CN104155273A - 一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法 - Google Patents
一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104155273A CN104155273A CN201410384419.1A CN201410384419A CN104155273A CN 104155273 A CN104155273 A CN 104155273A CN 201410384419 A CN201410384419 A CN 201410384419A CN 104155273 A CN104155273 A CN 104155273A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- adenosine
- fluorescence
- aunps
- method based
- determination
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
Abstract
本发明公开了一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,属于分析化学技术领域。通过金硫键将巯基DNA连接到金纳米颗粒上,且这巯基DNA可与荧光染料修饰的腺苷核酸适配体杂交。在高盐溶液中由于荧光淬灭,检测体系无荧光或荧光强度很低且稳定存在的金纳米颗粒使溶液颜色为酒红色。腺苷的加入会导致核酸适配体结构的变化,使荧光染料修饰的腺苷适配体从金纳米颗粒上解离下来,荧光染料的荧光恢复。而此时的金纳米颗粒不能稳定存在,溶液颜色则由红色变蓝色。该方法通过检测体系的荧光强度和溶液颜色的变化,实现了对腺苷的定性和定量检测,具有灵敏度高,选择性好等优点。
Description
技术领域
本发明属于分析化学技术领域,涉及是一种构建基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的生物传感器的构建。
背景技术
核酸适配体(aptamer)是指从人工合成的DNA/RNA文库中筛选得到的能够高亲和、高特异性地和靶标分子结合的单链寡核苷酸。它可以通过SELEX技术获得,其总的思路是从通过组成化学原理设计合成的随机寡核苷酸(1015-1018种核酸分子)中经多轮筛选和指数富集最终获得目标核酸适配体。
核酸本身特有的生化特性使核酸适配体在生物传感应用领域具有以下诸多优势:1.靶分子范围广。小到ATP、氨基酸、金属离子等小分子物质,大到酶、生长因子等生物大分子,甚至完整的病毒、细菌等都可以作为适配体筛选的靶物质。2.亲和力强。核酸适配体和靶分子的结合强度高。3.特异性高。核酸适配体不仅能识别靶物质一个甲基或羟基等的细微变化,还能够区分旋光异构体。4.制备、修饰方便快速。通过化学合成的方法可以在体外快速灵活地合成所需要的各种核酸适配体序列,而且可以进行精确的位点修饰,如荧光标记、生物素的标记。5.核酸适配体可通过生物分子进行剪裁,提高其亲和力。6.稳定性好,便于长期保存和运输。核酸适配体的这些优势使其成为生物传感器的理想识别分子。
腺苷被称为6-氨基-9-β-D-呋喃核糖基-9-H-嘌呤,是一种内源性核苷,在调控机体各组织的生理活性和有机功能中发挥了重要的作用。比如它在调节平滑肌的收缩,神经传递,血液流动,肾素释放等方面发挥了重要作用。目前检测腺苷的方法包括层析法,毛细管电泳,高效液相色谱法等。这些方法一般需要对样品进行预处理,其中最常用的分离方法是液液萃取,需要将样品与有机溶剂混合一定的时间,再对其进行萃取等后续处理。而这种分离方法往往需要大量的样品和有毒试剂且耗时耗力,检测腺苷的灵敏度和检测限均比较低,这些缺点在一定程度上限制了上述几种方法的应用。因此有必要发展一种克服以上缺点还对腺苷有好选择性和灵敏度的检测体系。
发明内容
为了解决现有技术问题,本发明的目的在于克服已有技术存在的不足,提供一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的生物传感器。将荧光核酸适配体荧光素作为识别分子,AuNPs作为荧光淬灭分子,提高了传感器的灵敏度和选择性,与传统的腺苷检测方法相比,有更灵敏的检测效果,减小了最低检测浓度和检出限。
一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于:
1)、直径为5-40nm的金纳米颗粒(AuNPs)的合成;
2)、将巯基单链DNA(ssDNA)修饰到AuNPs表面上构成ssDNA-AuNPs体系;
3)、将3′修饰有荧光素的腺苷核酸适配体杂交到上述ssDNA-AuNPs构成dsDNA-AuNPs体系;
4)、调节dsDNA-AuNPs体系的盐浓度并对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
5)、在dsDNA-AuNPs盐溶液体系中加入目标物腺苷,对其进行荧光检测及观察溶液颜色变化。腺苷核酸适配体在腺苷的存在下,会伴随结构变化,从自由态转变成G-四聚体。
其中荧光素作为荧光信号分子,腺苷核酸适配体作为识别分子,AuNPs作为荧光淬灭分子,利用加入腺苷前后溶液荧光信号和颜色的差异,实现对目标物定性定量检测。
步骤1)合成AuNPs的还原剂是柠檬酸钠,单宁酸,硼氢化钠,抗坏血酸或盐酸羟胺等。
