CN104027843A - 一种植入假体及其制造方法 - Google Patents

Abstract

本发明提供了一种植入假体及其制造方法，本发明提供的植入假体在惰性植入材料表面复合有生物陶瓷材料，由于生物陶瓷材料能与细胞等生物组织表现出良好的亲和性，因此该植入假体具有较高的生物相容性，解决目前惰性植入材料与人体不相容的问题。同时，该植入假体的生物陶瓷材料复合于惰性植入材料，不会破坏惰性植入材料的内部结构，不会引起惰性植入材料理化性能的下降。实验结果表明，本方法制备得到的植入假体生物相容性好，无致敏性和明显细胞毒性。

Description

一种植入假体及其制造方法

技术领域

本发明属于假体领域，尤其涉及一种植入假体及其制造方法。

背景技术

医疗整形是通过外科手术对人体先天或后天性的组织缺陷与畸形进行修复和再造。最常见的医疗整形方式为将硅橡胶、丙烯酸树脂、聚丙烯酰胺等惰性植入材料作为组织代用品植入人体，来修复各种原因造成的组织缺陷或畸形，以改善或恢复其生理功能和外貌。

由于硅橡胶、丙烯酸树脂、聚丙烯酰胺等惰性植入材料的化学性能稳定，不易降解，导致其植入后与人体组织无法相容，从而引发常见的假体植入并发症—包膜挛缩。包膜挛缩会引起惰性植入材料变形以及惰性植入材料周围组织感染、化脓，因此，在植入人体前必须对惰性植入材料进行改性处理以提高其生物相容性。

当前，应用较多的惰性植入材料生物相容性改性方法是将生物相容性材料与惰性植入材料混合，如将羟基磷灰石、磷酸三钙等生物陶瓷材料混合于丙烯酸树脂、硅橡胶等惰性植入材料内，待生物陶瓷材料降解后，惰性植入材料表面会形成很多微孔，人体组织可以长入这些微孔，从而降低包膜挛缩的发生。但将惰性植入材料与生物陶瓷混合会引起惰性植入材料理化性能的降低，如脆性增大、弹性减小、强度下降等，从而大大影响其应用效果。

为了避免在惰性植入材料中混合其他材料而造成其理化性能的降低，惰性植入材料表面改性法被提出，如等离子体表面改性法、表面接枝共聚法等。等离子体表面改性法是将惰性植入材料暴露于非聚合性气体等离子体中，利用等离子体轰击材料表面，引发惰性植入材料表面结构发生变化，从而增加其表面的生物相容性，但该方法需要使用等离子体发生器，处理成本较为昂贵。表面接枝共聚法是将亲水性物质以化学键交联的方式接枝共聚到惰性植入材料表面，该方法可以有效的提高惰性植入材料的生物相容性，但其操作步骤较为繁琐。

