CN103539856B - 淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用 - Google Patents

淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN103539856B
CN103539856B CN201310541297.8A CN201310541297A CN103539856B CN 103539856 B CN103539856 B CN 103539856B CN 201310541297 A CN201310541297 A CN 201310541297A CN 103539856 B CN103539856 B CN 103539856B
Authority
CN
China
Prior art keywords
ymmv
rhizoma dioscoreae
polyclonal antibody
gentle
virus
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201310541297.8A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103539856A (zh
Inventor
陈保善
邹承武
蒙姣荣
张蕾
卢晓静
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Guangxi University
Original Assignee
Guangxi University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Guangxi University filed Critical Guangxi University
Priority to CN201310541297.8A priority Critical patent/CN103539856B/zh
Publication of CN103539856A publication Critical patent/CN103539856A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103539856B publication Critical patent/CN103539856B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种淮山药温和花叶病毒(Yam?mild?mosaic?virus,YMMV)的多克隆抗体制备、检测及其应用。基于YMMV基因组,发明人通过原核表达纯化YMMV的核包涵体蛋白/外壳蛋白(NIb/CP)并用于免疫家兔制备多克隆抗体,该多克隆抗体能特异性识别原核表达YMMV的NIb/CP蛋白和侵染淮山药的YMMV病毒的NIb/CP蛋白,并产生特异性免疫反应。基于此,发明人还建立了一套高效、高灵敏和准确的IC-RT-PCR、ELISA和Western?blot方法,可以特异性地从感染YMMV的淮山药植株中检测出YMMV。应用本发明,可为YMMV与寄主相互作用研究以及该病毒的快速检测、分型和分子生物学研究提供物质基础和技术支撑,为该病毒的流行监测和防治打下扎实基础。

Description

淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,具体涉及一种淮山药温和花叶病毒的NIb/CP蛋白原核表达、多克隆抗体制备、检测及其应用。
背景技术
淮山药又称山药、淮山,为薯蓣科植物,其块根富含淀粉、蛋白质、维生素、氨基酸及多种药用成分如胆碱、皂甙、粘多糖等,还含有Fe、Zn、Cu、Ca等多种矿物质,依据种和品种的不同,可作药用或食用,具有良好市场前景和产业开发潜势。病毒病严重影响淮山药的产量和品质,在淮山药生产上造成重大损失。文献表明,全球范围内,自然条件下侵染淮山药的病毒有杆状DNA病毒属的参薯杆状病毒(Dioscoreaalatabacilliformvirus,DaBV)、淮山药花叶病毒(Yammosaicvirus,YMV)、淮山药温和花叶病毒(Yammildmosaicvirus,YMMV)、中国淮山药坏死花叶病毒(Chineseyamnecroticmosaicvirus,CYNMV)、日本淮山花叶病毒(Japaneseyammosaicvirus,JYMV)、蚕豆萎蔫病毒2(Broadbeanwiltvirus-2,BBWV-2)。我国已发现DaBV、YMMV、JYMV、CYNMV和BBWV-2侵染淮山药,引发的症状包括花叶、斑驳、脉明、褪绿、生长迟缓和叶片扭曲等。不同淮山药病毒引起症状不同,也可以引起相似症状;其传播介体不一样,有不同的传播途径。为了保证淮山药生产的正常进行,首先要保证种薯不携带病毒,其次是在生产大田及时发现和鉴定病毒,以便制定有针对性的防治措施,包括控制传播介体来切断病毒病的传播。因此,要求有灵敏度高、特异性好的病毒检测技术来对淮山药的种薯和田间样本进行检测。目前,用于植物RNA病毒病原检测的主要技术手段有RT-PCR、IC-RT-PCR、qRT-PCR、LAMP-PCR、ELISA、Westernblot等,在病毒病原检疫检测方面应用最多的是ELISA和qRT-PCR。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用,以便用于快速检测淮山药温和花叶病毒。
为解决上述技术问题,本发明采用以下技术方案:淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备方法,原核表达纯化淮山药温和花叶病毒的NIb/CP蛋白并用于免疫家兔制备多克隆抗体。
NIb/CP蛋白具有序列表SEQ.ID.No.1的氨基酸序列,或由具有序列表SEQ.ID.No.2的碱基序列的基因所编码。
上述的淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备方法,取纯化后的NIb/CP蛋白,采用皮下多点注射法免疫新西兰大白兔,以后每2周加强免疫一次,共免疫4次;首次免疫加入与蛋白等量的弗氏完全佐剂,后3次加入与蛋白等量的弗氏不完全佐剂;末次加强免疫7天后,心脏采血,分离血清;抗血清经抗原亲和纯化获得该病毒NIb/CP蛋白的多克隆抗体。
所得淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体在检测淮山药温和花叶病毒方面的应用。
基于上述多克隆抗体的淮山药温和花叶病毒的ELISA检测方法。
上述ELISA检测方法,包括以下步骤:
(1)用1mL抗原包被缓冲液研磨0.1g淮山药新鲜叶片,9000rpm离心5min,取上清液稀释20倍,按照100μl/孔加入ELISA板;以感染YMMV的病叶为阳性对照,未感染YMMV的健康叶为阴性对照,37℃孵育2h或4℃过夜;
(2)用200μlPBST洗涤两次后,用5%脱脂奶粉封闭30min;
(3)用200μlPBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液按照1:8000稀释的YMMV多克隆抗体,100μl/孔,37℃孵育1h或室温孵育3h;
(4)用200μlPBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液稀释3000倍的辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔IgG结合物,100μl/孔,室温孵育1h;
(5)用200μlPBST洗涤三次后,用TMB底物显色试剂盒(康为世纪公司)进行显色,室温避光孵育25-30min,反应产物呈蓝色,每孔再加入50μl0.5MH2SO4终止显色,此时蓝色产物变为亮黄色,立即用酶标仪读取OD450的值,以与阴性OD值比值(P/N)大于2.1为阳性;
PBST含3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,0.05%Tween20,pH7.4;抗原包被缓冲液为碳酸盐缓冲液(30mM碳酸钠-碳酸氢钠缓冲液,pH9.6);抗体稀释缓冲液为1%BSA,0.01MPBSpH7.2。
基于上述多克隆抗体的淮山药温和花叶病毒的Westernblot检测方法。
上述的Westernblot检测方法,包括以下步骤:
(1)用TCA/丙酮沉淀法或采用蛋白质提取试剂盒提取淮山药总蛋白样品,用Bradford法进行蛋白质定量,调整蛋白质浓度为2mg/mL;
(2)制备蛋白电泳凝胶,进行SDS-PAGE;
(3)半干式转移:电泳结束后将凝胶割至合适大小,用转膜缓冲液平衡,5min×3次;预先裁好与凝胶同样大小的滤纸和PVDF膜,用甲醇浸泡1min后,小心将膜放入双蒸水中浸泡2min,再浸入转膜缓冲液中10min;转膜装置从下至上依次按阳极碳板、3层3mm滤纸、PVDF膜、凝胶、3层3mm滤纸、阴极碳板的顺序放好,滤纸、凝胶、PVDF膜精确对齐,每一步去除气泡,盖好阴极碳板之后接通电源,恒流1mA/cm2,转移1.5h,转移结束后,断开电源将膜取出;
(4)免疫反应:用0.01MPBS洗膜,1min;加入封闭液,室温封闭1~2h;弃封闭液,用0.01MPBST洗膜,5min×3次;加入用抗体稀释缓冲液按照1:5000稀释的YMMV多克隆抗体(一抗),室温孵育2h或4℃放置12h以上;阴性对照,以1%BSA取代一抗,其余步骤与实验组相同;弃一抗和1%BSA,用0.01MPBST分别洗膜,5min×4次;加入用抗体稀释缓冲液稀释3000倍的辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔IgG结合物(二抗),平稳摇动,室温孵育2h;弃二抗,用0.01MPBST洗膜,5min×4次;采用ECL法进行检测;
转膜缓冲液为25mMTris,192mMglycine,0.01%SDS,20%methanol,pH8.3;0.01MPBS含有3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,pH7.4;封闭液为5%脱脂奶粉或3%BSA。
基于上述多克隆抗体的淮山药温和花叶病毒的IC-RT-PCR检测方法。
上述的IC-RT-PCR检测方法,包括以下步骤:
(1)用抗体稀释缓冲液按照1:8000稀释YMMV多克隆抗体,每个1.5mL的离心管中加入100μl稀释好的抗体,37℃孵育1h或室温孵育3h;
(2)将淮山叶片与含2%PVP的0.02MPBS研磨缓冲液按质量体积比0.2%(w/v)放入研钵中,研磨成叶汁匀浆,吸入1.5mL离心管中,9000rpm离心10min;
(3)将步骤(1)中包被好抗体的1.5mL离心管用PBST洗两次,加入200μl步骤(2)准备好的叶汁上清液,37℃水浴3h,此时暴露的病毒颗粒特异性地附着于离心管内壁上(免疫捕捉);
(4)移去叶汁,PBST洗3次,DEPC水洗1次,洗毕作短暂离心去除管底余液;
(5)用SuperRT一步法RT-PCR试剂盒(康为世纪公司)进行RT-PCR反应检测YMMV,病毒检测引物为YMMV-F:5’-GGCACACATGCAAATGAARGC-3’和YMMV-R:5’-CACCAGTAGAGTGAACATAG-3’,PCR阶段设置退火温度为55℃,35个循环;
(6)RT-PCR结束后,取5μl的PCR产物用质量体积浓度1.0%(w/v)琼脂糖凝胶进行电泳检测,预期片段大小为249bp。
抗体稀释缓冲液为1%BSA,0.01MPBSpH7.2。
为建立淮山药温和花叶病毒的检测方法,发明人深入研究了YMMV江西分离物(桂淮6号,采自江西省南昌市))的全长基因组序列,该病毒的全长基因组序列(见序列表SEQ.ID.No.3)共有9536个核苷酸,5’非编码区有137个碱基,3’非编码区有144个碱基(不包括polyA的长度),编码一个包含3084个氨基酸大的多聚蛋白,该多聚蛋白可被病毒自身编码的蛋白酶剪切成10个蛋白质,从5’端到3’端的顺序编码的蛋白分别为:P1(320aa),HC-Pro(457aa),P3(348aa),6K1(51aa),CI(643aa),6K2(52aa),NIaVPg(191aa),NIaPro(240aa),NIb(516aa),CP(266aa)。基于YMMV基因组,发明人通过原核表达纯化淮山药温和花叶病毒的核包涵体蛋白/外壳蛋白(NIb/CP)蛋白并用于免疫家兔制备多克隆抗体,该多克隆抗体能特异性识别原核表达YMMV的NIb/CP蛋白和侵染淮山药的YMMV病毒的NIb/CP蛋白,并产生特异性免疫反应,其ELISA效价为1:64000,Westernblot效价为1:10000。发明人更进一步,基于针对YMMV外壳蛋白的特异性抗体,结合针对该病毒YMMV的基因组的特异性引物建立了IC-RT-PCR方法,能够高效、高灵敏和准确地从感染YMMV的淮山药植株中检测出YMMV;同理建立的ELISA和Westernblot方法也可以特异性地从感染YMMV的淮山药植株中检测出YMMV。应用本发明提供的YMMV全基因组序列以及多克隆抗体,可为YMMV与寄主相互作用研究以及该病毒的快速检测、分型和分子生物学研究提供物质基础和技术支撑,为该病毒的流行监测和防治打下扎实基础。
附图说明
图1是YMMV的5’/3’RACE电泳图,图中:M为DNA分子量标准(O’GeneRuler1kbDNALadder,ThermoScientific公司),1为5’RACE产物,2为3’RACE产物。
图2是YMMV的分段PCR扩增电泳图,图中:M为DNA分子量标准(O’GeneRuler1kbDNALadder,ThermoScientific公司),1为YMMV片段2,2为YMMV片段3,3为YMMV片段4,4为YMMV片段5。
图3是YMMV的基因组结构示意图。
图4是YMMV的多聚蛋白与其他马铃薯Y病毒属病毒代表种的进化关系图。
图5是YMMV的NIb/CP蛋白与其他不同地区和不同淮山药品种中获得的YMMV分离物的外壳蛋白进化关系图。
图6是YMMV的外壳蛋白基因PCR扩增电泳图,图中:M为DNA分子量标准(O’GeneRuler1kbDNALadder,ThermoScientific公司),泳道1~3为3个重复的YMMV的NIb/CP蛋白基因的PCR产物。
图7是原核表达载体pET30a-YMMV-Nib/CP的酶切验证电泳图,图中:M为DNA分子量标准(O’GeneRuler1kbDNALadder,ThermoScientific公司),泳道1~3为3个重复的连接上YMMV的NIb/CP蛋白基因的pET30a-YMMV-Nib/CP质粒的酶切产物。
图8是验证YMMV的NIb/CP基因的重组蛋白表达形式的SDS-PAGE图,图中:M为蛋白分子量标准(PageRulerUnstainedProteinLadder,ThermoScientific公司),1为未诱导样品超声波破碎细胞后离心收集的沉淀,2为诱导样品超声波破碎细胞后离心收集的沉淀,3为未诱导样品超声波破碎细胞后离心收集的上清,4为诱导样品超声波破碎细胞后离心收集的上清。
图9是亲和纯化的YMMV的NIb/CP基因的重组蛋白的SDS-PAGE图,图中:M为蛋白分子量标准(PageRulerUnstainedProteinLadder,ThermoScientific公司),1~4为镍柱纯化的带有6×His标签的YMMV的NIb/CP蛋白的四次洗脱产物。
图10是YMMV多克隆抗体效价测定图,图中:1为免疫前血清,2为纯化抗体,3为检测因子。
图11是ACP-ELISA图,图中1-3是原核表达纯化的YMMV-NIb/CP蛋白样品,4-6是感染YMMV的淮山药总蛋白样品,7-9是未感染YMMV的健康淮山药样品,10-12是只加入蛋白裂解液的空白对照。
图12是Westernblot图,图中:M为蛋白分子量标准(PageRulerPrestainedProteinLadder,ThermoScientific公司),1~6为YMMV阴性样品,7~9为YMMV阳性样品。
图13是IC-RT-PCR图,图中:M为DNA分子量标准(O’GeneRuler100bpPlusDNALadder,ThermoScientific公司),1为空白对照,2为阴性对照(健康样品),3为阳性对照(YMMV感病样品),4-13为疑似YMMV病毒病的待测样品(其中11的样品经ELISA检测为YMMV阳性)。
具体实施方式
以下所用材料包括:HS高保真DNA聚合酶、T4DNA连接酶购自TaKaRa公司。柱式DNA胶回收试剂盒(E.Z.N.GelExtractionKit)购自OMEGA公司。RNAplantplus植物总RNA提取试剂、质粒DNA提取试剂盒购于天根生化科技(北京)有限公司,5’/3’RACE试剂盒、PCR产物纯化试剂盒购自Roche公司。TMB底物显色试剂盒、蛋白质提取试剂盒购自康为世纪公司。琼脂糖为RegularAgaroseG-10。胰蛋白胨、酵母提取物、尿素、BSA、PMSF、TEMED、DTT购自Sigma公司。限制性内切酶,RNaseInhibitor、IPTG、RevertAidTM第一链cDNA合成试剂盒、dNTP、GeneRuler1kbDNAladder、GeneRuler1kbplusDNAladder、PageRulerPrestainedProteinLadder、PageRulerUnstainedProteinLadder购自ThermoScientific公司。氨苄青霉素(Amp)、卡那霉素(Kan)、RNaseA、丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、三羟甲基氨基甲烷(Tris)、十二烷基磺酸钠(SDS)、甘氨酸、溶菌酶等购自生工生物工程(上海)有限公司。其它试剂均为分析纯。
一、YMMV的全长基因组序列的克隆
1.1YMMV的3’端序列克隆
根据高通量测序获得的YMMV的序列,设计一条正向引物(YMMV-8242F:5’-GAGGAAGAGCGGATTGTTGC-3’,见序列表SEQ.ID.No.4),利用5’/3’RACE试剂盒(Roche公司)合成YMMV的3’端的cDNA。在20μl的体系中加入7μlddH2O(RNase-Free),4μl的5×cDNAsynthesisbuffer,1μlN1T(10μM)(N1T:5’-GACCACGCGTATCGATGTCGAC(T)17V-3’,见序列表SEQ.ID.No.5,试剂盒提供),5μl受YMMV侵染的桂淮6号总RNA(约1μg)和2μldNTP(10mM),1μlTranscriptorReverseTranscriptase,混匀,55℃反应60min,然后在85℃反应5min使逆转录酶失活。以反转录获得的第一链cDNA为模板,YMMV-8242F和N1(N1:5’-GACCACGCGTATCGATGTCGAC-3’,见序列表SEQ.ID.No.6,试剂盒提供)为引物进行PCR,扩增出一条特异性预期大小为1290bp的带(图1,泳道2)。利用pCR2.1PCR产物克隆试剂盒直接克隆3’RACEPCR产物。连接反应体系为:1μl新鲜PCR产物,2μl5×连接酶Buffer,1μlpCR2.1vector,5μlddH2O和1μlT4DNA连接酶。连接反应液在室温放置,反应30min后用于转化E.coliDH5α的感受态细胞,涂布在加有100μg/L的氨苄青霉素、10μLIPTG(24mg/mL)和20μLX-Gal(20mg/mL)的LA培养基上,37℃培养18小时。挑取白色菌落提取质粒,并用EcoRI酶切鉴定,挑选3个鉴定正确的阳性克隆进行序列测定,将重组质粒命名为pCR-YMMV-3。
