CN104313065A - 一种生产手性苯基丙酸甲酯的方法 - Google Patents

一种生产手性苯基丙酸甲酯的方法 Download PDF

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张媛媛
梁方方
刘均洪
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Abstract

一种生产手性苯基丙酸甲酯的方法。用酿酒酵母细胞生物还原制备(-)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应罐中加入磷酸盐缓冲液,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为80-90g/L,加入湿酵母细胞进行生物还原反应,得到产物,产品收率高,对映体过量率高,具有很好的应用前景。

Description

一种生产手性苯基丙酸甲酯的方法
技术领域
本发明属于制药工程技术领域,特别涉及到酿酒酵母细胞生物还原制备手性医药中间体(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯的技术。
背景技术
羟基手性酯是合成手性药物、精细化学品、农药品和其他特殊材料的重要中间体。生物催化羰基化合物的不对称还原具有环境友好、条件温和、选择性高等优点,作为绿色高效制备羟基手性酯的优先途径,被越来越多地应用于生产一些高附加值的羟基手性酯。生物催化制备羟基手性酯具有很好的应用前景。
生物催化具有催化效率高、选择性强、条件温和、环境友好等突出优点,是可持续发展过程中替代和拓展传统有机化学合成的重要方法。其中手性拆分和不对称合成是生物催化最具吸引力的应用领域。在作为生物催化剂的六大类酶中,水解酶能够催化动力学拆分外消旋体得到手性产品,在工业生物催化中一直扮演着重要角色。近几年来,氧化还原酶在工业上的应用得到了迅速增长。目前,采用水解酶动力学拆分法、生物还原法和生物氧化法工业制备光学活性手性化合物的比例为4:2:1。
生物还原法相对于动力学拆分法而言,最大的优势在于理论收率可达100%,原子经济性好。然而生物还原反应需要辅酶或辅因子的参与,一定程度上限制了其应用。由于辅酶依赖性的缘故,生物还原反应中多釆用整细胞作为催化剂,实现体内辅酶循环再生的同时免去了酶的分离纯化步骤。
(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯是合成手性药物、精细化学品、农药品的重要手性砌块,由于有2个手性中心,使得化学合成较为困难,成本高。本发明将采用生物催化制备(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯
发明内容
本发明采用细胞催化制备(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应式如下:
底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯(1)经酿酒酵母催化还原,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯(2)。有多种微生物可以催化还原,经过大量实验筛选,最终确定采用酿酒酵母作为催化剂,因为其催化还原1的效果最好,反应收率、对映体过量率(ee%)均很高。
许多酿酒酵母都可以进行生物催化还原,然而,其效果不同,相差很大,经实验,本发明选用酿酒酵母菌株为ATCC 201388D-5
培养介质:
1、 培养液成份:蛋白胨1.5-2 g/L,酵母浸膏8-10 g/L,葡萄糖18-22 g/L,麦芽浸膏25-30 g,硫酸铵0.2-0.25g/L,硫酸镁0.3-0.4g/L,磷酸二氧钾1.8-2.3g/L。
2、固体培养基成份: 在液体培养基中加入1.5-2%的琼脂粉。
酵母细胞制备。酿酒酵母经斜面、摇瓶、种子罐培养得到种子液;发酵罐加入培养液,装料系数为0.6-0.7,121℃高压灭菌30分钟,冷却至25-26℃,将酿酒酵母ATCC 201388D-5种子液接种至发酵罐,接种比例为8-10%,通气比为0.5-1V/(V分钟),即每分钟通气量为0.5-1倍发酵液体积,25-26℃培养36-40小时,用过滤式离心机离心得到湿酵母细胞,用作生物还原反应催化剂。
反应罐中加入磷酸盐缓冲液,装料系数为0.6-0.7,pH为6.8,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为80-90 g/L,葡萄糖含量为 10-15g/L,木糖8-10 g/L,吐温80含量为15-20g/L,121℃高压灭菌30分钟。冷却至28-29℃时,剧烈搅拌,使反应液乳化,加入湿酵母细胞使浓度为10-13g/L,通气比为0.1-15V/(V分钟),即每分钟通气量为0.1-0.15倍反应液体积,进行生物还原反应,反应时间为60-70小时。反应结束后,滤出细胞,用乙酸乙酯萃取反应液,蒸出乙酸乙酯,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应转化率94-96%,产品收率92-94%,对映体过量率(ee%)97-98%。
本发明所开展工作包括菌株选择(从近百个菌株中选择)、催化还原条件优化(反应温度、通气量、pH)、反应介质选择和浓度优化(底物浓度、葡萄糖含量、木糖含量、表面活性剂种类(20多种选1)及浓度、其它多种成份选择排除),还曾进行了水-有机溶剂2相体系试验。由于试验量很大,尽管采用了响应面优化设计试验,大幅度减少了试验量,试验量仍然很大,全部试验进行2年多才完成,达成目前的技术方案。对于光活性产物而言,当反应转化率94-96%,产品收率92-94%时,对映体过量率(ee%)仍然高达97-98%,是非常不易的,我们的工作取得了显著进步。
实施例 1  
培养液培养液成份为:蛋白胨1.5g/L,酵母浸膏8g/L,葡萄糖18g/L,麦芽浸膏25g,硫酸铵0.2g/L,硫酸镁0.3g/L,磷酸二氧钾1.8g/L;固体培养基成份: 在液体培养基中加入1.5-2%的琼脂粉。
湿酵母细胞制备过程如下:酿酒酵母ATCC 201388D-5经斜面、摇瓶培养,得到种子液。10L发酵罐加入培养液,装料系数为0.6,121℃高压灭菌30分钟,冷却至25℃,将酿酒酵母种子液接种至发酵罐,接种比例为8%,通气比为0.5V/(V分钟),即每分钟通气量为0.5倍发酵液体积。25-26℃培养36小时,用离心机离心得到湿酵母细胞,用作生物还原反应催化剂。
15L反应罐中加入磷酸盐缓冲液,装料系数为0.6,pH为6.8,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为80g/L,葡萄糖含量为 10g/L,木糖8-10 g/L,吐温80含量为15g/L,121℃高压灭菌30分钟;冷却至28℃时,剧烈搅拌,使反应液乳化,加入湿酵母细胞使浓度为10g/L,通气比为0.1V/(V分钟),即每分钟通气量为0.1倍反应液体积,进行生物还原反应,反应时间为60小时;反应结束后,滤出细胞,反应液用0.4倍反应液体积的乙酸乙酯萃取3次,合并萃取液,蒸出乙酸乙酯,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应转化率94%,产品收率92%,对映体过量率(ee%)98%。
实施例 2  
培养液培养液成份为:蛋白胨2 g/L,酵母浸膏10 g/L,葡萄糖22 g/L,麦芽浸膏30 g,硫酸铵0.25g/L,硫酸镁0.4g/L,磷酸二氧钾2.3g/L;固体培养基成份: 在液体培养基中加入1.5-2%的琼脂粉。
湿酵母细胞制备过程如下:酿酒酵母ATCC 201388D-5经斜面、摇瓶、种子罐培养,得到种子液。50L发酵罐加入培养液,装料系数为0.7,121℃高压灭菌30分钟,冷却至26℃,将酿酒酵母种子液接种至发酵罐,接种比例为10%,通气比为1V/(V分钟),即每分钟通气量为1倍发酵液体积。25-26℃培养40小时,用过滤式离心机离心得到湿酵母细胞,用作生物还原反应催化剂。
100L反应罐中加入磷酸盐缓冲液,装料系数为0.7,pH为6.8,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为90 g/L,葡萄糖含量为15g/L,木糖8-10 g/L,吐温80含量为20g/L,121℃高压灭菌30分钟;冷却至29℃时,剧烈搅拌,使反应液乳化,加入湿酵母细胞使浓度为13g/L,通气比为0.15V/(V分钟),即每分钟通气量为0.15倍反应液体积,进行生物还原反应,反应时间为70小时;反应结束后,用过滤式离心机滤出细胞,反应液用0.4倍反应液体积的乙酸乙酯萃取3次,合并萃取液,蒸出乙酸乙酯,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应转化率96%,产品收率94%,对映体过量率(ee%)97%。
实施例 3  
培养液培养液成份为:蛋白胨1.8 g/L,酵母浸膏9 g/L,葡萄糖20 g/L,麦芽浸膏28 g,硫酸铵0.22g/L,硫酸镁0.35g/L,磷酸二氧钾2g/L;固体培养基成份: 在液体培养基中加入1.5-2%的琼脂粉。
湿酵母细胞制备过程如下:酿酒酵母ATCC 201388D-5经斜面、摇瓶、种子罐培养,得到种子液。500L发酵罐加入培养液,装料系数为0.65,121℃高压灭菌30分钟,冷却至25.5℃,将酿酒酵母种子液接种至发酵罐,接种比例为9%,通气比为0.75V/(V分钟),即每分钟通气量为0.75倍发酵液体积。25.5℃培养38小时,用过滤式离心机离心得到湿酵母细胞,用作生物还原反应催化剂。
1000L反应罐中加入磷酸盐缓冲液,装料系数为0.65,pH为6.8,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为85 g/L,葡萄糖含量为 10-15g/L,木糖8-10 g/L,吐温80含量为18g/L,121℃高压灭菌30分钟;冷却至28.5℃时,剧烈搅拌,使反应液乳化,加入湿酵母细胞使浓度为12g/L,通气比为0.12V/(V分钟),即每分钟通气量为0.12倍反应液体积,进行生物还原反应,反应时间为65小时;反应结束后,用过滤式离心机滤出细胞,反应液用0.4倍反应液体积的乙酸乙酯萃取3次,合并萃取液,蒸出乙酸乙酯,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应转化率95%,产品收率93%,对映体过量率(ee%)98%。
实施例 4  
培养液培养液成份为:蛋白胨1.7 g/L,酵母浸膏10 g/L,葡萄糖21 g/L,麦芽浸膏29 g,硫酸铵0.22g/L,硫酸镁0.37g/L,磷酸二氧钾2.1g/L;固体培养基成份: 在液体培养基中加入1.5-2%的琼脂粉。
湿酵母细胞制备过程如下:酿酒酵母ATCC 201388D-5经斜面、摇瓶、种子罐培养,得到种子液。2000L发酵罐加入培养液,装料系数为0.65,121℃高压灭菌30分钟,冷却至26℃,将酿酒酵母种子液接种至发酵罐,接种比例为10%,通气比为0.8V/(V分钟),即每分钟通气量为0.8倍发酵液体积。26℃培养40小时,用过滤式离心机离心得到湿酵母细胞,用作生物还原反应催化剂。
10000L反应罐中加入磷酸盐缓冲液,装料系数为0.65,pH为6.8,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为90 g/L,葡萄糖含量为15g/L,木糖8-10 g/L,吐温80含量为20g/L,121℃高压灭菌30分钟;冷却至29℃时,剧烈搅拌,使反应液乳化,加入湿酵母细胞使浓度为13g/L,通气比为0.15V/(V分钟),即每分钟通气量为0.15倍反应液体积,进行生物还原反应,反应时间为70小时;反应结束后,用过滤式离心机滤出细胞,用逆流萃取机萃取反应液,萃取剂为乙酸乙酯萃取,蒸出乙酸乙酯,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应转化率96%,产品收率94%,对映体过量率(ee%)97.5%。

Claims (3)

1.一种酿酒酵母细胞生物还原制备(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯的方法,其特征在于反应罐中加入磷酸盐缓冲液,装料系数为0.6-0.7,pH为6.8,底物2-苯甲酰-2-丙烯酸甲酯浓度为80-90 g/L,葡萄糖含量为 10-15g/L,木糖8-10 g/L,吐温80含量为15-20g/L,121℃高压灭菌30分钟;冷却至28-29℃时,剧烈搅拌,使反应液乳化,加入湿酵母细胞使浓度为10-13g/L,通气比为0.1-0.15V/(V分钟),进行生物还原反应,反应时间为60-70小时;反应结束后,滤出细胞,用乙酸乙酯萃取反应液,蒸出乙酸乙酯,得到产物(−)-(2S,3S)-3-羟基-2-苯基丙酸甲酯,反应转化率94-96%,产品收率92-94%,对映体过量率97-98%。
2.权利要求1所述的方法,其特征在于湿酵母细胞制备过程如下:酿酒酵母经斜面、摇瓶、种子罐培养得到种子液;发酵罐加入培养液,装料系数为0.6-0.7,121℃高压灭菌30分钟,冷却至25-26℃,将酿酒酵母种子液接种至发酵罐,接种比例为8-10%,通气比为0.5-1V/(V分钟),25-26℃培养36-40小时,用过滤式离心机离心得到湿酵母细胞,用作生物还原反应催化剂。
3.权利要求1所述的方法,其特征在于培养液成份为:蛋白胨1.5-2 g/L,酵母浸膏8-10 g/L,葡萄糖18-22 g/L,麦芽浸膏25-30 g,硫酸铵0.2-0.25g/L,硫酸镁0.3-0.4g/L,磷酸二氧钾1.8-2.3g/L;固体培养基成份: 在液体培养基中加入1.5-2%的琼脂粉。
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