发明内容

有鉴于此，本发明的目的在于提供一种植入假体，该植入假体化学性能稳定、机械强度高、生物相容性良好。

本发明提供了一种植入假体，包括：

惰性植入材料；

复合于惰性植入材料表面的生物活性材料；

所述生物活性材料包括生物陶瓷材料和分散剂。

优选的，所述惰性植入材料为硅橡胶、聚乙烯、聚氯乙烯、丙烯酸树脂、聚四氟乙烯、聚丙烯酰胺或聚氨酯。

优选的，所述生物陶瓷材料和所述分散剂的质量比为2～20:1～5。

优选的，所述生物陶瓷材料为羟基磷灰石生物陶瓷材料、磷酸钙生物陶瓷材料、氧化铝生物陶瓷材料或复合生物陶瓷材料。

优选的，所述分散剂为羧甲基纤维素钠、阿拉伯胶、刺梧桐胶、瓜尔胶、卡拉胶、海藻酸盐、明胶和海藻酸丙二醇酯中的一种或多种。

本发明提供了一种植入假体的制造方法，包括：

在惰性植入材料表面喷涂表面改性剂，干燥处理后得到植入假体；

所述表面改性剂包括水、分散剂和生物陶瓷材料。

优选的，所述惰性植入材料为硅橡胶、聚乙烯、聚氯乙烯、丙烯酸树脂、聚四氟乙烯、聚丙烯酰胺或聚氨酯。

优选的，所述生物陶瓷材料在表面改性剂中的质量百分数为2％～20％，所述分散剂在表面改性剂中的质量百分数为1％～5％。

优选的，所述生物陶瓷材料为羟基磷灰石生物陶瓷材料、磷酸钙生物陶瓷材料、氧化铝生物陶瓷材料或复合生物陶瓷材料。

优选的，所述分散剂为羧甲基纤维素钠、阿拉伯胶、刺梧桐胶、瓜尔胶、卡拉胶、海藻酸盐、明胶和海藻酸丙二醇酯中的一种或多种。

与现有技术相比，本发明提供了一种植入假体，包括惰性植入材料和复合于惰性植入材料表面的生物活性材料，所述生物活性材料包括生物陶瓷材料和分散剂。本发明提供的植入假体在惰性植入材料表面复合有生物陶瓷材料，由于生物陶瓷材料能与细胞等生物组织表现出良好的亲和性，因此该植入假体具有较高的生物相容性，解决目前惰性植入材料与人体不相容的问题。同时，该植入假体的生物陶瓷材料复合于惰性植入材料表面，不会破坏惰性植入材料的内部结构，不会引起惰性植入材料理化性能的下降。本发明直接在惰性植入材料表面涂覆含有水、分散剂和生物陶瓷材料的表面改性剂，干燥处理后即可得到植入假体，操作步骤简单，仅需配制好表面改性剂，再涂覆于惰性植入材料表面后晾干即可，不使用特定设备，便于实现。

实验结果表明，本方法制备得到的植入假体生物相容性好，无致敏性和明显细胞毒性。

具体实施方式

为了进一步了解本发明，下面对本发明优选实施方案进行描述，但是应当理解，这些描述只是为进一步说明本发明的特点和优点，而不是对本发明权利要求的限制。

本发明公开了一种植入假体，包括：

惰性植入材料；

复合于惰性植入材料表面的生物活性材料；

所述生物活性材料包括生物陶瓷材料和分散剂。

本发明的植入假体以惰性植入材料为主体材料，在其表面复合有生物活性材料，以增加惰性植入材料的生物相容性。

在本发明中，所述惰性植入材料是指在生物环境中能够保持稳定，不发生或仅发生微弱化学反应的生物医学材料，包括但不限于硅橡胶、聚乙烯、聚氯乙烯、丙烯酸树脂、聚四氟乙烯、聚丙烯酰胺或聚氨酯。本发明对所述惰性植入材料的来源没有特殊限制，市购即可。对所述惰性植入材料的形状没有特殊限制，根据实际情况修剪成需要的形状即可。

所述生物活性材料复合在所述惰性植入材料表面，包括生物陶瓷材料和分散剂。所述生物陶瓷材料为能与细胞等生物组织表现出良好的亲和性的材料，包括但不限于羟基磷灰石生物陶瓷材料、磷酸钙生物陶瓷材料、氧化铝生物陶瓷材料或复合生物陶瓷材料。所述生物陶瓷材料的粒径优选为10nm～900nm，更优选为10nm～500nm，最优选为10nm～100nm。所述分散剂包括但不限于羧甲基纤维素钠、阿拉伯胶、刺梧桐胶、瓜尔胶、卡拉胶、海藻酸盐、明胶和海藻酸丙二醇酯中的一种或多种。所述生物陶瓷材料和所述分散剂的质量比优选为2～20:1～5，更优选为2～5:1～5，最优选为2～5:1～3。本发明对所述陶瓷材料和所述分散剂的来源没有特殊限制，市购即可。

本发明还公开了一种植入假体的制备方法，包括：

在惰性植入材料表面涂覆表面改性剂，干燥处理后得到植入假体；

所述表面改性剂包括水、分散剂和生物陶瓷材料。

在本发明中，首先在惰性植入材料表面涂覆表面改性剂，所述惰性植入材料是指在生物环境中能够保持稳定，不发生或仅发生微弱化学反应的生物医学材料，包括但不限于硅橡胶、聚乙烯、聚氯乙烯、丙烯酸树脂、聚四氟乙烯、聚丙烯酰胺或聚氨酯。本发明对所述惰性植入材料的来源没有特殊限制，市购即可。对所述惰性植入材料的形状没有特殊限制，根据实际情况修剪成需要的形状即可。在本发明中，所述表面改性剂包括水、分散剂和生物陶瓷材料。在本发明中，所述分散剂为能够将生物陶瓷材料复合到惰性植入材料表面的试剂，包括但不限于羧甲基纤维素钠、阿拉伯胶、刺梧桐胶、瓜尔胶、卡拉胶、海藻酸盐、明胶和海藻酸丙二醇酯中的一种或多种。在本发明中，所述生物陶瓷材料为能与细胞等生物组织表现出良好的亲和性的材料，包括但不限于羟基磷灰石生物陶瓷材料、磷酸钙生物陶瓷材料、氧化铝生物陶瓷材料或复合生物陶瓷材料。在本发明中，所述分散剂在表面改性剂中的质量百分数优选为1％～5％，更优选为1％～3％。所述生物陶瓷材料在表面改性剂中的质量百分数优选为2％～20％，更优选为2％～5％。本发明对所述陶瓷材料和所述分散剂的来源没有特殊限制，市购即可。

本发明采用的表面改性剂优选采用以下步骤制备得到：

将分散剂、生物陶瓷材料和水混合，得到表面改性剂。

本发明采用的分散剂、生物陶瓷材料和水混合的方式优选为：

先将分散剂和水混合，再加入生物陶瓷材料。

得到表面改性剂后，将其涂覆于惰性植入材料表面，本发明对所述涂覆没有特殊限制，采用本领域技术人员熟知的方式即可，优选为喷涂。进行喷涂前，需要将表面改性剂加入喷罐内，所述喷罐优选为手持式压力喷罐，所述表面改性剂加入喷灌内的方法优选采用高压灌装法。

将表面改性剂涂覆于惰性植入材料表面之前，优选还包括对表面改性剂进行消毒处理，所述消毒处理为本领域技术人员熟知的技术手段，以不破例表面改性剂中分散剂和生物陶瓷材料的结构为宜。

涂覆表面改性剂后，对惰性植入材料进行干燥处理，待惰性植入材料表面干燥后即完成对惰性植物材料的改性，得到植入假体。优选在干燥后的植入假体表面反复涂覆表面改性剂2～5次，以增加惰性植入材料表面生物陶瓷材料的密度，从而进一步提高植入假体的生物相容性。本发明对于所述干燥处理没有特殊限制，采用本领域技术人员熟知的技术手段即可，优选采用静置干燥，静止时间优选为5min～20min，更优选为8min～12min。

为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚，下面对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。

实施例1

将4质量份的羧甲基纤维素钠加入94质量份纯水中搅拌均匀，再加入2质量份的纳米级羟基磷灰石粉末搅拌均匀，得到表面改性剂。

对得到的表面改性剂进行消毒处理，消毒后装入手持式压力喷罐内。

将硅橡胶修剪成需要的形状，然后将表面改性剂喷涂于硅橡胶表面，静置干燥10min，得到植入假体。

对上述植入假体进行生物相容性测试

从上述植入假体取样，取样规格为0.2mm×1cm×1cm，以该取样样本作为实验组，以多聚赖氨酸包被的玻片和纯硅橡胶作为对照组，将实验组和对照组灭菌后置于24孔板中，每组11个样本，将人皮肤成纤维细胞以2.5×10⁴个/cm²的密度接种于各组样本中培养。24、48、72h后，每组各取3个样本，胰酶消化后细胞计数，每个样本测4次。培养72h后，每组再各取1个样本，PBS漂白，30ml/L戊二醛固定，乙醇脱水，真空干燥，喷金镀膜后扫描电镜观察。人皮肤成纤维细胞在不同材料上的生长情况如表1所示。

表1人皮肤成纤维细胞在不同材料上的生长情况

通过表1可以看出，各组细胞数随培养时间逐渐增多，同一时间点的细胞数，多聚赖氨酸对照组>实验组>硅橡胶对照组。实验组与硅橡胶相比P＜0.05，有明显统计学差异。

扫描电镜观察结果表明，纯硅橡胶上的细胞较少，体积大，呈长梭形；实验组上的细胞数多于纯硅橡胶，细胞呈梭形、多角形；多聚赖氨酸包被的玻片上的细胞数多于实验组，细胞呈梭形、多角形，并相互连接成片。多聚赖氨酸对照组成纤维细胞数目最多，胞核呈圆形或椭圆形，淡蓝色，极少数细胞核深染，染色质凝聚成亮点；纯硅橡胶组、实验组情况相似，细胞核数目少于多聚赖氨酸对照组，胞核形态与多聚赖氨酸对照组相似，深染的胞核数目略多于多聚赖氨酸对照组。

通过纯硅橡胶和上述植入假体的生物相容性测试结果可以看出，上述植入假体上的细胞呈多角形，和纯硅橡胶上长梭形的细胞相比，上述植入假体更有利于细胞的增殖和分化，细胞在上述植入假体表面的生长和分化明显优于纯硅橡胶材料。

对上述植入假体进行血溶性测试

从健康成年兔股动脉取血20ml，肝素抗凝，取此血8ml，加生理盐水10ml稀释，得稀释兔血。取上述植入假体5g，清洗消毒后切成5×30mm条状，置于试管内，加入生理盐水10ml，得到实验组；取纯硅橡胶5g，清洗消毒后切成5×30mm条状，置于试管内，加入生理盐水10ml，得到纯硅橡胶组；取生理盐水10ml置于试管内，得到阴性对照组；取蒸馏水10ml置于试管内，得到阳性对照组。

每组取3个样本，37℃水浴保温30min，各样本加入稀释兔血0.2ml，轻轻混匀后置于37℃水浴继续保温60min，取各样本离心5min，取上清液置于比色皿内，分光光度计在545nm处测量吸光度，计算溶液率，溶血率(HR)＝(样品吸光度-阴性对照吸光度)/(阳性对照吸光度-阴性对照吸光度)×100％。各组吸光度和溶血率如表2所示。

表2各组吸光度和溶血率

通过表2可以看出，实验组、纯硅橡胶组和阴性对照组均无溶血现象，阳性对照组全部溶血，纯硅橡胶组和实验组溶血率均<5％(符合国标要求)，但纯硅橡胶溶血率高于实验组，说明在硅橡胶表面复合生物陶瓷材料，可明显改善硅橡胶的血液相容性。

对上述植入假体进行细胞毒性测试

将纯硅橡胶按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到纯硅橡胶浸提液；将上述植入假体按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到实验组浸提液。其中，样本表面积/浸提介质＝1.5cm²/mL，制备温度37℃，培养时间24h，选用10％小牛血清的DMEM细胞培养液为浸提介质。

取假体植入手术中切除的正常皮肤组织用组织块法进行人皮肤成纤维细胞的培养，传代后采用3～5代细胞以0.25％胰酶消化制成细胞悬液，以1×10⁴个/ml的密度接种于96孔板，100μl/孔。培养24h后吸出培养液，将吸出的培养液和制备的实验组浸提液接种于96孔板，180μl/孔，得到实验组；将吸出的培养液和制备的纯硅橡胶浸提液接种于96孔板，180μl/孔，得到纯硅橡胶对照组；将吸出的培养液和10％小牛血清的DMEM细胞培养液接种于96孔板，180μl/孔，得到正常组；将0.064％苯酚溶液接种于96孔板，180μl/孔，得到阳性对照组；将10％小牛血清的DMEM细胞培养液接种于96孔板，180μl/孔，得到空白组，第四天换液。每天在倒置相差显微镜下观察细胞生长情况。分别于第1、3、5、7天后在各组中取出1块96孔板，加入MTT20μl(5mg/ml)，继续培养4h，吸出液体，加入DMSO150μl，室温下振荡10min，使结晶物充分溶解。以490nm为测量波长，630nm为参考波长，在酶标仪上测量A(吸光度)值，计算相对增殖率(RGR)。

RGR＝(待测样本A-空白组A)/(正常组A-空白组A)×l00％。

根据RGR均值，按照细胞相对增殖率评价表评分标准，对样品细胞毒性程度进行评价。

通过倒置相差显微镜下观察，阳性对照组为大量坏死细胞及碎片，细胞皱缩，极少许存活细胞。其他各组细胞生长无明显差异，随培养时间延长，细胞增殖，形态正常，折光度高。以A值反应细胞数量，细胞生长增殖评分如表3：相同时间点，实验组、纯硅橡胶组和正常组之间两两比较，无明显统计学差异(p>0.05)，阳性对照组的RGR均值明显低于以上各组(P<0.05)。可见，上述植入假体和纯硅橡胶均无明显细胞毒性。