1.2YMMV的5’端cDNA的克隆
根据高通量测序获得的YMMV的序列,设计两条反向引物(YMMV-996R:5’-GCGAACTATCATATGTGAACCTGT-3’,见序列表SEQ.ID.No.7);YMMV-928R:5’-CGCTACAACCTCGTGTGATT-3’,见序列表SEQ.ID.No.8),利用5’/3’RACE试剂盒(Roche)合成YMMV的5’端的cDNA。在20μl的体系中加入7μlddH2O(RNase-Free),4μl的cDNAsynthesisbuffer,2μldNTP(10mM),1μlYMMV-996R(10μM),5μl受YMMV侵染的桂淮6号总RNA(约1μg)和1μlTranscriptorReverseTranscriptase混匀,55℃反应60分钟,然后在85℃反应5分钟使转录酶失活。反应结束后,用Roche的高纯PCR产物纯化试剂盒纯化第一链cDNA产物(根据试剂盒说明书进行操作)。取19μl纯化的第一链cDNA产物,加入2.5μl10×ReactionBuffer,2mMdATP,轻柔混匀并短暂离心,于94℃反应3分钟,立即置于冰上。短暂离心,加入1μl的末端转移酶(TerminalTransferase),轻柔混匀并置于37℃反应20分钟。然后在70℃反应10分钟以使末端转移酶失活。取5μl已经加了A尾巴的cDNA作为模板,加入1μlOligodT-anchorprimer(N1T),1μlYMMV-996R,1μldNTP(10mM),5μl10×ReactionBuffer,0.5μlTaqDNAPolymerase(5U/μl)和36.5μlddH2O,进行第一次PCR,再以第一次PCR产物稀释100倍为模板,以YMMV-928R和N1为引物进行第二次PCR,扩增出一条特异性预期大小为928bp的带(图1,泳道1)。利用pCR2.1PCR产物克隆试剂盒直接克隆5’RACEPCR产物。连接反应体系为:1μl新鲜PCR产物,2μl5×连接酶Buffer,1μlpCR2.1vector,5μlddH2O和1μlT4DNA连接酶。连接反应液在室温放置,反应30分钟后用于转化E.coliDH5α的感受态细胞,涂布在加有100μg/L的氨苄青霉素、10μLIPTG(24mg/mL)和20μLX-Gal(20mg/mL)的LA培养基上,37℃培养18小时。挑取白色菌落提取质粒,并用EcoRI酶切鉴定,挑选3个鉴定正确的阳性克隆进行序列测定,将重组质粒命名为pCR-YMMV-5。
1.3克隆测序验证高通量测序结果
根据高通量测序获得的序列和3’RACE以及5’RACE的测序结果设计四对引物:
YMMV-839F:5’-CGCAAGTTATAGCACCAATCCA-3’,见序列表SEQ.ID.No.9,
YMMV-3172R:5’-CACCTCCAACCGTTCTCAATG-3’,见序列表SEQ.ID.No.10;
YMMV-3092F:5’-GGATGAGGACTGGTGTTAGGAT-3’,见序列表SEQ.ID.No.11;
YMMV-5038R:5’-TGACTACGGAATGTGGTATTGC-3’,见序列表SEQ.ID.No.12;
YMMV-4787F:5’-AGGCGGCGTTCTTGAGTT-3’,见序列表SEQ.ID.No.13;
YMMV-7000R:5’-CTTGTTCCAGATCCATGAGTAGTT-3’,见序列表SEQ.ID.No.14;
YMMV-6942F:5’-AAGCAGCACACCATCAGAAC-3’,见序列表SEQ.ID.No.15;
YMMV-8458R:5’-TCCGAAGAGCGTATTCAGAGAT-3’,见序列表SEQ.ID.No.16。
预期片段大小分别为2334bp、1947bp、2214bp和1517bp。以3’RACE的cDNA为模板,分别用这四对引物进行PCR扩增获得预期大小的目的片段(图2),分别克隆至pCR2.1vector并挑取3个克隆进行测序。
通过3’RACE、5’RACE和分段克隆测序最终拼接获得包含9536nt的YMMV的全长基因组序列(不包括polyA的长度),5’非编码区有137个碱基,3’非编码区有144个碱基,经结构域预测和同源序列比对分析发现,其编码一个包含3084个氨基酸大的多聚蛋白,该多聚蛋白可被病毒自身编码的蛋白酶剪切成10个蛋白质(图3),从5’端到3’端的顺序编码的蛋白分别为:P1(320aa),HC-Pro(457aa),P3(348aa),6K1(51aa),CI(643aa),6K2(52aa),NIaVPg(191aa),NIaPro(240aa),NIb(516aa),CP(266aa)。
分别选取多聚蛋白和外壳蛋白的氨基酸序列用MEGA4.0软件的邻接法构建系统进化树,均显示该病毒与YMMV巴西分离物在进化上的关系最近(图4和图5)。
二、原核表达纯化外壳蛋白并制备多克隆抗体
2.1引物设计与合成
根据3’RACE获得的YMMV的3’端部分序列(GenBank:JF357963)设计并由生工生物工程(上海)有限公司合成一对特异性引物YMMVNIbCP-F:5’-CCCGAATTCATGTCGCACAAAGCAGTTAAG-3’(见序列表SEQ.ID.No.17)和YMMVNIbCP-R:5’-CCCGTCGACCTAGATATTGCGCACTCCAAG-3’(见序列表SEQ.ID.No.18)。上游引物YMMVNIbCP-F位于NIb基因编码区,并在其中引入一个EcoRI酶切位点(下划线所示)。下游引物YMMVNIbCP-R与CP基因编码区3’端序列互补,并在终止密码子的下游加入一个SalI酶切位点(下划线所示)。预期PCR产物大小为1191bp,包括部分NIb和完整CP基因以及酶切位点序列。
2.2NIb/CP基因的克隆与序列测定
以感染YMMV的桂淮6号病叶为材料,用RNAplantplus植物总RNA提取试剂按照说明书的方法提取病叶的总RNA。取1μg总RNA为模板,采用RevertAidTM第一链cDNA合成试剂盒,根据说明书提供的标准程序以OligleDT(18)为引物进行反转录获得cDNA。然后取1μL稀释20倍的反转录产物作为模板,加入10μM的YMMVNIbCP-F和YMMVNIbCP-R引物各2μL,10μL5×PCRbuffer,0.5μL10mMdNTP,0.25μLHS高保真DNA聚合酶,36.25μLddH2O,进行PCR扩增。反应条件为:98℃预变性3min,98℃变性10sec,55℃退火15sec,72℃延伸1min,34个循环,最后在进行72℃反应5min。PCR产物采用浓度为1%的琼脂糖凝胶电泳(图6),切胶回收纯化目的DNA片段后,与用SmaI切开pUC19平端载体连接,转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,挑取转化子用质粒DNA提取试剂盒提取质粒,用EcoRI/SalII双酶切鉴定重组质粒,选择鉴定正确的克隆送生工生物工程(上海)有限公司测序,核苷酸和氨基酸序列采用VectorNTIAdvanceTM10软件进行比对分析(见序列表SEQ.ID.No.1和SEQ.ID.No.2)。
2.3原核表达载体的构建
将纯化的重组质粒经EcoRI和SalI双酶切后,回收目的基因片段与用相同酶切的pET30a连接。取5μL连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,提取质粒DNA,用EcoRI和SalI双酶切鉴定筛选阳性克隆(图7),获得鉴定正确的原核表达载体pET30a-YMMV-NIbCP。再将该表达载体和对照空载体pET30a分别转化大肠杆菌BL21(DE3)pLysS感受态细胞,用卡那霉素抗性筛选获得携带目标表达载体pET30a-YMMV-NIbCP和空载体pET30a的表达菌株。
2.4诱导表达及表达条件优化
挑取新鲜培养的含pET30a-YMMV-NIbCP表达载体的BL21(DE3)pLysS单菌落,接种于lmL含50μg/L卡那霉素的LB培养基中,37℃振荡培养过夜,同时以含空质粒pET30a的BL21(DE3)pLysS菌作对照。按l:100的比例将过夜培养的菌液加入到5mL新鲜的含25μg/L卡那霉素的LB培养基中,其中含空质粒pET30a的BL21(DE3)pLysS菌1小瓶,含pET30a-YMMV-NIbCP表达载体的BL21(DE3)pLysS菌6小瓶。37℃继续振摇培养3h左右至OD600=0.4~0.6,然后向含pET30a-YMMV-NIbCP表达载体的BL21(DE3)pLysS菌液中加入化学诱导剂IPTG至终浓度分别为0mM、0.1mM、0.4mM、0.8mM、1.2mM、2.0mM,继续28℃,200rpm振荡培养。诱导6h后从摇床取出置于冰上10min使菌体停止生长,然后10000rpm离心1min收集菌体,用PBS(pH7.4)清洗一次,再悬浮于200μlPBS(pH7.4),取30μl悬浮液加入10μl4×蛋白上样缓冲液,煮沸10min,12000rpm离心2min,取10μl上清进行SDS-PAGE检测。根据SDS-PAGE结果选择梯度诱导目的蛋白表达量最好的IPTG浓度进行大量诱导表达。
2.5表达产物的可溶性分析
取5mL诱导表达的菌液,10000rpm离心2min收集菌体,用PBS清洗一次,再悬浮于200μlPBS(pH7.4),用SONICSUibraCellTM超声波破碎细胞,Amp(与功率对应)参数设置为38%,每次10Sec,间隔10Sec,直至菌液变澄清。4℃,12000rpm离心30min,取上清液于新的离心管。沉淀用200μl含8M脲的PBS充分溶解,12000rpm离心10min。分别取10μl上清和沉淀进行SDS-PAGE检测(图8)。
2.6YMMV-NIb-CP重组蛋白的纯化
该表达载体含有6×His标签,所以根据QIAexpressionistTM手册采用亲合层析方法进行蛋白纯化,将100mL诱导表达的菌液用400mLBeckman离心管收集,在Beckman高速离心机上10000rpm离心5min收集菌体,置于-20℃放置30min。然后于冰上融化30min,此时菌体在自身表达的溶菌酶的作用下开始发生裂解。用LysisBuffer(100mMNaH2PO4,10mMTris·Cl,8Murea,pH8.0)重悬菌液,超声波破碎细胞,直至菌液变澄清。12000rpm离心20min,取上清液与用LysisBuffer平衡的Ni-NTA树脂充分混匀,装柱,然后先用WashBuffer(100mMNaH2PO4,10mMTris·Cl,8Murea,pH6.3)洗脱杂蛋白,再用ElutionBuffer(100mMNaH2PO4,10mMTris·Cl,8Murea,pH4.5)连续洗脱目的蛋白,分管收集洗脱液,每管收集1mL,分别取10μl蛋白洗脱液进行SDS-PAGE检测目的蛋白的纯化效果(图9)。
2.7多克隆抗体制备及效价测定
取纯化后的重组蛋白2mL,采用皮下多点注射法免疫新西兰大白兔(免疫前采集正常血清作为阴性对照),以后每2周加强免疫一次,共免疫4次;首次免疫加入与蛋白等量的弗氏完全佐剂,后3次加入与蛋白等量的弗氏不完全佐剂;末次加强免疫7d后,心脏采血,分离血清;抗血清经抗原亲和纯化获得该病毒NIb/CP蛋白的多克隆抗体。
以原核表达的YMMVNIb/CP为抗原,经ELISA法测定,纯化后的多克隆抗体效价为1:64000(图10)。
三、基于YMMV外壳蛋白多克隆抗体的检测方法
3.1间接抗原包被ELISA(ACP-ELISA)方法检测病毒
ACP-ELISA方法的操作步骤:
(1)用1mL抗原包被缓冲液研磨0.1g淮山药新鲜叶片,9000rpm离心5min,取上清液稀释20倍,按照100μl/孔加入ELISA板;以感染YMMV的病叶为阳性对照,未感染YMMV的健康叶为阴性对照,37℃孵育2h或4℃过夜;
(2)用200μlPBST洗涤两次后,用5%脱脂奶粉封闭30min;
(3)用200μlPBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液按照1:8000稀释的YMMV多克隆抗体,100μl/孔,37℃孵育1h或室温孵育3h;
(4)用200μlPBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液稀释3000倍的辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔IgG结合物(Abmart),100μl/孔,室温孵育1h;
(5)用200μlPBST洗涤三次后,用TMB底物显色试剂盒(康为世纪公司)进行显色(图11),室温避光孵育25-30min,反应产物呈蓝色,每孔再加入50μl0.5MH2SO4终止显色,此时蓝色产物变为亮黄色,立即用酶标仪读取OD450的值,以与阴性OD值比值(P/N)大于2.1为阳性。
其中,PBST含3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,0.05%Tween20,pH7.4;抗原包被缓冲液为碳酸盐缓冲液(30mM碳酸钠-碳酸氢钠缓冲液,pH9.6);抗体稀释缓冲液为1%BSA,0.01MPBSpH7.2。
3.2蛋白质免疫印记(Westernblot)方法检测病毒
Westernblot方法的操作步骤:
(1)用TCA/丙酮沉淀法或采用蛋白质提取试剂盒(康为世纪)提取淮山药总蛋白样品,用Bradford法进行蛋白质定量,调整蛋白质浓度为2mg/mL;
(2)制备蛋白电泳凝胶,进行SDS-PAGE;
(3)半干式转移:电泳结束后将凝胶割至合适大小,用转膜缓冲液平衡,5min×3次;预先裁好与凝胶同样大小的滤纸和PVDF膜,用甲醇浸泡1min后,小心将膜放入双蒸水中浸泡2min,再浸入转膜缓冲液中10min;转膜装置从下至上依次按阳极碳板、3层3mm滤纸、PVDF膜、凝胶、3层3mm滤纸、阴极碳板的顺序放好,滤纸、凝胶、PVDF膜精确对齐,每一步去除气泡,盖好阴极碳板之后接通电源,恒流1mA/cm2,转移1.5h,转移结束后,断开电源将膜取出;
(4)免疫反应:用0.01MPBS(3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,pH7.4)洗膜,1min;加入封闭液(5%脱脂奶粉或3%BSA),室温封闭1~2h;弃封闭液,用0.01MPBST洗膜,5min×3次;加入用抗体稀释缓冲液按照1:5000稀释的YMMV多克隆抗体(一抗),室温孵育2h或4℃放置12h以上;阴性对照,以1%BSA取代一抗,其余步骤与实验组相同;弃一抗和1%BSA,用0.01MPBST分别洗膜,5min×4次;加入用用抗体稀释缓冲液稀释3000倍的辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔IgG结合物(二抗),平稳摇动,室温孵育2h;弃二抗,用0.01MPBST洗膜,5min×4次;采用ECL法(ECLWesternBlottingSubstrate,ThermoScientific)进行检测(图12);
其中,转膜缓冲液为25mMTris,192mMglycine,0.01%SDS,20%methanol,pH8.3;0.01MPBS含有3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,pH7.4;封闭液为5%脱脂奶粉或3%BSA。
3.3用免疫捕获反转录聚合酶链式反应(IC-RT-PCR)方法检测病毒
IC-RT-PCR方法的操作步骤:
(1)用抗体稀释缓冲液按照1:8000稀释YMMV多克隆抗体,每个1.5mL的离心管中加入100μl稀释好的抗体,37℃孵育1h或室温孵育3h;
(2)将淮山叶片与研磨缓冲液(0.02MPBS,2%PVP)按0.2%(w/v)放入研钵中,研磨成叶汁匀浆,吸入1.5mL离心管中,9000rpm离心10min;
(3)将步骤(1)中包被好抗体的1.5mL离心管用PBST洗两次,加入200μl步骤(2)准备好的叶汁上清液,37℃水浴3h,此时暴露的病毒颗粒特异性地附着于离心管内壁上(免疫捕捉);
(4)移去叶汁,PBST洗3次,DEPC水洗1次,洗毕作短暂离心去除管底余液;
(5)用SuperRT一步法RT-PCR试剂盒(康为世纪公司)按照说明书进行RT-PCR检测反应,YMMV检测引物为YMMV-F:5’-GGCACACATGCAAATGAARGC-3’(见序列表SEQ.ID.No.19)和YMMV-R:5’-CACCAGTAGAGTGAACATAG-3’(见序列表SEQ.ID.No.20),PCR阶段设置退火温度为55℃,35个循环;
(6)RT-PCR结束后,取5μl的PCR产物用1.0%(w/v)琼脂糖凝胶进行电泳检测,预期片段大小为249bp(图13);
其中,抗体稀释缓冲液为1%BSA,0.01MPBSpH7.2。

Claims (8)

1.一种淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备方法,其特征在于:原核表达纯化淮山药温和花叶病毒的NIb/CP蛋白并用于免疫家兔制备多克隆抗体;所述NIb/CP蛋白为序列表SEQIDNo:1的氨基酸序列,或由序列表SEQIDNo:2的碱基序列的基因所编码;该法按以下操作进行:取纯化后的NIb/CP蛋白,采用皮下多点注射法免疫新西兰大白兔,以后每2周加强免疫一次,共免疫4次;首次免疫加入与蛋白等量的弗氏完全佐剂,后3次加入与蛋白等量的弗氏不完全佐剂;末次加强免疫7天后,心脏采血,分离血清;抗血清经抗原亲和纯化获得该病毒NIb/CP蛋白的多克隆抗体。
2.权利要求1所得淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体在检测淮山药温和花叶病毒方面的应用。
3.基于权利要求1所述多克隆抗体的淮山药温和花叶病毒的ELISA检测方法。
4.根据权利要求3所述的ELISA检测方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)用1mL抗原包被缓冲液研磨0.1g淮山药新鲜叶片,9000rpm离心5min,取上清液稀释20倍,按照100μl/孔加入ELISA板;以感染YMMV的病叶为阳性对照,未感染YMMV的健康叶为阴性对照,37℃孵育2h或4℃过夜;
(2)用200μlPBST洗涤两次后,用5%脱脂奶粉封闭30min;
(3)用200μlPBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液按照1:8000稀释的YMMV多克隆抗体,100μl/孔,37℃孵育1h或室温孵育3h;
(4)用200μlPBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液稀释3000倍的辣根过氧化物酶标记的羊抗兔IgG结合物,100μl/孔,室温孵育1h;
(5)用200μlPBST洗涤三次后,用TMB底物显色试剂盒进行显色,室温避光孵育25-30min,反应产物呈蓝色,每孔再加入50μl0.5MH2SO4终止显色,此时蓝色产物变为亮黄色,立即用酶标仪读取OD450的值,以与阴性OD值比值大于2.1为阳性;
所述PBST含3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,0.05%Tween20,pH7.4;所述抗原包被缓冲液为碳酸盐缓冲液:30mM碳酸钠-碳酸氢钠缓冲液,pH9.6;所述抗体稀释缓冲液为1%BSA,0.01MPBSpH7.2。
5.基于权利要求1所述多克隆抗体的淮山药温和花叶病毒的Westernblot检测方法。
6.根据权利要求5所述的Westernblot检测方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)用TCA/丙酮沉淀法或采用蛋白质提取试剂盒提取淮山药总蛋白样品,用Bradford法进行蛋白质定量,调整蛋白质浓度为2mg/mL;
(2)制备蛋白电泳凝胶,进行SDS-PAGE;
(3)半干式转移:电泳结束后将凝胶割至合适大小,用转膜缓冲液平衡,5min×3次;预先裁好与凝胶同样大小的滤纸和PVDF膜,用甲醇浸泡1min后,小心将膜放入双蒸水中浸泡2min,再浸入转膜缓冲液中10min;转膜装置从下至上依次按阳极碳板、3层3mm滤纸、PVDF膜、凝胶、3层3mm滤纸、阴极碳板的顺序放好,滤纸、凝胶、PVDF膜精确对齐,每一步去除气泡,盖好阴极碳板之后接通电源,恒流1mA/cm2,转移1.5h,转移结束后,断开电源将膜取出;
(4)免疫反应:用0.01MPBS洗膜,1min;加入封闭液,室温封闭1~2h;弃封闭液,用0.01MPBST洗膜,5min×3次;加入用抗体稀释缓冲液按照1:5000稀释的YMMV多克隆抗体,室温孵育2h或4℃放置12h以上;阴性对照,以1%BSA取代一抗,其余步骤与实验组相同;弃一抗和1%BSA,用0.01MPBST分别洗膜,5min×4次;加入用抗体稀释缓冲液稀释3000倍的辣根过氧化物酶标记的羊抗兔IgG结合物,平稳摇动,室温孵育2h;弃二抗,用0.01MPBST洗膜,5min×4次;采用ECL法进行检测;
所述转膜缓冲液为25mMTris,192mMglycine,0.01%SDS,20%methanol,pH8.3;所述0.01MPBS含有3.2mMNa2HPO4,0.5mMKH2PO4,1.3mMKCl,135mMNaCl,pH7.4;所述封闭液为5%脱脂奶粉或3%BSA。
7.基于权利要求1所述多克隆抗体的淮山药温和花叶病毒的IC-RT-PCR检测方法。
8.根据权利要求7所述的IC-RT-PCR检测方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)用抗体稀释缓冲液按照1:8000稀释YMMV多克隆抗体,每个1.5mL的离心管中加入100μl稀释好的抗体,37℃孵育1h或室温孵育3h;
(2)将淮山叶片与含2%PVP的0.02MPBS研磨缓冲液按质量体积比0.2%放入研钵中,研磨成叶汁匀浆,吸入1.5mL离心管中,9000rpm离心10min;
(3)将步骤(1)中包被好抗体的1.5mL离心管用PBST洗两次,加入200μl步骤(2)准备好的叶汁上清液,37℃水浴3h;
(4)移去叶汁,PBST洗3次,DEPC水洗1次,洗毕作短暂离心去除管底余液;
(5)用SuperRT一步法RT-PCR试剂盒进行RT-PCR反应,检测引物为YMMV-F:5’-GGCACACATGCAAATGAARGC-3’和YMMV-R:5’-CACCAGTAGAGTGAACATAG-3’,PCR阶段设置退火温度为55℃,35个循环;
(6)RT-PCR结束后,取5μl的PCR产物用质量体积浓度1.0%琼脂糖凝胶进行电泳检测,
所述抗体稀释缓冲液为1%BSA,0.01MPBSpH7.2。
CN201310541297.8A 2013-11-05 2013-11-05 淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用 Active CN103539856B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310541297.8A CN103539856B (zh) 2013-11-05 2013-11-05 淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310541297.8A CN103539856B (zh) 2013-11-05 2013-11-05 淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103539856A CN103539856A (zh) 2014-01-29
CN103539856B true CN103539856B (zh) 2016-04-27

Family

ID=49963753

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310541297.8A Active CN103539856B (zh) 2013-11-05 2013-11-05 淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103539856B (zh)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105002148A (zh) * 2015-08-06 2015-10-28 南京中医药大学 泽泻3-羟基-3-甲基戊二酰辅酶a还原酶抗体制备及检测方法
CN107918017A (zh) * 2016-12-26 2018-04-17 云南农业大学 一种快速检测辣椒褪绿病毒的血清学方法
CN108732228B (zh) * 2018-04-10 2020-08-28 中国医学科学院输血研究所 人凝血因子Ⅷ制品中vWF多聚体的检测方法
CN110256538A (zh) * 2019-05-29 2019-09-20 湖南省植物保护研究所 抗生菜褪绿病毒的重组蛋白及其制备方法、多克隆抗体及制备方法、检测试剂盒及应用
CN110845606A (zh) * 2019-10-24 2020-02-28 东北林业大学 一种赤瓟花叶病毒的多克隆抗体制备及elisa检测方法
CN114019159B (zh) * 2021-11-09 2022-08-12 中国科学院西北生态环境资源研究院 一种日本山药花叶病毒的检测引物组合物、试剂盒及其应用
CN117106078B (zh) * 2023-07-18 2024-09-17 华南农业大学 一种水稻橙叶植原体抗原膜蛋白多克隆抗体及其应用

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Analysis of the sequence diversity of the P1,HC,P3,NIb and CP genomic regions of several yam mosaic potyvirus isolates: implicatons for the intraspecies molecular diversity of potyviruses;Aleman-Verdaguer等;《Journal of general virology》;19971231;第78卷;1253-1264 *
Caracterizacao de um isolado de yam mild mosaic virus(YMMV) obtido de dioscorea trifida, sequenciamento do genoma e producao de antissoro policlonal;francisco de assis camara rabelo filho;《universidade federal rural de pernambuco》;20130228;第33-38、47-54页 *
Isolation,characterisation and identification of a potyvirus from dioscorea alata L.(water yam)in Nigeria;Odu等;《ann.appl.biol》;19991231;第134卷;65-71 *
Origin,world-wide dispersion, bio-geographical diversification, radiation and recombination: an evolutionary history of yam mild mosaic virus(YMMV);Bousalem等;《infection,genetics and evolution》;20031231;第3卷;第2.2、2.5.1、2.6、3.3、图4、表3-4 *
polyprotein,partial[yam mild mosaic virus];Zou c等;《Genbank》;20110929;全文 *
甘薯脉花叶病毒外壳蛋白基因在大肠杆菌中的表达及其抗血清的制备;张业辉 等;《植物病理学报》;20111231;第41卷(第1期);57-63 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN103539856A (zh) 2014-01-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103539856B (zh) 淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用
CN102675469A (zh) 新型鸭呼肠孤病毒重组σB(SigmaB)蛋白抗原、制备方法及应用
CN103539842A (zh) 草鱼呼肠孤病毒ⅱ型s10基因编码的重组蛋白、由其制备的多克隆抗体及应用
Vaira et al. A polyclonal antiserum against a recombinant viral protein combines specificity with versatility
Meng et al. Antiserum to recombinant virus coat protein detects Rupestris stem pitting associated virus in grapevines
CN111999497A (zh) 检测狂犬病毒糖蛋白抗原的酶联免疫试剂盒及其应用
CN103045635A (zh) 李坏死环斑病毒外壳蛋白基因表达方法及抗血清和试剂盒
CN103543264B (zh) 淮山药x病毒的多克隆抗体制备、检测及其应用
CN109239351B (zh) 一种莲藕潜隐病毒双抗体夹心酶联免疫检测试剂盒及制备与检测方法
CN106018831A (zh) 脑多头蚴病的标志物gp50以及用于诊断脑多头蚴病的试剂盒
CN101748136A (zh) 建兰花叶病毒外壳蛋白基因的表达及其抗体制备方法
CN102533663A (zh) 口蹄疫杂交瘤细胞株、单克隆抗体、检测试剂和试剂盒
CN101781656A (zh) 齿兰环斑病毒外壳蛋白基因的表达及其抗体制备方法
CN104651379A (zh) 一种重组猪流行性腹泻病毒n蛋白及其制备方法
Chen et al. Development and evaluation of nucleoprotein-based rapid detection test for Siniperca chuatsi rhabdovirus
CN103897051B (zh) 一种华支睾吸虫特异性ppmp型抗原
CN106977605A (zh) 抗cd19蛋白单克隆抗体及其用途
CN101921337A (zh) 间日疟原虫乳酸脱氢酶抗体、相关制备方法、杂交瘤细胞株和应用
CN106749668A (zh) 抗ido1蛋白单克隆抗体及其用途
CN109679963A (zh) 一种重组人视黄醇结合蛋白4N端19-201aa的表达与纯化方法及应用
CN106636010A (zh) 杂交瘤细胞株Jnw1D2及其产生的抗甲萘威单克隆抗体
CN114230661B (zh) 一种用于番茄黄化斑驳相关病毒检测的抗体及其制备方法和应用
CN104888208A (zh) 马红球菌致病基因VapA重组蛋白的应用
CN204389505U (zh) 一种检测大熊猫西氏贝蛔虫的酶联免疫试剂盒
CN113121691B (zh) 鲤Toll样受体2多克隆抗体的制备方法及应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant