CN103834691A - 靶向il-33基因rna干扰重组慢病毒载体的构建方法 - Google Patents
靶向il-33基因rna干扰重组慢病毒载体的构建方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103834691A CN103834691A CN201410026264.4A CN201410026264A CN103834691A CN 103834691 A CN103834691 A CN 103834691A CN 201410026264 A CN201410026264 A CN 201410026264A CN 103834691 A CN103834691 A CN 103834691A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- gene
- recombinant lentivirus
- shrna2
- plvx
- target
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明针对IL-33基因,设计合成双链DNA片段,连接到慢病毒载体中,制备出重组慢病毒质粒载体,然后将重组慢病毒质粒载体与病毒包装成所需的3个辅助载体共转染到293T细胞中,获得靶向IL-33基因RNA干扰的重组慢病毒载体,为IL-33的进一步研究奠定了良好的基础。由于慢病毒载体免疫原性低,能感染分裂相和非分裂相细胞,将自身携带片断整合入宿主细胞基因组,并在哺乳动物各类细胞稳定表达siRNA,长期抑制基因表达。与质粒载体及其他病毒载体相比,慢病毒介导的RNA干扰具有高效、稳定、特异性强的特点。本发明为体内基因治疗及IL-33基因功能的研究提供了一种新思路。
Description
技术领域
本发明属于生物医药技术领域,具体涉及一种靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法。
背景技术
白细胞介素-33即interleukin-33,简称IL-33,是Schmitz等通过计算机辅助手段发现的IL-1家族的第11个成员,又被称为IL-1F11。人IL-33基因位于染色体9p24.1,小鼠与之相对应的基因则位于染色体19qC1。在人和小鼠中,IL-33基因分别编码270和266个氨基酸残基形成的多肽,相应的全长蛋白质分子量分别为30kD和29.9kD。IL-33广泛分布于身体的各器官系统中,主要在非造血细胞中表达,包括成纤维细胞、脂肪细胞、平滑肌细胞、内皮细胞、支气管和肠上皮细胞等。但是它也于造血细胞中表达,如激活的树突细胞和巨噬细胞低水平表达IL-33。IL-33蛋白具有双重功能,它不仅作为细胞因子参与信号通路的转导,还作为核内转录因子参与基因表达的调节。IL-33通过结合其受体IL-1受体样1(IL-1receptor-like1,IL1RL1),也称为ST2,发挥它的生物学功能。当IL-33与ST2形成复合物后,募集IL-1受体辅助蛋白(IL-1receptor accessory protein,IL-1RAcP),与其结合形成三聚体,并通过丝裂原激活蛋白激酶(mitogen activated protein kinase,MAPK)和NF-κB进行信号传导。
研究表明IL-33可以加剧气道炎症、过敏反应和类风湿性关节炎等疾病的发生。参见Kurowska-Stolarska M,Stolarski B,Kewin P,et al.IL-33amplifies the polarization of alternativelyactivated macrophages that contribute to airway inflammation[J].J Immunol,2009,183(10):6469-6477.Matsuba-Kitamura S,Yoshimoto T,Yasuda K,et al.Contribution of IL-33to inductionand augmentation of experimental allergic conjunctivitis[J].Int Immunol,2010,22(6):479-489.及Xu D,Jiang HR,Kewin P,et al.IL-33exacerbates antigen-induced arthritis by activating mastcells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(31):10913-10918.同时IL-33在纤维化疾病中也发挥着重要作用。它会促进肺纤维化、肝纤维化、皮肤纤维化和肾脏纤维化的发生。参见LuzinaI G,Kopach P,Lockatell V,et al.Interleukin-33Potentiates Bleomycin-induced Lung Injury[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2013,49(6):999-1008.Marvie P,Lisbonne M,L'Helgoualc'h A,et al.Interleukin-33overexpression is associated with liver fibrosis in mice and humans[J].J Cell MolMed,2010,14(6B):1726-1739.Rankin AL,Mumm JB,Murphy E,et al.IL-33inducesIL-13-dependent cutaneous fibrosis[J].J Immunol,2010,184(3):1526-1535.及Manetti M,Ibba-Manneschi L,Liakouli V,et al.The IL1-like cytokine IL33and its receptor ST2areabnormally expressed in the affected skin and visceral organs of patients with systemic sclerosis[J].Ann Rheum Dis,2010,69(3):598-605.因此,针对靶向抑制IL-33的治疗或许会对上述疾病带来希望。
RNA干扰(RNA interference,RNAi)技术能够特异性地降解目的基因的mRNA,从而使靶基因沉默,在转录后水平抑制基因的表达,因此可以用它来进行基因功能和药物靶点的研究。慢病毒载体是目前常用的病毒载体之一,它能够将外源基因整合到宿主细胞的基因组上,同时它还具有免疫原性低,对分裂细胞和非分裂细胞均具有干扰能力等优点。它能够在哺乳动物各类细胞中稳定表达siRNA,长期抑制目的基因表达。因此将慢病毒载体介导的RNA干扰技术的高效、稳定及特异性强等特点应用于基因功能的研究,在疾病的基因治疗上具有良好的前景。但是目前慢病毒载体介导的IL-33RNA干扰技术还没有相关报道。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是:针对现有技术的不足,提供一种靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法。
本发明解决上述技术问题所采用的技术方案为:靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法,包括以下步骤:
a.根据IL-33mRNA序列,设计合成双链DNA片段;
b.将合成的双链DNA片段连接到pLVX-shRNA2载体的多克隆位点中构建成pLVX-IL-33-shRNA2重组载体;
c.将构建得到的pLVX-IL-33-shRNA2重组载体与pMDLg pRRE载体、pRSV-rev载体及pCMV-VSV-G载体共转染到293T细胞培养,即得到靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体。
所述的双链DNA片段为以下四种序列中的一种:
(1)mus-IL-33寡核苷酸序列1:
正义链:5'-gatccACGGGATTCTAGGAAGAGATTCAAGAGATCTCTTCCTAGAATCCCGTTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAAACGGGATTCTAGGAAGAGATCTCTTGAATCTCTTCCTAGAATCCCGTg-3';
(2)mus-IL-33寡核苷酸序列2:
正义链:5'-gatccGTGCTACTACGCTACTATGTTCAAGAGACATAGTAGCGTAGTAGCACTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAAGTGCTACTACGCTACTATGTCTCTTGAACATAGTAGCGTAGTAGCACg-3';
(3)mus-IL-33寡核苷酸序列3:
正义链:5'-gatccGCCATAAGAAAGGAGACTAGTTCAAGAGACTAGTCTCCTTTCTTATGGTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAACCATAAGAAAGGAGACTAGTCTCTTGAACTAGTCTCCTTTCTTATGGCg-3';
(4)mus-IL-33寡核苷酸序列4:
正义链:5'-gatccGCCCTGAGTACATACAATGATTCAAGAGATCATTGTATGTACTCAGGGTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAACCCTGAGTACATACAATGATCTCTTGAATCATTGTATGTACTCAGGGCg-3'。
步骤b中,所述的pLVX-shRNA2载体的多克隆位点连接双链DNA片段的酶切位点为BamH I和EcoR I。
与现有技术相比,本发明的优点在于:本发明针对IL-33基因,设计合成双链DNA片段,连接到慢病毒载体中,制备出重组慢病毒质粒载体,然后将重组慢病毒质粒载体与病毒包装成所需的3个辅助载体共转染到293T细胞中,获得靶向IL-33基因RNA干扰的重组慢病毒载体,该载体是复制缺陷自我失活的第三代慢病毒载体,为IL-33的进一步研究奠定了良好的基础。由于慢病毒载体免疫原性低,能感染分裂相和非分裂相细胞,将自身携带片断整合入宿主细胞基因组,并在哺乳动物各类细胞稳定表达siRNA,长期抑制基因表达。与质粒载体及其他病毒载体相比,慢病毒介导的RNA干扰具有高效、稳定、特异性强的特点。本发明为体内基因治疗及IL-33基因功能的研究提供了一种新思路。
附图说明
图1为重组慢病毒质粒载体pLVX-IL-33-shRNA2结构示意图;
图2为四种重组质粒的琼脂糖电泳图;
图3为四种重组质粒Mlu I酶切验证结果;
图4为插入片段基因测序结果;
图5为靶向IL-33基因RNA干扰的重组质粒对IL-33基因抑制效果。
具体实施方式
以下结合附图实施例对本发明作进一步详细描述。
设计了4个靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法的实施例,各实施例的构建方法包括以下步骤:
1.寡核苷酸的设计及合成
应用Clontech公司的RNAi Target Sequence Selector软件并通过Blast同源比对,设计靶向IL-33基因mRNA序列(NM-001164724.1)的4个干扰靶序列,分别对应实施例1、实施例2、实施例3和实施例4,具体参见下表1,并合成相应的双链DNA。
表1实施例1~4的双链DNA序列名称及靶序列
序列名称 | 靶序列 | |
实施例1 | mus-IL-33寡核苷酸序列1 | ACGGGATTCTAGGAAGAGA |
实施例2 | mus-IL-33寡核苷酸序列2 | GTGCTACTACGCTACTATG |
实施例3 | mus-IL-33寡核苷酸序列3 | CCATAAGAAAGGAGACTAG |
实施例4 | mus-IL-33寡核苷酸序列4 | CCCTGAGTACATACAATGA |
在合成的双链DNA片段正义链5’端引入BamH I酶切位点和反义链的5’端引入EcoR I酶切位点;如果靶序列不是以嘌呤碱基开始,正义链的5’端必须加上一个G,为RNA聚合酶III提供一个合适的转录起始位点;靶序列长度为19bp;发卡环序列为TTCAAGAGA;靶序列的反义链为19bp;RNA聚合酶III的终止序列包含6个多聚T碱基;为了方便鉴定重组质粒在终止子序列后面加了一个Mlu I酶切位点(ACGCGT),重组载体经该酶酶切后会产生一个约1.3kb的片段;3’端含有一个G碱基保证下游EcoR I克隆位点完成。
实施例1~4中双链DNA合成片段信息如下:
(1)实施例1中mus-IL-33寡核苷酸序列1:
正义链:5'-gatccACGGGATTCTAGGAAGAGATTCAAGAGATCTCTTCCTAGAATCCCGTTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAAACGGGATTCTAGGAAGAGATCTCTTGAATCTCTTCCTAGAATCCCGTg-3';
(2)实施例2中mus-IL-33寡核苷酸序列2:
正义链:5'-gatccGTGCTACTACGCTACTATGTTCAAGAGACATAGTAGCGTAGTAGCACTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAAGTGCTACTACGCTACTATGTCTCTTGAACATAGTAGCGTAGTAGCACg-3';
(3)实施例3中mus-IL-33寡核苷酸序列3:
正义链:5'-gatccGCCATAAGAAAGGAGACTAGTTCAAGAGACTAGTCTCCTTTCTTATGGTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAACCATAAGAAAGGAGACTAGTCTCTTGAACTAGTCTCCTTTCTTATGGCg-3';
(4)实施例4中mus-IL-33寡核苷酸序列4:
正义链:5'-gatccGCCCTGAGTACATACAATGATTCAAGAGATCATTGTATGTACTCAGGGTTTTTTACGCGTg-3',
正义链:5'-aattcACGCGTAAAAAACCCTGAGTACATACAATGATCTCTTGAATCATTGTATGTACTCAGGGCg-3'。
2.pLVX-IL-33-shRNA2重组载体的构建
(1)Lentivirus-shRNA引物退火
将各实施例中合成的双链DNA片段分别用TE buffer(pH8.0)溶解,浓度为100μM。取相应的正义链和反义链寡聚物溶液各2μL,在PCR仪上进行退火反应。程序如下:95℃30s;72℃2min;37℃2min;25℃2min;4℃保存。退火处理后得到浓度为50μM的shRNA模板。将所得模板溶液稀释100倍,终浓度为500nM,用于连接反应。
