CN103725762B - 用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法 - Google Patents

用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103725762B
CN103725762B CN201210385102.0A CN201210385102A CN103725762B CN 103725762 B CN103725762 B CN 103725762B CN 201210385102 A CN201210385102 A CN 201210385102A CN 103725762 B CN103725762 B CN 103725762B
Authority
CN
China
Prior art keywords
probe
mould
epidemic disease
primer pair
winter
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201210385102.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103725762A (zh
Inventor
杜洪忠
吴品珊
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Chinese Academy of Inspection and Quarantine CAIQ
Original Assignee
Chinese Academy of Inspection and Quarantine CAIQ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Chinese Academy of Inspection and Quarantine CAIQ filed Critical Chinese Academy of Inspection and Quarantine CAIQ
Priority to CN201210385102.0A priority Critical patent/CN103725762B/zh
Publication of CN103725762A publication Critical patent/CN103725762A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103725762B publication Critical patent/CN103725762B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686Polymerase chain reaction [PCR]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明提供了一种用于检测冬生疫霉的引物对和探针,所述引物对的核苷酸序列如SEQ ID No.1和2所示,所述探针的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示。本发明进一步提供了检测冬生疫霉的荧光RT-PCR法,其是以样品总DNA为模板,利用上述引物对和探针进行实时荧光PCR扩增,每个循环结束采集数据,反应结束后根据扩增曲线判定结果。该方法可从发病植物组织及土壤中复杂的病原菌环境快速、准确地检测出冬生疫霉。根据该方法构建的检测试剂盒操作简便,特异性好,灵敏度高,对冬生疫霉疫情的早期预警、疫区的病原监测以及进出口安全等方面具有重要意义。