步骤3)涉及的荧光素有FAM,Cy3,Cy5,ROX,TexasRed。
腺苷核酸适配体序列为
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGACTG-荧光素-3′,
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGTCAG-荧光素-3′,
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGTGGC-荧光素-3′,
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCACGCAG-荧光素-3′。
巯基ssDNA序列为5′-SH-C6-CAGTCTGGACCC-3′,
5′-SH-C6-CTGACTGGACCC-3′,5′-SH-C6-GCCACTGGACCC-3′,
5′-SH-C6-CTGCGTGGACCC-3′。
巯基ssDNA是通过金硫键作用连在AuNPs表面上的。
步骤3)dsDNA-AuNPs是由所述的腺苷核酸适配体和巯基DNA在85-95℃,5-10min的退火条件下杂交组成。
步骤4)调节盐浓度采用NaCl,KCl,MgCl2,BaCl2或CaCl2。
步骤5)加入腺苷的浓度范围在0-120uM。
本发明与现有技术相比,具有如下显著优点:
1)、利用金纳米颗粒极好的淬灭效应,显著地降低了体系的背景荧光,提高了检测的灵敏度,减小了最低检测浓度和检出限。
2)、引入核酸适配体,不仅能检测DNA、RNA等核酸类物质,还可以检测蛋白质、多肽、金属离子、药物、病毒、细胞等,扩大了检测范围。
3)、核酸荧光分子探针与目标物特异性高,有很好的选择性,是检测结果更加准确。
附图说明
图1是本发明基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的生物传感器的示意图。
图2是本发明合成13nm金纳米颗粒的透射电镜(TEM)照片。
图3是本发明实施例1所构建的检测腺苷体系,荧光强度随不同浓度腺苷变化的荧光光谱图。
图4是本发明实施例1所构建的检测腺苷体系,不同浓度腺苷对荧光强度的标准曲线图。
图5是是本发明实施例2所构建的检测腺苷体系,不同浓度腺苷对荧光强度的标准曲线图。
图6是本发明实施例3所构建的检测腺苷体系,不同浓度腺苷对荧光强度的标准曲线图。
具体实施方式
实施例对本发明作进一步说明,本发明的保护内容不限于以下实例。在不背离发明构思的范围下,本领域技术人员能够想到的变化都包括在本发明中,并以权利要求书为保护范围。
实施例1
具体操作步骤如下:
1)、合成直径为13nm的金纳米颗粒;
合成过程如下:将100mL蒸馏水和2mL1%氯金酸,加入到250mL三颈烧瓶中,并在剧烈搅拌的条件下加热至沸腾。然后,迅速将新鲜配制的1%柠檬酸钠溶液加入到上述沸腾溶液中,反应15min后,继续搅拌使溶液冷却至室温,于4℃保存。
2)、将巯基ssDNA修饰到AuNPs表面上构成ssDNA-AuNPs体系;
将序列为5′-SH-C6-CAGTCTGGACCC-3′的DNA配制成浓度10uM,取70ul上述DNA溶液与200ul金纳米颗粒混合培养16h后,加2MNaCl使其最终浓度为0.1M,陈化24h后,用0.1MPBS(pH7.4)离心洗3次后,得到的红色物质溶解在200ulTris-HCl(pH7.4)缓冲溶液中。
3)、将3′修饰有FAM的腺苷核酸适配体杂交到上述ssDNA-AuNPs构成dsDNA-AuNPs体系,对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
在腺苷核酸适配体3′修饰上FAM,其序列为:
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGACTG-FAM-3′
将其与步骤2)中制得的ssDNA-AuNPs按DNA摩尔比1:1混合,在95℃水浴中,反应5min,然后再缓慢降到室温。再将所得溶液离心洗涤3次后,沉淀溶解在0.1MPBS(pH7.4)中。
4)、调节dsDNA-AuNPs体系的盐浓度并对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
在上述dsDNA-AuNPs体系中缓慢加入1MMgCl2盐溶液,使其最终浓度为5mM。取上述溶液于1cm的荧光比色皿中,在激发波长为494nm,发射波长为522nm处的荧光强度,并观察到此时溶液颜色为红色。
5)、在dsDNA-AuNPs盐溶液体系中加入目标物腺苷,对其进行荧光检测及观察溶液颜色变化;
在步骤4)所得溶液中分别加入0,10,20,30,40,50,60uM的腺苷待测物,震荡1min后,在室温下放置30min。取上述溶液于1cm的荧光比色皿中,在激发波长为494nm,发射波长为522nm处的荧光强度,并观察到此时溶液颜色为紫色。
参见图3,在激发波长为494nm,发射波长为522nm处的荧光强度随不同浓度腺苷(0-60uM)变化的荧光光谱图。
参见图4,不同浓度腺苷对荧光强度的标准曲线图。
实施例2
具体操作步骤如下:
1)、合成直径为5nm的金纳米颗粒;
合成过程如下:将70mL蒸馏水和10mL0.1%氯金酸,加入到250mL三颈烧瓶中,并在剧烈搅拌的条件下加热至沸腾。然后,迅速将新鲜配制的4mL1%柠檬酸钠和5mL1%单宁酸的混合溶液加到上述沸腾溶液中,反应10min后,继续搅拌使溶液冷却至室温,于4℃保存。
2)、将巯基ssDNA修饰到AuNPs表面上构成ssDNA-AuNPs体系;
将序列为5′-SH-C6-CTGACTGGACCC-3′的DNA配制成浓度10uM,取70ul上述DNA溶液与200ul金纳米颗粒混合培养16h后,加1MNaCl使其最终浓度为0.1M,陈化24h后,用0.1MPBS(pH7.4)离心洗3次后,得到的红色物质溶解在200ulTris-HCl(pH7.4)缓冲溶液中。
3)、将3′修饰有FAM的腺苷核酸适配体杂交到上述ssDNA-AuNPs构成dsDNA-AuNPs体系,对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
在腺苷核酸适配体3′修饰上Cy3,其序列为:
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGTCAG-Cy3-3′
将其与步骤2)中制得的ssDNA-AuNPs按DNA摩尔比1:1混合,在90℃水浴中,反应8min,然后再缓慢降到室温。再将所得溶液离心洗涤3次后,沉淀溶解在0.1MPBS(pH7.4)中。
4)、调节dsDNA-AuNPs体系的盐浓度并对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
在上述dsDNA-AuNPs体系中缓慢加入2MNaCl盐溶液,使其最终浓度为7mM。取上述溶液于1cm的荧光比色皿中,在激发波长为550nm,发射波长为570nm处的荧光强度,并观察到此时溶液颜色为红色。
5)、在dsDNA-AuNPs盐溶液体系中加入目标物腺苷,对其进行荧光检测及观察溶液颜色变化;
在步骤4)所得溶液中分别加入20,30,40,50,60,70uM的腺苷待测物,震荡1min后,在室温下放置30min。取上述溶液于1cm的荧光比色皿中,在激发波长为550nm,发射波长为570nm处的荧光强度,并观察到此时溶液颜色为紫色。
参见图5,在激发波长为550nm,发射波长为570nm处的荧光强度对不同浓度腺苷(20-70uM)的标准曲线图。
实施例3
1)、合成直径为30nm的金纳米颗粒;
合成过程如下:将100mL0.01%氯金酸,加入到250mL三颈烧瓶中,并在剧烈搅拌的条件下加热至沸腾。然后,迅速将新鲜配制的1mL1%柠檬酸钠溶液加入到上述沸腾溶液中,反应15min后,继续搅拌使溶液冷却至室温,于4℃保存。
2)、将巯基ssDNA修饰到AuNPs表面上构成ssDNA-AuNPs体系;
将序列为5’-SH-C6-GCCACTGGACCC-3’的DNA配制成浓度10uM,取70ul上述DNA溶液与200ul金纳米颗粒混合培养24h后,每5min加1uL1MNaCl使其最终浓度为0.1M,用0.1MPBS(pH7.4)离心洗3次后,得到的红色物质溶解在200ulTris-HCl(pH7.4)缓冲溶液中。
3)、将3′修饰有FAM的腺苷核酸适配体杂交到上述ssDNA-AuNPs构成dsDNA-AuNPs体系,对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
在腺苷核酸适配体3′修饰上Cy5,其序列为:
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGTGGC-Cy5-3′
将其与步骤2)中制得的ssDNA-AuNPs按DNA摩尔比1:1混合,在95℃水浴中,反应5min,然后再缓慢降到室温。再将所得溶液离心洗涤3次后,沉淀溶解在0.1MPBS(pH7.4)中。
4)、调节dsDNA-AuNPs体系的盐浓度并对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
在上述dsDNA-AuNPs体系中缓慢加入2MKCl盐溶液,使其最终浓度为8mM。取上述溶液于1cm的荧光比色皿中,在激发波长为650nm,发射波长为670nm处的荧光强度,并观察到此时溶液颜色为红色。
5)、在dsDNA-AuNPs盐溶液体系中加入目标物腺苷,对其进行荧光检测及观察溶液颜色变化;
在步骤4)所得溶液中分别加入20,40,60,80,100,120uM的腺苷待测物,震荡1min后,在室温下放置30min。取上述溶液于1cm的荧光比色皿中,在激发波长为650nm,发射波长为670nm处的荧光强度,并观察到此时溶液颜色为紫色。
参见图6,在激发波长为550nm,发射波长为570nm处的荧光强度对不同浓度腺苷(20-120uM)的标准曲线图。
Claims (10)
1.一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于:
1)、直径为5-40nm的金纳米颗粒(AuNPs)的合成;
2)、将巯基单链DNA(ssDNA)修饰到AuNPs表面上构成ssDNA-AuNPs体系;
3)、将3′修饰有荧光素的腺苷核酸适配体杂交到上述ssDNA-AuNPs构成dsDNA-AuNPs体系;
4)、调节dsDNA-AuNPs体系的盐浓度并对其进行荧光检测及观察溶液颜色;
5)、在dsDNA-AuNPs盐溶液体系中加入目标物腺苷,对其进行荧光检测及观察溶液颜色变化。
2.根据权利要求1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,荧光素作为荧光信号分子,腺苷核酸适配体作为识别分子,AuNPs作为荧光淬灭分子,利用加入腺苷前后溶液荧光信号和颜色的差异,实现对目标物定性定量检测。
3.根据权利要求1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,步骤1)合成AuNPs的还原剂是柠檬酸钠,单宁酸,硼氢化钠,抗坏血酸或盐酸羟胺。
4.根据权利要求1的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,步骤4)调节盐浓度采用NaCl,KCl,MgCl2,BaCl2或CaCl2。
5.根据权利要求1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,巯基ssDNA是通过金硫键作用连在AuNPs表面上的。
6.根据权利要求1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,步骤3)涉及的荧光素有FAM,Cy3,Cy5,ROX,TexasRed。
7.根据权利要求2所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,腺苷核酸适配体序列为
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGACTG-荧光素-3′,
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGTCAG-荧光素-3′,
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCAGTGGC-荧光素-3′,
5′-TGGAAGGAGGCGTTATGAGGGGGTCCACGCAG-荧光素-3′。
8.根据权利要求1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,巯基ssDNA序列为
5′-SH-C6-CAGTCTGGACCC-3′,5′-SH-C6-CTGACTGGACCC-3′,
5′-SH-C6-GCCACTGGACCC-3′,5′-SH-C6-CTGCGTGGACCC-3′。
9.根据权利要求1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,步骤3)dsDNA-AuNPs是由所述的腺苷核酸适配体和巯基DNA在85-95℃,5-10min的退火条件下杂交组成。
10.根据权利要求书1所述的一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法,其特征在于,步骤5)加入腺苷的浓度范围在0-120uM。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410384419.1A CN104155273B (zh) | 2014-08-06 | 2014-08-06 | 一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410384419.1A CN104155273B (zh) | 2014-08-06 | 2014-08-06 | 一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104155273A true CN104155273A (zh) | 2014-11-19 |
CN104155273B CN104155273B (zh) | 2017-01-18 |
Family
ID=51880833
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201410384419.1A Active CN104155273B (zh) | 2014-08-06 | 2014-08-06 | 一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104155273B (zh) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106950206A (zh) * | 2017-03-01 | 2017-07-14 | 南京医科大学 | 一种基于核酸适配体的荧光传感器检测腺苷的方法 |
CN107796799A (zh) * | 2017-10-27 | 2018-03-13 | 河南师范大学 | 一种用于银离子检测的dna探针组及其制备方法 |
CN108444963A (zh) * | 2018-03-13 | 2018-08-24 | 中国人民解放军国防科技大学 | 一种检测谷胱甘肽的方法和硫金复合物的应用 |
CN110231476A (zh) * | 2019-05-08 | 2019-09-13 | 桂林理工大学 | 一种固相基质上荧光素与蛋白质混合固载的处理方法 |
CN110672569A (zh) * | 2019-09-30 | 2020-01-10 | 中国科学院宁波工业技术研究院慈溪生物医学工程研究所 | 一种dna或rna检测体系、检测方法和它们的应用 |