表3各组细胞毒性测试结果

对上述植入假体进行全身急性毒性测试

将纯硅橡胶按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到阴性对照浸提液；将上述植入假体按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到实验组浸提液。其中，样本表面积/浸提介质＝1.5cm²/mL，制备温度37℃，培养时间24h，选用生理盐水为浸提介质。

选取体重20g左右的健康小白鼠15只，随机分为实验组、阴性对照组和空白组，每组5只，纪录初始体重。在小白鼠尾静脉分别注射实验组浸提液、阴性对照组浸提液和生理盐水1mL/只，分别与注射后24、48和72h后称重、观察动物反应。

实验结果表明，各组小鼠情况良好，活动自如，步态正常，未表现出中枢神经系统兴奋或抑制现象。进食如常，毛发、呼吸等无异常，未有稀便或便结情况，体重无减轻。各组小鼠各器官大致正常，无1例动物死亡。说明硅橡胶和上述植入假体均无全身毒性。

对上述得到的植入假体进行过敏性测试

将纯硅橡胶按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到阴性对照浸提液；将上述植入假体按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到实验组浸提液。其中，样本表面积/浸提介质＝1.5cm²/mL，制备温度37℃，培养时间24h，选用生理盐水为浸提介质。

选取健康豚鼠40只，雌雄不限，体重200～250g，间日腹腔注射实验组和阴性对照组浸提液0.3ml，连续3次，每种浸提液注射6只，此后随机分为两组，分别于第1次注射后第14天和21天，经颈静脉注射2ml实验组浸提液，于注射后15min内，观察动物有无出现蜷缩、竖毛、呼吸困难、死亡等过敏现象。

实验结果表明，在14天和21天，经颈静脉注射实验组浸提液15min内，动物未出现蜷缩、竖毛、呼吸困难、死亡等过敏现象，说明上述植入假体无致敏性。

对上述得到的植入假体进行皮内测试

将纯硅橡胶体按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到阴性对照生理盐水浸提液；将上述得到的植入假按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到实验组生理盐水浸提液。其中，样本表面积/浸提介质＝1.5cm²/mL，制备温度37℃，培养时间24h，选用生理盐水为浸提介质。

将纯硅橡胶按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到阴性对照花生油浸提液；将上述得到的植入假体按ISO和国家标准在无菌条件下制备得到实验组花生油浸提液。其中，样本表面积/浸提介质＝1.5cm²/mL，制备温度37℃，培养时间24h，选用花生油为浸提介质。

选健康成年家兔7只，体重3.0～3.5kg，随机分为两组。剃除背部被毛，于脊柱两侧对称部位各选2个5cm×5cm实验区，共4个区，每区选5个测试点，每只兔脊柱左侧2个区分别注射花生油浸提液和花生油0.2ml。右侧注射生理盐水浸提液和生理盐水。分别于注射后即刻和24，48，72h后观察各注射部位情况。

实验结果表明，生理盐水及生理盐水浸提液组均无明显的红斑、水肿出现，局部无坏死等。花生油及花生油浸提液注射后有轻度红斑、水肿出现，花生油和花生油浸提液的组织反应无明显差异。检测结果证实，上述植入假体的皮内试验为阴性。