Description

用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法
技术领域
本发明涉及分子生物学检测技术,具体地说,涉及一种用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法。
背景技术
冬生疫霉(Phytophthora hibernalis Carne)是导致柑橘褐腐疫病的主要病原菌之一,柑橘褐腐疫病在果实采收前、采收后发生均可造成重大的经济损失,尤其是在雨季。该病菌在澳大利亚西部的柑橘果实上首次被发现,随后在欧洲、美洲及非洲等许多国家均有报道。该病菌主要侵染柑橘属植物的果实和枝叶,还可侵染杜鹃、玫瑰、红花、芝麻、番茄、苹果等多种植物,导致植物出现枯萎、根腐或溃疡症状。
因此开发冬生疫霉的早期快速检测技术,对相关植物生产中的病害防控和无公害化具有重要的意义。
近年来,实时荧光定量PCR(荧光RT-PCR)技术及其相关分子检测技术已广泛用于植物病原菌消长动态的分子检测与预警,然而国内外鲜有利用荧光RT-PCR技术检测冬生疫霉方面的报道。
发明内容
本发明的目的是提供一种用于检测冬生疫霉的引物对和探针。
本发明的另一目的是提供用于检测冬生疫霉的荧光RT-PCR法。
为了实现本发明目的,本发明的一种用于检测冬生疫霉的引物对,其包括上游引物PH-F:5’-CGACTTGCCACCGGGA-3’(SEQ IDNo.1)和下游引物PH-R:5’-AACGGTACTTCTCTTTGCTCGAA-3’(SEQ ID No.2)。
本发明还提供含有上述引物对PH-F和PH-R的用于检测冬生疫霉的试剂盒。
本发明还提供一种用于检测冬生疫霉的探针,所述探针为:5’-F1-TTCCACAACCAATTCCAT-Q1-3'(SEQ ID No.3),其中F1为报告荧光基团,Q1为非荧光性的淬灭基团。优选F1为FAM荧光染料,Q1为MGB。
本发明还提供一种检测冬生疫霉的荧光RT-PCR法:以样品DNA为模板,采用引物对PH-F和PH-R以及上述探针进行荧光RT-PCR反应,每个循环结束采集数据,反应结束后根据扩增曲线判定结果。
上述荧光RT-PCR扩增反应中,25μL的反应体系含有成分如下:样品DNA1μL(0.0005-50ng),10×PCR反应缓冲液(不含Mg2+)2.5μL,25mM MgCL22.0μL,2.5mM dNTP2.0μL,10μM引物PH-F1μL,10μM引物PH-R1μL,10μM探针1.5μL,5U/μL Taq DNA聚合酶0.3μL,ddH2O13.7μL。
荧光RT-PCR扩增反应过程中使用的退火温度为60℃。优选地,反应程序为:95℃3min;95℃10s,60℃30s,40个循环。
本发明还提供用于检测冬生疫霉的试剂盒,其包括引物对PH-F和PH-R以及上述探针。
优选地,所述试剂盒还包括dNTPs、Taq DNA聚合酶、Mg2+、PCR反应缓冲液中的一种或多种。
更优选地,所述试剂盒还包括标准阳性模板。
本发明在测序分析冬生疫霉及其近似种和近缘种的ITS序列的基础上,分别设计用于检测冬生疫霉的引物对和荧光探针。该探针与普通的Taqman探针不同之处在于3'端采用了非荧光性的淬灭基因,即淬灭基团吸收报告基团的能量后并不发光,大大降低了本底信号的干扰。
Taqman MGB探针技术,即将报告荧光染料标记在探针的5’端,而3'端采用了非荧光性的淬灭基因,二者构成能量转移结构,即报告荧光染料所发射的荧光可被淬灭基团吸收,当二者距离变远时,抑制作用减弱,报告荧光染料信号增强。在扩增反应过程中,探针同模板上的目的扩增片段杂交,由于Taq酶具有5’端到3’端的外切酶活性,在扩增延伸阶段将探针切断,淬灭基团的抑制作用消失,报告荧光染料信号增强,从而实现对冬生疫霉的检测。
本发明根据冬生疫霉ITS序列,设计出可快速检测冬生疫霉病菌的特异性引物对和探针,并在此基础上建立了荧光RT-PCR检测法,可从发病植物组织及土壤中复杂的病原菌环境快速、准确地检测出冬生疫霉。根据该方法构建的检测试剂盒操作简便,特异性好,灵敏度高,对冬生疫霉疫情的早期预警、疫区的病原监测以及进出口安全等方面具有重要意义。
附图说明
图1为本发明实施例4中采用荧光RT-PCR技术检测冬生疫霉的结果示意图,其中,1:冬生疫霉(Phytophthora hibernalis,来源于澳大利亚);2:冬生疫霉(P.hibernalis,来源于英国);3-4:丁香疫霉(P.syringae);5-7:雪松疫霉(P.lateralis);8-9:栎树猝死病菌(P.ramorum);10-11:苜蓿疫霉根腐病菌(P.medicaginis);12-13:马铃薯绯腐疫霉(P.erythroseptica);14-16:栗黑水疫霉(P.cambivora);17-18:草莓疫霉(P.fragariae);19-20:树霉疫霉(P.fragariae var.rubi);21:大豆疫霉(P.sojae);22:棕榈疫霉(P.palmivora);23:辣椒疫霉(P.capsici);24:康沃尔疫霉(P.kernoviae);25:空白对照。
图2是本发明实施例5中荧光RT-PCR检测方法的灵敏度实验结果示意图,其中,1-8的DNA浓度分别为50ng/μL、5ng/μL、0.5ng/μL、0.05ng/μL、0.005ng/μL、0.0005ng/μL、0.00005ng/μL和0.000005ng/μL,9为空白对照。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
以下实施例均按照常规实验条件,如Sambrook等分子克隆实验手册(New York:Gold Spring Harbor Laboratory Press,1989),或Draper等(Blackwell科学出版社,1988),郑小波(疫霉菌及其研究技术,中国农业出版社,1997)中所述的操作技术规程,或按照制造厂商所建议的实验条件。
实施例1引物对及探针的设计与合成
根据冬生疫霉ITS序列,采用探针设计软件Express3.0设计引物对及探针,引物对序列为:
PH-F(正向引物):5’-CGACTTGCCACCGGGA-3’
PH-R(反向引物):5’-AACGGTACTTCTCTTTGCTCGAA-3’
探针的序列为:5’-F1-TTCCACAACCAATTCCAT-Q1-3';其中,F1为FAM荧光染料,Q1为非荧光性的淬灭基团MGB。
上述引物对及探针序列合成由上海基康生物技术有限公司完成。
实施例2样品总DNA的提取
包括以下步骤:
1)采集适量冬生疫霉(Phytophthora hibernalis)真菌菌丝体或染病果实、叶片,用液氮研成粉末,取0.4g装入1.5mL离心管中。
2)预热CTAB提取液至65℃,向装有粉末的1.5mL离心管中加入600μL预热的CTAB提取液,混匀。
3)立即置于65℃水浴30min,然后加入500μL氯仿/异戊醇(24:1,体积比),上下颠倒数次,13000g离心1分钟。
4)吸取上清液约400μL至一个新的2.0ml离心管中,加入500μl氯仿/异戊醇(24:1),500μL CTAB提取液,轻轻混匀,13000g离心1分钟。
5)取800μl上清液至一个新的1.5mL离心管中,加入500μL异丙醇,轻轻混匀,室温放置20min。
6)13000g离心2min,去上清,用70%乙醇洗沉淀,室温干燥。
7)加入50μL1×TE缓冲液(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,含20μgRNase,pH值8.0),置于4℃过夜,待DNA溶解后,检测DNA浓度及质量。
实施例3实时荧光定量PCR(荧光RT-PCR)法的建立
1、荧光RT-PCR反应体系
以总DNA为模板,进行实时荧光PCR反应,反应体系(总体积25μL)为:样品DNA1μL(0.0005-50ng),10×PCR反应缓冲液(不含Mg2+)2.5μL,25mM MgCL22.0μL,2.5mM dNTP2.0μL,10μM引物PH-F1μL,10μM引物PH-R1μL,10μM探针1.5μL,5U/μL Taq DNA聚合酶0.3μL,ddH2O13.7μL。
2、实时荧光PCR反应条件
将样品管放入BIO-RAD公司IQTM5荧光PCR仪后,设置如下条件进行反应:第1个循环为95℃3min;然后是95℃10s,60℃30s,40个循环。每个循环结束后采集数据。反应结束后根据扩增曲线判定结果。
实施例4冬生疫霉荧光RT-PCR检测法的特异性分析
以冬生疫霉的总DNA为模板,以冬生疫霉的近似种及近缘种的总DNA为对照,通过荧光RT-PCR检测荧光强度变化。
试验结果:
以冬生疫霉(Phytophthora hibernalis)的总DNA为模板,通过实时荧光PCR检测可观察到明显的荧光强度变化,而冬生疫霉的近似种及近缘种,如丁香疫霉(P.syringae)、雪松疫霉(P.lateralis)、栎树猝死病菌(P.ramorum)、苜蓿疫霉根腐病菌(P.medicaginis)、马铃薯绯腐疫霉(P.erythroseptica)、栗黑水疫霉(P.cambivora)、草莓疫霉(P.fragariae)、树霉疫霉(P.fragariae var.rubi)、大豆疫霉(P.sojae)、棕榈疫霉(P.palmivora)、辣椒疫霉(P.capsici)、康沃尔疫霉(P.kernoviae)的荧光强度没有变化,检测结果如图1所示。
实施例5冬生疫霉荧光RT-PCR检测法的灵敏度分析
用超纯水分别稀释冬生疫霉的DNA,进行相对灵敏度检测,在25μL反应体系中,DNA分别为50ng/μL、5.0ng/μL、0.5ng/μL、0.05ng/μL、0.005ng/μL、0.0005ng/μL、0.00005ng/μL和0.000005ng/μL。检测结果如图2所示,最低检测限为0.0005ng/μL。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。

Claims (8)

1.用于检测冬生疫霉的引物对和探针,其特征在于,
上游引物PH-F:5’-CGACTTGCCACCGGGA-3’,
下游引物PH-R:5’-AACGGTACTTCTCTTTGCTCGAA-3’;
所述探针为:5’-F1-TTCCACAACCAATTCCAT-Q1-3',其中F1为报告荧光基团,Q1为非荧光性的淬灭基团。
2.根据权利要求1所述的引物对和探针,其特征在于,所述探针中F1为FAM,Q1为MGB。
3.检测冬生疫霉的荧光RT-PCR法,其特征在于,以样品DNA为模板,采用权利要求1或2所述的引物对和探针进行荧光RT-PCR反应,每个循环结束采集数据,反应结束后根据扩增曲线判定结果。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,25μL的反应体系含有成分如下:样品DNA 1μL,不含Mg2+的10×PCR反应缓冲液2.5μL,25mM MgCL22.0μL,2.5mM dNTP 2.0μL,10μM引物PH-F1μL,10μM引物PH-R 1μL,10μM探针1.5μL,5U/μL Taq DNA聚合酶0.3μL,ddH2O 13.7μL;其中,样品DNA中DNA的量为0.0005-50ng。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于,反应程序为:95℃3min;95℃10s,60℃30s,40个循环。
6.用于检测冬生疫霉的试剂盒,其包括权利要求1或2所述的引物对和探针。
7.根据权利要求6所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括dNTPs、Taq DNA聚合酶、Mg2+、PCR反应缓冲液中的一种或多种。
8.根据权利要求6或7所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括标准阳性模板。
CN201210385102.0A 2012-10-11 2012-10-11 用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法 Expired - Fee Related CN103725762B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201210385102.0A CN103725762B (zh) 2012-10-11 2012-10-11 用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201210385102.0A CN103725762B (zh) 2012-10-11 2012-10-11 用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103725762A CN103725762A (zh) 2014-04-16
CN103725762B true CN103725762B (zh) 2015-08-05

Family

ID=50450053

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201210385102.0A Expired - Fee Related CN103725762B (zh) 2012-10-11 2012-10-11 用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103725762B (zh)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104046698B (zh) * 2014-07-08 2017-02-22 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 同步检测苹果属上三种检疫性疫霉的四重pcr引物及其扩增方法
CN104195259B (zh) * 2014-09-17 2016-11-30 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 同步检测草莓疫霉和树莓疫霉的三重pcr引物及其扩增方法和用途
CN108588266A (zh) * 2018-06-11 2018-09-28 南京林业大学 一种冬生疫霉的lamp检测引物组合物及其lamp检测试剂盒和lamp检测方法
CN109486985A (zh) * 2018-08-07 2019-03-19 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 检测冬生疫霉菌的lamp引物对及其扩增方法和用途
CN109988860B (zh) * 2019-03-14 2022-08-30 南京林业大学 一种用于检测冬生疫霉的引物及探针组合物及其试剂盒和检测方法
CN111004859B (zh) * 2019-12-30 2020-10-02 南京林业大学 一种冬生疫霉的特异性检测靶标Phibe_s00001g00026.1及其应用

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101643781A (zh) * 2009-09-10 2010-02-10 山东农业大学 辣椒疫霉菌果胶裂解酶Pcpel1基因分子检测技术
CN102586469A (zh) * 2012-03-31 2012-07-18 中国科学院微生物研究所 用于检测辣椒疫霉的lamp引物及含有该引物的试剂盒
CN102628084A (zh) * 2012-04-12 2012-08-08 山东农业大学 基于果胶甲基酯酶Pcpme6基因开发的检测辣椒疫霉菌的引物及方法
CN102634585A (zh) * 2012-04-25 2012-08-15 山东农业大学 基于多聚半乳糖醛酸酶Pcipg8基因开发的检测辣椒疫霉菌的引物及方法
CN102643903A (zh) * 2012-03-31 2012-08-22 中国科学院微生物研究所 辣椒疫霉的pcr检测引物、含有该引物的试剂盒及应用

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101643781A (zh) * 2009-09-10 2010-02-10 山东农业大学 辣椒疫霉菌果胶裂解酶Pcpel1基因分子检测技术
CN102586469A (zh) * 2012-03-31 2012-07-18 中国科学院微生物研究所 用于检测辣椒疫霉的lamp引物及含有该引物的试剂盒
CN102643903A (zh) * 2012-03-31 2012-08-22 中国科学院微生物研究所 辣椒疫霉的pcr检测引物、含有该引物的试剂盒及应用
CN102628084A (zh) * 2012-04-12 2012-08-08 山东农业大学 基于果胶甲基酯酶Pcpme6基因开发的检测辣椒疫霉菌的引物及方法
CN102634585A (zh) * 2012-04-25 2012-08-15 山东农业大学 基于多聚半乳糖醛酸酶Pcipg8基因开发的检测辣椒疫霉菌的引物及方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
张海峰等.冬生疫霉(Phytophthora hibernalis)的快速分子检测.《植物病理学报》.2008,第38卷(第3期),231-237. *

Also Published As

Publication number Publication date
CN103725762A (zh) 2014-04-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103725762B (zh) 用于检测冬生疫霉的引物对和探针及其检测方法
CN103146847B (zh) 一种黄瓜绿斑驳花叶病毒的rt-lamp快速检测试剂盒及检测方法
CN104774955B (zh) 一种葡萄座腔菌的检测方法
CN105238876B (zh) 用于烟草青枯病菌检测的lamp引物组及其使用方法
CN103233065A (zh) 油茶良种长林4号和32号分子特异性标记引物及鉴定方法
CN103740815A (zh) 一种针对镰刀菌的多重pcr检测的引物及其应用
CN104450961A (zh) 草鱼呼肠孤病毒i型ii型iii型rt-lamp可视化检测试剂盒及其检测方法
CN102776295A (zh) 一种检测番茄幼苗携带番茄黄化曲叶病毒试剂盒及方法
CN101845513A (zh) 黄瓜绿斑驳花叶病毒一步rt-pcr检测试剂盒及其检测方法
Du et al. Real-time PCR for quantification of aerobic anoxygenic phototrophic bacteria based on pufM gene in marine environment
CN104232782A (zh) 一种检测烟草土传真菌病原物的pcr引物及应用与方法
CN103146812B (zh) 一种灰葡萄孢特异性pcr检测方法
CN104099404B (zh) 用于检测丁香疫霉的引物对和探针及其检测方法
CN103866038B (zh) 用于检测烟草对tmv抗性的n基因特异性引物对、检测方法及试剂盒
CN101457259B (zh) 兰花细菌性褐斑病菌检测用引物和探针及其检测方法
CN104004842A (zh) 一种同时检测水生动物败血症三种致病菌的多重pcr引物组及检测方法
CN104862404A (zh) 水稻上两种种传病害的多重pcr检测试剂盒及其专用引物和多重pcr检测方法
CN101348835A (zh) 一种利用环介导等温扩增技术检测创伤弧菌的试剂盒
CN105274258A (zh) 用于检测辣椒斑驳病毒的引物组合物及其应用、由其组成的试剂盒及试剂盒的应用
CN102242225B (zh) 一种菊花CVB和CChMVd病毒的二重RT-PCR检测方法
CN104263854B (zh) 南芥菜花叶病毒SYBR Green I实时荧光RT-PCR检测试剂盒及方法
CN106967824A (zh) 一种检测鼠伤寒沙门氏菌的方法
CN106521028A (zh) 一种用于同步检测4种虫传病毒的多重rt-pcr方法
CN113136442A (zh) 基于lfd-rpa技术的梨火疫病菌检测方法、试剂盒及其应用
CN103031383B (zh) 检测柑橘冬生疫霉褐腐病原菌和柑橘枝瘤病原菌的方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20150805

Termination date: 20161011

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee