CN103266103A - 用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中rna或dna模板的方法 - Google Patents

用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中rna或dna模板的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103266103A
CN103266103A CN2013101500857A CN201310150085A CN103266103A CN 103266103 A CN103266103 A CN 103266103A CN 2013101500857 A CN2013101500857 A CN 2013101500857A CN 201310150085 A CN201310150085 A CN 201310150085A CN 103266103 A CN103266103 A CN 103266103A
Authority
CN
China
Prior art keywords
rna
dna
primer
nucleic acid
polysaccharase
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN2013101500857A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103266103B (zh
Inventor
丁少峰
刘强
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tianjin Kinnet Gene Biotechnology Co., Ltd.
Original Assignee
丁少峰
刘强
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 丁少峰, 刘强 filed Critical 丁少峰
Publication of CN103266103A publication Critical patent/CN103266103A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103266103B publication Critical patent/CN103266103B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10—Transferases (2.)
    • C12N9/12—Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
    • C12N9/1241—Nucleotidyltransferases (2.7.7)
    • C12N9/1252—DNA-directed DNA polymerase (2.7.7.7), i.e. DNA replicase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28—N-glycosides
    • C12P19/30—Nucleotides
    • C12P19/34—Polynucleotides, e.g. nucleic acids, oligoribonucleotides
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明提供了用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中RNA模板的方法，开发了一种RNA-PAP的新方法，其可以直接放大RNA模板而无需额外的处理；RNA-PAP为扩增RNA模板带来了一个全新的机理，其中RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和RNA依赖性DNA聚合反应是用3'末端阻断性寡核苷酸引物所串联耦合的，由于这种串连耦合，使得RNA-PAP对RNA模板的不匹配性具有高度的选择性，从而提供了高度特异性的RNA模板的扩增；此外，经遗传工程产生的突变体聚合酶具有更高的RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和RNA依赖性DNA聚合反应的效率。

Description

用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中RNA或DNA模板的方法
技术领域
本发明涉及分子生物学领域，尤其是用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中RNA或DNA模板的方法。
背景技术
一、PAP技术用于DNA模板的扩增
焦磷酸化激活的聚合反应是一种使用3'末端阻断性寡核苷酸引物使得DNA聚合酶的焦磷酸化反应串联耦合聚合反应的核酸扩增方法。其引物在3'末端被不可延伸的核苷酸,例如双脱氧核苷酸,所封闭（3'末端阻断剂）,因而不能直接被DNA聚合酶所延伸。当3'末端被阻断的引物与其互补性DNA模板退火时，在焦磷酸的存在下DNA聚合酶可以从3'末端被阻断的引物上去除其3'末端阻断剂，这一反应为焦磷酸化反应。然后DNA聚合酶即而能延伸DNA模板上已去除3'末端阻断剂的引物。这些在美国专利6534269，7033763，7105298，7238480，7504221，7914995，和7919253中已有所描述。
在PAP（焦磷酸化激活的聚合反应）中使用3'末端被阻断的寡核苷酸引物而串联耦合了焦磷酸化反应和聚合反应导致了非常高的选择性，因为一个显著的可导致假阳性的非特异性扩增（第二类错误）需要不匹配性焦磷酸化反应加上随即发生的不匹配性延伸反应,而这种串联错误事件的发生概率估计为3.3×10-11。
