CN104694469A - 胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法 - Google Patents

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CN104694469A CN201510136758.2A CN201510136758A CN104694469A CN 104694469 A CN104694469 A CN 104694469A CN 201510136758 A CN201510136758 A CN 201510136758A CN 104694469 A CN104694469 A CN 104694469A
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姚静
张瑞婷
杨莉莉
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Abstract

本发明公开了一种胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,包括以下步骤:将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中消化18~20h后加入胰酶继续消化,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞;将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞进行培养扩增。Ⅰ型胶原酶消化底蜕膜组织块时间较长,能够获取大量间充质干细胞,增大底蜕膜组织块利用率,缩短细胞培养时间及培养周期,避免了细胞因多次复制引起的细胞质量下降以及功能形态变化,为临床使用胎盘底蜕膜间充质干细胞提供了良好的保障。

Description

胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法
技术领域
本发明涉及间充质干细胞的制备,特别涉及一种胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法。
背景技术
间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是来源于发育早期中胚层和外胚层的一类多能干细胞,最初在骨髓中发现,因其具有以下特点:1)造血支持作用。作为造血微环境主要细胞成分——基质细胞系的干/祖细胞,MSCs与造血干细胞共同移植可促进造血干祖细胞的植入;2)免疫调控。MSCs不表达CD34,CD45,HLA-DR等协同刺激分子,体外可抑制混合淋巴细胞反应,对于预防和治疗异基因造血细胞移植后引起的移植物抗宿主病,治疗自身免疫系统疾病有重要意义;3)基因治疗,由于MSCs体外扩增、增殖能力强,可以作为基因操作的干细胞平台,加之MSC具有对肿瘤的靶向性,在肿瘤的基因治疗中有着十分诱人的前景;4)多向分化潜能。在体外特定的诱导条件下可分化为脂肪、骨、软骨、肌肉、肌腱、韧带、神经、肝、心肌、内皮等多种组织细胞,连续传代培养和冷冻保存后仍具有多向分化潜能,可作为理想的种子细胞用于组织工程。
目前,从胎盘、脐带获得间充质干细胞常用酶消化法,通常是采用胶原酶消化2~3小时后加入胰酶,这种酶消化方法会因为消化不完全导致获得间充质干细胞量少,没有分离出的细胞被浪费,增大了细胞扩增的难度,延长了细胞培养时间。
发明内容
本发明的目的是提供一种胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,能够在很大程度上消化胎盘底蜕膜组织块,进而能够获得大量间充质干细胞,增大底蜕膜组织块利用率,缩短细胞培养时间。
为实现上述目的,根据本发明的一个方面,提供了一种胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,包括以下步骤:将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中消化18~20h后加入胰酶继续消化,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞;将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞进行培养扩增。由此,Ⅰ型胶原酶消化底蜕膜组织块时间较长,能够获取大量间充质干细胞,增大底蜕膜组织块利用率,缩短细胞培养时间及培养周期,避免了细胞因多次复制引起的细胞质量下降以及功能形态变化,为临床使用胎盘底蜕膜间充质干细胞提供了良好的保障。
在一些实施方式中,Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。由此,Ⅰ型胶原酶在此用量范围内,能够满足较长的消化时间。
在一些实施方式中,胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.2~0.3倍。由此,胰酶在此用量范围内,能够得到较好的消化效果。
在一些实施方式中,胰酶在37℃下消化20~40min。由此,在此时间范围内胰酶对底蜕膜组织块有较好的消化效果。
在一些实施方式中,底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。可获得含杂质较少的细胞。
在一些实施方式中,将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。进一步清洗提纯获得基本不含杂质的胎盘底蜕膜间充质干细胞。
在一些实施方式中,将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,进行原代细胞培养。对间充质干细胞进行第一次增殖培养,以上述密度接种,能够具有较好的增殖效果。
在一些实施方式中,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。在此环境下进行细胞培养,使细胞具有良好的增殖速度。
在一些实施方式中,原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:2~1:5体积比接种到新培养瓶中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。由此,依照上述步骤转移至新培养瓶中进行细胞培养,能够使细胞具有良好的增殖速度。
在一些实施方式中,培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。
本发明的有益效果为:本发明的制备方法采用Ⅰ型胶原酶消化底蜕膜组织块18~20h后,在加入胰酶继续消化。Ⅰ型胶原酶消化底蜕膜组织块时间较长,能够获取大量间充质干细胞,增大底蜕膜组织块利用率,缩短细胞培养时间及培养周期,避免了细胞因多次复制引起的细胞质量下降以及功能形态变化,为临床使用胎盘底蜕膜间充质干细胞提供了良好的保障。
附图说明
图1为A组的组织贴壁法制备间充质干细胞中细胞培养第9天间充质干细胞形态图;
图2为A组的组织贴壁法制备间充质干细胞中细胞培养第15天间充质干细胞融合80%~90%形态图;
图3为B组的胰酶消化法制备间充质干细胞中细胞培养第20天间充质干细胞形态图;
图4为B组的胰酶消化法制备间充质干细胞中细胞培养第28天间充质干细胞融合80%~90%形态图;
图5为C组的胰酶加胶原酶直接消化法制备间充质干细胞中细胞培养第10天间充质干细胞形态图;
图6为C组的胰酶加胶原酶直接消化法制备间充质干细胞中细胞培养第22天间充质干细胞融合80%~90%形态图;
图7为D组本发明的制备间充质干细胞方法中细胞培养第3天间充质干细胞形态图;
图8为D组本发明的制备间充质干细胞方法中细胞培养第7天间充质干细胞融合80%~90%形态图;
图9为D组本发明的制备间充质干细胞方法中细胞培养生长曲线及对应的细胞活率图;
图10为D组本发明的制备间充质干细胞方法中细胞培养P2代间充质干细胞流式表型图;
图11为D组本发明的制备间充质干细胞方法获得间充质干细胞的成骨诱导分化图;
图12为D组本发明的制备间充质干细胞方法获得间充质干细胞的成软骨诱导分化图;
图13为D组本发明的制备间充质干细胞方法获得间充质干细胞的成脂肪诱导分化图。
具体实施方式
以下通过对比几种胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,进一步解释本发明的有益效果。其中几种胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法包括组织块贴壁法、胰酶消化法、胰酶加胶原酶直接消化法和本发明的制备方法。其中,Ⅰ型胶原酶、胰酶、DMEM-F12培养基均采购自GIBCO公司。对比操作包括以下步骤:
S101、从新鲜足月胎盘组织中剥取底蜕膜,用生理盐水对底蜕膜组织进行清洗。
S102、尽量沥干底蜕膜组织表面的生理盐水,在玻璃皿中剪碎为底蜕膜组织块,组织块的体积为1mm3左右,然后平均分成A、B、C、D4组。
S103、将A、B、C、D4组分别采用组织块贴壁法、胰酶消化法、胰酶加胶原酶直接消化法和本发明的方法制备间充质干细胞。制备过程如下。
1、A组采用组织块贴壁法制备间充质干细胞。
将A组的底蜕膜组织块均匀贴于100mm的培养皿中,组织块之间的距离在1~2cm,晾干贴壁40min后,每个培养皿中加入10mlDMEM完全培养基,置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。
待细胞爬出后,剔除组织块,继续进行细胞培养,如图1所示,为细胞培养第9天间充质干细胞形态图。细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,按1:2~1:5接种到新培养瓶中培养。
如图2所示,细胞培养第15天细胞再次培养到80~90%融合。此时收集细胞,取2×105个用于流式检测;取5×103个/cm2接种于培养孔板中,进行成骨、成脂肪、成软骨诱导实验;剩余细胞按2×106个/ml永久冻存于液氮中。
2、B组采用胰酶消化法制备间充质干细胞。
将B组的底蜕膜组织块放入15ml离心管中,且加入组织块体积1/4的胰酶,混匀,于37℃消化30min,每10min摇晃一次,使消化完全。
取出消化后的混合物,无需加终止液,加入混合物三倍体积量的生理盐水稀释。将稀释的混合物过200目筛网,收集滤液,1800rpm,10min快速离心。离心后弃上清,收集沉淀细胞,用生理盐水清洗一遍,1500rpm,10min离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞按2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。待细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,按1:2~1:5接种到新培养瓶中培养。
如图3所示,为细胞培养第20天间充质干细胞形态图。如图4所示,细胞培养第28天细胞再次培养到80~90%融合。此时,收集细胞,取2×105个用于流式检测,取5×103个/cm2接种于培养孔板中,进行成骨、成脂肪、成软骨诱导实验,剩余细胞按2×106个/ml永久冻存于液氮中。
3、C组采用胰酶加胶原酶直接消化法法制备间充质干细胞。
将C组的底蜕膜组织块放入15ml离心管中,且加入底蜕膜组织块两倍体积的Ⅰ型胶原酶和1/4体积的胰酶37℃消化30min,每10min摇晃一次,使消化完全。
取出消化后的混合物,无需加终止液,加入混合物三倍体积量的生理盐水稀释。将稀释的组织样品过200目筛网,收集滤液,1800rpm,10min快速离心。离心后弃上清,收集沉淀细胞,用生理盐水清洗一遍,1500rpm,10min离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞按2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。待细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,按1:2~1:5接种到新培养瓶中培养。
如图5所示,细胞培养第10天间充质干细胞形态图。如图6所示,细胞培养第22天细胞再次培养到80~90%融合。此时,收集细胞,取2×105个用于流式检测;取5×103个/cm2接种于培养孔板中,进行成骨、成脂肪、成软骨诱导实验;剩余细胞按2×106个/ml永久冻存于液氮中。
4、D组采用本发明的方法制备间充质干细胞
将D组的底蜕膜组织块放入15ml离心管中,且加入底蜕膜组织块两倍体积的Ⅰ型胶原酶37℃消化18~20h,消化完成后加入总体积1/4的胰酶,混匀,放入37℃消化30min,每10min摇晃一次,使消化完全。
取出消化后的混合物,无需加终止液加入混合物三倍量的生理盐水清洗,然后过200目筛网,1800rpm,10min快速离心。离心后弃上清,收集沉淀细胞,用生理盐水清洗一遍,1500rpm,10min离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞按2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。待细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,按1:2~1:5接种到新培养瓶中培养。
如图7所示,为细胞培养第3天间充质干细胞形态图。如图8所示,细胞培养第7天细胞再次培养到80~90%融合。此时,收集细胞,取2×105个用于流式检测,实验结果如图9所示,图9a为胎盘底蜕膜来源的P2代间充质干细胞的生长曲线图,从第4天起进入指数增长期,图9b为胎盘底蜕膜来源的P2代间充质干细胞1~8天中的细胞活率,显示细胞状态非常好,超过80%以上。图10显示胎盘底蜕膜来源的P2代间充质干细胞的流式分析,CD45\HLA-DR\CD14\CD34\CD79a表达阴性,CD105\CD79\CD90表达强阳性,表明具有间充质干细胞特性。取5×103个/cm2接种于培养孔板中,进行成骨、成脂肪、成软骨诱导实验;剩余细胞按2×106个/ml永久冻存于液氮中。图11、12和13所示,获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞能够有效分化为骨细胞、软骨细胞和脂肪细胞。
综合上述对比,A、B、C、D四组的胎盘底蜕膜间充质干细胞从分离到细胞培养到80~90%融合的时间依次为15天、28天、22天、7天。由此可见,采用本发明的制备方法具有最短的制备时间,通过流式检测,得出获得的间充质干细胞具有较好的质量和纯度。通过成骨、成脂、成软骨诱导实验可得,获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞具有很好的分化能力。
以下对本发明的方法进行详细解释。
本发明的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其中,Ⅰ型胶原酶、胰酶、DMEM-F12培养基均采购自GIBCO公司。包括以下步骤:
S201、从新鲜足月胎盘组织中剥取底蜕膜,用生理盐水对底蜕膜组织进行清洗。尽量沥干底蜕膜组织表面的生理盐水,在玻璃皿中剪碎为底蜕膜组织块,组织块的体积为1mm3左右。
S202、将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中在37℃消化18~20h。Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。
S203、加入胰酶在37℃下继续消化20~40min,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.2~0.3倍。
S204、底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
S205、将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶(采用DMEM-F12培养基)中,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:2~1:5体积比接种到新培养瓶(采用DMEM-F12培养基)中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。
S206、培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。项目检测包括细胞流式检测以及进行成骨、成脂肪、成软骨诱导实验。冻存条件为:细胞按2×106个/ml永久冻存于液氮中。
以下通过实施例对本发明进一步解释。
实施例1
本实施例的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,包括以下步骤:
S201、从新鲜足月胎盘组织中剥取底蜕膜,用生理盐水对底蜕膜组织进行清洗。尽量沥干底蜕膜组织表面的生理盐水,在玻璃皿中剪碎为底蜕膜组织块,组织块的体积为1mm3左右。
S202、将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中在37℃消化18h。Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。
S203、加入胰酶在37℃下继续消化20min,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.2倍。
S204、底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
S205、将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:2体积比接种到新培养瓶中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。胎盘底蜕膜间充质干细胞从分离到细胞培养到80~90%融合的时间为8天。
S206、培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。
实施例2
本实施例的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,包括以下步骤:
S201、从新鲜足月胎盘组织中剥取底蜕膜,用生理盐水对底蜕膜组织进行清洗。尽量沥干底蜕膜组织表面的生理盐水,在玻璃皿中剪碎为底蜕膜组织块,组织块的体积为1mm3左右。
S202、将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中在37℃消化18.5h。Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。
S203、加入胰酶在37℃下继续消化30min,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.25倍。
S204、底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
S205、将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:3体积比接种到新培养瓶中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。胎盘底蜕膜间充质干细胞从分离到细胞培养到80~90%融合的时间为7天。
S206、培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。
实施例3
本实施例的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,包括以下步骤:
S201、从新鲜足月胎盘组织中剥取底蜕膜,用生理盐水对底蜕膜组织进行清洗。尽量沥干底蜕膜组织表面的生理盐水,在玻璃皿中剪碎为底蜕膜组织块,组织块的体积为1mm3左右。
S202、将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中在37℃消化19h。Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。
S203、加入胰酶在37℃下继续消化35min,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.27倍。
S204、底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
S205、将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:4体积比接种到新培养瓶中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。胎盘底蜕膜间充质干细胞从分离到细胞培养到80~90%融合的时间为7天。
S206、培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。
实施例4
本实施例的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,包括以下步骤:
S201、从新鲜足月胎盘组织中剥取底蜕膜,用生理盐水对底蜕膜组织进行清洗。尽量沥干底蜕膜组织表面的生理盐水,在玻璃皿中剪碎为底蜕膜组织块,组织块的体积为1mm3左右。
S202、将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中在37℃消化20h。Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。
S203、加入胰酶在37℃下继续消化40min,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.3倍。
S204、底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
S205、将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:5体积比接种到新培养瓶中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。胎盘底蜕膜间充质干细胞从分离到细胞培养到80~90%融合的时间为8天。
S206、培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。
以上所述的仅是本发明的一些实施方式。对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明创造构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。

Claims (10)

1.胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
将Ⅰ型胶原酶加入底蜕膜组织块中消化18~20h后加入胰酶继续消化,然后进行过滤和离心,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞;
将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞进行培养扩增。
2.根据权利要求1所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述Ⅰ型胶原酶的加入量是底蜕膜组织块体积的2倍。
3.根据权利要求1所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述胰酶的加入量是底蜕膜组织块经Ⅰ型胶原酶消化后总体积的0.2~0.3倍。
4.根据权利要求1所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述胰酶在37℃下消化20~40min。
5.根据权利要求1所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述底蜕膜组织块经胰酶消化后加入总体积三倍量生理盐水,然后经过200目筛网过滤,1800rpm离心10min,获得沉淀细胞。
6.根据权利要求5所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,将生理盐水加入所述沉淀细胞,1500rpm离心10min,获得胎盘底蜕膜间充质干细胞。
7.根据权利要求1所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,将获得的胎盘底蜕膜间充质干细胞以2×104个/cm2密度接种于培养瓶中,进行原代细胞培养。
8.根据权利要求7所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,将所述培养瓶置于37℃、饱和湿度、5%的CO2培养箱中进行原代细胞培养。
9.根据权利要求7所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述原代细胞培养过程中,细胞培养到80~90%融合时,用含重量0.25%EDTA的胰酶消化,将原培养瓶中的培养基与细胞的混合物按1:2~1:5体积比接种到新培养瓶中培养,细胞再次培养到80~90%融合时,收集细胞。
10.根据权利要求1~9任一项所述的胎盘底蜕膜间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述培养扩增得到的胎盘底蜕膜间充质干细胞用于项目检测或冻存。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106520688A (zh) * 2016-11-08 2017-03-22 华南生物医药研究院 获得底蜕膜间充质干细胞的方法及试剂盒
CN108456656A (zh) * 2018-03-26 2018-08-28 北京贝诗丹生物科技有限公司 DBMSCs活性物质、制备方法及其在护肤品中的应用
CN109777766A (zh) * 2019-02-17 2019-05-21 西北师范大学 一种小鼠子宫原代基质细胞体外诱导蜕膜化的方法
CN110904031A (zh) * 2019-12-31 2020-03-24 福建省银丰干细胞工程有限公司 一种从人胎盘底蜕膜组织中分离母体来源间充质干细胞的方法
CN111575229A (zh) * 2020-04-13 2020-08-25 广东华夏健康生命科学有限公司 一种胎盘底蜕膜干细胞的分离方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101575590A (zh) * 2005-02-28 2009-11-11 中国医学科学院血液学研究所泰达生命科学技术研究中心 人脐带间充质干细胞的制备方法
CN104357383A (zh) * 2014-10-11 2015-02-18 张炳强 人脂肪间充质干细胞制备方法及其在制备疾病药物的应用

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101575590A (zh) * 2005-02-28 2009-11-11 中国医学科学院血液学研究所泰达生命科学技术研究中心 人脐带间充质干细胞的制备方法
CN104357383A (zh) * 2014-10-11 2015-02-18 张炳强 人脂肪间充质干细胞制备方法及其在制备疾病药物的应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
余永春等: "脐带间充质干细胞分离培养方法的优化", 《医药》 *
邢昕等: "体外分离培养人源性脂肪间充质干细胞及其鉴定", 《中国输血杂志》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106520688A (zh) * 2016-11-08 2017-03-22 华南生物医药研究院 获得底蜕膜间充质干细胞的方法及试剂盒
CN108456656A (zh) * 2018-03-26 2018-08-28 北京贝诗丹生物科技有限公司 DBMSCs活性物质、制备方法及其在护肤品中的应用
CN109777766A (zh) * 2019-02-17 2019-05-21 西北师范大学 一种小鼠子宫原代基质细胞体外诱导蜕膜化的方法
CN109777766B (zh) * 2019-02-17 2022-05-17 西北师范大学 一种小鼠子宫原代基质细胞体外诱导蜕膜化的方法
CN110904031A (zh) * 2019-12-31 2020-03-24 福建省银丰干细胞工程有限公司 一种从人胎盘底蜕膜组织中分离母体来源间充质干细胞的方法
CN111575229A (zh) * 2020-04-13 2020-08-25 广东华夏健康生命科学有限公司 一种胎盘底蜕膜干细胞的分离方法
CN111575229B (zh) * 2020-04-13 2021-04-30 广东华夏健康生命科学有限公司 一种胎盘底蜕膜干细胞的分离方法

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