CN114778461A (zh) * | 2022-04-22 | 2022-07-22 | 南通大学 | 一种智能金纳米颗粒的制备方法及其在β-淀粉样蛋白比色分析中的应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103713138A (zh) * | 2013-12-20 | 2014-04-09 | 湖南工程学院 | 一种基于微流控芯片和核酸适配体识别技术的腺苷检测方法 |
-
2014
- 2014-08-06 CN CN201410384419.1A patent/CN104155273B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103713138A (zh) * | 2013-12-20 | 2014-04-09 | 湖南工程学院 | 一种基于微流控芯片和核酸适配体识别技术的腺苷检测方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
JUEWEN LIU ET AL: "Preparation of aptamer-linked gold nanoparticle purple aggregates for colorimetric sensing of analytes", 《NATURE PROTOCOLS》 * |
WEIBING QIANG ET AL: "Label-free detection of adenosine based on fluorescence resonance energy transfer between fluorescent silica nanoparticles and unmodified gold nanoparticles", 《ANALYTICA CHIMICA ACTA》 * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106950206A (zh) * | 2017-03-01 | 2017-07-14 | 南京医科大学 | 一种基于核酸适配体的荧光传感器检测腺苷的方法 |
CN106950206B (zh) * | 2017-03-01 | 2020-03-31 | 南京医科大学 | 一种基于核酸适配体的荧光传感器检测腺苷的方法 |
CN107796799A (zh) * | 2017-10-27 | 2018-03-13 | 河南师范大学 | 一种用于银离子检测的dna探针组及其制备方法 |
CN108444963A (zh) * | 2018-03-13 | 2018-08-24 | 中国人民解放军国防科技大学 | 一种检测谷胱甘肽的方法和硫金复合物的应用 |
CN110231476A (zh) * | 2019-05-08 | 2019-09-13 | 桂林理工大学 | 一种固相基质上荧光素与蛋白质混合固载的处理方法 |
CN110672569A (zh) * | 2019-09-30 | 2020-01-10 | 中国科学院宁波工业技术研究院慈溪生物医学工程研究所 | 一种dna或rna检测体系、检测方法和它们的应用 |
CN114778461A (zh) * | 2022-04-22 | 2022-07-22 | 南通大学 | 一种智能金纳米颗粒的制备方法及其在β-淀粉样蛋白比色分析中的应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104155273B (zh) | 2017-01-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Zhou et al. | CRISPR/Cas12a based fluorescence-enhanced lateral flow biosensor for detection of Staphylococcus aureus | |
Zheng et al. | Lateral flow test for visual detection of multiple MicroRNAs | |
Wang et al. | DNase I enzyme-aided fluorescence signal amplification based on graphene oxide-DNA aptamer interactions for colorectal cancer exosome detection | |
CN104155273A (zh) | 一种基于荧光和比色双重检测体系测定腺苷的方法 | |
CN105548109B (zh) | 一种重金属镉的荧光检测体系以及检测方法 | |
Zhang et al. | Label-free and ultrasensitive fluorescence detection of cocaine based on a strategy that utilizes DNA-templated silver nanoclusters and the nicking endonuclease-assisted signal amplification method | |
Song et al. | Label-free and non-enzymatic detection of DNA based on hybridization chain reaction amplification and dsDNA-templated copper nanoparticles | |
CN109406475A (zh) | 双标记快速响应核酸适配体探针及其检测黄曲霉毒素b1的方法 | |
Ren et al. | A cytometric bead assay for sensitive DNA detection based on enzyme-free signal amplification of hybridization chain reaction | |
Deng et al. | A sensitive fluorescence anisotropy method for the direct detection of cancer cells in whole blood based on aptamer-conjugated near-infrared fluorescent nanoparticles | |
Chen et al. | A SiO 2 NP–DNA/silver nanocluster sandwich structure-enhanced fluorescence polarization biosensor for amplified detection of hepatitis B virus DNA | |
Xiao et al. | A novel graphene oxide amplified fluorescence anisotropy assay with improved accuracy and sensitivity | |
CN102676508A (zh) | 基于纳米金和适配体的小分子探针及其制备方法 | |
Huang et al. | Sensitive turn-on fluorescent detection of tartrazine based on fluorescence resonance energy transfer | |
US9777313B2 (en) | Silver nanocluster probe and target polynucleotide detection method using same, and silver nanocluster probe design method | |
Song et al. | Aptamer-based polymerase chain reaction for ultrasensitive cell detection | |
CN103436608B (zh) | 基于核酸适体的快速检测方法及试剂盒 | |
Xu et al. | Highly sensitive homogeneous electrochemiluminescence biosensor for microRNA-21 based on cascaded signal amplification of target-induced hybridization chain reaction and magnetic assisted enrichment | |
Li et al. | A universal colorimetry for nucleic acids and aptamer-specific ligands detection based on DNA hybridization amplification | |
Yang et al. | A novel fluorescent detection for PDGF-BB based on dsDNA-templated copper nanoparticles | |
Li et al. | Fast functionalization of silver decahedral nanoparticles with aptamers for colorimetric detection of human platelet-derived growth factor-BB | |
Fu et al. | A homogeneous electrochemical sensor for Hg 2+ determination in environmental water based on the T–Hg 2+–T structure and exonuclease III-assisted recycling amplification | |
Sun et al. | A light-up fluorescence assay for tumor cell detection based on bifunctional split aptamers | |
CN114350670B (zh) | 特异性识别可溶性st2蛋白的核酸适配体及其应用 | |
Yang et al. | A new label-free fluorescent sensor for human immunodeficiency virus detection based on exonuclease III-assisted quadratic recycling amplification and DNA-scaffolded silver nanoclusters |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |