气单胞菌YQ及在酶法制备L-瓜氨酸中的应用
(一)技术领域
本发明涉及一株产L-瓜氨酸菌种--气单胞菌(Aeromonas sp.YQ)以及采用该菌株转化底物L-精氨酸生产L-瓜氨酸的工艺方法。
(二)背景技术
L-瓜氨酸(L-citrulline)是人体尿素循环中的一种重要代谢产物,能够吸收并清除有害的自由基从而起到抗氧化的作用。瓜氨酸可以使人的血管获得松弛,用于增强男性性功能,以及治疗性功能障碍。维护建康的肺功能,提高脑力清晰度,有帮助脑神经细胞具贮藏与调回讯息的功能。L-瓜氨酸可由L-精氨酸在精氨酸脱亚胺酶作用下,脱去亚氨基生成。目前,生产L-瓜氨酸的方法主要有:发酵法、化学合成法、提取法和酶转化法。发酵法生产的缺点是L-瓜氨酸产率低。化学合成法生产的产品中含有L-瓜氨酸的旋光对映体D-瓜氨酸。提取法的生产工艺相对困难,产品很难纯化,因此成本比较高。酶转化法优点是生产条件温和,产品中无D-型旋光对映体产生。酶转化法生产L-瓜氨酸是一种效率高,成本低的生产方法,将在瓜氨酸生产中起到重要作用。转化能力较强的菌株将在未来瓜氨酸生产中扮演重要角色。
迄今尚没有气单胞菌(Aeromonas sp.)酶转化法生产L-瓜氨酸的报道。
(三)发明内容
本发明目的是提供一株可转化底物L-精氨酸生产L-瓜氨酸的新菌株--气单胞菌(Aeromonas sp.)YQ,及其酶法生产L-瓜氨酸的工艺方法。
本发明采用的技术方案是:
气单胞菌(Aeromonas sp.)YQ,保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号:CCTCCNo:M 2015271,保藏日期:2015年5月3日,地址:中国,武汉,武汉大学,邮编430072。
本发明菌株的获得:从浙江省杭州市勾庄西瓜大棚中采集的土壤样品,通过初筛,复筛,获得具有转化底物L-精氨酸生产L-瓜氨酸能力的纯培养物。对该纯培养物进行了形态和生理生化鉴定,将其鉴定为气单胞菌(Aeromonas sp.),命名为气单胞菌YQ(Aeromonassp.YQ)。
本发明还涉及所述的气单胞菌YQ在酶法制备L-瓜氨酸中的应用,具体所述的应用为:以气单胞菌YQ经发酵培养获得的湿菌体为催化剂,以L-精氨酸为底物,以pH=6醋酸缓冲液为反应介质,在30℃~37℃,180r/min条件下进行转化反应,反应结束后,获得含L-瓜氨酸的混合液,将混合液分离纯化,获得L-瓜氨酸。
进一步,所述湿菌体的用量以缓冲液体积计为10.35g/L,所述底物的终浓度以缓冲液体积计为100g/L。
进一步,所述混合液分离纯化的方法为:将混合液用截留分子量为6000的超滤膜过滤,透过液调整pH值至2后进行阳离子交换树脂柱层析(装填25mL湿732型树脂的内径13mm、高250mm的玻璃吸附柱进行动态吸附,上柱温度为室温),以质量浓度1%的氨水作为洗脱液,以1.2BV/h的流速进行洗脱,洗脱液用量为6倍树脂体积,将收集的洗脱液用NKA-II树脂脱色,随后减压浓缩,再在浓缩液中加入无水乙醇进行结晶,晶体干燥,获得L-瓜氨酸。
本发明的有益效果主要体现在:本发明筛选得到一株具有转化底物L-精氨酸生产L-瓜氨酸能力的菌株Aeromonas sp.YQ,该菌全细胞可在30℃~37℃,180r/min,pH=6的醋酸缓冲液中,作用3d,可将100g/L的底物L-精氨酸转化生成75g/L的L-瓜氨酸,产品纯度约为47.8%,整个工艺产品总收率为40%,为酶法生产L-瓜氨酸工业化奠定基础。
(四)附图说明
图1为菌株YQ在牛肉膏蛋白胨琼脂上的菌落形态图片;
图2为菌株YQ的透射电镜图片;
图3为菌株YQ的革兰氏染色镜检图片(球状的菌株为阳性对照,杆状为菌株YQ);
图4为菌株YQ的系统进化发育树;
图5为L-瓜氨酸标准品高效液相色谱检测图谱(A)及L-瓜氨酸浓度计算的标准曲线(B);
图6为Aeromonas sp.YQ不同天数的转化液高效液相色谱检测图谱(A)1d,(B)2d,(C)3d及转化液中L-瓜氨酸浓度的变化趋势(D)。
(五)具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述,但本发明的保护范围并不仅限于此:
实施例1:酶转化法生产L-瓜氨酸菌株的筛选
(1)菌株筛选
采集浙江省杭州市勾庄西瓜大棚中采集的土壤样品,用生理盐水制成悬液,并用生理盐水梯度稀释,涂布于筛选培养基平板,置于培养箱中,37℃培养24h,产生红色变色圈较大的菌株即为初步筛选对象。将上述菌株接种于100ml发酵培养中,37℃,180r/min培养24h,离心收集菌体转入60ml含终浓度100g/L L-精氨酸的pH为6的醋酸缓冲溶液中,置于37℃摇床,180r/min转化1d。通过HPLC测定转化液中L-瓜氨酸的浓度,比较菌体转化底物L-精氨酸生产L-瓜氨酸的能力。瓜氨酸出峰面积越大,表明菌株转化底物L-精氨酸能力越强,L-瓜氨酸产量越高。其中YQ菌株L-瓜氨酸峰面积最大为4403,转化液中瓜氨酸浓度达27g/L。保藏YQ菌株用于进一步试验。
筛选培养基:蛋白胨1g/L,NaCl 5g/L,KH2PO4 0.3g/L,L-精氨酸10g/L,酚红0.01,琼脂20g/L,溶剂为去离子水,pH 6.7。
发酵培养基组成:蛋白胨10g/L,酵母粉5g/L,NaCl 10g/L,L-精氨酸2g/L,溶剂为去离子水,pH=7.4。
(2)菌株的鉴定
菌株YQ在牛肉膏蛋白胨琼脂平板上形成的菌落(如图1所示)为圆形,微白色半透明,表明光滑边缘整齐,中间凸起。通过透射电镜观察(如图2所示),菌株YQ呈短杆状,两端钝圆,有一根极生鞭毛。菌体的大小为(0.2~0.4)μm×(1~2)μm,革兰氏染色阴性(图3所示),不产芽孢。菌株生理生化特性测定结果为:甲基红实验,V-P实验,运动性实验,产硫化氢实验,明胶水解实验,接触酶实验阳性阳性。吲哚实验阴性。
对该菌株YQ的DNA进行PCR扩增,以细菌16S rDNA通用引物,扩增到1439bp的DNA片段,GenBank中登录号为(KR612330),通过NCBI数据库进行BLAST比对,结果显示该菌株与气单胞菌属(Aeromonas)的序列同源性最高,采用MEGA5.05软件将该菌株的16S rDNA序列与Genbank中的若干个相关种的16S rDNA序列进行分析比对,以Plesiomonas shigelloides(NR_044827)为外群构建系统发育树,结果如图4所示,该菌株与Aeromonas veronii B565strain B565(NR_102789)位于同一个系统发育的分支。根据该菌株形态特征、生理生化特征及16S rDNA序列分析,并参考《常见细菌鉴定手册》,该菌株与Aeromonas属特征相符,故将该菌株命名为气单胞菌YQ(Aeromonas sp.YQ),保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号:CCTCC No:M 2015271,保藏日期:2015年5月3日,地址:中国,武汉,武汉大学,邮编430072。
实施例2菌株的活化与发酵
将气单胞菌YQ接种至斜面培养基,37℃培养24小时,获得斜面菌体。将斜面菌体接种一环于装有50mL种子培养基的250mL锥形瓶中,37℃,180rpm下培养24小时,获得种子液。再以体积浓度4%的接种量将种子液接种于100ml发酵培养基中,37℃,180r/min培养24h,将发酵液于6000rpm离心10min,收集菌体用灭菌生理盐水洗涤1~2次,获得湿菌体。
斜面培养基组成:蛋白胨10g/L,牛肉膏5g/L,NaCl 3g/L,KH2PO4 2g/L,溶剂为去离子水,琼脂20g/L,pH=7.4。
种子培养基组成:蛋白胨10g/L,牛肉膏5g/L,NaCl 3g/L,KH2PO4 2g/L,溶剂为去离子水,pH=7.4。
发酵培养基组成:蛋白胨10g/L,酵母粉5g/L,NaCl 10g/L,L-精氨酸2g/L,溶剂为去离子水,pH=7.4。
实施例3:气单胞菌YQ转化液的制备及L-瓜氨酸衍生化
将实施例2制备的湿菌体0.621g加入60ml含终浓度100g/L L-精氨酸的pH=6醋酸缓冲液中,反复吹打均匀,装液量60mL,置于37℃,180r/min开始转化反应。转化反应3d后,每24h取转化液10000r/min离心5min,上清用蒸馏水稀释30倍,取1mL放入10mL的棕色容量瓶中(因为衍生物见光易分解),加入配制好的pH值为9的Na2CO3-NaHCO3缓冲液1mL,再加入1mL的体积浓度1.5%的2,4-二硝基氟苯乙腈溶液后摇匀,60℃水浴加热1h后,用pH值为7的K2HPO4-KH2PO4缓冲液定容。衍生化后的样品(定容后的溶液)10000r/min离心5min,取0.6mL入棕色液相瓶中,采用HPLC测L-瓜氨酸浓度。气单胞菌YQ转化L-精氨酸1d、2d、3d后,HPLC检测得L-瓜氨酸峰面积依次为4403.15479、10034.5、11550.1,L-瓜氨酸浓度依次为27.37g/L,65.31g/L,75.52g/L。
将混合液用截留分子量为6000的超滤膜过滤,透过液调整pH值至2后进行阳离子交换树脂柱层析(732型树脂),以质量浓度1%的氨水作为洗脱液,以1.2BV/h的流速进行洗脱,洗脱液用量为6倍树脂体积,将收集的洗脱液用NKA-II树脂脱色,随后减压浓缩,再在浓缩液中加入无水乙醇进行结晶,晶体干燥,获得L-瓜氨酸。产品纯度约为47.8%,整个工艺产品总收率为40%。
使用Agilent XDB-C18色谱柱(250mmX4.6mm)。流动相A为含1%N,N-二甲基甲酰胺的0.05mol/LNaAc和HAc缓冲溶液,流动相B为乙腈-水(3:1)。实验采用梯度洗脱,流动相A和B的体积比为:初始A与B的体积比为75%:25%;10min后A与B的体积比为40%:60%;13min时A与B的体积比增至5%:95%;17min时A与B的体积比还原为75%:25%;20min洗脱结束。流速1.0mL/min,进样量5μL,二极管阵列(DAD)检测器,检测波长360nm。
同样条件下制备L-瓜氨酸标准品(购自Sigma公司)的衍生化样品,L-瓜氨酸衍生化样品中L-瓜氨酸的浓度为0.2g/L,分别进样2μL,4μL,6μL,8μL,10μL,平行进样五次,确定L-瓜氨酸的出峰时间(如图5中A所示瓜氨酸的出峰时间为5.211min),并以L-瓜氨酸标准品衍生化样品进样量为横坐标,以峰面积为纵坐标制作绘制进样量与峰面积的线性关系图(图5中B)。标准曲线的回归方程为y=8905x+340.25,R2=0.997。检测样品瓜氨酸浓度的计算方法为:经HPLC检测得样本瓜氨酸的峰面积y值,带入标准曲线换算出进样量x值,除以进样体积,乘以转化液的稀释倍数即为样品转化液中的瓜氨酸浓度。
实施例4气单胞菌YQ转化底物L-精氨酸及产物L-瓜氨酸的检测
(1)气单胞菌YQ转化底物L-精氨酸
将实施例2制备的湿菌体0.621g加入60ml含终浓度100g/L精氨酸的pH=6醋酸缓冲液中,反复吹打均匀,装液量60mL,置于37℃,180r/min开始转化,分别于1d,2d,3d时取样1mL。L-瓜氨酸浓度检测方法同实施例3,结果如图6所示。图6中A、B、C分别为转化1d,2d,3d后转化液中L-瓜氨酸的HPLC检测图谱,5.1min为瓜氨酸的出峰时间,所得的峰面积根据绘制的标准曲线换算,1d,2d,3d的瓜氨酸浓度分别为27.37g/L,65.31g/L,75.52g/L。图6中D为转化3d转化液中瓜氨酸浓度的变化趋势。由图可知,转化1d,2d两个时间点之间的斜率最陡,瓜氨酸产生速率最大。这可能是由于第0天转入的菌体在高浓度底物L-精氨酸的刺激下持续表达精氨酸脱亚胺酶,经过1d的转化反应在胞内累积了大量的精氨酸脱亚胺酶,酶量的增加加速了酶促反应,使得瓜氨酸的产生速率加快。而后由于酶的稳定性,产物等因素反馈抑制了瓜氨酸的进一步产生,使得瓜氨酸产生速率大幅度降低,3d后瓜氨酸浓度趋于稳定。