使用两个相反方向的3'末端被阻断的寡核苷酸引物并在其3'末端与一个核苷酸相互重叠，这种双向形式的PAP（双向PAP）则特别适合于等位基因的特异性扩增。在109个拷贝的野生型DNA存在的条件下，双向-PAP能够实验出单一拷贝的突变型等位基因而没有假阳性扩增。
PAP的最初测试是使用了Tfl和Taq聚合酶并用于人类多巴胺D1基因DNA模板，从而证明了DNA依赖性DNA焦磷酸化反应和DNA依赖性DNA聚合反应可以串联耦合。在用于其它DNA模板的情况下，使用一个经基因工程改造而含F667Y突变的聚合酶TaqFS，证明可大大提高PAP的效率。
然而没有任何证据表明PAP可以利用RNA作为模板，这是一个长久以来想到但却尚没有解决了的需求。利用RNA作为模板并使得PAP工作还需要RNA依赖性DNA聚合反应和RNA依赖性DNA焦磷酸化反应，而后者的可行性在此之前还没有被证实过。
二、RNA依赖性DNA聚合反应或RT-PCR中使用的反转录
RT-PCR的第一个步骤是由RNA依赖性DNA聚合酶或逆转录酶所催化的以RNA为模板的DNA聚合反应或引物延伸反应。禽成髓细胞瘤病毒（AMV）和莫洛尼鼠白血病病毒（MMLV）反转录酶是在常温下使用的逆转录病毒转录酶，通常在该第一步骤中用来将RNA模板转换成它的互补DNA（cDNA）产物。尤其是在二价离子Mn2+的存在下,Taq酶，一个耐热性的DNA聚合酶，具有低度可测性的逆转录酶活性。另一个耐热性DNA聚合酶rTth虽然有非常相似的氨基酸序列,但是有超过Taq酶100倍以上的逆转录酶活性。此外，Taq和rTth聚合酶也可经基因工程改造以提高其逆转录酶活性。
三、依赖于RNA的DNA焦磷酸化反应
Taq，Tfl，TaqFS，Pfu，和Vent聚合酶都可催化DNA依赖性DNA焦磷酸化反应。也有报道称艾滋病毒及丙型肝炎病毒的逆转录酶可催化DNA依赖性DNA焦磷酸化反应，可以在人工化学合成的DNA（而不是RNA）模板上去除其DNA引物的3'末端的双脱氧核苷酸。
然而从没有RNA依赖性的DNA焦磷酸化反应，既用RNA为模板并除去寡核苷酸引物上的3'末端脱氧核糖核苷酸，3'末端双脱氧核苷酸，或3'末端无环核苷酸的报道。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于提供用于扩增核糖核酸的方法，即以核糖核酸（RNA或DNA）为模板焦磷酸化激活的聚合反应（RNA-PAP或DNA-PAP）的方法，可以直接放大RNA模板或DNA模板，通过使用3'末端被阻断性寡核苷酸引物将RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和RNA依赖性DNA聚合反应串联耦合或将DNA依赖性DNA焦磷酸化反应和DNA依赖性DNA聚合反应串联耦合，该方法带来了一个以RNA或DNA为模板扩增核酸的新机制。
本发明所要解决的另一技术问题在于提供分析上述方法中RNA模板的方法。
为解决上述技术问题，本发明的技术方案是：
用于扩增核糖核酸的方法，是以RNA或DNA为模板合成核酸的RNA-PAP或DNA-PAP方法，包括以下具体步骤：
（a）一个3'末端被阻断的寡核苷酸引物即其3'末端有一个不可延伸的核苷酸（3'末端阻断剂）,并与其互补的RNA模板或DNA模板产生退火；
（b）RNA依赖性DNA焦磷酸化反应或DNA依赖性DNA焦磷酸化反应以去除3'末端被阻断引物的阻断剂,从而使其成为3'末端去除阻断的引物；
（c）RNA依赖性DNA聚合反应或DNA依赖性DNA聚合反应来延伸其3'末端已去除阻断的引物。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），其步骤（a）、（b）和（c）可以重复进行直到达到核酸产物所预期的水平。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），在反应中可以更进一步加入第二个寡核苷酸引物，即：在步骤（c）后，
（d）该第二引物可与步骤（c）的核酸产物产生退火；
（e）DNA依赖性DNA聚合反应来延伸该第二引物从而可以达到一个指数性的扩增。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），可以更进一步包括第二个3'末端被阻断的寡核苷酸引物，即：在步骤（c）后，
（f）第二3'末端被阻断的引物与步骤（c）的核酸产物产生退火；
（g）DNA依赖性DNA焦磷酸化反应则从被阻断引物上去除3'末端阻断剂,产生一个3'末端去除阻断的引物；
（h）DNA依赖性DNA聚合反应对3'末端已去除阻断的引物进行延伸。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），所述步骤（b）和（c）由聚合酶催化。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），步骤（b），（c），（d），（f），（g）和（h）都是在一个反应试管中由同一聚合酶所催化的。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），所述聚合酶是经过遗传工程优化的DNA聚合酶，根据所述SEQ ID NO：10，可在与野生型Taq聚合酶相对应的由TaqFS，TaqFS681G，TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，TaqFS599V602A605A608V681G，和TaqFS742S747I所构成的一组突变体酶中进行选择。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的599V，602A，605A，608V，667Y，681G，681K，681V，681R，742S，和747I位点氨基酸突变的一组突变体中选择。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的其氨基酸突变点位于599，602，605，608，667，681，742，和747的一组突变体中选择。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），所述焦磷酸化反应中dNTP的浓度为10-50μM。
优选的，上述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），所述焦磷酸化反应中dNTP浓度为10-25μM。
分析上述方法中RNA模板的方法，步骤包括：
（a）RNA模板与其互补的寡核苷酸引物发生退火；
（b）经由RNA依赖性DNA焦磷酸化反应从引物上去除其3'末端核苷酸。
优选的，上述分析上述方法中RNA模板或DNA模板的方法，所述引物在其3'末端带有一个不可延伸的核苷酸。
优选的，上述分析上述方法中RNA模板或DNA模板的方法，所述步骤（b）后进一步包括：（c）延伸3'末端非延伸性引物。
优选的，上述分析上述方法中RNA模板或DNA模板的方法，所述RNA依赖性DNA焦磷酸化反应的反应混合物包括有：（a）一种RNA模板，（b）一个互补性寡核苷酸引物，以及（c）一种核酸聚合酶；（a’）一种DNA模板，（b’）一个互补性寡核苷酸引物，以及（c’）一种核酸聚合酶
优选的，上述分析上述方法中RNA模板的方法，所述反应混合物中的核酸聚合酶是I型DNA聚合酶。
优选的，上述分析上述方法中RNA模板的方法，所述反应混合物中的核酸聚合酶是经过遗传工程优化的DNA聚合酶，根据所述SEQ ID NO：10，可在与野生型Taq聚合酶相对应的由TaqFS，TaqFS681G，TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，TaqFS599V602A605A608V681G，和TaqFS742S747I所构成的一组突变体酶中进行选择。
优选的，上述分析上述方法中RNA模板的方法，所述反应混合物中的核酸聚合酶根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的599V，602A，605A，608V，667Y，681G，681K，681V，681R，742S，和747I位点氨基酸突变的一组突变体中选择。
优选的，上述分析上述方法中RNA模板的方法，所述反应混合物中的核酸聚合酶根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的其氨基酸突变点位于599，602，605，608，667，681，742，和747的一组突变体中选择。
本发明的有益效果是：
本发明所述用于扩增核糖核酸的方法（RNA-PAP方法或DNA-PAP方法），可以直接放大RNA模板或DNA模板而无需额外的处理；此外，RNA-PAP对不匹配的RNA模板具有高的选择性,DNA-PAP对不匹配的DNA模板具有高的选择性,从而提供了高度特异性的RNA模板或DNA模板的扩增；而且经基因工程改造的突变体聚合酶具有更高的RNA-PAP或DNA-PAP效率。
附图说明
图1阐明了RNA-PAP的原理。寡核苷酸引物在其3'末端被阻断，例如用一双脱氧核苷酸来阻断它被聚合酶所延伸。当3'末端被阻断的引物与其互补的RNA模板产生退火时，其3'末端双脱氧核苷酸可被RNA依赖性DNA焦磷酸化反应所去除。已去除阻断的DNA引物可被以RNA为模板的RNA依赖性DNA聚合酶所延伸；
图2说明了RNA依赖性DNA聚合反应的最佳dNTP浓度。RT-PCR实验II（A至D）和III（E到H）在25μl的反应体积中加入了0.25ng的总量RNA。每一种Taq聚合酶使用了一个单位（A和E），rTth（B和F），TaqFS（C和G），和TaqFS742S747I（D和H）。扩增曲线示图显示了所给周期的循环次数和SybrGreen的荧光单位。
图3显示了在使用各种聚合酶的情况下RNA-PAP的可行性。RNA-PAP实验IV（A至D），V（E到H），和VI（I到L）均为对0.25ng总量RNA的扩增结果。每一验测均对TaqFS（A，E，I），TaqFS681G（B，F，J），TaqFS681K（C，G，K），TaqFS742S747I（D，H和L）聚合酶进行了测试。在25μl的反应体积下，每一种酶的用量均是从1U直到1/16U的2倍方式连续性稀释。
具体实施方式
除非另有说明，本发明在具体实施时使用常用的化学，分子生物学，和重组DNA等技术请详见如由Sambrook等人所著的“分子克隆”第2版（Sambrook,J.F.,E.F.Maniatis,T..(1989).Molecular cloning,a laboratorymanual,second edition,Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York），Sambrook和Russell所著的“分子克隆”第3版（Sambrook,J.(2001).Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Third Edition,Cold Spring HarborLaboratory Press,Cold Spring Harbor,New York），和Ausubel等人所著的“现代分子生物学实验技术”（Ausubel,F.M.(1994).Current protocols inmolecular biology,John Wiley&Sons,New York）。
此外，除非另有定义，本发明所用的全部技术和科学术语是与在本领域的普通技术人员所通常理解的术语含义是相同的：
PCR是指聚合酶链式反应。
RT-PCR是指反转录性聚合酶链式反应。
焦磷酸化反应是脱氧核糖核酸聚合反应的逆反应。在焦磷酸的存在下，聚合酶可从双链DNA上将3'末端核苷酸去除而生成三磷酸核苷酸和缩短的双链DNA：[dNMP]n+PPi→[dNMP]n-1+dNTP（Deutscher,M.P.,and Kornberg,A.(1969).Enzymatic synthesis of deoxyribonucleic acid.28.The pyrophosphateexchange and pyrophosphorolysis reactions of deoxyribonucleic acid polymerase.The Journal of biological chemistry244,3019-3028）。
DNA依赖性DNA焦磷酸化反应是指使用DNA为模板的DNA焦磷酸化反应。它是DNA依赖性DNA聚合反应的逆反应。
RNA依赖性DNA焦磷酸化反应是指使用RNA为模板的DNA焦磷酸化反应。它是RNA依赖性DNA聚合反应的逆反应。
聚合酶是指其具有催化聚合反应或延长脱氧核糖核酸的特性。
DNA依赖性DNA聚合酶是指具有催化以DNA为模板的DNA聚合反应的特性。
RNA依赖性DNA聚合酶或逆转录酶是指具有催化以RNA为模板的DNA聚合反应的特性。
3'末端阻断性寡核苷酸引物是指其带有3'末端非延伸性核苷酸（3'末端阻断剂）如双脱氧核苷酸的寡核苷酸。其3'末端核苷酸不能被直接延伸，但它可以被焦磷酸化反应所去除，已去除阻断的引物可以被聚合酶所延伸。
PAP是指焦磷酸化反应激活的聚合反应。
RNA-PAP是指以RNA为模板的PAP。
cDNA是指以RNA为模板所合成的互补性DNA分子。
热稳定是指一种酶，其具有热稳定性或热抵抗性。
蛋白突变是指在某一蛋白质位点的氨基酸残基的改变，如Taq聚合酶。氨基酸残基的改变则被定义为与其相对的自然生成性蛋白质而言。一个蛋白具有突变则被称作为“突变体”蛋白质。
除非另有说明，氨基酸的位点应该被解释为所有DNA聚合酶相类似的位置，即使单个字母的氨基酸代码特别相指在Taq聚合酶上标示位置的氨基酸残基。
实施例1
材料和方法
寡核苷酸引物的制备
3'末端被阻断的引物系由Integrated DNA Technologies公司进行化学合成及HPLC纯化，引物均为30个核苷酸长和并在其3'末端用ddCMP双脱氧核苷酸所阻断。一般DNA引物的合成也由同一供应厂商合成（表1）。
表1引物和实验列表
Figure BDA00003112191700061
Figure BDA00003112191700071
a为避免来自于被污染的基因组DNA所产生的非特异性扩增，RT-PCR和RNA-PAP的引物设计在跨越内含子区域的转录序列(mRNA)并能与其产生退火。
b例如P53是指人类P53基因；（13280）是指根据GenBank登录x54156,引物的5'末端开始于第13280位点的核苷酸；D是指下游（即转录方向）。ACTB基因是来自于GenBank登录NM_001101.3。GAPDH基因的mRNA来自从GenBank登录AB062273.1。准确的PCR片段的大小和位置都可以从其信息化的名称中获得。
c基于其化学合成的可用性，以ddC双脱氧核苷酸为例。
总量RNA的提取：
总量RNA是根据Qiagen公司的实验技术步骤（QIAamp RNA血液迷你手册）使用QIAamp RNA试剂盒从血液中的白细胞所提取。在此操作中使用无RNA酶的DNA酶来去除污染的基因组DNA。用分光光度计在260nm处测定总量RNA的浓度。质量是以A260/A280比值位于1.8和2.1之间来控制的。提取的总量RNA储存在-20℃直至使用。
重组体质粒的构建：
野生型Taq聚合酶的氨基酸序列如同在GenBank登录AAA27507.1（SEQID NO：10）中的描述。自氨基末端残基开始计数。字母是指其所示位置的氨基酸残基的单字母氨基酸代码。
编码野生型Taq聚合酶的序列重组体质粒的构建是根据Navagen公司pET质粒系统用户手册，由一个GenBank登录J04639从121到2619核苷酸，2.4kb长的DNA片段联结至pET14b载体的Nde I与BamHⅠ限制性切点之间。然后将重组体质粒转化到DH5α大肠杆菌细胞内提取其质粒DNA。连接后的TaqDNA聚合酶的编码序列则由ABI公司的Sanger荧光测序分析所证实。
使用Stratagene公司QuikChange引物设计软件所设计的用于诱发突变的寡核苷酸引物和QuikChange闪电位点定向突变诱发试剂盒，按照Stratagene公司的用户手册，共构建了八个编码突变型Taq聚合酶的重组体质粒。然后每个突变体质粒转化到DH5α大肠杆菌细胞内并继而提取其质粒DNA。突变体质的DNA序列是由ABI公司的Sanger荧光测序分析所证实。
突变体TaqFS含有G46D和F667Y氨基酸突变，TaqFS681G含有G46D，F667Y和E681G突变，TaqFS681K含有G46D，F667Y和E681K突变，TaqFS681V含有G46D，F667Y和E681V突变，TaqFS681Y所含G46D，F667Y和E681Y突变，TaqFS608V681G含有G46D，608V，F667Y和E681G突变，TaqFS599V602A605A608V681G含有G46D，I599V，E602A，L605A，A608V，F667Y和E681G突变，TaqFS742S747I含有G46D，F667Y，E742S，和M747I突变。每一突变是由一个字母/数字/字母组合的型式来表示。字母是单个字母氨基酸残基的代码。数字则表示基于SEQ ID NO：10的氨基酸序列中突变位点氨基酸残基的位置。
突变体聚合酶的表达和提取：
根据BioLabs公司的手册,突变型Taq聚合酶是经转化到T7表达型lysY/Iq大肠杆菌细胞来表达的。在Taq聚合酶的起始密码子之前，有六联组氨酸标记的残基并与Taq聚合酶共同表达。由于表达的聚合酶含有组氨酸标记的N-末端，按照Qiagen公司的Ni-NTA亲和层析方法进行纯化。从500毫升IPTG诱导的大肠杆菌LB培养物中，纯化聚合酶的典型产量是4毫克。纯化蛋白的SDS-PAGE分析在考马斯亮蓝染色后显示一个约95,000道尔顿的主带，纯度≥90％。
在-20℃下，酶存储于含有20mM Tris-HCl（在25℃下的pH为8.0），100mMKCl，0.1mM EDTA，50％甘油，0.5％Tween-20，和0.5％NP-40的存储缓冲液中直至使用。
PCR校准DNA依赖性DNA聚合酶的活性：
试验1的寡核苷酸引物是设计用来扩增人类P53基因外显子6中一个209bp的区域。每个PCR混合物含其总体积为25μl，含有50mM KCl，10mM的Tris-HCl（在25℃下的pH值8.3），1.5mM Mg2Cl，200μM每种dNTPs（dATP，dTTP，dGTP，和dCTP），0.1μM每种引物，0.1×SybrGreen I染料，0.02％Tween-20，0.02％NP-40，20ng基因组DNA，和不同单位的聚合酶。
使用了一个Bio-Rad公司的CFX96实时PCR检测系统来对扩增产物进行定量。分析模式：SybrGreen荧光，基线设置：基线减去曲线拟合，阈值循环（Ct）测定：单阈值，基线方法：SYBR自动计算，阈值设置：自动计算。
循环含有94℃变性15秒，55℃退火30秒，和72℃延伸1分钟共30个循环。在热循环前，使用一个94℃2分钟的步骤来对基因组DNA进行完全变性。
Taq聚合酶（Roche公司）被用来作为标准对于活性进行校准，在25微升的反应体积内其用量为从1U直到1/16U的2倍方式连续稀释。为了进行比较，其他的酶也以相同的方式进行稀释。以30圈内有可计量Ct值最小单位聚合酶来反映其DNA依赖性DNA聚合酶的活性。
随继温度从68℃升到95℃，每次增加值为0.5℃并持续5秒,熔点曲线分析用来确认扩增的产物。
除非另有说明，25μl的RT-PCR反应混合液中含有浓度为880mM Tris-HCl（在25℃下的pH值8.0），10mM（NH4）2SO4，1.2mM MgCl2，25μM dNTPs（dATP，dTTP，dGTP和dCTP），0.1μM实验II或III的各种寡核苷酸引物，90μM Na4PPi，0.1×SybrGreen I染料，0.02％Tween-20，0.02％NP-40，1U聚合酶，和0.25ng的总量RNA模板。
使用了一个Bio-Rad公司的CFX96实时PCR检测系统来对扩增产物进行定量。分析模式：SybrGreen荧光，基线设置：基线减去曲线拟合，阈值循环（Ct）测定：单阈值，基线方法：SYBR自动计算，阈值设置：自动计算。
循环含有96℃12秒，60℃30秒，64℃30秒，和68℃30秒共30个循环。在第一个循环前加了一个96℃2分钟的变性步骤。
随继用从68℃到95℃，增加值为0.5℃并持续5秒的熔点曲线分析来确认扩增的产物。
为了进一步确认，将产物在一个标准的3％琼脂糖凝胶上进行电泳。用溴化乙锭对凝胶进行染色并用一个电荷耦合器件(CCD)相机在UV下照相。
RNA-PAP：
除非另有说明，25μl的PAP反应混合液中含有浓度为880mM Tris-HCl（pH值8.0,25°C），10mM（NH4）2SO4，1.2mM MgCl2，25μM dNTPs（dATP，dTTP，dGTP和dCTP），0.1μM实验IV,V,或VI的各种寡核苷酸引物，90μM Na4PPi，0.1×SybrGreen I染料，0.02％Tween-20，0.02％NP-40，各种不同单位的聚合酶，和0.25ng的总量RNA模板。
使用了一个Bio-Rad公司的CFX96实时PCR检测系统来对扩增产物进行定量。分析模式：SybrGreen荧光，基线设置：基线减去曲线拟合，阈值循环（Ct）测定：单阈值，基线方法：SYBR自动计算，阈值设置：自动计算。
循环含有96℃12秒，60℃30秒，64℃30秒，和68℃30秒共30-35个循环。在第一个循环前加了一个96℃2分钟的变性步骤。
随继用从68℃到95℃，增加值为0.5℃并持续5秒的熔点曲线分析来确认扩增的产物。
为了进一步确认，将产物在一个标准的3％琼脂糖凝胶上进行电泳。用溴化乙锭对凝胶进行染色并用一个电荷耦合器件(CCD)相机在UV下照相。
实施例2
RNA依赖性DNA聚合反应的最优条件
RT-PCR的方法包括两个步骤：1）RNA模板逆转录成cDNA产物，和2）常规PCR对cDNA产物的扩增。一般认为在整个过程中逆转录是反应效率受限制的步骤。
在逆转录反应中通常使用AMV或MMLV逆转录酶以及Taq，Tth聚合酶和它们的经遗传工程改造的形式,另外每种dNTP的浓度为200μm。在RT-PCR中，该浓度的dNTPs是适合于逆转录步骤和其随后的PCR步骤。然而它严重地抑制了焦磷酸化1。因此必需探索最佳的dNTP浓度。
为了寻找最佳的反应条件，设计了II和III两个RT-PCR实验（表1）。RT-PCR实验II用寡核苷酸引物ACTB(426)25D和ACTB（488）25U扩增了一个63bp的ACTB基因mRNA区域,及实验III用引物ACTB(426)25D和ACTB（705）25U扩增了一个280bp的ACTB基因mRNA区域。每一实验包含正向引物和反向引物,而其反向引物则与RNA模板相匹配。
首先，检测在二价离子Mg2+存在下各种不同dNTP浓度的影响。在图2中25μM每种dNTP及90μM PPi，25μM每种dNTP但不含PPi，以及200μMdNTP不含PPi共三种dNTP条件下进行了测试。在25μl的反应中，四种聚合酶如Taq酶，rTth，TaqFS和Taq681G均为加一个单位。DNA依赖性DNA聚合反应中的聚合酶活性是在标准的PCR条件下根据从人类基因组DNA中扩增P53基因外显子6（PCR实验Ⅰ）的一个209-bp区域的结果而确定,并根据Taq酶（Roche公司）的活性而进行校正的。此外，一个单位的Taq DNA聚合酶的酶量则定义为在30分钟内及75℃下将10nmol dNTP结合至酸不溶性物质内（Roche公司）。在RT-PCR实验II和III中，发现每种dNTP在25μM的浓度下其RNA依赖性DNA聚合酶的活性要高于在200μM的浓度下。因此25μM，而不是200μM，的每种dNTP则被用于随后的试验。
