CN104450627A - 鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白orf132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用 - Google Patents
鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白orf132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104450627A CN104450627A CN201410823311.8A CN201410823311A CN104450627A CN 104450627 A CN104450627 A CN 104450627A CN 201410823311 A CN201410823311 A CN 201410823311A CN 104450627 A CN104450627 A CN 104450627A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- monoclonal antibody
- orf132
- envelope protein
- type
- hybridoma cell
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种保藏编号为CCTCCN O:C2014172的杂交瘤细胞株,以及该杂交瘤细胞株分泌鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体。所述的鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体,可以识别天然鲤疱疹病毒3型,并具有很好的特异性,可广泛用于鲤疱疹病毒3型的病原学诊断、血清学检测、免疫学检测及防治、ORF132蛋白功能研究等。
Description
技术领域
本发明属于免疫学领域,具体涉及一种鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用。
背景技术
鲤疱疹病毒3型(Cyprinid herpesvirus 3,CyHV-3)又称锦鲤疱疹病毒(KoiHerpesvirus,KHV),属于疱疹病毒目(Herpesvirales),异疱疹病毒科(Alloherpesviridae),鲤疱疹病毒属(Cyprinivirus),是一种双链线性DNA病毒,具有囊膜结构。该病毒严重威胁鲤(Cyprinus carpio)及其观赏品种:锦鲤,致死率高达80%-100%。鲤疱疹病毒3型基因组约295kb,编码156个不同的ORF,目前已经确定其中的14个ORF编码囊膜蛋白。囊膜蛋白位于病毒最外层,在病毒与宿主细胞的识别、互作以及入侵过程中发挥着重要作用,也是建立检测方法和防治手段的重要靶分子。
ORF132是鲤疱疹病毒3型的一个高度保守并且特异的囊膜蛋白分子,也是病毒的一个结构蛋白(Michel B,Leroy B等,The genome of cyprinid herpesvirus3encodes 40proteins incorporated in mature virions,Journal of General Virology,2010,91:452–462;Yi Y,Zhang H等,Extracellular virion proteins of two ChineseCyHV-3/KHV isolates,and identification of two novel envelope proteins,VirusResearch,2014,191:108–116),对其核苷酸序列和氨基酸使用NCBI blast软件在蛋白质数据库和DNA数据库进行在线分析显示:ORF132是鲤疱疹病毒3型的特有基因,目前GenBank中已经登录了4个毒株的ORF132序列,包括GZ11株,美国株(U)、以色列株(I)、日本株(J),其中GZ11株、U株、J株的ORF132基因序列完全一致,与上述3个毒株相比,I株的ORF132基因存在一个碱基的差异:第17位碱基由T变为A,对应的第6位氨基酸由异亮氨酸(Ile)变为天冬酰胺(Asn)。根据文献(刘振兴,柯浩等,锦鲤疱疹病毒囊膜蛋白ORF132的克隆及分析,广东农业科学,2011,6:134-136)报道,ORF132蛋白的97-170位氨基酸片段为主要B细胞表位区段,具有良好的免疫原性,并且该片段的氨基酸序列在已知的鲤疱疹病毒3型中完全一致,是一个理想的鲤疱疹病毒3型诊断靶位。
发明内容
本发明的目的在于提供一种分泌鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体的杂交瘤细胞株4E11。
本发明还提供了由上述保藏编号为CCTCCNO:C2014172的杂交瘤细胞株制备的单克隆抗体。
本发明还提供了上述单克隆抗体在检测鲤疱疹病毒3型上的应用。
本发明所采用的技术方案是:
一种分泌鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体的杂交瘤细胞株4E11,已于2014年10月23日保藏于中国典型培养物保藏中心(CHINACENTER FOR TYPE CULTURE COLLECTION),保藏编号为CCTCCNO:C2014172。
一种鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体,由保藏编号为CCTCCNO:C2014172的杂交瘤细胞株产生。
所述单克隆抗体为IgG1亚类。