(2)pLVX-shRNA2载体的线性化
提取pLVX-shRNA2质粒,核酸测定仪Nanodrop2000测定浓度及纯度后,然后取1μg质粒按照如下体系进行酶切反应:
组分 | 体积(μL) |
10×K Buffer | 2 |
BamH I | 0.5 |
EcoR I | 0.5 |
pLVX-shRNA2 | 1μg |
双蒸水 | 至20 |
总体系 | 20 |
37℃酶切4h,琼脂糖电泳后用DNA回收试剂盒回收,核酸测定仪测定其浓度为20ng/μL,A260/A280=1.8,A260/A230=2.03,其纯度较高。
(3)pLVX-IL-33-shRNA2重组载体的构建
按照如下体系连接反应:
组分 | 体积(μL) |
Solution I | 5 |
pLVX-shRNA2(BamH I+EcoR I) | 2.5 |
shRNA模板 | 1 |
双蒸水 | 1.5 |
总体系 | 10 |
16℃连接6h,转化到DH5α感受态细胞。
每个连接反应挑取4个菌落,接种到5mL含100μg/mL氨苄抗生素的LB液体培养基中,37℃200r/min震荡16h左右,提取质粒进行琼脂糖电泳;然后用Mlu I进行酶切验证,再将酶切正确的菌液送到上海桑尼生物科技有限公司进行测序鉴定。由于质粒较多,琼脂糖电泳、酶切及测序结果中每个序列只选择一个克隆的图片。琼脂糖电泳如图2所示,条带基本一致;酶切验证结果如图3所示,1,3,5为对照质粒,2,4,6,7为四种质粒酶切,都有约1.3kb的条带;测序结果如图4所示,与设计的序列完全相同。
3.靶向IL-33基因RNA干扰的重组质粒对IL-33基因抑制效果的鉴定
先用无内毒素质粒大提试剂盒提取构建4个pLVX-IL-33-shRNA2重组质粒、pLVX-shRNA2及pcDNA3.1(+)-mIL-33,构建的pLVX-IL-33-shRNA2重组慢病毒质粒载体质粒的结构示意图如图1所示;然后将状态良好,处于对数期的293T细胞用0.25%胰酶消化,用完全培养基悬浮成单细胞悬液,细胞计数后,按照每孔6×105个细胞接种于6孔板中,18~24h细胞融合度达到70%左右时,换成DMEM完全培养基;2h后分别用200μL DMEM培养基稀释1μg四种干扰重组质粒及阴性对照质粒pLVX-shRNA2,再加入1μgpcDNA3.1(+)-mIL-33高表达质粒,混匀后,分别向各管中加入4μL NanoFectin转染试剂,充分混匀后,离心室温放置15分钟;然后将各混合物逐滴加入对应的细胞孔中;8h后换成不含抗生素的DMEM培养基;37℃,5%CO2培养箱中继续培养40h;提取细胞的总RNA,逆转录后进行RT-PCR方法检测重组质粒的干扰效率。靶向IL-33基因RNA干扰的重组质粒对IL-33基因抑制效果如图5所示。图5中,0为无插入双链DNA片段的pLVX-shRNA2对照,1,2,3,4分别为插入上述4个实施例中合成的4种双链DNA片段的重组慢病毒pLVX-IL-33-shRNA2干扰质粒载体。从图5中可看出4个实施例中,实施例1和实施例4构建的靶向IL-33基因的RNA干扰抑制效果最好;实施例2次之;实施例3的抑制效果较差。
4.慢病毒包装及滴度测定
无内毒素质粒大提试剂盒提取病毒包装的三个辅助质粒pMDLg pRRE、pRSV-rev及pCMV-VSV-G质粒;然后与构建的干扰效率高重组质粒按照NanoFectin使用说明书共转染到293T细胞;转染8h后换成不含抗生素的DMEM培养基;换液后分别在48h、72h时收集细胞上清;4℃3000g离心15min去除细胞和细胞碎片后,用0.45μm滤膜过滤彻底去除细胞碎片,若要获得较高浓度的慢病毒,可在滤膜过滤后加入原上清1/4体积的Lenti-ConcentinTM VirusPrecipitation Solution;充分混匀,4℃放置24h,4℃1500g离心30min;弃上清,再次1500g离心5min弃净剩余液体;然后用1/100原上清体积的PBS重悬沉淀,分装成小份,每种病毒取出一支进行滴度测定,剩余的-80℃冰箱冻存。
按照梯度稀释法进行滴度测定,即准备500μL无菌离心管,IL-33基因RNA干扰的重组慢病毒载体和空病毒载体各10个,每管加入90μL含血清的DMEM培养基;分别取10μL IL-33基因RNA干扰的重组慢病毒载体和空病毒载体分别加入到第1个管中,混匀后吸取10μL加入到第2个管中,继续相同操作,每管中加入1.5×104个293T细胞,充分混匀后将离心管中的混合物加入到96孔板中,37℃培养24h后换液,继续培养48h后用倒置荧光显微镜观察,慢病毒滴度=(带有荧光的细胞数/病毒原液量)×103TU/mL。
以上实施例中所用主要材料的来源为:PrimeSTAR HS DNA Polymerase、BamH I、EcoR I、DNA Ligation Kit Ver.2.1、RNAiSO Plus和DL2,000Marker均购于大连宝生生物有限公司;质粒DNA小量制备试剂盒与GenClean柱式琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒购于上海捷瑞生物工程有限公司;逆转录试剂盒购于Invitrogen公司;无内毒素质粒大提试剂盒购买于天根生化科技有限公司;NanoFectin Transfection Regent和Lenti-ConcentinTM Virus Precipitation Solution购买于上海ExCell Bio;DMEM高糖培养基和胎牛血清购买于Hyclone公司;胰酶与抗生素购买于Gibco公司;10cm的细胞培养皿购买于Corning公司;大肠杆菌DH5α、含pcDNA3.1(+)-mIL-33质粒的甘油菌由本实验室保存;pLVX-shRNA2(Clontech)慢病毒载体与三代慢病毒辅助载体pMDLg pRRE(Addgene)、pRSV-rev(Addgene)及pCMV-VSV-G(Addgene)购买于长沙爱科博生物科技有限公司;293T细胞购买于上海中科院细胞库。
Claims (3)
1.靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法,其特征在于该构建方法包括以下步骤:
a.根据IL-33mRNA序列,设计合成双链DNA片段;
b.将合成的双链DNA片段连接到pLVX-shRNA2载体的多克隆位点中构建成pLVX-IL-33-shRNA2重组载体;
c.将构建得到的pLVX-IL-33-shRNA2重组载体与pMDLg pRRE载体、pRSV-rev载体及pCMV-VSV-G载体共转染到293T细胞培养,即得到靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体。
2.根据权利要求1所述的靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法,其特征在于所述的双链DNA片段为以下四种序列中的一种:
(1)mus-IL-33寡核苷酸序列1:
正义链:5'-gatccACGGGATTCTAGGAAGAGATTCAAGAGATCTCTTCCTAGAATCCCGTTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAAACGGGATTCTAGGAAGAGATCTCTTGAATCTCTTCCTAGAATCCCGTg-3';
(2)mus-IL-33寡核苷酸序列2:
正义链:5'-gatccGTGCTACTACGCTACTATGTTCAAGAGACATAGTAGCGTAGTAGCACTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAAGTGCTACTACGCTACTATGTCTCTTGAACATAGTAGCGTAGTAGCACg-3';
(3)mus-IL-33寡核苷酸序列3:
正义链:5'-gatccGCCATAAGAAAGGAGACTAGTTCAAGAGACTAGTCTCCTTTCTTATGGTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAACCATAAGAAAGGAGACTAGTCTCTTGAACTAGTCTCCTTTCTTATGGCg-3';
(4)mus-IL-33寡核苷酸序列4:
正义链:5'-gatccGCCCTGAGTACATACAATGATTCAAGAGATCATTGTATGTACTCAGGGTTTTTTACGCGTg-3',
反义链:5'-aattcACGCGTAAAAAACCCTGAGTACATACAATGATCTCTTGAATCATTGTATGTACTCAGGGCg-3'。
3.根据权利要求1或2所述的靶向IL-33基因RNA干扰重组慢病毒载体的构建方法,其特征在于步骤b中,所述的pLVX-shRNA2载体的多克隆位点连接双链DNA片段的酶切位点为BamH I和EcoR I。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410026264.4A CN103834691B (zh) | 2014-01-21 | 2014-01-21 | 靶向il-33基因rna干扰重组慢病毒载体的构建方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410026264.4A CN103834691B (zh) | 2014-01-21 | 2014-01-21 | 靶向il-33基因rna干扰重组慢病毒载体的构建方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103834691A true CN103834691A (zh) | 2014-06-04 |
CN103834691B CN103834691B (zh) | 2016-06-29 |
Family
ID=50798586
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201410026264.4A Expired - Fee Related CN103834691B (zh) | 2014-01-21 | 2014-01-21 | 靶向il-33基因rna干扰重组慢病毒载体的构建方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103834691B (zh) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105925611A (zh) * | 2016-04-23 | 2016-09-07 | 同济大学苏州研究院 | 靶向hsp70基因rna干扰重组慢病毒载体及其构建方法 |
CN105936917A (zh) * | 2016-04-23 | 2016-09-14 | 同济大学苏州研究院 | 靶向grp78基因rna干扰重组慢病毒载体及其构建方法 |
CN106399378A (zh) * | 2016-11-08 | 2017-02-15 | 同济大学苏州研究院 | 靶向PLCε基因RNA干扰重组慢病毒载体及其构建方法 |
CN109055429A (zh) * | 2018-08-09 | 2018-12-21 | 连云港市第人民医院 | 一种靶向RunX2基因的小鼠成骨样细胞慢病毒载体及其构建方法 |
CN112210556A (zh) * | 2020-10-15 | 2021-01-12 | 扬州大学 | 一组靶向干扰IL-33表达的shRNA、重组腺病毒载体及其构建方法和应用 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2004044147A2 (en) * | 2002-11-07 | 2004-05-27 | Lung-Ji Chang | Modified dendritic cells |
CN102604994A (zh) * | 2012-03-06 | 2012-07-25 | 党宁宁 | 一种针对flg基因rna干扰的重组慢病毒载体及其制备 |
CN102643859A (zh) * | 2012-04-01 | 2012-08-22 | 常熟市常福有机复合肥有限公司 | 一种针对hNINL基因RNA干扰的重组慢病毒载体及其制备 |
-
2014
- 2014-01-21 CN CN201410026264.4A patent/CN103834691B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2004044147A2 (en) * | 2002-11-07 | 2004-05-27 | Lung-Ji Chang | Modified dendritic cells |
CN102604994A (zh) * | 2012-03-06 | 2012-07-25 | 党宁宁 | 一种针对flg基因rna干扰的重组慢病毒载体及其制备 |
CN102643859A (zh) * | 2012-04-01 | 2012-08-22 | 常熟市常福有机复合肥有限公司 | 一种针对hNINL基因RNA干扰的重组慢病毒载体及其制备 |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
张磊 等: "第三代慢病毒高效率包装系统的建立", 《基因组学与应用生物学》 * |
朱佳鑫 等: "IL-33分子特异性siRNA对类风湿关节炎纤维样滑膜细胞移植作用研究", 《第八届全国免疫学学术大会分类摘要》 * |
武燕 等: "IL-33/ST2信号转导系统及其与疾病关系的研究进展", 《现代免疫学》 * |
武燕: "小鼠IL-33干扰RNA逆转录病毒表达载体的构建及其对吸烟引起的小鼠肺部炎症的作用", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库·医药卫生科技辑》 * |
沈玉光: "RNAi沉默MMP-2基因对食管癌细胞增殖影响的体内实验研究", 《中国博士学位论文全文数据库·医药卫生科技辑》 * |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105925611A (zh) * | 2016-04-23 | 2016-09-07 | 同济大学苏州研究院 | 靶向hsp70基因rna干扰重组慢病毒载体及其构建方法 |
CN105936917A (zh) * | 2016-04-23 | 2016-09-14 | 同济大学苏州研究院 | 靶向grp78基因rna干扰重组慢病毒载体及其构建方法 |
CN106399378A (zh) * | 2016-11-08 | 2017-02-15 | 同济大学苏州研究院 | 靶向PLCε基因RNA干扰重组慢病毒载体及其构建方法 |
CN109055429A (zh) * | 2018-08-09 | 2018-12-21 | 连云港市第人民医院 | 一种靶向RunX2基因的小鼠成骨样细胞慢病毒载体及其构建方法 |
CN109055429B (zh) * | 2018-08-09 | 2021-10-08 | 连云港市第一人民医院 | 一种靶向RunX2基因的小鼠成骨样细胞慢病毒载体及其构建方法 |
CN112210556A (zh) * | 2020-10-15 | 2021-01-12 | 扬州大学 | 一组靶向干扰IL-33表达的shRNA、重组腺病毒载体及其构建方法和应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103834691B (zh) | 2016-06-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Zhou et al. | miR-30a negatively regulates TGF-β1–induced epithelial-mesenchymal transition and peritoneal fibrosis by targeting Snai1 | |
CN103834691A (zh) | 靶向il-33基因rna干扰重组慢病毒载体的构建方法 | |
JP2022506515A (ja) | 制御性rnaを発現させるためのベクターシステム | |
CN108165549B (zh) | 人工环状rna的通用表达框架及其应用 | |
CN105586320A (zh) | 一种重组腺相关病毒及其构建方法和应用 | |
Bak et al. | Targeting of human interleukin-12B by small hairpin RNAs in xenografted psoriatic skin | |
CN109055374B (zh) | 特异性抑制OCT1基因表达的shRNA及应用 | |
CN107523569A (zh) | Pdcd1基因的用途及其相关药物 | |
Zhou et al. | shRNA against PTEN promotes neurite outgrowth of cortical neurons and functional recovery in spinal cord contusion rats | |
Kong et al. | MicroRNA-126 promotes endothelial progenitor cell proliferation and migration ability via the Notch pathway | |
CN111676222A (zh) | 抑制Mettl3基因表达的shRNA及其重组腺相关病毒与应用 | |
CN105200059A (zh) | 靶向抑制小鼠UCP2基因表达的siRNA及其表达载体的构建 | |
CN114177298B (zh) | Adar1作为治疗肺动脉高压疾病药物的应用 | |
CN101948859B (zh) | 特异性抑制SET蛋白表达的shRNA表达载体及其构建方法和应用 | |
CN109112129B (zh) | 用于靶向敲除人OC-2基因的特异性sgRNA及应用 | |
CN105624159A (zh) | 一种针对人EDIL3基因的siRNA及其应用 | |
CN105779480A (zh) | 一种携带多位点突变型egfr新抗原基因的重组腺相关病毒载体及构建方法和应用 | |
CN111235150A (zh) | 用于抑制非洲猪瘟病毒复制的shRNA及其用途 | |
CN118480601A (zh) | Mid1作为类风湿关节炎标志物及靶点的应用 | |
CN103952406A (zh) | 抑制人恶性脑胶质瘤增殖的靶向STAT3基因的siRNA及其表达载体和应用 | |
CN103937745B (zh) | 长链非编码gas5缺陷的人a375稳转细胞株及构建方法 | |
CN109554368A (zh) | 靶向抑制miR-34a的人工环状RNA的通用表达框架、表达方法及其应用 | |
CN116407636B (zh) | Lnc-CCKAR-5在制备促进糖尿病创面修复的药物中的应用 | |
CN101624596B (zh) | 一种靶向c-myc癌基因的外指引序列 | |
CN103667423B (zh) | 人ifitm3基因的用途及其相关药物 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20160629 Termination date: 20220121 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |