发明内容
本发明所要解决的一个技术问题是提供一种海藻糖合酶的突变体,当活性中心位点附近附近氨基酸发生突变后,得到转化率提高的海藻糖合酶。所述突变体包括含有一个、两个或三个相对于Thermobifida fusca YX海藻糖合酶活性氨基酸残基的取代,与亲本相比有更高的海藻糖转化效率。
所述海藻糖合酶的亲本的氨基酸序列与NCBI数据库中的Thermobifida fusca YX海藻糖合酶一致(登录号WP_011291031.1)。
所述突变体是将亲本海藻糖合酶的第271位的谷氨酰胺(Gln)突变为甲硫氨酸(Met),命名为Q271M;或将环海藻糖合酶基因中第220位的异亮氨酸(Ile)突变成缬氨酸(Val),所得突变体命名为I220V;或将海藻糖合酶基因中第228位的缬氨酸(Val)突变成异亮氨酸(Ile),所得突变体命名为V228I;或将海藻糖合酶基因中第290位的半胱氨酸(Cys)突变成缬氨酸(Val),所得突变体命名为C290V;或将海藻糖合酶基因中第294位的苯丙氨酸(Phe)突变成络氨酸(Tyr),所得突变体命名为F294Y;或将海藻糖合酶基因中第332位的异亮氨酸(Ile)突变成苯丙氨酸(Phe),所得突变体命名为I332F。
所述突变体还可以是将单突变体酶I220V的第271位的谷氨酰胺(Gln)突变成甲硫氨酸(Met),或第228位的缬氨酸(Val)突变成异亮氨酸(Ile),或第290位的半胱氨酸(Cys)突变成缬氨酸(Val),或第294位的苯丙氨酸(Phe)突变成络氨酸(Tyr),或第332位的异亮氨酸(Ile)突变成苯丙氨酸(Phe),所得突变体分别命名为I220V/Q271M、I220V/V228I、I220V/C290V、I220V/F294Y、I220V/I332F。
本发明所要解决的另一个技术问题是提供一种海藻糖转化效率提高的海藻糖合酶突变体的制备方法,包括如下步骤:
(1)在Thermobifida fusca YX海藻糖合酶氨基酸序列的基础上确定突变位点;设计定点突变的突变引物,以携带海藻糖合酶基因的载体为模板进行定点突变;构建含突变体的质粒载体;
(2)将突变体质粒转化进宿主细胞;
(3)挑选阳性克隆进行发酵培养,并纯化海藻糖合酶突变体。
在本发明的一种实施方式中,所述质粒载体为pUC系列,pET系列,或pGEX中的任意一种。
在本发明的一种实施方式中,所述宿主细胞为细菌或真菌细胞。
在本发明的一种实施方式中,所述的细菌为革兰氏阴性菌或革兰氏阳性菌。
本发明实现了海藻糖产量的提高,相同条件下,突变体酶Q271M、I220V、V228I、C290V、F294Y、I332F、I220V/Q271M、I220V/V228I、I220V/C290V、I220V/F294Y、I220V/I332F生产海藻糖的转化率分别达到73.3%、74.9%、73.6%、72.4%、73.3%、73.6%、74.8%、75.3%、78.6%、74.4%、75.3%,野生酶生产海藻糖的转化率为70.7%。
实施例2:突变体的制备
(1)单突变
来源于Thermobifida fusca YX的海藻糖合酶的六种突变体酶Q271M、I220V、V228I、C290V、F294Y、I332F:
根据Thermobifida fusca YX的海藻糖合酶的基因序列,分别设计并合成引入Q271M、I220V、V228I、C290V、F294Y、I332F突变的引物,对海藻糖合酶基因进行定点突变,测定DNA编码序列,分别鉴别出将突变体基因置于适当的表达载体并导入大肠杆菌中进行表达,得到单突变海藻糖合酶。单突变Q271M、I220V、V228I、C290V、F294Y、I332F的定点突变:利用快速PCR技术,以表达载体TreS/pET24a(+)为模板,
引入Q271M突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-CTCAGCGAAGCCAACATGTGGCCCGCCGAC-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-GTCGGCGGGCCACATGTTGGCTTCGCTGAG-3’(下划线为突变碱基)
引入I220V突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-CTGGACCTTGGCGTGGACGGTTTCCGCTTGG-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-CCAAGCGGAAACCGTCCACGCCAAGGTCCAG-3’(下划线为突变碱基)
引入V228I突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-TTCCGCTTGGACGCCATTCCCTACCTGTACG-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-CGTACAGGTAGGGAATGGCGTCCAAGCGGAA-3’(下划线为突变碱基)
引入C290V突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-CGGCGGCGACGAAGTGCACATGAACTTCCA-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-TGGAAGTTCATGTGCACTTCGTCGCCGCCG-3’(下划线为突变碱基)
引入F294Y突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-TGCCACATGAACTACCACTTCCCGCTGA-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-TCAGCGGGAAGTGGTAGTTCATGTGGCA-3’(下划线为突变碱基)
引入I332F突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-ACTGCCAGTGGGCGTTCTTCCTGCGCAACCA-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-TGGTTGCGCAGGAAGAACGCCCACTGGCAGT-3’(下划线为突变碱基)
PCR反应体系均为:5×PS buffer 10μL,dNTPs Mix(2.5mM)4μL,正向引物(10μM)1μL,反向引物(10μM)1μL,模板DNA 1μL,PrimerStar HS(5U/μL)0.5μL,加入双蒸水至50μL。
PCR扩增条件为:94℃预变性4min;随后30个循环(98℃10s,55℃5s,72℃8min);72℃继续延伸10min。
PCR产物经Dpn Ⅰ消化,转化大肠杆菌JM109感受态,感受态细胞在LB固体培养基(含30μg/mL卡那霉素)培养过夜后,挑克隆于LB液体培养基(含30μg/mL卡那霉素)中培养后提取质粒,将突变质粒转化表达宿主大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞,所有突变质粒均测序正确。
发酵产酶
(2)双突变
Thermobifida fusca YX的海藻糖合酶的双突变体酶I220V/Q271M、I220V/V228I、I220V/C290V、I220V/F294Y、I220V/I332F:将单突变体酶I220V基因中第271位的谷氨酰胺(Gln)突变成甲硫氨酸(Met),或者第228位的缬氨酸(Val)突变成异亮氨酸(Ile),或者第290位的半胱氨酸(Cys)突变成缬氨酸(Val),或者第294位的苯丙氨酸(Phe)突变成络氨酸(Tyr),或者第332位的异亮氨酸(Ile)突变成异亮氨酸(Phe),分别命名为I220V/Q271M、I220V/V228I、I220V/C290V、I220V/F294Y、I220V/I332F。双突变体酶的制备方法,以单突变体I220V编码基因为模板,分别设计并合成引入Q271M、V228I、C290V、F294Y、I332F突变的引物,对单突变体I220V编码基因进行定点突变,测定序列,鉴别出271位的Gln密码子变成Met密码子,第228位的Val变成Ile密码子,第290位Cys变成Val,第294位Phe变成Tyr,或者第332位Ile变成Phe,将突变体基因置于适当的表达载体并导入大肠杆菌中进行表达,得到双突变海藻糖合酶突变体。
双突变I220V/Q271M、I220V/V228I、I220V/C290V、I220V/F294Y、I220V/I332F的定点突变:利用快速PCR技术,以表达载体I220V/pET24a(+)为模板,
引入Q271M突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-CTCAGCGAAGCCAACATGTGGCCCGCCGAC-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-GTCGGCGGGCCACATGTTGGCTTCGCTGAG-3’(下划线为突变碱基)
引入V228I突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-TTCCGCTTGGACGCCATTCCCTACCTGTACG-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-CGTACAGGTAGGGAATGGCGTCCAAGCGGAA-3’(下划线为突变碱基)
引入C290V突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-CGGCGGCGACGAAGTGCACATGAACTTCCA-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-TGGAAGTTCATGTGCACTTCGTCGCCGCCG-3’(下划线为突变碱基)
引入F294Y突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-TGCCACATGAACTACCACTTCCCGCTGA-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-TCAGCGGGAAGTGGTAGTTCATGTGGCA-3’(下划线为突变碱基)
引入I332F突变的定点突变引物为:
正向引物:5’-ACTGCCAGTGGGCGTTCTTCCTGCGCAACCA-3’(下划线为突变碱基)
反向引物:5’-TGGTTGCGCAGGAAGAACGCCCACTGGCAGT-3’(下划线为突变碱基)
PCR反应体系、反应条件及突变基因的测序方法同单突变体的方法。
(3)突变体酶的发酵与纯化
挑取转入表达宿主大肠杆菌BL21(DE3)的阳性克隆于LB液体培养基(含30μg/mL卡那霉素)生长8~10h,按5%接种量将种子发酵液接到TB培养基(含30μg/mL卡那霉素)中,在37℃摇床中培养48h后,将发酵液于4℃、8000rpm离心10min除菌体,收集离心上清液。