泛认可。然而，由于生物土壤结皮结皮和土壤紧密的胶结在一起很难直接称取其生物量，因此，无法比较藻类结皮和维管束植物生物量间的关系，也无法准确评估藻类结皮生物量对生态系统生产力的贡献率。鉴于此，如何测量藻类结皮实际生物量，将是比较藻类结皮和维管束植物生物量关系的关键技术。
发明内容
基于上述，本发明的目的在于提供一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法，用于测定藻类结皮实际生物量。
本发明的目的是通过以下技术方案来实现：
一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法，其步骤是：
a.藻类结皮样品采样：选择发育良好的藻类结皮，用铁铲将藻类结皮沿地表轻轻铲下，并装入信封；
b.过筛：用手将采集的藻类结皮样品揉碎，过0.2mm筛子，待用；
c.清洗：取过筛后的藻类结皮样品20g，浸泡在50ml蒸馏水中，静置20min。将浸泡后的藻类结皮样品放在纱布上，在蒸馏水中慢慢漂洗，直至样品中的杂质和土壤全部清洗干净，剩下的为混合藻类悬浮液;
d.藻类培养：取混合藻类悬浮液2-5ml，加入装有300mlBG11培养液的三角烧瓶中，置于转速为140转/min摇床上进行初步培养，室内温度控制在25-30℃，光强控制在550lx-650lx，室内培养时间7-10天后，将进行了初步培养的藻类悬浮液转移至室外进行培养；室外培养装置为100L的塑料收纳箱，每个箱子中装有BG11培养液60L，并有增氧设施1套；室外培养7-8天即可收获；将收获的藻类置于阴凉通风处，自然干燥后得到干燥藻类，待用；
e.叶绿素a和b的测定：将上述的干燥藻类，先置于65℃烘箱中，待样品质量恒定后取出，置于研钵中，研磨成粉末状，叶绿素a和b的测定采用混合液法提取叶绿素，叶绿素的提取采用混合液法（提取液：无水乙醇：丙酮：水=4.5:4.5:1）；分别称取研磨后的藻粉0.005、0.01、0.05、0.1、0.5、1.0、2.0、5.0g，将称好的藻粉放入盛有10mL提取液试管内，塞上橡皮塞，每处理设3次重复；放入45℃的恒温箱中，保持24h，直至藻粉变成白色；取出，比色，测定D645、D652、D663的吸光值；计算叶绿素含量（mg/g，Fw）；叶绿素a含量（mg/g，Fw）=（12.71*D663-2.59*D645）*V/1000/m；叶绿素b含量（mg/g，Fw）=（22.88*D645-4.67*D663）*V/1000/m；叶绿素总量（mg/g，Fw）=（20.29*D645+8.04*D663）*V/1000/m。其中，m表示藻粉干重；V表示提取液体积；
f.标准曲线绘制：对叶绿素a+b与已知藻类生物量进行回归，选取回归系数最高的方程作为标准曲线；
g.自然发育藻类生物量的测定：采取单位面积的藻类结皮，采用f）步骤，描述的叶绿素的测定方法测定叶绿素a+b，根据标准曲线计算出藻类结皮的生物量。
上述藻类培养中的BG11培养液，每升BG11培养液组分如下为：MgSO4·7H2O0.07g，K2HPO40.04g，CaCl2·2H2O0.036g，NaNO31.5g，柠檬酸0.006g，柠檬酸铁胺0.006g，乙二胺四乙酸钠盐（EDTA）0.001g，CaCO30.02g；微量元素A5+Co溶液1mL；其中，A5+Co溶液中每升蒸馏水中加入H3BO32.86g，MnCl2·4H2O1.86g，ZnSO4·7H2O0.22g，Na2MoO4·2H2O0.39g，CuSO4·5H2O0.08g，Co(NO3)2·6H2O0.05g。
本发明的优点是：
1.操作简单，藻种容易采集，藻类培养避免了传统培养的提纯过程，培养方法简单，培养环境容易实现。
2.结果准确，采用混合藻类进行培养，保证了藻种组成结构与自然发育结构的接近，确保了试验结果的准确性。叶绿素的测定采用纯藻进行，排除了杂质和土壤对重量干扰，结果更接近真实值
3.该方法实现了生物土壤结皮真实生物量的测定；
4.该方法实现了生物土壤结皮与维管束植物间生物量的比较；
5.适用范围广，试验重复性好，该方法适用于不同地区、不同生境条件下发育的藻类结皮。
附图说明
图1叶绿素a+b和藻类生物量间的标准曲线。
具体实施方式
本发明适用于适宜于不同地区、不同生境条件下发育的藻类结皮生物量的测定，下面结合实例作进一步说明：
实例1：沙丘丘间低地发育的藻类结皮生物量的测定
2014年8月，在宁夏回族自治区中卫市中科院沙坡头国家站1990年建立的人工植被固沙区，在沙丘丘间低地采集发育良好的藻类结皮样品10个，每个样品的面积为9cm2。采样用自制的3cm*3cm*0.5cm的方形不锈钢框；具体的方法，如：藻类结皮样品采样、过筛、清洗、藻类培养、叶绿素a和b的测定、标准曲线绘制和自然发育藻类生物量的测定分述如下：
a.采样时首先将采样框用力按如土壤中，至采样框完全进入土壤中，用75%酒精消毒过的铲子轻轻取出不锈钢框内约50cm2藻类结皮，装入信封中待用；
b.操作前需用75%酒精对手套进行消毒，并佩戴手套，用手从信封中取出藻类结皮样品，将采集的藻类结皮样品揉碎，过0.2mm筛子，待用；
c.清洗：取过筛后的藻类结皮样品20g，浸泡在50ml蒸馏水中，静置20min。将浸泡后的藻类结皮样品放在普通医用纱布上，在蒸馏水中慢慢漂洗，直至样品中的杂质和土壤全部清洗干净，剩下的为混合藻类悬浮液;
d.藻类培养：取混合藻类悬浮液2-5ml，加入装有300mlBG11培养液的三角烧瓶中，每升BG11培养液组分为：MgSO4·7H2O0.07g，K2HPO40.04g，CaCl2·2H2O0.036g，NaNO31.5g，柠檬酸0.006g，柠檬酸铁胺0.006g，乙二胺四乙酸钠盐（EDTA）0.001g，CaCO30.02g；微量元素A5+Co溶液1mL；其中，A5+Co溶液中每升蒸馏水中加入H3BO32.86g，MnCl2·4H2O1.86g，ZnSO4·7H2O0.22g，Na2MoO4·2H2O0.39g，CuSO4·5H2O0.08g，Co(NO3)2·6H2O0.05g。将装有BG11培养液的三角烧瓶置于转速为140转/min摇床上进行初步培养，室内温度控制在25-30℃，光强控制在600lx室内培养时间7-10天后，将进行了初步培养的藻类悬浮液转移至室外进行培养；室外培养装置为100L的塑料收纳箱，每个箱子中装有BG11培养液60L，并有增氧设施1套（如家用观赏鱼增氧泵）；藻类悬浮液在室外培养一周即可收获；将收获的藻类置于阴凉通风处，自然干燥后得到干燥藻类，待用；
e.叶绿素a和b的测定：将上述的干燥藻类，先置于65℃烘箱中，待样品质量恒定后取出，置于研钵中，研磨成粉末状，分别称取研磨后的藻粉0.005、0.01、0.05、0.1、0.5、1.0、2.0、5.0g，每个藻粉的量设3次重复；将称好的藻粉放入盛有10mL提取液试管内，叶绿素a和b的测定采用混合液法提取叶绿素，提取液：无水乙醇：丙酮：水=4.5:4.5:1；尔后塞上橡皮塞，放入45℃的恒温箱中，保持24h，直至藻粉变成白色；取出，比色，用紫外分光光度计测定645、652、663处波长的吸光值；计算叶绿素含量（mg/g，Fw）；叶绿素a含量（mg/g，Fw）=（12.71*D663-2.59*D645）*V/1000/m；叶绿素b含量（mg/g，Fw）=（22.88*D645-4.67*D663）*V/1000/m；叶绿素总量（mg/g，Fw）=（20.29*D645+8.04*D663）*V/1000/m。其中，m表示藻粉干重；V表示提取液体积；根据标准曲线（标准曲线如图1所示），计算藻类结皮生物量。从野外采取的10个藻类结皮样品的生物量如下：208.98、231.89、229.15、222.59、217.17、213.96、213.42、230.48、215.26、221.61g/m2；丘间低地的藻类结皮的平均生物量为220.45g/m2。
f.标准曲线绘制：对叶绿素a+b与已知藻类生物量进行回归，选取回归系数最高的方程作为标准曲线；
h.自然发育藻类生物量的测定：采取单位面积的藻类结皮，采用f）步骤，描述的叶绿素的测定方法测定叶绿素a+b，根据标准曲线计算出藻类结皮的生物量。
实例2：沙丘顶部发育的藻类结皮生物量的测定
2014年8月，在宁夏回族自治区中卫市中科院沙坡头国家站1990年建立的人工植被固沙区，在沙丘顶部低地采集发育良好的藻类结皮样品10个，每个样品的面积为9cm2。采样用自制的3cm*3cm*0.5cm的方形不锈钢框；具体的方法，如：藻类结皮样品采样、过筛、清洗、藻类培养与实施例1相同。
叶绿素a和b的测定：叶绿素的提取采用混合液法（提取液：无水乙醇：丙酮：水=4.5:4.5:1）。将采集的藻类结皮样品放入盛有10mL提取液试管内，塞上橡皮塞，每处理设3次重复；放入45℃的恒温箱中，保持24h，直至藻粉变成白色；取出，比色，测定D645、D652、D663的吸光值；计算叶绿素含量（mg/g，Fw）；叶绿素a含量（mg/g，Fw）=（12.71*D663-2.59*D645）*V/1000；叶绿素b含量（mg/g，Fw）=（22.88*D645-4.67*D663）*V/1000；叶绿素总量（mg/g，Fw）=（20.29*D645+8.04*D663）*V/1000。其中，V表示提取液体积。根据标准曲线（标准曲线如图1所示）计算藻类结皮生物量。10个藻类结皮样品的生物量如下：156.64、243.39、219.44、214.03、179.87、229.18、216.50、230.12、216.81、215.46；丘顶的藻类结皮的平均生物量为212.14g/m2。
实例1中沙丘丘间低地发育的藻类结皮平均生物量为220.45g/m2。而实例2沙丘顶的藻类结皮的平均生物量为212.14g/m2。在相同的实验条件下，实例1与实施例2藻类结皮的平均生物量不同，这主要与地形和环境有关。实例1处于两沙丘丘间低地，土壤水分含量高、风蚀量小，藻类结皮的平均生物量高；而实例2处于沙丘顶土壤水分含量低、风蚀量大、日照强度大，所以沙丘顶的藻类结皮的平均生物量低的原因在于此。

Claims (2)

1.一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法，其步骤是：
a.藻类结皮样品采样：选择发育良好的藻类结皮，用铁铲将藻类结皮沿地表轻轻铲下，并装入信封；
b.过筛：用手将采集的藻类结皮样品揉碎，过0.2mm筛子，待用；
c.清洗：取过筛后的藻类结皮样品20g，浸泡在50ml蒸馏水中，静置20min；将浸泡后的藻类结皮样品放在纱布上，在蒸馏水中慢慢漂洗，直至样品中的杂质和土壤全部清洗干净，剩下的为混合藻类悬浮液;
d.藻类培养：取混合藻类悬浮液2-5ml，加入装有300mlBG11培养液的三角烧瓶中，置于转速为140转/min摇床上进行初步培养，室内温度控制在25-30℃，光强控制在550lx-650lx，室内培养时间7-10天后，将进行了初步培养的藻类悬浮液转移至室外进行培养；室外培养装置为100L的塑料收纳箱，每个箱子中装有BG11培养液60L，并有增氧设施1套；室外培养7-8天即可收获；将收获的藻类置于阴凉通风处，自然干燥后得到干燥藻类，待用；
e.叶绿素a和b的测定：将上述的干燥藻类，先置于65℃烘箱中，待样品质量恒定后取出，置于研钵中，研磨成粉末状，分别称取研磨后的藻粉0.005、0.01、0.05、0.1、0.5、1.0、2.0、5.0g，每个藻粉的量为3次重复；将称好的藻粉放入盛有10mL提取液试管内，叶绿素a和b的测定采用混合液法提取叶绿素，提取液为：无水乙醇：丙酮：水=4.5:4.5:1；尔后塞上橡皮塞；放入45℃的恒温箱中，保持24h，直至藻粉变成白色；取出，比色，用紫外分光光度计测定645、652、663处波长的吸光值；计算叶绿素含量（mg/g，Fw）；叶绿素a含量（mg/g，Fw）=（12.71*D663-2.59*D645）*V/1000/m；叶绿素b含量（mg/g，Fw）=（22.88*D645-4.67*D663）*V/1000/m；叶绿素总量（mg/g，Fw）=（20.29*D645+8.04*D663）*V/1000/m；其中，m表示藻粉干重；V表示提取液体积；
f.标准曲线绘制：对叶绿素a+b与已知藻类生物量进行回归，选取回归系数最高的方程作为标准曲线；
g.自然发育藻类生物量的测定：采取单位面积的藻类结皮，采用f）步骤，描述的叶绿素的测定方法测定叶绿素a+b，根据标准曲线计算出藻类结皮的生物量。
2.根据权利要求1所述一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法，其特征是上述藻类培养中的BG11培养液，每升BG11培养液组分如下为：MgSO4·7H2O0.07g，K2HPO40.04g，CaCl2·2H2O0.036g，NaNO31.5g，柠檬酸0.006g，柠檬酸铁胺0.006g，乙二胺四乙酸钠盐（EDTA）0.001g，CaCO30.02g；微量元素A5+Co溶液1mL；其中，A5+Co溶液中每升蒸馏水中加入H3BO32.86g，MnCl2·4H2O1.86g，ZnSO4·7H2O0.22g，Na2MoO4·2H2O0.39g，CuSO4·5H2O0.08g，Co(NO3)2·6H2O0.05g。
CN201510473242.7A 2015-08-05 2015-08-05 一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法 Active CN105092495B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510473242.7A CN105092495B (zh) 2015-08-05 2015-08-05 一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510473242.7A CN105092495B (zh) 2015-08-05 2015-08-05 一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105092495A true CN105092495A (zh) 2015-11-25
CN105092495B CN105092495B (zh) 2017-10-27

