CN102660501A - 分离和扩增脐带新鲜组织间充质干细胞的方法 - Google Patents
分离和扩增脐带新鲜组织间充质干细胞的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102660501A CN102660501A CN2012101599181A CN201210159918A CN102660501A CN 102660501 A CN102660501 A CN 102660501A CN 2012101599181 A CN2012101599181 A CN 2012101599181A CN 201210159918 A CN201210159918 A CN 201210159918A CN 102660501 A CN102660501 A CN 102660501A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- umbilical cord
- tissue
- stem cell
- mesenchymal stem
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法。其包括如下步骤：对脐带组织进行消毒和清洗，将组织剪成块状，消化处理1-2.5小时，终止消化，对消化得到的细胞进行细胞清洗，获得细胞悬液，将细胞悬液加入T25细胞培养瓶里培养，培养至第3-6天并进行补，继续培养，在第8-11天时进行第一次全换液，此后每1-3天进行一次全换液；当平皿内的贴壁细胞融合率达到50-70%左右时，使用消化酶使贴壁细胞脱离T25细胞培养瓶底部；离心去上清液，加入间充质干细胞培养基重新悬浮细胞，再接种于T25细胞培养瓶进行传代并进行扩增培养，此后每1-3天换液一次，直至融合率达到70-90%后，即得脐带间充质干细胞。本发明方法可有效用于分离和扩增间充质干细胞。
Description
技术领域
本发明涉及从脐带新鲜组织中分离和扩增干细胞的方法，特别涉及从脐带新鲜组织中分离和扩增间充质干细胞的方法。
背景技术
间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSC)来源于发育早期的中胚层和外胚层，具有多向分化潜能、免疫调节和自我复制等特点，日益受到人们的关注。间充质干细胞在体内或体外特定的诱导条件下，可分化为脂肪、骨、软骨、肌肉、肌腱、韧带、神经、肝、心肌、内皮等多种组织细胞，连续传代培养和冷冻保存后仍具有多向分化潜能，可作为理想的种子细胞用于衰老和病变引起的组织器官损伤修复，尤其对治疗衰老和组织器官损伤修复有很大的临床应用价值。
MSC在骨髓中蕴含丰富，但随着年龄的老化，骨髓中的干细胞数目也会显著降低、增殖分化能力亦大幅度衰退。另外，骨髓MSC移植给异体可能引起免疫反应，且提取干细胞过程对患者的损伤性和在采集时遇到的其他问题，都直接影响了骨髓MSC的临床应用，使得寻找骨髓以外其他可替代的间充质干细胞来源成为一个重要的问题。
近期的研究显示，脐带组织中也含有间充质干细胞并且能成功分离。这种组织来源的间充质干细胞不仅保持了间充质干细胞的生物学特性，而且分离出来的干细胞更原始，有更强的增殖分化能力。其免疫细胞的功能活性低，大大减低了触发免疫反应及引起移植物抗宿主病的风险。潜伏性病毒和微生物的感染及传播几率比较低。采集过程简单，对产妇及新生儿无任何危害及损伤。以上原因足以令脐带间充质干细胞成为骨髓间充质干细胞的理想替代物。
但是，目前关于脐带MSC的分离和扩增方法不一，且大多步骤复杂，获得较多数量脐带MSC也存在一定困难。因此，本领域需要有从脐带中分离和扩增间充质干细胞的简单、有效的方法，以满足医药、科研、临床应用等领域的需求。
发明内容
本发明的目的是解决现有获取脐带间充质干细胞方法的缺陷，提供一种简单有效的从离体脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法。本发明发现使用一种组织消化法可以有效地从脐带组织分离原代间充质干细并进行培养。本发明基于此发现而得以完成。
因此，本发明第一方面提供了从脐带离体新鲜组织中分离和扩增间充质干细胞的方法，该方法包括以下步骤：
(1)消毒和清洗：用消毒液(例如酒精)对脐带组织表面进行消毒，将脐带剪开，平铺，通过缓冲液(例如PBS缓冲液)清洗脐带组织，以减少脐带组织上红细胞；
(2)消化处理：将步骤(1)得到的脐带组织剪成组织块，将组织块放入消化酶溶液(例如其非限制性地包含I型胶原酶、DMEM-F12)中，消化处理0.5-3小时(例如1-2小时，例如1.5小时)，过滤清除组织块后，加入间充质干细胞培养基以终止消化，然后对消化得到的细胞进行细胞清洗，最终获得细胞悬液；
(3)细胞培养：将步骤(2)得到的细胞悬液放入培养容器，再将培养容器放进培养箱中进行培养，培养至第2-7天(例如第3-6天，例如第4天，例如第5天)时将培养容器从培养箱中取出，补加适量(例如3ml)间充质干细胞培养基，继续培养；在第8-11天(例如第9天)时将培养容器从培养箱中取出，进行第一次全换液，继续培养；往后每1-3天(例如2天)进行一次全换液；
(4)细胞传代：当培养容器中的贴壁细胞融合率达到40%-70%(例如60%)以后，利用消化酶(例如TrypLe Express)将贴壁细胞脱离容器底部，离心，抽走上清液，加入充质干细胞培养基重新悬浮细胞，再接种于培养容器进行传代并进行扩增培养，此后每1-3天(例如每2天)换液一次，直至融合率达到70-90%(例如80%)后，即得脐带间充质干细胞，必要时进行传代；
以及任选的下列一个或多个步骤：
(5)针对步骤(4)所得脐带间充质干细胞，检测以下项目的至少一项：细胞活性、细胞污染、遗传病、HLA-ABC/DR配型；
(6)将步骤(4)所得传代后的脐带间充质干细胞于液氮中冷冻，备用。
根据本发明第一方面的方法，其中所述脐带是脐带的新鲜离体组织。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)所述脐带组织是在生物安全柜内进行处理。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)所述平铺的步骤是将脐带组织平铺在培养平皿内，所述培养平皿直径为5-20cm的培养平皿，优选培养皿直径为10cm的培养平皿。
根据本发明第一方面的方法，其中所述酒精的浓度为25%-95%，优选75%。
根据本发明第一方面的方法，其中所述PBS缓冲液是磷酸的钠盐和/或钾盐配制的，其pH为5.0-8.0，优选pH为5.5-76，优选pH为6.0-7.0。在一个实施方案中，所述PBS缓冲液中磷酸根的浓度为0.01-0.5M，优选0.02-0.1M。在本发明下文试验中，所用PBS缓冲液是磷酸钠盐，其中磷酸根的浓度为0.025M，pH为6.5。需要说明的是，本发明人发现，在上述范围内的PBS缓冲液浓度和pH值对于本发明方法的效果影响不大。
根据本发明第一方面的方法，其中所述消化酶溶液是将I型胶原酶加入DMEM-F12，通过过滤器过滤得到的，其消化酶为0.05g-0.5g，优选消化酶为0.08g-0.2g，优选消化酶为0.1g，其DMEM-F12为50-500ml，优选DMEM-F12为80-200ml，优选DMEM-F12为100ml，其过滤器为5-50μm过滤器，优选20μm过滤器。在一个实施方案中，所述消化酶溶液是将0.1g的I型胶原酶加入到100ml的DMEM-F12中，混匀，过滤(例如用20um过滤器过滤)得到的。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)是将脐带组织转移至另一个细胞培养平皿中，然后进行脐带组织剪成组织块的，所述培养平皿直径为5-20cm的培养平皿，优选培养皿直径为10cm的培养平皿。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，组织块的大小约为0.2-2.5立方厘米，优选约为0.5-1.5立方厘米，优选约1立方厘米的立方形块状。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，组织块大小在0.5-1.5立方厘米，优选0.5-1.0立方厘米，特别是大小约1立方厘米时是非常优选的。尽管预期组织碎块小有利于本发明方法的实现，然而本发明人在试验中发现在0.2立方厘米、0.5立方厘米、1立方厘米三种状态下，它们对消化酶的消化处理效果基本一致，而体积大于1.5立方厘米以后对消化酶的消化效果有显著不利影响，该不利影响可以通过延长消化时间在一定程度上弱化。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，消化处理的时间为0.5-3小时，优选1-2.5小时，优选1.5-2小时。本发明人发现在1-2.5小时的消化处理时间内，对组织块的消化处理效果是最佳的，既可保证组织块得到充分的消化处理，也能避免细胞被破坏。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，消化处理是在人体体温附近的温度范围内进行的，优选34-40℃，优选36-38℃，优选37℃。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，消化处理是在恒温摇床里进行的。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，过滤清除组织块是通过滤网进行的，所述滤网为50-150μm滤网，优选约100μm滤网。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，终止消化的间充质干细胞培养基是按照2:1~1:2的比例加入，优选1:1的比例，所述比例为体积比。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，细胞清洗的具体步骤是离心5-15分钟，去除上清液，加入PBS缓冲液重悬细胞，再离心5-15分钟，去除上清液，加入间充质干细胞培养基，抽取小量样本进行细胞计数。离心转速为800-2000rpm，优选1250rpm，离心时间为优选10分钟。
根据本发明第一方面的方法，其中所述间充质干细胞培养基中包含FBS、L-Glutamine(L-谷氨酸)、Gentamicin(庆大霉素)和DMEM-F12。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有10-20%的FBS。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有约15%的FBS。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有0.5-2%的L-Glutamine。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有约1%的L-Glutamine。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有约0.01-0.1%的Gentamicin。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有约0.05%的Gentamicin。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有80-90%的DMEM-F12。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有约84%的DMEM-F12。在一个实施方案中，所述间充质干细胞培养基中含有约15重量份的FBS、约1重量份的L-Glutamine、约0.05重量份的Gentamicin和约84重量份的DMEM-F12。本发明人发现，含有约15重量份的FBS、约1重量份的L-Glutamine、约0.05重量份的Gentamicin和约84重量份的DMEM-F12的间充质干细胞培养基是特别优选的，比之于使该培养基的任一成分含量变化10%以上的配方在增加脐带组织贴壁、减短贴壁细胞从组织爬出的时间等效果方面具有显著优势。
根据本发明第一方面的方法，其中培养容器为T25细胞培养瓶。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(3)所述细胞悬液以密度0.2-2×104/cm2加入培养容器中，优选以密度约1×104/cm2加入。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(3)所述培养箱中CO2浓度为3-7%，优选浓度为5%，培养箱温度控制在人体体温附近范围内，优选34-40℃，优选36-38℃，优选37℃。
根据本发明第一个方面的方法，在步骤(5)中，所述细胞污染检测利用少量细胞培养，检测细胞是否受到真菌和细菌的污染。在一个实施方案中，所述细胞污染检测是利用病原学方法，检测细胞是否受到选自下列的一项或多项的感染：乙肝两对半、丙肝、艾滋病毒、巨细胞病毒、EB病毒和梅毒、HbsAg、HbsAb、HbcAb、HbeAb、HbsAb、HCVAb、HIV-1/2Ab、CMV-IgM和EBV-IgA、TRUST。
根据本发明第一方面的方法，在步骤(5)中，所述遗传病检测是利用分子遗传学的方法，检测冻存细胞是否存在遗传病。
根据本发明第一方面的方法，在步骤(5)中，所述HLA-ABC/DR配型是检测细胞HLA-ABC/DR表型。
根据本发明第一方面的方法，在步骤(6)中，所述脐带间充质干细胞是经程序降温过程冻存于液氮中。
根据本发明第一方面的方法，在步骤(6)中，所述脐带间充质干细胞存在于细胞冻存液中。在一个实施方案中，该细胞冻存液包含DMEM-F12、二甲基亚砜和人血白蛋白。在一个实施方案中，该细胞冻存液包含约65份的DMEM-F12、约10份的二甲基亚砜、约15份的人血白蛋白。在一个实施方案中，该细胞冻存液包含50%低糖DMEM培养液、40%FBS、10%二甲基亚砜。
根据本发明第一方面的方法，该方法包括以下步骤：
(1)消毒和清洗：在生物安全柜内，用酒精对脐带组织表面进行消毒，将脐带从中间剪开，平铺在无菌10cm细胞培养平皿上，利用PBS缓冲液清洗组织，以减少组织上面的红细胞；
(2)消化处理：把0.1g的I型胶原酶加入100ml的DMEM-F12，然后用20μm过滤器过滤得到消化液，将步骤(1)得到的脐带组织转移至另一个10cm细胞培养平皿中，把脐带组织剪成1cm3大小的组织块，把组织块放入已配好的消化液里，在37℃的恒温摇床里消化1.5小时，利用100μm滤网清除余下的组织块，按1:1的体积比加入间充质干细胞培养基(15%FBS+1%L-Glutamine+0.05%Gentamicin+84%DMEM-F12)以终止消化，以转速1250rpm离心10分钟，把上清液去掉并加入PBS缓冲液重悬细胞后再以转速1250rpm离心10分钟，去上清液并加入间充质干细胞培养基，抽取小量样本进行细胞计数；
(3)细胞培养：将步骤(2)得到的细胞悬液加入T25细胞培养瓶里，把T25细胞培养瓶放进CO2浓度为5%的37℃培养箱中进行培养，培养至第5天时将T25细胞培养瓶从培养箱中取出，补加3ml间充质干细胞培养基，继续培养；在第9天时将T25细胞培养瓶从培养箱中取出，进行第一次全换液，继续培养；往后每2天进行一次全换液；
(4)细胞传代：当T25细胞培养瓶中的贴壁细胞融合率达到60%以后，利用消化酶(TrypLe Express)将贴壁细胞脱离T25细胞培养瓶底部，离心，抽走上清液，加入充质干细胞培养基重新悬浮细胞，再接种于T25细胞培养瓶进行传代并进行扩增培养，此后每2天换液一次，直至融合率达到80%，即得脐带间充质干细胞，必要时进行传代。
进一步地，可以针对以上步骤(4)所得脐带间充质干细胞，检测以下项目的至少一项：细胞活性、细胞污染、遗传病、HLA-ABC/DR配型。
进一步地，可以针对以上步骤(4)所得传代后的脐带间充质干细胞于液氮中冷冻，备用。
进一步地，可以将传代后的细胞于液氮中冻存并记录相关胎儿信息，并进行细胞的生物学特征及多向分化潜能鉴定，以及对细胞进行分子遗传学诊断，保存细胞的所有相关数据，建立脐带干细胞的数据库并与冻存细胞进行关联。因此，本发明在一个方面中，提供了建立脐带干细胞的步骤，以及如下步骤：将传代后的细胞于液氮中冻存并记录相关胎儿信息，并进行细胞的生物学特性及多向分化潜能鉴定，以及对细胞进行分子遗传学诊断，保存细胞的所有相关数据，建立脐带干细胞的数据库并与冻存细胞进行关联。
此外，在本发明的第一方面，提供了从脐带新鲜组织中分离和扩增间充质干细胞的方法。因此，本发明第二方面提供了一种脐带间充质干细胞。
根据本发明第二方面的脐带间充质干细胞，其是根据本发明第一方面任一实施方案所述方法获得的。
根据本发明第二方面的脐带间充质干细胞，其细胞纯度大于90%，例如大于95%。在一个实施方案中，所述脐带间充质干细胞经3代以上传代后，细胞纯度大于90%，例如大于95%。
下面对本发明作进一步的说明。本发明所引用的文献，以及该文献中所引用的文献，它们的全部内容通过引用并入本文。
在本发明中，本发明任一方面的任一技术方案中，其任一技术特征同样适用于本发明的任一方面的任一实施方案，只要它们不会引起矛盾，并且这种相互适用在必要时可以作适当的修改。
在本发明中，术语“脐带间充质干细胞”是指来源于脐带的间充质干细胞。因此在本发明中，特别是涉及本发明的语境中，术语“脐带间充质干细胞”可以与“脐带干细胞”、“干细胞”、“间充质干细胞”互换使用，除非另有明确指明。
在本发明中，术语“PBS缓冲液”或者“PBS”是指磷酸盐缓冲液。本领域技术人员熟知在本发明情形下使用的PBS的一般性配方和配制方法以及它们的一般性质例如pH值或pH范围。
在本发明中，术语“脐带”是指新生儿脐带，特别是指产后4小时之内的脐带。
间充质干细胞(mesenchymal stem cell，MSC)例如人类的间充质干细胞最早是从骨髓中分离出来的，来源于中胚层的一类具有多向分化潜能和自我更新能力的组织干细胞，在体内和体外特定条件下具有向成骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞、内皮细胞、神经细胞、肌细胞、肝细胞等多种成体细胞分化的能力(Caplan AI.Mesenchymal stem cells.J Orthop Res.1991,9:641-650.Pittenger MF，Mackay AM,Beck SC,et al.Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells.Science.1999;284:143-147)。最新的研究表明间充质干细胞具有免疫调节和造血支持作用，而且易于外源基因导入表达。因此间充质干细胞不但是组织工程化骨、软骨和心肌构建中的种子细胞，基因治疗中重要的载体细胞，而且由于间充质干细胞促进造血重建和抑制移植物抗宿主反应功能，在造血干细胞移植和器官移植中具有广泛的应用前景。间充质干细胞具有体外贴壁生长的特性，利用这种特性，人们已经成功从肝脏、肾脏、胰腺、肌肉、软骨、皮肤、外周血等多种组织中分离培养出间充质干细胞。
目前所报道的间充质干细胞主要来源于骨髓，采用密度梯度离心法获得。虽然分离方法简便，但供者取髓需要经历一个比较痛苦的手术，并在取材过程中及取材后会有很高的感染机会；由于人体骨髓中MSC的含量极其稀少，每105～106个单个核细胞中大约只有1个，而且随着年龄的增加，骨髓中间充质干细胞的数量、增殖和分化能力均显著下降，使其在研究和应用尤其是临床应用中受到限制。起源于胚胎发育期胚外中胚层的脐带是由间质、血管及滋养细胞组成，含有大量的间充质成分。
最新的研究表明脐带中含有丰富的干细胞，从脐带中分离培养出这些多能干细胞将为实验研究和临床应用开辟一个崭新而丰富的来源。
现有的分离干细胞从而建立干细胞库的方法尚有诸多缺点，例如纯度不足、和/或数量不高，进而显示出这些方法尚不能满足人们的期待。例如CN 101270349A(中国专利申请号200810061267.6，公开日2008年9月24日)公开的题为“胎盘间充质干细胞分离和体外扩增培养方法”的发明；CN 101693884A(中国专利申请号200910117522.9，公开日2010年4月14日)公开的题为“一种从胎盘、脐带或脂肪组织中分离提取干细胞的方法”的发明；CN 102146359A(中国专利申请号201110005964.1，公开日2011年8月10日)公开的题为“从胎盘中提取原始间充质干细胞及无血清扩增的方法”的发明。这些方法在提取物的纯度和/或回收率方面是有待进一步改善的。
本发明公开了一种从脐带中大量分离间充质干细胞的方法，并可利用这种方法保存脐带间充质干细胞并建立脐带干细胞库。本发明的发明人在总结以往分离培养间充质干细胞的基础上，利用组织消化酶消化脐带组织块，结合贴壁培养法，成功自脐带中分离得到大量间充质干细胞。本发明方法得到的间充质干细胞纯度高、数量多，具有与骨髓间充质干细胞相同的生物学特性，能向成骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞、内皮细胞、神经细胞等分化。由于脐带中干细胞较成体干细胞幼稚，含量丰富，在临床上具有广泛的应用前景，我们运用常规的细胞冻存方法将间充质干细胞像脐血一样冻存起来，建立脐带干细胞库，为以后干细胞的深入研究和临床治疗奠定基础。
由于脐血中含有丰富的造血干细胞，人们建立脐血库把脐血造血干细胞这一重要的生物资源储存起来，为多种血液系统疾病和免疫系统疾病提供一种治疗手段。同样脐带间充质干细胞作为一种更加重要的干细胞资源，我们运用常规的细胞冻存方法将其冷冻在-196摄氏度的深低温液氮中长期保存，建立脐带干细胞库，为日后的干细胞治疗保存种子。
根据本发明的方法，其中间充质干细胞培养基配方能成功并有效的对脐带间充质干细胞进行体外扩增。根据本发明的方法，其中换液和组织清除时间的设定缩短了贴壁细胞达到指定融合率的时间。根据本发明的方法,消化酶的配方和脐带组织的消化时间和方法能成功并有效地把组织里的全细胞分离出来。
本发明操作简单，方便实用，能得到大量的间充质干细胞，分化性能好，具有向成骨细胞、脂肪细胞、软骨细胞、内皮细胞、神经细胞等细胞分化的能力。与现有方法的比较:目前MSC主要采用手术法抽取供者骨髓或灌流法分离脐带，贴壁培养获得。该法分得细胞数量少，而且供者在取髓中和取髓后均有感染的可能。本发明成功自脐带中分离获得大量纯度较高的间充质干细胞，并运用此法建立脐带干细胞库来储备这种极具应用前景的干细胞。该法简便易行，且由于脐带与脐血一样，细胞成份较幼稚，来源广泛，方便易得，因此本发明的方法在干细胞的临床应用上将具有广泛的前景。
具体实施方式
通过下面的实施例可以对本发明进行进一步的描述,然而，本发明的范围并不限于下述实施例。本领域的专业人员能够理解,在不背离本发明的精神和范围的前提下,可以对本发明进行各种变化和修饰。本发明对试验中所使用到的材料以及试验方法进行一般性和/或具体的描述。虽然为实现本发明目的所使用的许多材料和操作方法是本领域公知的，但是本发明仍然在此作尽可能详细的描述。
实施例1、从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法
(1)消毒和清洗：在生物安全柜内，用酒精对脐带组织表面进行消毒，将脐带从中间剪开，平铺在无菌10cm细胞培养平皿上，利用PBS缓冲液清洗组织，以尽量减少组织上面的红细胞；
(2)消化处理：把0.1g的I型胶原酶加入100ml的DMEM-F12，然后用20μm过滤器过滤得到消化液，将步骤(1)得到的脐带组织转移至另一个10cm细胞培养平皿中，把脐带组织剪成1cm3大小的组织块，把组织块放入已配好的消化液里，在37℃的恒温摇床里消化1.5小时，利用100μm滤网清除余下的组织块，按1:1的体积比加入间充质干细胞培养基(15%FBS+1%L-Glutamine+0.05%Gentamicin+84%DMEM-F12)以终止消化，以转速1250rpm离心10分钟，把上清液去掉并加入PBS缓冲液重悬细胞后再以转速1250rpm离心10分钟，去上清液并加入间充质干细胞培养基，抽取小量样本进行细胞计数；
(3)细胞培养：将终止消化得到的细胞悬液加入T25细胞培养瓶里，把T25细胞培养瓶放进CO2浓度为5%的37℃培养箱中进行培养，培养至第5天时将T25细胞培养瓶从培养箱中取出，补加3ml间充质干细胞培养基，继续培养；在第9天时将T25细胞培养瓶从培养箱中取出，进行第一次全换液，继续培养；往后每2天进行一次全换液；
(4)细胞传代：当T25细胞培养瓶里面的贴壁细胞融合率达到60%左右，可利用消化酶(TrypLE Express)把贴壁细胞脱离平皿底部，离心后把上清转移并加入间充质干细胞培养基重新悬浮细胞，接种于T25细胞培养瓶进行传代并进行扩增培养。往后每两天换液一次直至融合率达到80%后再进行传代。
在以上步骤的测试中，消化后获得的脐带组织全细胞在培养的第7天开始有贴壁细胞爬出，在第19天融合率达到90%。经3代传代后，细胞纯度大于95%。
在以上步骤的测试中，间充质干细胞培养基中包含15重量份FBS、1重量份L-Glutamine、0.05重量份Gentamicin和84重量份DMEM-F12。该培养基的四种组份中，其中的任意三种比例固定时，另一种的比率在偏离上述配比10%以上时，传代至T25培养瓶后，在第17天融合率均未达到75%。例如当使用的间充质干细胞培养基中包含1重量份L-Glutamine、0.05重量份Gentamicin和84重量份DMEM-F12，以及12重量份FBS、13.5重量份FBS、16.5重量份FBS、或18重量份FBS时，四种情况下，传代至T25培养瓶后，在第17天融合率均在53-76%之间。
在以上步骤的测试中，换液时间为细胞培养的第9天第一次全换液，往后为每2天一次全换液，其中的任意换液时间在偏离上述时间10%以上时，贴壁细胞未在20天内达到融合率80%。例如换液时间为细胞培养的第12天第一次全换液，或往后为每4天一次全换液，两种情况下，贴壁细胞在第22-25天达到80%
在以上步骤的测试中，消化液为把0.1g的I型胶原酶加入100ml的DMEM-F12，消化时间为1.5小时。在培养液中I型胶原酶含量偏离上述含量10%以上时，或在消化时间偏离上述时间10%以上时，组织里的全细胞不能高效分离，分离是否高效根据抽取小量样本的细胞计数判断。
实施例2、从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法
参考实施例1的方法进行。消化后获得的脐带组织全细胞在培养的第8天开始有贴壁细胞爬出，在第20天融合率达到90%。经3代传代后，细胞纯度大于95%。
实施例3、从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法
参考实施例1的方法进行。消化后获得的脐带组织全细胞在培养的第7天开始有贴壁细胞爬出，在第18天融合率达到90%。经3代传代后，细胞纯度大于90%。
实施例4、从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法
参考实施例1的方法进行。消化后获得的脐带组织全细胞在培养的第7天开始有贴壁细胞爬出，在第20天融合率达到90%。
实施例5、从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法
参考实施例1的方法进行。消化后获得的脐带组织全细胞在培养的第8天开始有贴壁细胞爬出，在第19天融合率达到90%。
实施例6、脐带MSC的传代培养及其冻存
将实施例1-5任一项获得的细胞进行消化，消化后取1×106细胞加入到1ml细胞冻存液（含65份DMEM-F12+10份二甲基亚砜+15份人血白蛋白）中，经过程序降温最后进入到液氮罐中冻存。
实施例7、脐带MSC的生物学特性鉴定
1、细胞生长及其形态学特点
通过实施例1和实施例6的分离培养，脐带单个核细胞培养72小时后在显微镜下可明显见到梭形贴壁细胞，10天左右会形成涡轮状细胞克隆，消化传代后会形成80%左右融合的贴壁层。培养过程中，发现这种细胞形态相对均一，增殖速度快，贴壁速度快，易被胰酶消化，传代至5-15代，其形态及生长特点亦无明显改变。
2、流式细胞术鉴定MSC表面标志
分别取第3、6、9、12、15代细胞，流式细胞术检测细胞表面标志，动态观察培养过程中细胞表面标志的变化。消化收集细胞，计数后取8×106个细胞，分装16管；PBS洗一次，1500rpm离心10min；弃上清，残留100～200μl，吹打混匀细胞；加入PE标记的CD14、CD29、CD31、CD34、CD44、CD54、CD73、CD80、CD86、CD166抗体以及FITC标记的CD45、CD105、HLA-ABC、HLA-DR、UEA-1抗体各10μl，并设一管为空白对照；在4℃下，避光反应30min；PBS洗一次，1500rpm离心10min；直接标记的细胞弃上清，加入200μl PBS吹打混匀细胞，200μl的1%多聚甲醛固定，置4℃待测，3天内上流式细胞仪检测。
流式细胞仪检测细胞的表面标志，动态观察第3、6、9、12、15代的细胞，无明显改变。不表达造血细胞表面标志即CD14、CD31、CD34(HSPC及内皮细胞阳性)、CD45(白细胞阳性)、CD54(ICAM-1)、CD80(B7-1)、CD86(B7-2)、HLA-DR(MHC-II类分子)持续阴性，CD29和CD44(纤维蛋白和透明脂酸盐的受体，基质细胞表达)、CD73(即SH-3、4)、CD105(即SH-2)、CD166(间充质细胞表达)、HLA-ABC(MHC-I类分子)和UEA-1(内皮细胞的表面标志)持续为阳性。经3代以上传代后，细胞成分均一，纯度在95%以上。
3、流式细胞术检测脐带MSC的细胞周期
细胞长至80%左右融合时，消化收集细胞约1×106个，PBS洗一次，加入70%的乙醇固定，4℃待测。检测时，先离心去乙醇，再用PBS洗一次，加入RNase I 500u，37℃反应30min，PBS洗一次，加入碘化丙啶(PI，终浓度50μg/ml)1ml，室温避光反应20min，上机检测细胞DNA含量。
经测定第3代和第6代细胞的DNA含量，细胞周期分析，G0/G1期、S期和G2M期所占比例分别为96.35%、96.66%，1.11%、0.09%，和2.54%、3.25%。结果表明体外培养的细胞具有典型的干细胞增殖特点，即只有少数细胞处于活跃的增殖期(1.11%、0.09%)，大部分的细胞处于静息期(96.35%、96.66%)。
4、脐带MSC生长曲线的绘制及对数生长期倍增时间的测定
取对数生长期细胞，消化计数，以10%FBS的LG-DMEM培养基制成细胞悬液(2×104/ml)，24孔板中每孔接种0.5ml，37℃，5%CO2，饱和湿度下培养。每天取3复孔，台盼蓝染色后计数活细胞数，计算平均值，连续观察7天。以培养时间为横轴，细胞数为纵轴，绘制细胞生长曲线。以Patterson公式计算细胞在对数生长期的倍增时间，即Td=Tlg2/Lg(Nt/No)，Td：倍增时间(h)，T：细胞由No增至Nt所用的时间(h)，N：细胞数。
通过每天细胞计数的结果绘制细胞生长曲线，计算倍增时间。由细胞生长曲线可以看出，细胞在第2-4天处于指数生长期。根据公式计算出第5代细胞在指数生长期的倍增时间在18-30小时范围内。
5、脐带MSC多向分化潜能的鉴定
(1)成骨诱导
3代以上MSC，按1×105/孔接种六孔板，放于37℃、5%CO2、饱和湿度下，MSC培养基中培养24h后，换用含10%经筛选FBS的DMEM-HG并加入地塞米松0.1μM、抗坏血酸磷酸盐50μM、β-磷酸甘油10mM，放于37℃、5%CO2、在饱和湿度下培养，每3天半量换液，共诱导2-4周。碱性磷酸酶染色鉴定成骨细胞形成，Von Kossa染色鉴定骨结节形成。
在含10%经筛选FBS的DMEM-HG，加入地塞米松0.1μM、抗坏血酸磷酸盐50μM、β-磷酸甘油10mM培养1周，细胞形态发生明显的改变，由纺锤形的成纤维细胞样变为多角形，类似于神经元细胞样，细胞周边出现长丝状突出，并可向周围延伸。继续培养2周以上后，细胞基质中出现钙化斑，矿化物逐渐出现，并且开始形成多层小结结构，至培养4周后，可见明显钙化结节。2周时碱性磷酸酶染色呈强阳性反应，达到95%以上，而未加以诱导的对照组则大部分为阴性，只有不到5%显示为弱阳性，表明细胞已向成骨细胞转化。von Kossa染色可将骨结节中沉积的钙染成黑色，诱导组可见大量的黑色骨结节，有明显的立体结构，而对照组在任何时间都没有阳性反应。
(2)成脂肪诱导
3代以上MSC，按1×105/孔接种于六孔板，放于37℃、5%CO2、饱和湿度下，在MSC培养基中培养24h后，换用含10%经筛选FBS的高糖DMEM，并加入地塞米松1μM、消炎痛60μM、IBMX 0.5mM、胰岛素5μg/ml，放于37℃，5%CO2，饱和湿度下培养，每3天半量换液，共诱导2周，油红染色鉴定脂滴形成。
在含10%经筛选FBS的DMEM-HG，加入地塞米松1μM、消炎痛200μM、IBMX 0.5mM、胰岛素10μg/ml培养3天，细胞即发生形态改变，由纺锤形的成纤维细胞样逐渐收缩变短，90%以上细胞成为立方形或多角形；连续培养7天，镜下可见细胞内有微小脂滴出现，随着培养时间的延长，脂滴逐渐增大并融合，至培养2周时，可见融合成团的脂滴充满整个细胞。油红O染色可见细胞内产生的脂肪被特异性染成红色。
(3)成软骨诱导
3代以上细胞，按照每管2×105细胞分装到15ml聚丙烯离心管，低速离心使细胞在试管中形成微团，在含2.5%FBS的DMEM-HG中加入胰岛素、转铁蛋白、亚硒酸钠各6.25μg/ml，BSA 1.25μg/ml，丙酮酸钠1mM/L，抗坏血酸磷酸37.5μg/ml，TGF-β150ng/ml，放于37℃、5%CO2、饱和湿度下培养，每3天半量换液，连续培养2周。
诱导2周后将细胞微团打散涂片，阿辛蓝(Alcian blue)染色可见II型胶原形成细胞外基质呈蓝色，对照组无蓝染。
通过以上一系列数据指标的检测，显示出应用本发明方法分离得到的MSC，具有向成骨细胞、脂肪细胞、软骨细胞分化的能力，证实本发明方法获得的MSC具有干细胞特性。
实施例8、脐带干细胞库的建立
1、细胞活性的检测
利用台盼蓝染色法计数冻存前后活细胞的数目。
2、细胞污染的检测
利用少量细胞培养，检测细胞是否受到真菌和细菌的污染。利用病原学方法，检测细胞是否受到乙肝两对半、丙肝、艾滋、巨细胞病毒、EB病毒和梅毒、HbsAg、HbsAb、HBcAb、HbeAg、HbeAb、HCVAb、HIV-1/2Ab、CMV-IgM和EBV-IgA、TRUST感染。
3、遗传病的检测
利用分子遗传学的方法，检测冻存细胞是否存在遗传病。
4、HLA-ABC/DR配型
检测细胞HLA-ABC/DR表型，并记录在案。
5、细胞来源的调查
记录胎儿及其父母的详细资料，并记录在案。
6、脐带干细胞数据库的建立
在保存正常的脐带干细胞后，建立脐带干细胞的数据库，其中包括前五项资料，并建立与冻存细胞的关联。
Claims (10)
1.从脐带新鲜组织中分离和扩增间充质干细胞的方法，该方法包括以下步骤：
(1)消毒和清洗：用消毒液(例如酒精)对脐带组织表面进行消毒，将脐带剪开，平铺，通过缓冲液(例如PBS缓冲液)清洗脐带组织，以减少脐带组织上红细胞；
(2)消化处理：将步骤(1)得到的脐带组织剪成组织块，将组织块放入消化酶溶液(例如其非限制性地包含I型胶原酶、DMEM-F12)中，消化处理0.5-3小时(例如1-2小时，例如1.5小时)，过滤清除组织块后，加入间充质干细胞培养基以终止消化，然后对消化得到的细胞进行细胞清洗，最终获得细胞悬液；
(3)细胞培养：将步骤(2)得到的细胞悬液放入培养容器，再将培养容器放进培养箱中进行培养，培养至第2-7天(例如第3-6天，例如第4天，例如第5天)时将培养容器从培养箱中取出，补加适量(例如3ml)间充质干细胞培养基，继续培养；在第8-11天(例如第9天)时将培养容器从培养箱中取出，进行第一次全换液，继续培养；往后每1-3天(例如2天)进行一次全换液；
(4)细胞传代：当培养容器中的贴壁细胞融合率达到40%-70%(例如60%)以后，利用消化酶(例如TrypLe Express)将贴壁细胞脱离容器底部，离心，抽走上清液，加入充质干细胞培养基重新悬浮细胞，再接种于培养容器进行传代并进行扩增培养，此后每1-3天(例如每2天)换液一次，直至融合率达到70-90%(例如80%)后，即得脐带间充质干细胞，必要时进行传代；
以及任选的下列一个或多个步骤：
(5)针对步骤(4)所得脐带间充质干细胞，检测以下项目的至少一项：细胞活性、细胞污染、遗传病、HLA-ABC/DR配型；
(6)将步骤(4)所得传代后的脐带间充质干细胞于液氮中冷冻，备用。
2.根据权利要求1的方法，其中所述脐带是脐带的新鲜离体组织。
3.根据权利要求1的方法，其中步骤(2)中，剪碎的组织是大小约0.2-2.5立方厘米。
4.根据权利要求1的方法，其中步骤(2)中，消化处理的时间为1-2.5小时。
5.根据权利要求1的方法，其中所述间充质干细胞培养基中包含FBS、L-Glutamine、Gentamicin和DMEM-F12。
6.根据权利要求1的方法，其中：
所述间充质干细胞培养基中含有10-20%的FBS；
所述间充质干细胞培养基中含有0.5-2%的L-Glutamine；
所述间充质干细胞培养基中含有0.02-0.1%的Gentamicin；和/或
所述间充质干细胞培养基中含有80-90%的DMEM-F12。
7.根据权利要求1的方法，其中所述间充质干细胞培养基中含有约15重量份的FBS、约1重量份的L-Glutamine、约0.05重量份的Gentamicin和约84重量份的DMEM-F12。
8.根据权利要求1的方法，该方法包括以下步骤：
(1)消毒和清洗：在生物安全柜内，用酒精对脐带组织表面进行消毒，将脐带从中间剪开，平铺在无菌10cm细胞培养平皿上，利用PBS缓冲液清洗组织，以减少组织上面的红细胞；
(2)消化处理：把0.1g的I型胶原酶加入100ml的DMEM-F12，然后用20μm过滤器过滤得到消化液，将步骤(1)得到的脐带组织转移至另一个10cm细胞培养平皿中，把脐带组织剪成1cm3大小的组织块，把组织块放入已配好的消化液里，在37℃的恒温摇床里消化1.5小时，利用100μm滤网清除余下的组织块，按1:1的体积比加入间充质干细胞培养基(15%FBS+1%L-Glutamine+0.05%Gentamicin+84%DMEM-F12)以终止消化，以转速1250rpm离心10分钟，把上清液去掉并加入PBS缓冲液重悬细胞后再以转速1250rpm离心10分钟，去上清并加入间充质干细胞培养基，抽取小量样本进行细胞计数；
(3)细胞培养：将步骤(2)得到的细胞悬液加入T25细胞培养瓶里，把T25细胞培养瓶放进CO2浓度为5%的37℃培养箱中进行培养，培养至第5天时将T25细胞培养瓶从培养箱中取出，补加3ml间充质干细胞培养基，继续培养；在第9天时将T25细胞培养瓶从培养箱中取出，进行第一次全换液，继续培养；往后每2天进行一次全换液；
(4)细胞传代：当T25细胞培养瓶中的贴壁细胞融合率达到60%以后，利用消化酶(TrypLe Express)将贴壁细胞脱离T25细胞培养瓶底部，离心，抽走上清液，加入充质干细胞培养基重新悬浮细胞，再接种于T25细胞培养瓶进行传代并进行扩增培养，此后每2天换液一次，直至融合率达到80%，即得脐带间充质干细胞，必要时进行传代；
和任选地，
针对以上步骤(4)所得脐带间充质干细胞，检测以下项目的至少一项：细胞活性、细胞污染、遗传病、HLA-ABC/DR配型；和/或
将以上步骤(4)所得传代后的脐带间充质干细胞于液氮中冻存，备用。
9.建立脐带干细胞数据库的方法，其包括权利要求1-8任一项所述方法的步骤，以及如下步骤：将传代后的细胞于液氮中冻存并记录相关胎儿信息，并进行细胞的生物学特性及多向分化潜能鉴定，以及对细胞进行分子遗传学诊断，保存细胞的所有相关数据，建立脐带干细胞的数据库并与冻存细胞进行关联。
10.一种脐带间充质干细胞，其是根据权利要求1-8任一项所述方法获得的。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2012101599181A CN102660501A (zh) | 2012-05-21 | 2012-05-21 | 分离和扩增脐带新鲜组织间充质干细胞的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2012101599181A CN102660501A (zh) | 2012-05-21 | 2012-05-21 | 分离和扩增脐带新鲜组织间充质干细胞的方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN102660501A true CN102660501A (zh) | 2012-09-12 |
Family
ID=46770081
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN2012101599181A Pending CN102660501A (zh) | 2012-05-21 | 2012-05-21 | 分离和扩增脐带新鲜组织间充质干细胞的方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN102660501A (zh) |
Cited By (22)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103421739A (zh) * | 2013-05-24 | 2013-12-04 | 北京汉氏联合生物技术有限公司 | 一种高效分离脐带间充质干细胞的方法 |
| CN104152488A (zh) * | 2014-08-15 | 2014-11-19 | 济南干细胞再生与转化医学研究院 | 一种人神经干细胞库的构建方法 |
| CN106265745A (zh) * | 2016-09-30 | 2017-01-04 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种干细胞制剂及其在制备治疗慢性肾炎的药物中的应用 |
| CN106434557A (zh) * | 2016-11-25 | 2017-02-22 | 博雅干细胞科技有限公司 | 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法 |
| CN107299082A (zh) * | 2017-08-02 | 2017-10-27 | 广州中科博雅干细胞科技有限公司 | 从组织中分离胎盘间质细胞并培养成间充质干细胞的方法 |
| CN107513518A (zh) * | 2017-10-10 | 2017-12-26 | 重庆金时代生物技术有限公司 | 一种脐带间充质干细胞体外培养方法 |
| CN107779430A (zh) * | 2016-08-30 | 2018-03-09 | 天津市康婷生物工程有限公司 | 脐带间充质干细胞上清液的收集方法 |
| CN107988152A (zh) * | 2017-11-10 | 2018-05-04 | 武汉北度生物科技有限公司 | 人脐带间充质干细胞培养液中抗氧化活性成分的分离方法 |
| CN108285888A (zh) * | 2017-01-10 | 2018-07-17 | 刘金宏 | 新鲜间充质干细胞的制备方法 |
| CN108456657A (zh) * | 2018-03-31 | 2018-08-28 | 无锡博雅基因科技有限公司 | 犬脐带间充质干细胞及其制备方法和冻存方法 |
| CN108486050A (zh) * | 2018-03-31 | 2018-09-04 | 无锡博雅基因科技有限公司 | 从犬的脐带制备间充质干细胞的方法 |
| CN108728408A (zh) * | 2018-05-28 | 2018-11-02 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 犬胎膜间充质干细胞及制备方法和使用的培养基 |
| CN108795853A (zh) * | 2018-05-28 | 2018-11-13 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 制备犬胎膜间充质干细胞的方法和犬胎膜间充质干细胞 |
| CN112159796A (zh) * | 2020-10-13 | 2021-01-01 | 上海市东方医院（同济大学附属东方医院） | 一种人脐带来源的间充质干细胞原代分离的方法及应用 |
| CN112195150A (zh) * | 2020-10-22 | 2021-01-08 | 江苏拓弘康恒医药有限公司 | 一种提高脐带间充质干细胞原代获取的方法 |
| CN112292447A (zh) * | 2019-02-28 | 2021-01-29 | 京东方科技集团股份有限公司 | 脐带间充质干细胞及其细胞膜片的制备方法 |
| CN112481202A (zh) * | 2020-11-30 | 2021-03-12 | 深圳博雅感知药业有限公司 | 血小板裂解物无血清分离培养脐带间充质干细胞的方法 |
| CN113322229A (zh) * | 2021-05-26 | 2021-08-31 | 许清霖 | 一种可分化再生的延缓机体衰老的干细胞培养方法 |
| CN113621568A (zh) * | 2021-07-22 | 2021-11-09 | 江苏蒙彼利生物科技有限公司 | 一种脐带间充质干细胞无血清培养设备及其培养方法 |
| WO2021237762A1 (zh) * | 2020-05-25 | 2021-12-02 | 青岛瑞思德生物科技有限公司 | 间充质干细胞体外筛选、激活、扩增、冻存及其细胞库建立的方法 |
| CN114921408A (zh) * | 2022-05-25 | 2022-08-19 | 河北三臧生物科技有限公司 | 一种体外规模化培养扩增间充质干细胞的方法 |
| CN115956555A (zh) * | 2021-08-31 | 2023-04-14 | 优赛生命科学发展有限公司 | 一种异体脐带间充质干细胞冷冻制剂及使用方法 |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1786154A (zh) * | 2005-10-18 | 2006-06-14 | 天津昂赛细胞基因工程有限公司 | 人胎盘、脐带间充质干细胞库及其构建方法 |
| CN101831403A (zh) * | 2010-05-21 | 2010-09-15 | 协和干细胞基因工程有限公司 | 体外扩增人脐带胎盘间充质干细胞的方法 |
| CN102127522A (zh) * | 2010-12-27 | 2011-07-20 | 协和干细胞基因工程有限公司 | 人脐带间充质干细胞及其制备方法 |
-
2012
- 2012-05-21 CN CN2012101599181A patent/CN102660501A/zh active Pending
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1786154A (zh) * | 2005-10-18 | 2006-06-14 | 天津昂赛细胞基因工程有限公司 | 人胎盘、脐带间充质干细胞库及其构建方法 |
| CN101831403A (zh) * | 2010-05-21 | 2010-09-15 | 协和干细胞基因工程有限公司 | 体外扩增人脐带胎盘间充质干细胞的方法 |
| CN102127522A (zh) * | 2010-12-27 | 2011-07-20 | 协和干细胞基因工程有限公司 | 人脐带间充质干细胞及其制备方法 |
Cited By (32)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103421739B (zh) * | 2013-05-24 | 2015-09-09 | 北京汉氏联合生物技术有限公司 | 一种高效分离脐带间充质干细胞的方法 |
| CN103421739A (zh) * | 2013-05-24 | 2013-12-04 | 北京汉氏联合生物技术有限公司 | 一种高效分离脐带间充质干细胞的方法 |
| CN104152488A (zh) * | 2014-08-15 | 2014-11-19 | 济南干细胞再生与转化医学研究院 | 一种人神经干细胞库的构建方法 |
| CN107779430A (zh) * | 2016-08-30 | 2018-03-09 | 天津市康婷生物工程有限公司 | 脐带间充质干细胞上清液的收集方法 |
| CN106265745A (zh) * | 2016-09-30 | 2017-01-04 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种干细胞制剂及其在制备治疗慢性肾炎的药物中的应用 |
| CN106434557B (zh) * | 2016-11-25 | 2019-08-13 | 博雅干细胞科技有限公司 | 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法 |
| CN106434557A (zh) * | 2016-11-25 | 2017-02-22 | 博雅干细胞科技有限公司 | 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法 |
| CN108285888A (zh) * | 2017-01-10 | 2018-07-17 | 刘金宏 | 新鲜间充质干细胞的制备方法 |
| CN107299082A (zh) * | 2017-08-02 | 2017-10-27 | 广州中科博雅干细胞科技有限公司 | 从组织中分离胎盘间质细胞并培养成间充质干细胞的方法 |
| CN107299082B (zh) * | 2017-08-02 | 2020-09-15 | 广州中科博雅干细胞科技有限公司 | 从组织中分离胎盘间质细胞并培养成间充质干细胞的方法 |
| CN107513518A (zh) * | 2017-10-10 | 2017-12-26 | 重庆金时代生物技术有限公司 | 一种脐带间充质干细胞体外培养方法 |
| CN107988152A (zh) * | 2017-11-10 | 2018-05-04 | 武汉北度生物科技有限公司 | 人脐带间充质干细胞培养液中抗氧化活性成分的分离方法 |
| CN108486050B (zh) * | 2018-03-31 | 2020-09-29 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 从犬的脐带制备间充质干细胞的方法 |
| CN108486050A (zh) * | 2018-03-31 | 2018-09-04 | 无锡博雅基因科技有限公司 | 从犬的脐带制备间充质干细胞的方法 |
| CN108456657A (zh) * | 2018-03-31 | 2018-08-28 | 无锡博雅基因科技有限公司 | 犬脐带间充质干细胞及其制备方法和冻存方法 |
| CN108728408B (zh) * | 2018-05-28 | 2021-08-24 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 犬胎膜间充质干细胞及制备方法和使用的培养基 |
| CN108728408A (zh) * | 2018-05-28 | 2018-11-02 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 犬胎膜间充质干细胞及制备方法和使用的培养基 |
| CN108795853A (zh) * | 2018-05-28 | 2018-11-13 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 制备犬胎膜间充质干细胞的方法和犬胎膜间充质干细胞 |
| CN108795853B (zh) * | 2018-05-28 | 2021-08-24 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 制备犬胎膜间充质干细胞的方法和犬胎膜间充质干细胞 |
| CN112292447A (zh) * | 2019-02-28 | 2021-01-29 | 京东方科技集团股份有限公司 | 脐带间充质干细胞及其细胞膜片的制备方法 |
| WO2021237762A1 (zh) * | 2020-05-25 | 2021-12-02 | 青岛瑞思德生物科技有限公司 | 间充质干细胞体外筛选、激活、扩增、冻存及其细胞库建立的方法 |
| JP2022550245A (ja) * | 2020-05-25 | 2022-12-01 | 青島瑞思徳生物科技有限公司 | 間葉系幹細胞のインビトロスクリーニング、活性化、増幅、凍結保存及びその細胞バンクの作成方法 |
| JP7390473B2 (ja) | 2020-05-25 | 2023-12-01 | 青島瑞思徳生物科技有限公司 | 間葉系幹細胞のインビトロスクリーニング、活性化、増幅、凍結保存及びその細胞バンクの作成方法 |
| CN112159796A (zh) * | 2020-10-13 | 2021-01-01 | 上海市东方医院（同济大学附属东方医院） | 一种人脐带来源的间充质干细胞原代分离的方法及应用 |
| CN112195150A (zh) * | 2020-10-22 | 2021-01-08 | 江苏拓弘康恒医药有限公司 | 一种提高脐带间充质干细胞原代获取的方法 |
| CN112481202A (zh) * | 2020-11-30 | 2021-03-12 | 深圳博雅感知药业有限公司 | 血小板裂解物无血清分离培养脐带间充质干细胞的方法 |
| CN112481202B (zh) * | 2020-11-30 | 2022-11-15 | 深圳博雅感知药业有限公司 | 血小板裂解物无血清分离培养脐带间充质干细胞的方法 |
| CN113322229A (zh) * | 2021-05-26 | 2021-08-31 | 许清霖 | 一种可分化再生的延缓机体衰老的干细胞培养方法 |
| CN113621568A (zh) * | 2021-07-22 | 2021-11-09 | 江苏蒙彼利生物科技有限公司 | 一种脐带间充质干细胞无血清培养设备及其培养方法 |
| CN113621568B (zh) * | 2021-07-22 | 2024-02-13 | 江苏蒙彼利生物科技有限公司 | 一种脐带间充质干细胞无血清培养设备及其培养方法 |
| CN115956555A (zh) * | 2021-08-31 | 2023-04-14 | 优赛生命科学发展有限公司 | 一种异体脐带间充质干细胞冷冻制剂及使用方法 |
| CN114921408A (zh) * | 2022-05-25 | 2022-08-19 | 河北三臧生物科技有限公司 | 一种体外规模化培养扩增间充质干细胞的方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN102660497B (zh) | 脐带组织冻存、复苏以及分离和扩增干细胞的方法 | |
| CN102660502B (zh) | 冻存和复苏脐带全细胞并分离和扩增干细胞的方法 | |
| CN102807966B (zh) | 胎盘全细胞冻存、复苏以及分离和扩增干细胞的方法 | |
| CN102660501A (zh) | 分离和扩增脐带新鲜组织间充质干细胞的方法 | |
| CN102676451B (zh) | 从胎盘中分离间充质干细胞的方法 | |
| CN102586184B (zh) | 建立胎盘间充质干细胞库的方法 | |
| CN107236704B (zh) | 从胎盘分离间充质干细胞的方法和使用的消化酶组合物 | |
| CN102660503A (zh) | 从脐带中分离和扩增间充质干细胞的方法 | |
| CN102127522B (zh) | 人脐带间充质干细胞及其制备方法 | |
| CN102002475B (zh) | 人脂肪成体干细胞的获取方法及该干细胞库的构建方法 | |
| CN102106342B (zh) | 一种间充质干细胞的保存方法和培养方法 | |
| CN103070161B (zh) | 一种脂肪间充质干细胞冻存液及冻存方法 | |
| CN107022521A (zh) | 壁蜕膜组织冻存、复苏及分离培养间充质干细胞的方法 | |
| CN106465710B (zh) | 脂肪组织冻存液及脂肪组织冻存方法 | |
| CN109234229B (zh) | 从胎盘血管分离间充质干细胞的方法和所用消化酶组合物 | |
| CN103396990A (zh) | 一种制备间充质干细胞的方法 | |
| CN103074298B (zh) | 一种人脂肪间充质干细胞库及其构建方法 | |
| CN108456657A (zh) | 犬脐带间充质干细胞及其制备方法和冻存方法 | |
| CN104673745A (zh) | 一种猪脂肪干细胞的分离培养方法 | |
| CN108486050A (zh) | 从犬的脐带制备间充质干细胞的方法 | |
| CN104450611A (zh) | 一种人羊膜间充质干细胞原代分离及培养方法 | |
| CN101629165A (zh) | 脐带华通胶间充质干细胞的制备方法及其产品 | |
| CN106434557A (zh) | 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法 | |
| CN105219707A (zh) | 一种复苏脂肪间充质干细胞的方法 | |
| CN104651305A (zh) | 一种利用脐带间充质干细胞获取生物活性蛋白的方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20120912 |