一种检测鲤疱疹病毒3型的试剂盒,含有保藏编号为CCTCCNO:C2014172的杂交瘤细胞株产生的鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体。
本发明所述的分泌鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体的杂交瘤细胞株4E11已于2014年10月23日保藏于国家知识产权局指定的保藏单位中国典型培养物保藏中心(CCTCC,地址:武汉大学),保藏日期2014年10月23日,保藏编号CCTCCNO:C2014172。
本发明主要具有如下有益效果:
本发明通过发明人长期研究鲤疱疹病毒3型,选取了该病毒特有的,且具有较高的免疫原性的鲤疱疹病毒3型ORF132基因,通过大量的实验研究,筛选到能稳定分泌鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体的杂交瘤细胞株4E11。
本发明制备得到的杂交瘤细胞株4E11能稳定、大量制备鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体,该抗体为IgG1亚类,可以识别天然鲤疱疹病毒3型,并且与同属于异疱疹病毒科的斑点叉尾鮰病毒(Channel catfish virus,CCV;又称为鮰疱疹病毒1型,Ictalurid herpesvirus 1,IcHV-1)无交叉反应,表现出很好的特异性,可广泛用于鲤疱疹病毒3型的病原学诊断、血清学检测、免疫学检测及防治等。
本发明制备的单克隆抗体可以特异性识别鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132,可以与该蛋白特异性结合,应用于免疫共沉淀、抗体封闭等ORF132相关的蛋白功能研究。
附图说明
图1为重组CyHV-3ORF132的诱导表达,其中,1:未诱导的重组CyHV-3ORF132蛋白工程菌裂解液,2:IPTG诱导的重组CyHV-3ORF132蛋白工程菌裂解液,3:纯化的重组CyHV-3ORF132蛋白。
图2为重组蛋白的Western Blot鉴定结果,其中,1:纯化的重组CyHV-3ORF132蛋白,2:诱导的重组CyHV-3ORF132蛋白工程菌裂解液。
图3为CyHV-3感染的CCB细胞IFA检测结果;其中,A1:DAPI染色,示细胞核;A2:Cy3免疫染色A3:A1、A2叠加图。
图4为未感染的CCB细胞IFA检测结果;其中,B1:DAPI染色,示细胞核;B2:Cy3免疫染色,B3:B1、B2叠加图。
图5为CCV感染的CCO细胞IFA检测结果;其中,C1:DAPI染色,示细胞核;C2:Cy3免疫染色,C3:C1、C2叠加图。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换,均属于本发明的范围。
若未特别指明,实施例中所用的化学试剂均为常规市售试剂,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
主要实验材料和来源:按照水产动物诊断试验手册(OIE,2013)的方法分离鲤疱疹病毒3型,分离的毒株命名为:HZ419株。
实施例1:杂交瘤细胞株CCTCC NO:C2014172,单克隆抗体4E11的制备和应用
一、免疫原的制备
1、鲤疱疹病毒3型ORF132重组表达载体的构建、重组蛋白的诱导表达、纯化与鉴定
参照文献(刘振兴,柯浩等,锦鲤疱疹病毒囊膜蛋白ORF132的克隆及分析,广东农业科学,2011,6:134-136)以末端带有EcoRI和HindIII酶切位点的引物ORF132F(CCGGAATTCCGCCGTATATCGAGGCACTT SEQ ID NO.1)/ORF132R(CCCAAGCTTTCTTAGACCTTTTAGACGATTTTGG,SEQ IDNO.2)扩增该基因的主要B细胞表位区段编码序列(289~510位核苷酸),反应程序:94℃预变性2min,之后35个循环:94℃30s,58℃30s,72℃30s,最后72℃5min。将上述PCR产物纯化后,经HindIII、EcoRI双酶切后插入pET-32a(+)载体,构建重组ORF132的表达载体,转化大肠杆菌Top10。测序证实,该段基因正确插入到表达载体,并且此段序列与GZ11株,U株、J株、I株的对应核苷酸序列一致性为100%。将包含上述载体的Top10工程菌扩大培养,提取质粒,转入Rosetta菌株中。参照pET表达手册(Novagen),进行重组蛋白的诱导表达,参照MERCK蛋白纯化说明书纯化重组蛋白并进行Western Blot鉴定。结果见图1,图2。如图所示,构建的重组工程菌株诱导以后可以观察到一条28kDa的目的条带,经Western Blot鉴定为重组表达的鲤疱疹病毒3型ORF132蛋白。
二、动物免疫及抗体效价检测
以纯化的重组ORF132蛋白作为抗原免疫12周龄BALB/c小鼠,免疫3次,每次间隔两周,第一次免疫,抗原加等体积的弗氏完全佐剂,后两次加等体积的弗氏不完全佐剂,免疫剂量为60μg/只,免疫途径为背部和腹部皮下多点注射。采用间接ELISA检测免疫小鼠的血清抗体效价。具体方法如下:
2.1 ELISA所用溶液的配制:
包被缓冲液:(0.05mol/L碳酸盐缓冲液pH9.6):1.59g Na2CO3,2.93gNaHCO3溶于800mL双蒸水中,调节pH值至9.6,并定容至1000mL。
洗涤缓冲液(pH7.4PBST):0.2g KH2PO4,2.9g Na2HPO4·12H2O,8.0g NaCl,0.2gKCl,0.5mL Tween-20(0.05%V/V)以上各物质准确称量后,加双蒸水完全溶解后,调pH值至7.4,定容至1000mL。
封闭液:牛血清白蛋白(BSA)1g加入100mL的PBST中,混匀溶解。
抗体稀释液:0.1g BSA溶于100mL PBST中,混匀溶解。
底物缓冲液:A液:Na2HPO4·12H2O 7.16g溶于100mL双蒸水;B液:C6H8O7·H2O 2.1g,溶于100mL双蒸水。
TMB底物显色液:TMB 50mg溶于25mL无水乙醇中4℃避光保存。
TMB工作液:临用前配制,TMB底物显色液0.5mL,底物缓冲液:A液2.57mL,底物缓冲液:B液2.43mL,双蒸水5mL,再加入30%H2O20.8μL混匀,现用现配。
终止液:(2mol/L H2SO4):双蒸水178.3mL,逐滴加入浓硫酸(98%)21.7mL。
2.2 间接ELISA步骤:
1、包被:用包被液稀释重组ORF132蛋白至浓度为3.125μg/mL,100μL/孔,加入96孔ELISA板,4℃包被过夜;弃去包被液,加入200μL/孔PBST洗涤液,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
2、封闭:加封闭液,100μL/孔,37℃条件下封闭2h,弃去封闭液,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
3、加样:每孔加入100μL血清,37℃作用1h,作用完毕后弃去血清样品。加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
4、加酶标二抗:每孔加100μL 1:10000稀释的辣根过氧化物酶标记羊抗小鼠抗体,37℃作用1h,作用完毕后弃去二抗,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
5、加显色液:加入100μL/孔的TMB底物显色液,显色液要用新鲜配制的,37℃避光显色10min。
6、加入终止液:显色完毕后,立即加入终止液终止反应,每孔50μL。
7、测OD值:用酶标仪测定OD450nm处吸光值。
三、杂交瘤细胞的融合、筛选与扩大培养
根据上述间接ELISA的检测结果,取效价较高的免疫小鼠进行细胞融合,融合前三天加强免疫,用不加佐剂抗原腹腔注射,剂量为60μg/只。取加强免疫后的小鼠脾细胞与骨髓瘤SP2/0细胞,按常规PEG融合法制备杂交瘤细胞;用重组表达的ORF132包被ELISA板,进行间接ELISA检测(操作方法同二),初步筛选到43株阳性克隆,再通过鲤疱疹病毒3型全病毒包被的ELISA板(包被浓度为20μg/mL),采用间接ELISA(除包被抗原更换为全病毒外,其他操作方法同二)从初筛的阳性克隆中筛选能够识别天然鲤疱疹病毒3型的阳性克隆4株,并扩大培养;同时采用有限稀释法对阳性克隆进行亚克隆,进行3次;对亚克隆后的细胞株进行3次冻存、复苏试验,最终筛选到2株稳定分泌单克隆抗体的阳性杂交瘤细胞株。经过抗体亚类分析,2株细胞分泌的单克隆抗体分别为IgM和IgG1亚类,由于小鼠IgM半衰期短,并且通常会形成多聚体,分子量大,在免疫组化等试验中会影响其组织、细胞的穿透性,因此,我们对IgG1亚类的单克隆抗体进一步研究,并将分泌IgG1亚类单克隆抗体的杂交瘤细胞株4E11,保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏日期为2014年10月23日,保藏编号为CCTCCNO:C2014172。其中,杂交瘤细胞4E11分泌抗体的稳定性分析和单克隆抗体亚类鉴定如下。
杂交瘤细胞4E11分泌抗体的稳定性分析:
将杂交瘤细胞CCTCCNO:C2014172在液氮中冻存1个月后复苏,以纯化的鲤疱疹病毒3型全病毒为抗原包被ELISA板,(包被浓度为20μg/mL)采用间接ELISA法(除包被抗原更换为全病毒外,其他操作方法同二)测定细胞培养上清液中的抗体效价,然后再次放入液氮中冻存;1个月后再次取出复苏,如此连续重复冻融3次。比较分析几次杂交瘤细胞培养上清的抗体效价的测定值。结果表明,杂交瘤细胞CCTCCNO:C2014172经过3次反复冻融,其细胞培养上清液抗体效价恒定,均为1:2560,说明分泌的单抗具有良好的稳定性。
单克隆抗体亚类鉴定:
采用Sigma公司的Mouse Monoclonal Antibody Isotyping Reagents,测定杂交瘤细胞4E11分泌的免疫球蛋白的亚类类型,结果表明本发明所述的单克隆抗体4E11为IgG1亚类。
四、杂交瘤细胞株4E11培养上清与腹水单抗效价的测定
将杂交瘤细胞培养上清和制备的腹水,连续倍比稀释,然后用间接ELISA(操作方法同上)测定其效价。结果显示,杂交瘤细胞培养上清的抗体效价为1:2560,腹水抗体效价为1:102400。
五、单克隆抗体4E11腹水的大量制备
取10周龄雌性健康BALB/c小鼠,1mL/只腹腔注射石蜡油;1周后,0.5mL/只腹腔注射浓度为5×107/mL的杂交瘤细胞CCTCCNO:C2014172;待腹水产生足量后,收集腹水并以2000g离心5min,上清液即为含单克隆抗体4E11的腹水。所获得的腹水可于-80℃或液氮中保存。
六、单克隆抗体4E11的纯化
采用rProteinG(GE Healthcare)亲和层析方法从上述腹水中纯化单克隆抗体,具体步骤按试剂盒的说明书操作。纯化后的单克隆抗体4E11调整到250μg/mL,经ELISA测定(操作方法同二),其效价为1:102400。
七、单克隆抗体4E11用于鲤疱疹病毒3型的免疫荧光检测
相关试剂配制同上。免疫荧光操作步骤参考博士德公司SABC-Cy3免疫组化试剂盒进行,具体步骤如下。
1、样品制备:鲤疱疹病毒3型(HZ419株)接种96孔板培养的CCB细胞(鲤脑细胞系),待出现CPE后,用-20℃预冷甲醇固定,室温固定30min。弃去甲醇,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,重复3次。
2、封闭:加入200μL/孔封闭液,37℃孵育2h,弃去封闭液,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,重复3次。
3、单抗结合:用抗体稀释液将纯化的4E11单克隆抗体(250μg/mL)1:100稀释,37℃孵育1h,弃去抗体反应液,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,重复3次。
4、二抗结合:用抗体稀释液将生物素标记的羊抗小鼠IgG 1:100稀释,37℃孵育1h,弃去抗体反应液,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,重复3次。
5、SABC-Cy3结合:用抗体稀释液将SABC-Cy31:100稀释,37℃孵育30min,弃去SABC-Cy3,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,重复3次。
6、DAPI染色:加入100μL/孔DAPI染色5min,弃去染液,加入200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,重复3次。
7、荧光倒置显微镜(Axio Observer A1)观察拍照。
结果见图3。结果显示,在CCB细胞的胞质区能观察到红色荧光,单克隆抗体4E11可以特异性识别鲤疱疹病毒3型的天然抗原(ORF132蛋白),能够应用于鲤疱疹病毒3型的检测。
八、单克隆抗体4E11的特异性检测
采用七中的免疫荧光检测方法,对未感染鲤疱疹病毒3型的CCB细胞(鲤脑细胞系)和感染斑点叉尾鮰病毒(Channel catfish virus,CCV;又称为鮰疱疹病毒1型,Ictalurid herpesvirus 1,IcHV-1)的CCO细胞(斑点叉尾鮰卵巢细胞系)进行免疫荧光检测。结果见图4和图5。其中,图4显示,在未感染CyHV-3的细胞中未检测到红色荧光,说明单抗4E11与CCB细胞无交叉反应。图5显示,在感染CCV的CCO细胞中未检测到红色荧光,说明单抗4E11与CCV无交叉反应。
从实验结果可知,单克隆抗体4E11与CCB细胞以及CCV无交叉反应,显示了良好的特异性。
九、单克隆抗体4E11应用于鲤疱疹病毒3型的抗原捕获ELISA
相关试剂配制同上,具体步骤如下:
1、捕获抗体包被:用包被液稀释纯化的单克隆抗体4E11至终浓度为4μg/mL,100μL/孔,加入ELISA板,4℃包被过夜;弃去包被液,加200μL/孔PBST洗涤液,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
2、封闭:加封闭液,100μL/孔,37℃条件下封闭2h,弃去封闭液,加200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
3、加样:加入感染鲤疱疹病毒3型(采用OIE推荐的PCR检测方法确诊)的锦鲤的血清以及设立健康锦鲤血清的阴性对照,100μL/孔,37℃作用1h,作用完毕后弃去样品。加200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
4、加检测抗体:加100μL/孔,终浓度5μg/mL的鸡抗鲤疱疹病毒3型IgY(制备方法参照Zhenxing Liu,Hao Ke等,Oral Passive Immunization of Carp Cyprinuscarpio with Anti-CyHV-3Chicken Egg Yolk Immunoglobulin(IgY),Fish Pathology,2014,49(3):113–120),37℃作用1h,作用完毕后弃去检测抗体,加200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
5、加酶标抗体:加100μL/孔1:8000稀释的辣根过氧化物酶标记兔抗鸡抗体(Sigma),37℃作用1h,作用完毕后弃去酶标抗体,加200μL/孔PBST,静置3min,弃洗涤液,将ELISA板在吸水纸上用力拍干,重复三次。
6、加显色液:加入100μL/孔TMB底物显色液,显色液要用新鲜配制的,37℃条件下避光显色5min。
7、加入终止液:显色完毕后,立即加入终止液终止反应,每孔50μL。
8、测OD值:用酶标仪测定OD450nm处吸光值。
结果显示,阳性血清与阴性血清的OD值分别为1.102、0.245,P/N>2.1,由杂交瘤细胞CCTCCNO:C2014172产生的单克隆抗体4E11可以应用于鲤疱疹病毒3型感染的血清学诊断。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Claims (5)
1.一种分泌鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体的杂交瘤细胞株,其保藏编号为CCTCCNO:C2014172。
2.鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体,其特征在于,其由保藏编号为CCTCCNO:C2014172的杂交瘤细胞株产生。
3.根据权利要求2所述的鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体,其特征在于,所述单克隆抗体为IgG1亚类。
4.权利要求2-3任一项所述的鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体在制备检测鲤疱疹病毒3型的试剂中的应用。
5.一种检测鲤疱疹病毒3型的试剂盒,其特征在于,包括有保藏编号为CCTCCNO:C2014172的杂交瘤细胞株产生的鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白ORF132的单克隆抗体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410823311.8A CN104450627B (zh) | 2014-12-24 | 2014-12-24 | 鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白orf132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410823311.8A CN104450627B (zh) | 2014-12-24 | 2014-12-24 | 鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白orf132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104450627A true CN104450627A (zh) | 2015-03-25 |
CN104450627B CN104450627B (zh) | 2017-03-29 |
Family
ID=52897386
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201410823311.8A Active CN104450627B (zh) | 2014-12-24 | 2014-12-24 | 鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白orf132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104450627B (zh) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107056898A (zh) * | 2017-02-13 | 2017-08-18 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 鲤疱疹病毒3型1301株orf136基因重组表达蛋白、抗体及其应用 |
CN107827980A (zh) * | 2017-10-11 | 2018-03-23 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 鲤疱疹病毒截短orf132基因重组表达蛋白、抗体及其应用 |
CN108017694A (zh) * | 2018-01-26 | 2018-05-11 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF65重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN108047317A (zh) * | 2018-02-08 | 2018-05-18 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF148重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN108178787A (zh) * | 2017-12-28 | 2018-06-19 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF131重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN111518201A (zh) * | 2020-04-09 | 2020-08-11 | 上海海洋大学 | 一株ⅱ型鲤疱疹病毒orf121蛋白的单克隆抗体及其应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104592383A (zh) * | 2015-01-21 | 2015-05-06 | 深圳出入境检验检疫局动植物检验检疫技术中心 | CyHV-2单克隆抗体、杂交瘤细胞和应用 |
-
2014
- 2014-12-24 CN CN201410823311.8A patent/CN104450627B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104592383A (zh) * | 2015-01-21 | 2015-05-06 | 深圳出入境检验检疫局动植物检验检疫技术中心 | CyHV-2单克隆抗体、杂交瘤细胞和应用 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
T AOKI ET. AL: "Generation of monoclonal antibodies specific for ORF68 of koi herpesvirus", 《COMPARATIVE IMMUNOLOGY,MICROBIOLOGY AND INFECTIOUS DISEASES》 * |
刘振兴等: "锦鲤疱疹病毒囊膜蛋白ORF132的克隆及分析", 《广东农业科学》 * |
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107056898A (zh) * | 2017-02-13 | 2017-08-18 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 鲤疱疹病毒3型1301株orf136基因重组表达蛋白、抗体及其应用 |
CN107827980A (zh) * | 2017-10-11 | 2018-03-23 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 鲤疱疹病毒截短orf132基因重组表达蛋白、抗体及其应用 |
CN108178787A (zh) * | 2017-12-28 | 2018-06-19 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF131重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN108178787B (zh) * | 2017-12-28 | 2019-10-18 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF131重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN108017694A (zh) * | 2018-01-26 | 2018-05-11 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF65重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN108017694B (zh) * | 2018-01-26 | 2019-10-18 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF65重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN108047317A (zh) * | 2018-02-08 | 2018-05-18 | 广东省农业科学院动物卫生研究所 | pORF148重组蛋白及其制备方法和应用 |
CN111518201A (zh) * | 2020-04-09 | 2020-08-11 | 上海海洋大学 | 一株ⅱ型鲤疱疹病毒orf121蛋白的单克隆抗体及其应用 |
CN111518201B (zh) * | 2020-04-09 | 2022-11-29 | 上海海洋大学 | 一株ⅱ型鲤疱疹病毒orf121蛋白的单克隆抗体及其应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104450627B (zh) | 2017-03-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104450627A (zh) | 鲤疱疹病毒3型囊膜蛋白orf132的单克隆抗体、杂交瘤细胞株及其应用 | |
CN103073644B (zh) | 特异性抗小鼠tigit的单克隆抗体及其制备方法、鉴定及应用 | |
WO2019047608A1 (zh) | 一种鸭坦布苏病毒e蛋白截短蛋白及应用 | |
CN112940087B (zh) | 一种SARS-CoV和SARS-CoV-2共同抗原表位肽及其应用 | |
CN109970851B (zh) | Ccv病毒m蛋白的单抗及其制备方法、免疫胶体金试纸条的制备方法 | |
CN103163299A (zh) | 禽白血病双抗体夹心elisa抗原检测试剂盒 | |
CN102304181A (zh) | 一种j亚群禽白血病病毒表面蛋白的单克隆抗体及其制备方法 | |
CN103992988A (zh) | 一种杂交瘤细胞株及其产生的抗犬瘟热病病毒n蛋白的单克隆抗体 | |
CN106366187A (zh) | 一株ii型鲤疱疹病毒orf72蛋白的单克隆抗体及其应用 | |
CN102643835A (zh) | 大鲵虹彩病毒主衣壳蛋白的原核表达及多抗制备和应用 | |
CN103342738A (zh) | 人乳头瘤病毒e6蛋白可诱发同源蛋白间交叉反应性抗体的精细表位肽 | |
CN105348372A (zh) | 一种猪伪狂犬病毒的检测方法 | |
CN113604438B (zh) | 一种抗罗非鱼湖病毒的单克隆抗体及其细胞株和应用 | |
CN107033226A (zh) | 一种小反刍兽疫病毒f蛋白抗原表位肽及其确定、制备方法和应用 | |
CN102304180A (zh) | 禽网状内皮组织增生症病毒囊膜蛋白的单克隆抗体及其制备方法 | |
CN108752471A (zh) | 抗pcv2单克隆抗体的制备方法及其应用 | |
CN103773736A (zh) | 分泌抗鸭源ndv分离株单克隆抗体的杂交瘤细胞株的建立 | |
CN116693632A (zh) | 非洲猪瘟病毒抗原表位肽、单克隆抗体及其用途 | |
CN114480297B (zh) | 一种血清1型马立克病病毒meq单克隆抗体、制备方法及应用 | |
CN103740649A (zh) | 抗蓝舌病病毒血清16型vp2蛋白单克隆抗体btv16-2b4及其识别的b细胞表位和应用 | |
CN107586783A (zh) | 抗小反刍兽疫病毒n蛋白单克隆抗体及其应用 | |
CN108017714B (zh) | 一株ⅱ型鲤疱疹病毒orf92蛋白的单克隆抗体及其应用 | |
CN106632676A (zh) | 一株鼠抗猪pd‑l1单克隆抗体及其应用 | |
CN101921337A (zh) | 间日疟原虫乳酸脱氢酶抗体、相关制备方法、杂交瘤细胞株和应用 | |
CN107033225A (zh) | 一种小反刍兽疫病毒hn蛋白抗原表位肽及其确定、制备方法和应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |