发明内容
本发明的目的是提供一种小麦WRKY转录因子基因在改变拟南芥根系发育中的应用。
本发明通过电子克隆法分离了具有完整开放阅读框的小麦WRKY家族基因,根据这些序列设计特异性PCR引物。采用RT-PCR的方法,获得了TaWRKY72-b基因,并且构建了可诱导的超表达载体,利用模式植物拟南芥进行了转基因的功能鉴定。
本发明的具体技术方案是:一种小麦WRKY转录因子基因,其核苷酸序列如SEQ IDNO:1所示。
所述WRKY转录因子基因根据水稻OsWRKY72基因的序列,通过同源序列比对,扩增,测序等分子生物学操作获得,命名为TaWRKY72-b。
所述WRKY转录因子基因连接到超表达载体上,通过农杆菌介导转化的方法,获得转基因拟南芥植株。该超表达载体中的pOp6/LhGR系统下游为GUS基因,上游为Gateway元件。pOp6/LhGR系统在地塞米松诱导后,pOp6双向启动子可同时表达GUS基因和Gateway元件中的TaWRKY72-b基因,因此通过GUS染色可以很方便的监测目的基因的表达情况。同时,此载体可以通过外源的化学诱导物地塞米松来控制目的基因的表达,具有着独特的优势。
本发明克隆了一种小麦WRKY转录因子基因TaWRKY72-b,构建可诱导的TaWRKY72-b超表达载体,用农杆菌介导转化,获得转基因拟南芥植株,该转基因拟南芥植株的根系发育受到抑制,植株生长停滞,表明该基因的超量表达,通过影响其上下游基因的表达从而抑制拟南芥根系的形成。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步详细说明。
一、小麦WRKY转录因子基因TaWRKY72-b的获得
1.总RNA的提取:以小麦扬麦158叶片作为提取材料,采用TIANGEN试剂盒,操作步骤如试剂盒说明所示。得到RNA溶液用琼脂糖凝胶电泳检测RNA的质量,-80℃低温保存。
2.cDNA的合成:cDNA的合成使用Invitrogen的SuperScriptTM Ⅲ First-StrandSynthesis System for RT-PCR,首先取0.5ml灭菌微量离心管,分别加入以下成分:总RNA11μL;Oligo(dT)1μL;10mM dNTP1μL,混匀,轻甩离心管,使溶液集中至底部,将混合液65℃温浴5min,然后迅速置于冰上1min,再在上述离心管中加入下列反转录反应液:5×First-strand Buffer 4μL,0.1M DTT 1μL,Recombinant RNase Inhibitor 1μL,SuperScriptTM Ⅲ RT 1μL,轻轻混匀,短暂离心收集至管底,50℃温浴50min,70℃,15min,将反转录产物放-20℃保存。
用小麦β-Actin检测反转录产物。PCR扩增程序为:94℃4min,35个循环的程序为95℃30s,60℃30s,72℃30s,最后72℃5min。1%琼脂糖凝胶电泳检测。
3.TaWRKY72-b基因的分离
以水稻相应基因的全长序列为基础到NCBI数据库上对EST库进行BLANSTN查询,将搜索到的一些部分高度相似且重叠的小麦ESTs进行序列拼接,组合成序列较长的复合EST,再以此为查询序列重复进行BLASTN搜索、聚类、拼接直至无法进行,以达到最有效延伸。利用BLASTX验证该拼接片段是否符合预测。根据符合预测的拼接片段设计特异性PCR引物,TaWRKY72-b F:5'-ATGGAGAATTACCCCATTCTC-3';TaWRKY72-b R:5'-TCATTGAAACATGTGTTGGTT-3'。以步骤2中合成的cDNA为模板,TaWRKY72-b F、TaWRKY72-b R为引物进行PCR扩增,PCR扩增体系为:反应总体系50μL,包括反转录产物1μL,5×phushion HF buffer 10μL,10mmol/L dNTPs 1μL,10mMPrimer F 1μL,10mM Primer R 1μL,Phusion DNA聚合酶0.5μL,dd H2O 35.5μL。PCR扩增程序为:98℃1min,35个循环的程序为98℃10s,47℃20s,72℃30s,最后72℃10min。其中PCR扩增选用的是NEB公司的Phusion DNA聚合酶。电泳完毕在紫外线灯下切下目的条带,用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒纯化(Takara公司,北京)。将纯化后的cDNA克隆到pGEM-T easy载体(Promega公司)上,并送至北京博迈德测序,获得如序列表中SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列。
二、TaWRKY72-b转基因拟南芥的获得
1.带有AttB位点的基因序列的扩增
以通过测序鉴定的质粒为模板,以AttB-TaWRKY72-b F:
5’-GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCTTAATGGAGAATTACCCCATTCTC-3,AttB-TaWRKY72-b R:
5’-GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGTCTCATTGAAACATGTGTTGGTT-3’
为引物进行PCR扩增。PCR扩增体系为:反应总体系包括质粒模板1.5μL,5×phushion HFbuffer 10μL,10mmol/L dNTPs 1μL,10mM基因特异引物各2.5μL,phusion DNA聚合酶0.5μL,dd H2O 32μL。PCR扩增程序为:98℃30s,35个循环的程序为98℃10s,60℃30s,72℃1min,最后72℃5min。50μl全部点样,琼脂糖电泳后回收PCR产物。
2.入门载体的构建
利用得到的AttB-TaWRKY72-b产物和pDONR(amp)进行BP反应,TaWRKY72-b基因编码序列将pDONR(amp)载体上的ccdB位点置换,构建成氨苄青霉素抗性的入门载体。将BP反应产物经转化大肠杆菌菌株DH5α后,用氨苄青霉素进行筛选。将转化所得的菌斑摇菌提质粒,保存进行菌落PCR鉴定,pDONR(amp)载体上游有T7引物和TaWRKY72-b R引物,以转化所得质粒为模板进行PCR鉴定。对阳性克隆进行测序。BP反应体系包括PCR产物1μL,pDONR(amp)vector 1μL,BP cloneⅡenzyme 1μL和dd H2O 1μL。
3.表达载体Expression clone的构建
如图1所示,将鉴定正确的质粒连接到pKIGW表达载体上,进行转化和酶切检测,将鉴定正确的菌液送到华大基因公司测序。LR反应体系包括BP质粒2μL,pKIGW vector1μL,LR clone II enzyme 1μL和dd H2O 1μL。
4.Expression clone的电击转化农杆菌
1)取50μL的农杆菌感受态细胞于冰上融化,加入2μL已构建好的质粒DNA,轻柔混匀,冰上放置半小时;
2)将1)中的混合物转入电击杯中,电击杯提前预冷;
3)用细胞融合仪进行电击;
4)电击结束后立即加入不含抗生素的SOC培养基中,混匀后移入2mL离心管中,28℃下震荡培养2h;
5)8000rpm,离心5min,弃上清,剩余菌液涂在含有卡那霉素、大观霉素、庆大霉素的固体LB平板上,28℃下倒置,培养2天。挑取培养基上的单菌落,作菌落PCR筛选单克隆。将鉴定正确的单克隆,液氮速冻,-80℃保存以备用。
5.用蘸花法转化拟南芥植株
将活化后的菌液取1mL接种于200mL含有卡那霉素、大观霉素、庆大霉素的液体LB培养基中,28℃,220rpm振荡培养至OD600=0.8~0.9。将上述菌液5000rpm离心8min,用5%(w/v)蔗糖溶液悬浮菌体,使OD600=0.8~0.9。将悬浮完菌体的蔗糖溶液中加入终浓度为0.02%的Silwet L-77,将拟南芥花序浸入加了Silwet L-77的蔗糖溶液中浸泡1min。之后把拟南芥用塑料袋套好,密封培养16-24小时后按常规方法培育植株到结实,收获T0代种子。
6.转基因拟南芥的筛选
转化当代植株(T0代)收获的种子用1/2MS+75mg/L kanamycin平板筛选,10天后挑选T1代阳性植株转移到土中,PCR鉴定并收种子。T2代株系kanamycin抗性,3∶1分离的被认为是单基因插入株系,抗性植株转移到土中培养并收种子。T3代株系中kanamycin抗性不再分离的为单基因插入纯合株系,用作进一步的试验研究。
三.转基因拟南芥的PCR鉴定
用SIGMA公司的Extract-N-AmpTM Plant PCR Kits试剂盒对转基因拟南芥进行鉴定,步骤如下:
1.DNA提取:取0.5-0.7cm叶片组织到2ml离心管中,加入100μL ExtractionSolution,95℃保持10min,加入100μL Dilution Solution混匀,2℃-8℃储存以备用;
2.PCR扩增:PCR扩增反应体系包括ddH2O 4μL、Extract-N-Amp PCR Readymix10μL、10mM Primer F 1μL、10mM Primer R 1μL、Leaf disk extract 4μL;PCR扩增反应程序为:94℃3min,30个循环包括94℃1min、60℃1min、72℃1min30sec,然后72℃10min。如图2所示,PCR分子鉴定有扩增条带的为转基因植株。
四.转基因植物的表型鉴定
将纯合体拟南芥转基因种子和野生型(Col-0)种子同时种植在含有地塞米松(DEX)的培养基中,生长两周后观察转基因植株与野生型的变化,如图3所示,发现与野生型拟南芥植株相比,转基因植株的根系发育受到了抑制,植株生长停滞。由图4拟南芥侧根和主根的显微图像也可以看出,转基因植株经诱导后根系发育受到影响,图B和C可见侧根和主根的根毛差别不大。说明该基因的超量表达,通过影响其上下游基因的表达抑制拟南芥根系的形成。为了查明是侧根的发育受到影响,还是所有根系的发育均出现问题,我们对侧根数,主根长度等指标进行统计。结果如表1所示,转基因植株经地塞米松(DEX)诱导后,主根长度和侧根数量都有明显减少,与未诱导植株有极显著差异,但是两者比值与未诱导植株及野生型无差异,说明转基因植株只在根系的长度上明显减少,对侧根的密度并无影响,该基因的超量表达影响了转基因植株根系的长度。
表1根系发育的统计分析
注:植株为18天的拟南芥幼苗;每种植株调查数量为10株。
以上对本发明的一个实施例进行了详细说明,但所述内容仅为本发明的较佳实施例,不能被认为用于限定本发明的实施范围。凡依本发明申请范围所作的均等变化与改进等,均应仍归属于本发明的专利涵盖范围之内。