Family

ID=54573412

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201510473242.7A Active CN105092495B (zh) 2015-08-05 2015-08-05 一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105092495B (zh)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108680520A (zh) * 2018-05-09 2018-10-19 大连理工大学 一种用于测定微藻-菌联合体系中微藻和细菌干重的方法
CN110305809A (zh) * 2019-06-21 2019-10-08 中国科学院寒区旱区环境与工程研究所 一种可机械化的人工蓝藻结皮培养施工工艺
CN110865173A (zh) * 2019-10-25 2020-03-06 内蒙古科技大学 一种对沙地藻结皮程度进行评价的数学模型及其建立方法
CN113287478A (zh) * 2021-07-06 2021-08-24 西北农林科技大学 一种苔藓结皮的快速培育方法
CN114563362A (zh) * 2022-01-29 2022-05-31 大连海事大学 一种船舶压载水微藻含量的检测方法
CN116152804A (zh) * 2022-12-26 2023-05-23 华能澜沧江水电股份有限公司 一种藻类密度、生物量与叶绿素a的快速估算方法及系统

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3258467A (en) * 1963-04-17 1966-06-28 Alexander F H Anderson Extraction and purification of chlorophyll
US4774186A (en) * 1985-11-05 1988-09-27 Schaefer Jr Jimmie W Microbial compositions and methods for treating soil
CN101438663A (zh) * 2008-12-19 2009-05-27 安徽大学 尾矿废弃地隐花植物结皮快速定植生长方法
CN102384903A (zh) * 2010-08-25 2012-03-21 中国海洋大学 一种简单、快速、准确的小球藻低温保存存活率的测定方法
CN102613065A (zh) * 2012-03-28 2012-08-01 中国科学院新疆生态与地理研究所 一种利用混合藻类构建人工藻结皮的方法
CN102612953A (zh) * 2012-03-28 2012-08-01 中国科学院新疆生态与地理研究所 一种荒漠环境中人工藻结皮的构建模式
CN103837486A (zh) * 2014-03-10 2014-06-04 内蒙古自治区林业科学研究院 一种生物结皮中荒漠藻生物量的测定方法
CN104380959A (zh) * 2014-10-20 2015-03-04 西北农林科技大学 一种黄土高原苔藓结皮的快速培育方法

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3258467A (en) * 1963-04-17 1966-06-28 Alexander F H Anderson Extraction and purification of chlorophyll
US4774186A (en) * 1985-11-05 1988-09-27 Schaefer Jr Jimmie W Microbial compositions and methods for treating soil
CN101438663A (zh) * 2008-12-19 2009-05-27 安徽大学 尾矿废弃地隐花植物结皮快速定植生长方法
CN102384903A (zh) * 2010-08-25 2012-03-21 中国海洋大学 一种简单、快速、准确的小球藻低温保存存活率的测定方法
CN102613065A (zh) * 2012-03-28 2012-08-01 中国科学院新疆生态与地理研究所 一种利用混合藻类构建人工藻结皮的方法
CN102612953A (zh) * 2012-03-28 2012-08-01 中国科学院新疆生态与地理研究所 一种荒漠环境中人工藻结皮的构建模式
CN103837486A (zh) * 2014-03-10 2014-06-04 内蒙古自治区林业科学研究院 一种生物结皮中荒漠藻生物量的测定方法
CN104380959A (zh) * 2014-10-20 2015-03-04 西北农林科技大学 一种黄土高原苔藓结皮的快速培育方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
张丙昌: "荒漠地表生物结皮中藻类区系与生态学研究", 《中国优秀博硕士学位论文全文数据库 (硕基础士科)学辑（月刊 ）》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108680520A (zh) * 2018-05-09 2018-10-19 大连理工大学 一种用于测定微藻-菌联合体系中微藻和细菌干重的方法
CN110305809A (zh) * 2019-06-21 2019-10-08 中国科学院寒区旱区环境与工程研究所 一种可机械化的人工蓝藻结皮培养施工工艺
CN110865173A (zh) * 2019-10-25 2020-03-06 内蒙古科技大学 一种对沙地藻结皮程度进行评价的数学模型及其建立方法
CN113287478A (zh) * 2021-07-06 2021-08-24 西北农林科技大学 一种苔藓结皮的快速培育方法
CN114563362A (zh) * 2022-01-29 2022-05-31 大连海事大学 一种船舶压载水微藻含量的检测方法
CN116152804A (zh) * 2022-12-26 2023-05-23 华能澜沧江水电股份有限公司 一种藻类密度、生物量与叶绿素a的快速估算方法及系统
CN116152804B (zh) * 2022-12-26 2023-09-26 华能澜沧江水电股份有限公司 一种藻类密度、生物量与叶绿素a的快速估算方法及系统

Also Published As

Publication number Publication date
CN105092495B (zh) 2017-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105092495A (zh) 一种生物土壤结皮中藻类生物量的测定方法
CN104620836B (zh) 一种铁皮石斛仿野生栽培方法
Martens Contribution of rhizodeposits to the maintenance and growth of soil microbial biomass
CN102550252B (zh) 一种铁皮石斛的栽培方法
Augé et al. Comparing contributions of soil versus root colonization to variations in stomatal behavior and soil drying in mycorrhizal Sorghum bicolor and Cucurbita pepo
CN103733829B (zh) 一种丹参人工栽培方法
Iijima et al. Mixed cropping has the potential to enhance flood tolerance of drought-adapted grain crops
CN103081869B (zh) 一种冬虫夏草低海拔人工培殖方法
CN104996138A (zh) 一种缩短钩藤种子育苗时限的方法
Kvavadze et al. The hidden side of ritual: New palynological data from Early Bronze Age Georgia, the Southern Caucasus
CN101843197A (zh) 一种用于改良滨海盐渍土壤植物的选择方法
CN106962096A (zh) 富硒茶叶的种植方法
CN109429971A (zh) 丛枝菌根真菌菌剂的制备方法
Popkova et al. Phototrophic communities of Ahshtyrskaya Cave in the condition of artificial light
CN107996333A (zh) 一种多花黄精组培苗移栽方法
Yang et al. Spatial-temporal distribution and accumulation characteristics of residual plastic film in cotton fields in arid oasis area and the effects on soil salt transport and crop growth
CN110249989A (zh) 一种油橄榄菌根苗培育方法
CN109496733A (zh) 一种降低高浓度镉污染下水稻籽粒镉含量的硅素分期施用方法
CN103340091B (zh) 人工培育雪峰虫草的方法
Nguyen et al. A carbon-14-glucose assay to compare microbial activity between rhizosphere samples
CN105165356A (zh) 一种大田扦插育苗法
CN105145095B (zh) 评价不同种植土壤中辣椒对Cd抗性的方法
CN101781630B (zh) 一种根瘤固氮菌株系ry1菌株及其应用
Dahanayake et al. Effect of potting mixture on growth and yield of chilli varieties (capsicum spp) and microbial activity
CN107801618A (zh) 一种铁皮石斛仿野生栽培方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
TR01 Transfer of patent right
TR01 Transfer of patent right

Effective date of registration: 20200818

Address after: 730000 No.318, Donggang West Road, Chengguan District, Lanzhou City, Gansu Province

Patentee after: NORTHWEST INSTITUTE OF ECO-ENVIRONMENT AND RESOURCES, CAS

Address before: Chengguan District of Gansu city of Lanzhou province Donggang West Road 730000 No. 320

Patentee before: Institute of environment and Engineering in cold and dry areas, Chinese Academy of Sciences