CN105004863A - 快速检测大豆致敏蛋白β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸及制备方法 - Google Patents

Abstract

本发明涉及一种快速检测大豆致敏蛋白β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸及制备方法，该试纸基于双抗体夹心的原理检测β-conglycinin，试纸含有支撑层、吸附层、保护层，吸附层从测试端依次为样品垫、结合垫、纤维素膜和吸水垫，结合垫吸附有β-conglycinin的特异性抗体，纤维素膜设有用β-conglycinin兔源多克隆抗体溶液喷点的检测线以及用羊抗小鼠IgG抗体或兔抗小鼠IgG抗体溶液喷点的质控线，β-conglycinin的特异性抗体采用胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体。本发明的免疫层析试纸特异性强、灵敏度高，检测简便、直观、准确，成本低，适用范围广，易于推广应用。

Description

快速检测大豆致敏蛋白β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸及制备方法

技术领域

本发明涉及一种快速检测大豆致敏蛋白β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸及制备方法，该试纸基于双抗体夹心的原理检测β-conglycinin。

背景技术

大豆中蛋白质含量丰富，氨基酸组成平衡，且富含不饱和脂肪酸，是人体和动物体重要的植物蛋白和植物油来源。由于其种植面积广，产量大，长久以来一直被广泛应用于食品和饲料的加工原料，然而，大豆也是联合国粮农组织认定的8种最重要的食物过敏源之一，据不完全统计，大豆会导致大约0.4%的儿童产生过敏反应。这主要是因为大豆中含有一系列过敏原，这些过敏原是大豆及其制品中能够导致人或畜禽过敏的蛋白质或糖蛋白，过敏原数据库网站在2014年1月更新的数据信息显示，大豆中共存在38种过敏原，包括大豆疏水蛋白（Gly m 1）、大豆外壳蛋白（Gly m 2）、大豆抑制蛋白（Gly m 3）、大豆球蛋白（Glycinin）、β-伴大豆球蛋白（β-conglycinin）、大豆空泡蛋白（Gly m Bd 30K）、胰蛋白酶抑制因子等。其中β-conglycinin大豆中最主要的致敏蛋白之一，β-conglycinin是具有较强热稳定性的致敏蛋白，直接加热并不能彻底破坏其过敏原活性，可以引发人体包括皮肤、肠胃、呼吸等方面的过敏反应，并且大量的动物试验研究也表明，β-conglycinin可以导致犊牛、仔猪和鼠等幼龄动物发生过敏反应，表现为腹泻、生长性能下降甚至死亡。

近几年，食物过敏已逐渐成为世界范围内广泛关注的食品安全问题，食品过敏原容易在婴幼儿和幼龄动物体内引起IgE（Immunoglobulin E）抗体介导的速发型（Ⅰ型）超敏反应，从而导致肠内组胺过量释放等过敏性损伤。食物过敏问题已引起了各国食品安全监督管理部门的重视，一些发达国家为保护食物过敏人群，专门立法规定食品包装上要标注食物过敏原，我国在2012年实施的食品安全国家标准《预包装食品标签通则》（GB 7718-2011）中也推荐食品包装上标注致敏物质。因此，针对食品过敏原的检测技术就显得意义重大，可为食品安全提供重要的技术依据。

 大豆及其制品被广泛应用于食品和饲料加工领域，但是当其存在于婴幼儿食品以及幼龄动物饲料中，就很可能会诱发过敏反应。免疫层析试纸检测方法具有成本低、快速、便携且易操作等优点，可以用于大批量样品的定性与定量检测，在准确性、灵敏度和特异性上也能够满足要求，该法分析过程简单，用作β-conglycinin的检测有独特优势，是需要优先发展的检测技术。但目前仍没有关于大豆致敏蛋白β-conglycinin免疫层析试纸检测方法的报道，所以该方法将会成为未来大豆过敏原检测方法的一个发展方向。

发明内容

本发明要解决的技术问题：针对现有技术存在的不足，提供一种特异、灵敏、简便、安全、快速检测β-conglycinin的免疫层析试纸及其制备方法。

本发明的技术方案：

一种快速检测β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸，底层为支撑层，中间层为吸附层，保护层固定在吸附层上，吸附层从测试端依次为样品垫、结合垫、纤维素膜和吸水垫。在纤维素膜设有用β-conglycinin兔源多克隆抗体溶液喷点的检测线以及用羊抗小鼠IgG抗体或兔抗小鼠IgG抗体溶液喷点的质控线；所述结合垫吸附有胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体。

所述支撑层用不吸水的韧性材料制成；样品垫用玻璃纤维棉、尼龙膜、聚偏二氟乙烯膜或聚酯膜制成；结合垫用玻璃纤维棉、聚酯膜、醋酸纤维或尼龙膜制成；纤维素膜用硝酸纤维素膜、纯纤维素膜或羧化纤维素膜制成；吸水垫用吸水滤纸或滤油纸制成。纤维素膜上的隐形检测线和隐形质控线为平行排列的“︱︱”直线式，或为其他类似印记。

快速检测β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸的制备方法：包括用胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体（金标单抗）制备结合垫，用β-conglycinin兔源多克隆抗体溶液喷点隐形检测线，用羊抗小鼠IgG抗体或兔抗小鼠IgG抗体溶液喷点隐形质控线，然后在支撑层上黏贴样品垫、结合垫、纤维素膜和吸水垫。在所述样品垫、结合垫及吸水垫上覆盖有保护膜，在样品垫与结合垫交界处对应的保护膜上喷点有样品标记线，最后加上保护层。

该试纸利用了双抗体夹心检测抗原的原理，当试纸测试端插入待测样品溶液后，待测溶液通过虹吸作用带动待测β-conglycinin及结合垫中的金标单抗一起向纤维素膜扩散，并最终渗入手柄端的吸水材料层。在扩散过程中，待测β-conglycinin可先与金标单抗相结合，进而与纤维素膜上喷点的兔源多克隆抗体检测线结合，金标抗体和兔源多克隆抗体分别与样品中被检测的β-conglycinin分子上的不同抗原决定簇结合，β-conglycinin被夹在金标单抗和兔源多克隆抗体之间，形成金标单抗-抗原-兔源多抗复合物，即双抗体夹心模式，显示红色检测印记“︱”；纤维素膜上喷点的羊或兔抗小鼠IgG抗体质控线也可与金标抗体结合，形成红色质控印记“︱”，即两条红色印记“︱︱”表示为阳性；反之样品溶液中无β-conglycinin时，则不能与金标抗体结合，同样也不能与纤维素膜上喷点的兔源多克隆抗体检测线结合，不显示红色检测印记，而纤维素膜上喷点的羊或兔抗小鼠IgG抗体质控线可与金标抗体结合，显示红色质控线印记“︱”，形成一条红色印记“︱”表示为阴性。无论结果为阳性还是阴性，都会显示红色质控印记，若不显示则表示试纸失效。

本发明的积极有益效果：

（1）特异性强，灵敏度高。本发明试纸以双抗体夹心原理为基础制备而成，两种抗体分别为胶体金纳米颗粒标记的鼠源单克隆抗体和兔源多克隆抗体。金标抗体中金颗粒与抗体分子之间无共价键形成，二者通过异性电荷间的范德华力相结合，胶体金标记对抗体的特异性及亲和力影响很小，且具有较高的标记率。因此，该试纸具有较强的特异性和较高的灵敏度，可检测100ng/mL的微量β-conglycinin。

（2）简便、快速。使用本发明试纸，无需其他任何试剂和仪器，可现场操作。只需将试纸插入被检样品液中，10min后即可判定检测结果。

（3）结果显示形象、直观、准确。本发明试纸以显示红色印记“︱︱”和“︱”（或类似性状）作为检测的阳性和阴性标记，即在纤维素膜上显示两条红色印记“︱︱”（检测线和质控线），表示被检样品中含有β-conglycinin；显示一条红色印记“︱”（质控线），表示被检样品中不含β-conglycinin。此结果可用肉眼直接观测，判定形象、直观、准确，简单明了，不易出现假阳性和假阴性等人为误判。

（6）节省费用。适用于进行现场检测，费用低廉，节省大量贵重仪器及设备费用。

（7）适用范围广，便于推广应用。本发明实现了基于双抗体夹心的原理在快速检测β-conglycinin胶体金免疫层析试纸中的应用，该试纸操作简便，能满足不同层次人员的需要，包括海关检疫、卫生检疫、质量监测、农畜产品生产企业和饲料加工企业等。本发明在保障食品安全、保护对于大豆过敏的消费者健康以及保障畜禽饲料安全等方面具有极其重要的意义，将具有明显的经济效益和社会效益。