实施例2

将1质量份的羧甲基纤维素钠加入94质量份纯水中搅拌均匀，再加入5质量份的纳米级羟基磷灰石粉末搅拌均匀，得到表面改性剂。

对得到的表面改性剂进行消毒处理，消毒后装入手持式压力喷罐内。

将硅橡胶修剪成需要的形状，然后将表面改性剂喷涂于硅橡胶表面，静置干燥15min，得到植入假体。

对上述植入假体进行生物相容性测试，测试结果表明，上述植入假体生物相容性良好，细胞在上述植入假体表面的生长和分化明显优于纯硅橡胶材料。

对上述植入假体进行生物安全性测试，结果表明，上述植入假体溶血率低于5％，无急性全身毒性和致敏性，无明显细胞毒性。

实施例3

将5质量份的羧甲基纤维素钠加入92质量份纯水中搅拌均匀，再加入1质量份的纳米级羟基磷灰石和2质量份的磷酸三钙粉末搅拌均匀，得到表面改性剂。

对得到的表面改性剂进行消毒处理，消毒后装入手持式压力喷灌内。

将硅橡胶修剪成需要的形状，然后将表面改性剂喷涂于硅橡胶表面，静置干燥10min，得到植入假体。

对上述植入假体进行生物相容性测试，测试结果表明，上述植入假体生物相容性良好，细胞在上述植入假体表面的生长和分化明显优于纯硅橡胶材料。

对上述植入假体进行生物安全性测试，结果表明，上述植入假体溶血率低于5％，无急性全身毒性和致敏性，无明显细胞毒性。

实施例4

将3质量份的阿拉伯胶加入87质量份纯水中搅拌均匀，再加入10质量份的磷酸三钙粉末搅拌均匀，得到表面改性剂。

对得到的表面改性剂进行消毒处理，消毒后装入手持式压力喷灌内。

将聚四氟乙烯修剪成需要的形状，然后将表面改性剂喷涂于聚四氟乙烯表面，静置干燥10min，得到植入假体。

对上述植入假体进行生物相容性测试，测试结果表明，上述植入假体生物相容性良好，细胞在上述植入假体表面的生长和分化明显。

对上述植入假体进行生物安全性测试，结果表明，上述植入假体溶血率低于5％，无急性全身毒性和致敏性，无明显细胞毒性。

实施例5

将5质量份的海藻酸钠加入80质量份纯水中搅拌均匀，再加入15质量份的磷酸三钙粉末搅拌均匀，得到表面改性剂。

对得到的表面改性剂进行消毒处理，消毒后装入手持式压力喷灌内。

将聚氨酯修剪成需要的形状，然后将表面改性剂喷涂于聚氨酯表面，静置干燥10min，得到植入假体。

对上述植入假体进行生物相容性测试，测试结果表明，上述植入假体生物相容性良好，细胞在上述植入假体表面的生长和分化明显。

对上述植入假体进行生物安全性测试，结果表明，上述植入假体溶血率低于5％，无急性全身毒性和致敏性，无明显细胞毒性。

以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (10)

1.一种植入假体，包括：

惰性植入材料；

复合于惰性植入材料表面的生物活性材料；

所述生物活性材料包括生物陶瓷材料和分散剂。

2.根据权利要求1所述的假体，其特征在于，所述惰性植入材料为硅橡胶、聚乙烯、聚氯乙烯、丙烯酸树脂、聚四氟乙烯、聚丙烯酰胺或聚氨酯。

3.根据权利要求1所述的假体，其特征在于，所述生物陶瓷材料和所述分散剂的质量比为2～20:1～5。

4.根据权利要求1所述的假体，其特征在于，所述生物陶瓷材料为羟基磷灰石生物陶瓷材料、磷酸钙生物陶瓷材料、氧化铝生物陶瓷材料或复合生物陶瓷材料。

5.根据权利要求1所述的假体，其特征在于，所述分散剂为羧甲基纤维素钠、阿拉伯胶、刺梧桐胶、瓜尔胶、卡拉胶、海藻酸盐、明胶和海藻酸丙二醇酯中的一种或多种。

6.一种植入假体的制造方法，包括：

在惰性植入材料表面涂覆表面改性剂，干燥处理后得到植入假体；

所述表面改性剂包括水、分散剂和生物陶瓷材料。

7.根据权利要求6所述的假体，其特征在于，所述惰性植入材料为硅橡胶、聚乙烯、聚氯乙烯、丙烯酸树脂、聚四氟乙烯、聚丙烯酰胺或聚氨酯。

8.根据权利要求6所述的方法，其特征在于，所述生物陶瓷材料在表面改性剂中的质量百分数为2％～20％，所述分散剂在表面改性剂中的质量百分数为1％～5％。

9.根据权利要求6所述的方法，其特征在于，所述生物陶瓷材料为羟基磷灰石生物陶瓷材料、磷酸钙生物陶瓷材料、氧化铝生物陶瓷材料或复合生物陶瓷材料。

10.根据权利要求6所述的方法，其特征在于，所述分散剂为羧甲基纤维素钠、阿拉伯胶、刺梧桐胶、瓜尔胶、卡拉胶、海藻酸盐、明胶和海藻酸丙二醇酯中的一种或多种。