（8）本发明制备的单克隆抗体的特异性较好，采用间接竞争ELISA测定与常见食物致敏蛋白的交叉反应率进行鉴定，这几种常见食物致敏蛋白竞争物包括大豆凝集素、大豆Kunitz胰蛋白酶抑制因子、花生凝集素、鸡卵清蛋白以及酪蛋白，以β-conglycinin的半数抑制浓度（IC₅₀）与各竞争物的IC₅₀的百分比作为交叉反应率，单克隆抗体与其他食物致敏蛋白竞争物之间基本没有交叉反应，结果表明其对于β-conglycinin具有良好的特异性；同时通过Western blot试验对单克隆抗体的特异性进行鉴定，试验证明，所筛选的杂交瘤细胞分泌的单克隆抗体特异性强，与其他致敏蛋白无交叉反应，能够用于胶体金纳米颗粒的标记，并能够喷点结合垫进而对样品中的β-conglycinin进行特异识别。

附图说明

图1为大豆致敏蛋白β-conglycinin鼠源单克隆抗体的特异性鉴定结果图。

图2为本发明的免疫层析试纸的结构示意图。

图3为本发明的免疫层析试纸的俯视结构示意图。

图中，1为支撑层，2为样品垫，3为结合垫，4为纤维素膜，5为吸水垫，6为检测线，7为质控线，8-1为测试端保护膜，8-2为手柄端保护膜，9为样品标记线。

具体实施方式

以下实施例是为了更好的解释本发明，但并不表示对本发明的特别限定，如果没有特别说明，其中的百分含量均可理解为重量百分比。

本发明试纸的制备过程包括：β-conglycinin兔源多克隆抗体的制备、β-conglycinin鼠源单克隆抗体的制备、结合垫的制备、样品垫的制备、纤维素膜的制备和试纸的组装等步骤。

1、β-conglycinin兔源多克隆抗体的制备：

取清洁级3月龄新西兰大白兔，用β-conglycinin溶液进行免疫，颈部皮下分4~6点注射。首次免疫剂量为200μg/只，用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量弗氏完全佐剂（FCA）混合，25000r/min充分乳化10min；加强免疫剂量增大，为300μg/只，免疫4次，用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量弗氏不完全佐剂（FIA）混合，25000r/min充分乳化10min。共免疫4次，每次免疫间隔3周，最后一次免疫30天后，以ELISA法测定效价，并鉴定其敏感性和特异性，心脏采血并分离收集血清。以饱和硫酸铵盐析法纯化兔源多克隆抗体，即取1份血清加2份PBS（pH7.2）混匀，加等体积饱和硫酸铵溶液混匀，置4℃冰箱12h，4℃、10000rpm离心30min，弃上清，再以适量PBS（pH7.2）溶解沉淀，加饱和硫酸铵溶液至终浓度33％，置4℃冰箱12h，4℃、10000rpm离心30min，弃上清，以适量PBS（pH7.2）溶解沉淀，置4℃冰箱内用PBS（pH7.2）透析48~72h，中间换液6~8次，4℃、12000rpm离心15min，收集上清，得初步纯化的β-conglycinin兔源多克隆抗体。

然后采用Protein G亲和层析柱进一步纯化，先用10倍柱体积PBS起始缓冲液平衡层析柱，将初步纯化的β-conglycinin兔源多克隆抗体用起始缓冲液1:1稀释后，通过0.22μm一次性无菌过滤器过滤后加样，随后用10倍柱体积的起始缓冲液流洗，除去未结合抗体，最后用2倍柱体积的洗脱缓冲液（0.1mol/L甘氨酸-盐酸，pH 2.5）洗脱，用盛有中和液（0.1mol/L Tris-HCl pH 9.0）的离心管收集，再用PBS充分透析备用。

2、β-conglycinin鼠源单克隆抗体的制备：

取SPF级6~8周龄BALB/c小鼠，用β-conglycinin溶液进行免疫。剂量为50μg/只，背部皮下分4~6点注射。免疫4次，首次免疫用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量FCA混合，加强免疫用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量FIA混合，25000r/min充分乳化10min，免疫间隔3周。确定抗体效价符合要求后以50μg/只的剂量不加佐剂进行超强免疫，之后3~4天将免疫小鼠眶下窦采血，分离阳性血清；脱颈致死，用75%的酒精浸泡小鼠5~10min消毒体表，无菌操作取其脾脏，将脾脏剪碎并研磨，经120目尼龙纱布过滤，1000rpm离心10min，收集脾细胞。将1×10⁸的脾细胞与NS0骨髓瘤细胞按10:1的比例混合，1000rpm离心10min，弃上清，细胞沉淀物于37℃水浴中缓慢加入0.7~1.0mL的 PEG1500作用1min，然后缓慢加入无血清1640培养基15mL，以终止PEG的作用；37℃水浴5~10 min，1000rpm离心10min弃上清，将细胞沉淀物重悬于HAT选择培养基中，并加入96孔细胞培养板孔（100μL~200μL/孔），置于37℃、5% 的 CO₂培养箱中培养。培养10~14天，用间接ELISA和间接竞争ELISA进行阳性孔筛选，选择强阳性、抑制率高、细胞生长旺盛的孔进行2~3次有限稀释克隆化，将阳性孔扩大培养后建立杂交瘤细胞株。采用小鼠体内诱生腹水法获得腹水，再经纯化得到鼠源单克隆抗体，纯化方法采用上述兔源多克隆抗体制备中的饱和硫酸铵盐析法和亲和层析法。

通过ELISA饱和法测定鼠源单克隆抗体的亲和常数能够达到10⁹L/mol。利用Sigma鼠源单克隆抗体亚型鉴定试剂，鉴定出该单克隆抗体的亚型为IgG1型。

单克隆抗体的特异性：首先采用间接竞争ELISA测定与常见食物致敏蛋白的交叉反应率进行鉴定，这几种常见食物致敏蛋白竞争物包括大豆凝集素、大豆Kunitz胰蛋白酶抑制因子、花生凝集素、鸡卵清蛋白以及酪蛋白，以β-conglycinin的半数抑制浓度（IC₅₀）与各竞争物的IC₅₀的百分比作为交叉反应率，结果如表1所示，单克隆抗体与其他食物致敏蛋白竞争物之间基本没有交叉反应，结果表明其对于β-conglycinin具有良好的特异性。

表1 β-conglycinin鼠源单克隆抗体与竞争物的交叉反应

    同时通过Western blot试验对单克隆抗体的特异性进行鉴定，图1为单克隆抗体的 Western blot特异性鉴定结果，图中A为Western blot试验NC膜经液体AEC HRP酶底物显色结果，B为SDS-PAGE结果，第1、4泳道为蛋白分子量Marker，2、5泳道为β-conglycinin，3、6泳道为大豆分离蛋白（SPI）。将NC膜显色结果与蛋白分子量Marker和β-conglycinin的亚基条带相对照，从图中可以清晰的看出：单克隆抗体同时与β-conglycinin中的α’和α亚基发生特异性反应，这主要是因为α’和α亚基在氨基酸序列上有90%以上的同源性，该单克隆抗体可以识别α’和α亚基上的共同表位，而单克隆抗体与其他大豆蛋白成分均不发生反应。证明所筛选的杂交瘤细胞分泌的单克隆抗体特异性强，与其他致敏蛋白无交叉反应，能够用于胶体金纳米颗粒的标记，并能够喷点结合垫进而对样品中的β-conglycinin进行特异识别。

3、样品垫的制备

样品垫用玻璃纤维棉、尼龙膜、聚偏二氟乙烯PVDF膜或聚酯膜制备，将纤维材料剪成宽1.5cm规格的条带，将其放入样品垫封闭液中浸泡30min，于37℃烘干，备用。

4、结合垫的制备

采用柠檬酸钠还原法制备胶体金溶液，即在沸腾的0.01~0.02%氯金酸溶液中加入1%的新配制柠檬酸钠溶液，获得直径15~20nm的胶体金溶液，用0.1mol/L的K₂CO₃调节pH值至8.5~9.5，置2~8℃保存备用。以适当的标记比将待标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体加入pH 8.5~9.5的胶体金溶液中，标记30min后，加入10%的BSA，静置30min，4℃、13000rpm离心30min弃上清。沉淀用含2% BSA的0.02mol/L 四硼酸钠溶液复溶，4℃、13000rpm离心30min弃上清。将胶体金纳米颗粒沉淀用25 mL的TB重悬液（重悬液组成：0.02 mol/L 四硼酸钠溶液含1% BSA和0.03%叠氮钠）重悬，获得胶体金标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体。将2~5倍稀释的胶体金标记抗体喷点于玻璃纤维绵上制备结合垫，56℃干燥后密封避光保存。

5、纤维素膜的制备

纤维素膜用硝酸纤维素膜、纯纤维素膜或羧化纤维素膜，剪切成宽1.5cm规格的条带，用点样仪在纤维素膜上不同位置分别喷点β-conglycinin兔源多克隆抗体和羊抗小鼠IgG抗体（或兔抗小鼠IgG抗体），制作隐形的检测线和质控线，于40℃烘干后用2% BSA溶液充分封闭，室温干燥后密封避光保存备用。 

其中羊抗小鼠IgG（或兔抗小鼠IgG）抗体的制备方法如下：

首先利用饱和硫酸铵盐析法提取β-conglycinin阴性小鼠血清IgG，然后以200μg~500μg/只的剂量经皮下或肌肉注射清洁级山羊或新西兰大白兔3~4次，末次免疫30天后，以ELISA测定其血清效价达到1:10000以上时，心脏或动脉采血，分离收集高免血清，以饱和硫酸铵盐析法和亲和层析法提取羊抗小鼠或兔抗小鼠IgG抗体，用于β-conglycinin检测试纸质控线的喷点。

6、免疫层析试纸的组装：

将样品垫、结合垫、纤维素膜、吸水垫从左至右依次黏贴在带有粘合剂的支撑层上，彼此交界处重叠2~3mm，然后切成3~4mm宽的试纸即可。

7、免疫层析试纸的检测原理：

当试纸测试端插入待测样品溶液后，待测溶液通过虹吸作用带动待测β-conglycinin及结合垫中的金标抗体一起向纤维素膜扩散，并最终渗入手柄端的吸水材料层。在扩散过程中，待测β-conglycinin可先与金标单抗相结合，进而与纤维素膜上喷点的β-conglycinin兔源多克隆抗体检测印记结合，显示检测线，形成红色检测线带“︱”；纤维素膜上喷点的羊或兔抗小鼠IgG抗体质控印记也可与金标抗体结合，形成红色质控线带“︱”，即两条红色线带“︱︱”表示为阳性；反之样品溶液中无β-conglycinin时，则不能与金标抗体结合，同样也不能与纤维素膜上喷点的β-conglycinin兔源多克隆抗体检测印记结合，不显示红色检测线带，而纤维素膜上喷点的羊或兔抗小鼠IgG抗体质控印记可与金标抗体结合，显示红色质控线带“︱”，形成一条红色带“︱”表示为阴性。如果纤维素膜上没有任何红色线带显示，则表明试纸已失效。

以下用实例具体说明本发明试纸的结构、检测方法及特性。

实施例一：参见图2和图3。图中1为支撑层，用塑胶薄片条制成；2为样品垫，用玻璃纤维棉制成；3为结合垫，吸附有胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体的玻璃纤维棉；4为纤维素膜，采用硝酸纤维素膜；手柄端的吸水垫5用吸水滤纸制成。将样品垫2、结合垫3、纤维素膜4、吸水垫5从左至右依次黏贴固定在支撑层1上，彼此之间交界处纤维互相重叠。在纤维素膜4上设有隐形检测线6，用β-conglycinin兔源多克隆抗体溶液制成；隐形质控线7用羊抗小鼠IgG抗体溶液在纤维素膜上喷点制成，两条线带平行排列，形成组合印迹带“︱︱”。

8-1为覆盖在样品垫2和结合垫3上面的样品端白色保护膜，8-2为覆盖在吸水垫5上面的其它颜色保护膜（如黄色），9为样品标记线，该标记线位于样品垫2与结合垫3交界处对应的白色保护膜上偏向样品垫2一侧约0.5cm处，在标记线左侧保护膜上印有箭头及Max字样。

待测样品的制备及检测步骤：

检测脱脂奶粉：将样品用含有0.01mol/L NaHSO₃的水溶液以1:15的料液比溶解后，1mol/L的NaOH调pH至9.0，在45℃水浴条件下搅拌1h，将混合溶液在常温下10000rpm离心30min，分离上清液用于检测。

操作方法：将β-conglycinin试纸样品端插入待测样品中，插入深度不超过标记线，约10~20秒钟取出试纸，水平放置，10min后观察判定检测结果。

结果判定：（a）阳性 如果在纤维素膜上显示有两条红色印迹带“︱︱”，表示检测结果为阳性，说明在待测样品中含有β-conglycinin；（b）阴性 如果在纤维素膜上显示有一条红色印迹带“︱”，表示检测结果为阴性，说明在待测样品中不含β-conglycinin；（c）失效 如果在纤维素膜上没有红色带显示，则表明试纸已失效。

实施例二：试纸结构和实施例一基本相同，不同之处在于：样品垫2用尼龙膜制成，纤维素膜4采用纯纤维素膜。

检测饲料：先将样品进行粉碎，过60目筛，再用石油醚对粉碎后的样品进行脱脂处理。随后的样品制备、操作方法和结果判定同实施例一。

实施例三：试纸结构和实施例一基本相同，不同之处在于：样品垫2用聚偏二氟乙烯PVDF膜制成，隐形质控印迹7用兔抗小鼠IgG抗体溶液在纤维素膜上制成，纤维素膜4采用羧化纤维素膜。

检测饲料：样品制备方法同实施例二；操作方法和结果判定同实施例一。

实施例四：试纸结构和实施例一基本相同，不同之处在于：样品垫2用聚酯膜制成，纤维素膜4采用羧化纤维素膜。检测样品、操作方法和结果判定同实施例一。

实施例五：试纸结构和实施例一基本相同，不同之处在于：样品垫2用尼龙膜制成，隐形质控印迹7用兔抗小鼠IgG抗体溶液在纤维素膜上制成。检测样品、操作方法和结果判定同实施例一。

实施例六：本发明试纸的敏感性和特异性试验。

敏感性：取十个梯度的β-conglycinin标准溶液，浓度分别为0ng/mL，50ng/mL，100ng/mL，200ng/mL，400ng/mL，800ng/mL，1600ng/mL，3200ng/mL，6400ng/mL，12800ng/mL。各取100μL用实施例一中的试纸进行检测，10min后观察结果，以检测线显色结果评价试纸的敏感性。结果表明，试纸的灵敏度可以达到100ng/mL。

特异性：用该试纸检测分别检测高浓度的大豆凝集素、大豆Kunitz胰蛋白酶抑制因子、花生凝集素、鸡卵清蛋白以及酪蛋白，浓度为20μg/mL，结果检测线均不显色，说明该试纸与这几种致敏蛋白均没有交叉反应，具有良好的特异性。

Claims (10)

1.一种快速检测大豆致敏蛋白β-conglycinin的胶体金免疫层析试纸，底层为支撑层，中间层为吸附层，保护层固定在吸附层上，吸附层从测试端依次为样品垫、结合垫、纤维素膜和吸水垫，其特征在于：在纤维素膜设有用β-conglycinin兔源多克隆抗体溶液喷点的隐形检测线以及用羊抗小鼠IgG抗体或兔抗小鼠IgG抗体溶液喷点的隐形质控线；所述结合垫吸附有胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体。

2.根据权利要求1所述的免疫层析试纸，其特征是：所述支撑层用不吸水的韧性材料制成；样品垫用玻璃纤维棉、尼龙膜、聚偏二氟乙烯膜或聚酯膜制成；结合垫用玻璃纤维棉、聚酯膜、醋酸纤维或尼龙膜制成；纤维素膜用硝酸纤维素膜、纯纤维素膜或羧化纤维素膜制成；吸水垫用吸水滤纸或滤油纸制成。

3.根据权利要求1所述的免疫层析试纸，其特征是：所述隐形检测线和隐形质控线为平行排列的“︱︱”直线式印记；在所述样品垫、结合垫及吸水垫上覆盖有保护层，在样品垫与结合垫交界处对应的保护层上喷点有样品标记线。

4.根据权利要求1所述的免疫层析试纸，其特征是：其中Β-conglycinin兔源多克隆抗体的制备方法如下：

取清洁级3月龄新西兰大白兔，用β-conglycinin溶液进行免疫，颈部皮下分4~6点注射，首次免疫剂量为200μg/只，用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量弗氏完全佐剂混合，25000r/min充分乳化10min；加强免疫剂量增大至300μg/只，免疫4次，用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量弗氏不完全佐剂混合，25000r/min充分乳化10min，共免疫4次，每次免疫间隔3周，最后一次免疫30天后，以ELISA法测定效价，并鉴定其敏感性和特异性，心脏采血并分离收集血清；

以饱和硫酸铵盐析法纯化兔源多克隆抗体，即取1份血清加2份pH7.2的PBS混匀，加入等体积的饱和硫酸铵溶液混匀，置4℃冰箱12h，4℃、10000rpm离心30min，弃上清，再以适量pH7.2的PBS溶解沉淀，加饱和硫酸铵溶液至终浓度33％，置4℃冰箱12h，4℃、10000rpm离心30min，弃上清，以适量pH7.2的PBS溶解沉淀，置4℃冰箱内用pH7.2的PBS透析48~72h，中间换液6~8次，4℃、12000rpm离心15min，收集上清，得初步纯化的β-conglycinin兔源多克隆抗体；

然后采用Protein G亲和层析柱进一步纯化，先用10倍柱体积的PBS起始缓冲液平衡层析柱，将初步纯化的β-conglycinin兔源多克隆抗体用起始缓冲液1:1稀释后，通过0.22μm的一次性无菌过滤器过滤后加样，随后用10倍柱体积的起始缓冲液流洗，除去未结合的抗体，最后用2倍柱体积的洗脱缓冲液洗脱，用盛有中和液的离心管收集，再用PBS充分透析备用；所述洗脱缓冲液为0.1mol/L的甘氨酸-盐酸，pH值为 2.5；中和液为0.1mol/L 的Tris-HCl、pH 值为9.0。

5.根据权利要求1所述的免疫层析试纸，其特征是：其中β-conglycinin鼠源单克隆抗体的制备方法如下：

取SPF级6~8周龄BALB/c小鼠，用β-conglycinin溶液进行免疫，剂量为50μg/只，背部皮下分4~6点注射，免疫4次，首次免疫用无菌PBS稀释β-conglycinin，与等量FCA混合，加强免疫用无菌PBS稀释β-conglycinin，与等量FIA混合，25000r/min充分乳化10min，免疫间隔3周；确定抗体效价符合要求后，以50μg/只的剂量不加佐剂进行超强免疫，之后3~4天将免疫小鼠眶下窦采血，分离阳性血清；脱颈致死，用体积比为75%的酒精浸泡小鼠5~10min消毒体表，无菌操作取其脾脏，将脾脏剪碎并研磨，经120目尼龙纱布过滤，1000rpm离心10min，收集脾细胞；将1×10⁸的脾细胞与NS0骨髓瘤细胞按10:1的比例混合，1000rpm离心10min，弃上清，细胞沉淀物于37℃水浴中缓慢加入0.7~1.0mL的 PEG1500作用1min，然后缓慢加入无血清1640培养基15mL，以终止PEG的作用；37℃水浴5~10 min，1000rpm离心10min弃上清，将细胞沉淀物重悬于HAT选择培养基中，并加入96孔细胞培养板，100μL~200μL/孔，置于37℃、5%的 CO₂培养箱中培养，培养10~14天，用间接ELISA和间接竞争ELISA法进行阳性孔筛选，将选择的阳性孔进行2~3次有限稀释克隆化，阳性孔扩大培养后建立杂交瘤细胞株；采用小鼠体内诱生腹水法获得腹水，再经纯化得到鼠源单克隆抗体。

6.根据权利要求1-5任一项所述的免疫层析试纸，其特征是：其中胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体的制备方法如下：

在沸腾的0.01~0.02%氯金酸溶液中加入1%的新配制的柠檬酸钠溶液，获得直径15~20nm的胶体金溶液，用0.1mol/L的K₂CO₃调节pH值至8.5~9.5，置2~8℃保存备用；以以1：2000的标记比将待标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体加入pH 8.5~9.5的胶体金溶液中，标记30min后，加入10%的BSA，静置30min，4℃、13000rpm离心30min，弃上清；沉淀用含2% BSA的0.02mol/L 四硼酸钠溶液复溶，4℃、13000rpm离心30min弃上清；将胶体金纳米颗粒沉淀用25 mL的TB重悬液重悬，获得胶体金标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体；其中TB重悬液为0.02 mol/L 的四硼酸钠溶液，其中含重量比为1% 的BSA和0.03%的叠氮钠。

7.权利要求1所述免疫层析试纸的制备方法，其特征是：该方法包括以下步骤：

首先制备β-conglycinin兔源多克隆抗体，然后制备β-conglycinin鼠源单克隆抗体并用胶体金纳米颗粒进行标记，用胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体制备结合垫，用β-conglycinin兔源多克隆抗体溶液喷点隐形检测线，用羊抗小鼠IgG抗体或兔抗小鼠IgG抗体溶液喷点隐形质控线，然后在支撑层上依次层叠黏贴样品垫、结合垫、纤维素膜和吸水垫，最后加上保护层，制得免疫层析试纸。

8.权利要求7所述免疫层析试纸的制备方法，其特征是：Β-conglycinin兔源多克隆抗体的制备方法如下：

取清洁级3月龄新西兰大白兔，用β-conglycinin溶液进行免疫，颈部皮下分4~6点注射，首次免疫剂量为200μg/只，用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量弗氏完全佐剂混合，25000r/min充分乳化10min；加强免疫剂量增大至300μg/只，免疫4次，用无菌PBS稀释β-conglycinin与等量弗氏不完全佐剂混合，25000r/min充分乳化10min，共免疫4次，每次免疫间隔3周，最后一次免疫30天后，以ELISA法测定效价，并鉴定其敏感性和特异性，心脏采血并分离收集血清；

以饱和硫酸铵盐析法纯化兔源多克隆抗体，即取1份血清加2份pH7.2的PBS混匀，加入等体积的饱和硫酸铵溶液混匀，置4℃冰箱12h，4℃、10000rpm离心30min，弃上清，再以适量pH7.2的PBS溶解沉淀，加饱和硫酸铵溶液至终浓度33％，置4℃冰箱12h，4℃、10000rpm离心30min，弃上清，以适量pH7.2的PBS溶解沉淀，置4℃冰箱内用pH7.2的PBS透析48~72h，中间换液6~8次，4℃、12000rpm离心15min，收集上清，得初步纯化的β-conglycinin兔源多克隆抗体；

然后采用Protein G亲和层析柱进一步纯化，先用10倍柱体积的PBS起始缓冲液平衡层析柱，将初步纯化的β-conglycinin兔源多克隆抗体用起始缓冲液1:1稀释后，通过0.22μm的一次性无菌过滤器过滤后加样，随后用10倍柱体积的起始缓冲液流洗，除去未结合的抗体，最后用2倍柱体积的洗脱缓冲液洗脱，用盛有中和液的离心管收集，再用PBS充分透析备用；所述洗脱缓冲液为0.1mol/L的甘氨酸-盐酸，pH值为 2.5；中和液为0.1mol/L 的Tris-HCl、pH 值为9.0。

9.权利要求7所述免疫层析试纸的制备方法，其特征是：其中β-conglycinin鼠源单克隆抗体的制备方法如下：

取SPF级6~8周龄BALB/c小鼠，用β-conglycinin溶液进行免疫，剂量为50μg/只，背部皮下分4~6点注射，免疫4次，首次免疫用无菌PBS稀释β-conglycinin，与等量FCA混合，加强免疫用无菌PBS稀释β-conglycinin，与等量FIA混合，25000r/min充分乳化10min，免疫间隔3周；确定抗体效价符合要求后，以50μg/只的剂量不加佐剂进行超强免疫，之后3~4天将免疫小鼠眶下窦采血，分离阳性血清；脱颈致死，用体积比为75%的酒精浸泡小鼠5~10min消毒体表，无菌操作取其脾脏，将脾脏剪碎并研磨，经120目尼龙纱布过滤，1000rpm离心10min，收集脾细胞；将1×10⁸的脾细胞与NS0骨髓瘤细胞按10:1的比例混合，1000rpm离心10min，弃上清，细胞沉淀物于37℃水浴中缓慢加入0.7~1.0mL的 PEG1500作用1min，然后缓慢加入无血清1640培养基15mL，以终止PEG的作用；37℃水浴5~10 min，1000rpm离心10min弃上清，将细胞沉淀物重悬于HAT选择培养基中，并加入96孔细胞培养板，100μL~200μL/孔，置于37℃、5%的 CO₂培养箱中培养，培养10~14天，用间接ELISA和间接竞争ELISA法进行阳性孔筛选，将选择的阳性孔进行2~3次有限稀释克隆化，阳性孔扩大培养后建立杂交瘤细胞株；采用小鼠体内诱生腹水法获得腹水，再经纯化得到鼠源单克隆抗体。

10.权利要求7所述免疫层析试纸的制备方法，其特征是：胶体金纳米颗粒标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体的制备方法如下：

在沸腾的0.01~0.02%氯金酸溶液中加入1%的新配制的柠檬酸钠溶液，获得直径15~20nm的胶体金溶液，用0.1mol/L的K₂CO₃调节pH值至8.5~9.5，置2~8℃保存备用；以以1：2000的标记比将待标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体加入pH 8.5~9.5的胶体金溶液中，标记30min后，加入10%的BSA，静置30min，4℃、13000rpm离心30min，弃上清；沉淀用含2% BSA的0.02mol/L 四硼酸钠溶液复溶，4℃、13000rpm离心30min弃上清；将胶体金纳米颗粒沉淀用25 mL的TB重悬液重悬，获得胶体金标记的β-conglycinin鼠源单克隆抗体；其中TB重悬液为0.02 mol/L 的四硼酸钠溶液，其中含重量比为1% 的BSA和0.03%的叠氮钠。