其次，检测各种不同聚合酶量的影响。共对TaqFS，TaqFS681G，TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，TaqFS599V602A605A608V681G，和TaqFS742S747I八个聚合酶进行了测试。各酶的用量是在25μl的反应中，从1U直到1/16U的两倍方式连续稀释（表2）。在30个循环内可测出最小单位的Ct值的聚合酶则被认为反映其相应水平的RNA依赖性DNA聚合反应的活性，因为它是限制反应全过程的原因。发现八个酶均表现出不同水平的RNA依赖性DNA聚合酶活性。
另外，在熔化曲线分析中只有一个熔融峰显示了所扩增产物的Tm值（实验II的Tm=80.5-82°C以及实验III的Tm=89.5-90℃）。无模板的阴性对照组没有显现出任何可测性的Ct值。
实施例3
RNA-PAP反应
RNA-PAP的过程可以分为两个步骤。在第一步中以RNA作为起始模板，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除被阻断寡核苷酸引物上的3'末端阻断剂，然后RNA依赖性DNA聚合反应延伸3'末端已去除阻断的引物而产生DNA产物。在第二步中则以DNA产物作为模板，DNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除被阻断引物上的3'末端阻断剂，然后DNA依赖性DNA聚合反应延伸3'末端已去除阻断的引物。因此共涉及四个不同的反应，它们均为经由聚合酶所催化。
为证明原理，设计三种从RNA模板扩增的RNA-PAP实验：IV，V，和VI（表1）。每一检测均有一个正向寡核苷酸引物和一个反向引物以便测定指数性扩增。在3'末端被一个双脱氧核苷酸所阻断的反向引物与RNA模板相匹配。
对于每一检测则使用了TaqFS，TaqFS681G，TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，TaqFS599V602A605A608V681G，及TaqFS742S747I共八个聚合酶。每种酶的用量是在25μl的反应中，从1U直到1/16U的两倍方式连续稀释。
RNA-PAP实验IV用寡核苷酸引物ACTB(426)25D和ACTB（488）30U扩增了一个63bp的ACTB基因的mRNA区域（表2，图3）。在第一步中，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除3'末端被阻断引物ACTB（488）30U上的3'末端ddC双脱氧核苷酸,然后RNA依赖性DNA聚合反应延伸了已去除阻断的引物共34个碱基。
RNA-PAP实验V用寡核苷酸引物ACTB(426)25D和ACTB（572）30U扩增了一个147bp的ACTB基因的mRNA区域（表2，图3B）。在第一步中，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除3'末端被阻断引物ACTB（572）30U上的3'末端ddC双脱氧核苷酸，然后RNA依赖性DNA聚合反应延伸了已去除阻断的引物共118个碱基。
RNA-PAP实验VI用寡核苷酸引物GAPDH（50）-30D和GAPDH（110）-30U扩增了GAPDH基因的mRNA的区域（表2，图3C）。在第一步中，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除了3'末端被阻断引物GAPDH（110）-30U上的3'末端ddC双脱氧核苷酸，然后RNA依赖性DNA聚合反应延伸了已去除阻断的引物共32个碱基。
在实验IV，V和VI中证明了RNA-PAP的原理,并特别证实了1）RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和2）的串行耦合RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和RNA依赖性DNA聚合反应的可行性。同时还发现了TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，和TaqFS742S747I共5个酶表现出较高的活性，尤其是RNA依赖性DNA焦磷酸化反应。
此外在熔化曲线分析中，只有一个熔融峰显示了来自扩增产物的Tm值（实验IV的Tm=80.5-81.5°C，实验V的Tm=87.5-88°C，和实验VI的Tm=82-83°C）。无模板的阴性对照组没有显现出任何可测性的Ct值。
表2RT-PCR和RNA-PAP所需最小单位聚合酶
Figure BDA00003112191700131
a单位被定义为根据Taq酶活性所校准的DNA依赖性DNA聚合酶的活性。
b在25微升反应中，加0.25ng的总量RNA，酶的用量为从1U直到1/16U的2倍方式连续稀释。以30个循环可计量的Ct值所需要最小单位的聚合酶来记算。
C在30个循环内无Ct值显示。
RNA依赖性DNA焦磷酸化反应与RNA依赖性DNA聚合反应
RNA-PAP过程可以分为两个步骤。在以RNA为起始模板的第一步中，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和RNA依赖性DNA聚合反应是由一个聚合酶所催化的两个截然不同的反应
要显示它们的相对重要性，对RT-PCR和RNA-PAP的所需聚合酶的最小单位进行比较（表3）。在RT-PCR实验II中，RNA依赖性DNA聚合反应自3'末端寡核苷酸引物ACTB（488）25U上延伸了38个碱基。在另一方面，在RNA-PAP实验IV中，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除了3'末端被阻断引物ACTB（488）30U上的3'末端ddC双脱氧核苷酸，然后RNA依赖性DNA聚合反应将已去除阻断的引物共延伸了34个碱基。在RNA-PAP实验VI中，RNA依赖性DNA焦磷酸化反应去除了3'末端被阻断引物GAPDH（110）-30U上的3'末端ddC双脱氧核苷酸，然后RNA依赖性DNA聚合反应将已去除阻断的引物共延伸了32个碱基。
表3用于RT-PCR和RNA-PAP实验中所需的聚合酶最小单位比率
Figure BDA00003112191700141
由于扩增子的长度较小，RT-PCR实验II和RNA-PAP实验IV或VI之间中的最低所需比率表明在RNA依赖性DNA焦磷酸化反应和RNA依赖性DNA聚合反应之间的相对重要性（表3）。对RNA-PAP而言，那些具有最小单位比率为≥1的聚合酶是首选的，例如TaqFS681K。
上述RNA-PAP反应的原理如下：
本发明是一种以RNA为模板来合成所需核酸的RNA扩增方法（图1）。
该方法由下列步骤所组成：a）杂交：一个互补性3'末端被阻断的寡核苷酸引物即3'末端带有一个不能被延伸的核苷酸（3'末端阻断剂）的引物与RNA模板产生退火，b）RNA依赖性DNA焦磷酸化反应：从3'末端被阻断的引物上去除其3'末端阻断剂，和c）RNA依赖性DNA聚合反应：将3'末端已去除阻断的引物进行延伸以合成所需核酸（图1）。
该方法生成的单链互补性DNA（cDNA）或RNA/cDNA的双链体。在步骤c之后该cDNA产物可以被进一步扩增，如用PAP或PCR的方法。
该方法可以使用一种聚合酶，其既可催化RNA依赖性DNA焦磷酸化反应而又可催化RNA依赖性DNA聚合反应。
3'末端阻断剂包括但不限定于3'末端双脱氧核苷酸。也可以使用其他3'末端阻断剂如无环核苷酸其用2-羟基乙氧基甲基集团替代了2’-脱氧呋喃核糖。
一生物标本中可能含有RNA分子，RNA可以是异质性的,而其中目标RNA只占一小部分。
上述参照具体实施方式对该用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中RNA或DNA模板的方法进行的详细描述，是说明性的而不是限定性的，可按照所限定范围列举出若干个实施例，因此在不脱离本发明总体构思下的变化和修改，应属本发明的保护范围之内。
Figure IDA00003112192600011
Figure IDA00003112192600041
Figure IDA00003112192600051

Claims (12)

1.用于扩增核糖核酸的方法，其特征在于：是以RNA或DNA为模板合成核酸的方法，包括以下具体步骤：
（a）一个3'末端被阻断的寡核苷酸引物即其3'末端有一个不可延伸的核苷酸,并与其互补的RNA模板或DNA模板产生退火；
（b）RNA依赖性DNA焦磷酸化反应或DNA依赖性DNA焦磷酸化反应以去除3'末端被阻断引物的阻断剂,从而使其成为3'末端去除阻断的引物；
（c）RNA依赖性DNA聚合反应或DNA依赖性DNA聚合反应来延伸其3'末端已去除阻断的引物。
2.根据权利要求1所述的用于扩增核糖核酸的方法，其特征在于：在反应中更进一步加入第二个寡核苷酸引物，即：在步骤（c）后，
（d）该第二引物可与步骤（c）的核酸产物产生退火；
（e）DNA依赖性DNA聚合反应来延伸该第二引物从而可以达到一个指数性的扩增。
3.根据权利要求1所述的用于扩增核糖核酸的方法，其特征在于：在反应中更进一步包括第二个3'末端被阻断的寡核苷酸引物，即：在步骤（c）后，
（f）第二3'末端被阻断的引物与步骤（c）的核酸产物产生退火；
（g）DNA依赖性DNA焦磷酸化反应则从被阻断引物上去除3'末端阻断剂,产生一个3'末端去除阻断的引物；
（h）DNA依赖性DNA聚合反应对3'末端已去除阻断的引物进行延伸。
4.根据权利要求1-3之一所述的用于扩增核糖核酸的方法，其特征在于：所述步骤（b）和（c），（d），（f）、（g）和（h）由聚合酶催化。
5.根据权利要求4所述的用于扩增核糖核酸的方法，其特征在于：步骤（b），（c），（d），（f），（g）和（h）都是在一个反应试管中由同一聚合酶所催化的。
6.根据权利要求4所述的用于扩增核糖核酸的方法，其特征在于：所述聚合酶是经过遗传工程优化的DNA聚合酶，根据所述SEQ ID NO：10，可在与野生型Taq聚合酶相对应的由TaqFS，TaqFS681G，TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，TaqFS599V602A605A608V681G，和TaqFS742S747I所构成的一组突变体酶中进行选择；或
根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的599V，602A，605A，608V，667Y，681G，681K，681V，681R，742S，和747I位点氨基酸突变的一组突变体中选择；或
根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的其氨基酸突变点位于599，602，605，608，667，681，742，和747的一组突变体中选择。
7.分析权利要求1或3-6之一所述方法中RNA模板或DNA模板的方法，其特征在于：步骤包括：
（a）RNA模板或DNA模板与其互补的寡核苷酸引物发生退火；
（b）经由RNA依赖性DNA焦磷酸化反应或DNA依赖性DNA焦磷酸化反应从引物上去除其3'末端核苷酸。
8.根据权利要求7所述的分析方法，其特征在于：所述引物在其3'末端带有一个不可延伸的核苷酸。
9.根据权利要求7所述的分析方法，其特征在于：所述步骤（b）后进一步包括：（c）延伸3'末端非延伸性引物。
10.根据权利要求7所述的分析方法，其特征在于：所述RNA依赖性DNA焦磷酸化反应的反应混合物包括有：（a）一种RNA模板，（b）一个互补性寡核苷酸引物，以及（c）一种核酸聚合酶；所述DNA依赖性DNA焦磷酸化反应的反应混合物包括有：（a’）一种DNA模板，（b’）一个互补性寡核苷酸引物，以及（c’）一种核酸聚合酶。
11.根据权利要求10所述的分析方法，其特征在于：所述反应混合物中的核酸聚合酶是I型DNA聚合酶。
12.根据权利要求10或11所述的分析方法，其特征在于：所述反应混合物中的核酸聚合酶是经过遗传工程优化的DNA聚合酶，根据所述SEQ IDNO：10，可在与野生型Taq聚合酶相对应的由TaqFS，TaqFS681G，TaqFS681K，TaqFS681V，TaqFS681Y，TaqFS608V681G，TaqFS599V602A605A608V681G，和TaqFS742S747I所构成的一组突变体酶中进行选择；或
根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的599V，602A，605A，608V，667Y，681G，681K，681V，681R，742S，和747I位点氨基酸突变的一组突变体中选择；或
根据所述SEQ ID NO：10,经遗传工程优化的突变体聚合酶可在与野生型Taq聚合酶相对应的其氨基酸突变点位于599，602，605，608，667，681，742，和747的一组突变体中选择。
CN201310150085.7A 2012-11-08 2013-04-26 用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中rna或dna模板的方法 Active CN103266103B (zh)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201261724292P 2012-11-08 2012-11-08
US61/724,292 2012-11-08

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103266103A true CN103266103A (zh) 2013-08-28
CN103266103B CN103266103B (zh) 2016-08-31

Family

ID=49009765

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310150085.7A Active CN103266103B (zh) 2012-11-08 2013-04-26 用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中rna或dna模板的方法

Country Status (2)

Country Link
US (2) US9133491B2 (zh)
CN (1) CN103266103B (zh)

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014062848A1 (en) * 2012-10-16 2014-04-24 Dna Polymerase Technology, Inc. Inhibition-resistant polymerases
CN104894105A (zh) * 2014-12-04 2015-09-09 丁少峰 用于制备pap固体反应成分的冷冻干燥技术及由该技术获得的固体集成组合物与应用
CN105112514A (zh) * 2014-08-04 2015-12-02 丁少峰 Gnas 基因突变检测试剂
CN106754812A (zh) * 2016-12-21 2017-05-31 南京诺唯赞生物科技有限公司 一种可提高加A效率的突变型Taq酶及其制备方法和应用
CN107208074A (zh) * 2014-12-16 2017-09-26 生命技术公司 聚合酶组合物和制造与使用其的方法
WO2019062614A1 (en) * 2017-09-26 2019-04-04 Phocus Technology ( Shanghai) Co. Ltd METHOD FOR AMPLIFYING TARGET NUCLEIC ACID
CN110592192A (zh) * 2018-06-12 2019-12-20 丁少峰 延迟性焦磷酸化激活性聚合反应
US11091745B2 (en) 2015-05-12 2021-08-17 Dna Polymerase Technology, Inc. Mutant polymerases and uses thereof
WO2023216030A1 (zh) * 2022-05-07 2023-11-16 深圳华大智造科技股份有限公司 一种占位引物和去除方法

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11921049B2 (en) * 2018-11-09 2024-03-05 Shaofeng Ding Pyrophosphorolysis activated fluorescence to measure PAP amplification of nucleic acid
CN113490751A (zh) * 2019-01-22 2021-10-08 使命生物公司 核酸检测和引物设计方法
EP3973074A4 (en) 2019-05-22 2023-09-06 Mission Bio, Inc. METHOD AND DEVICE FOR SIMULTANEOUS TARGETED SEQUENCING OF DNA, RNA AND PROTEIN
US11667954B2 (en) 2019-07-01 2023-06-06 Mission Bio, Inc. Method and apparatus to normalize quantitative readouts in single-cell experiments

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2292787A1 (en) * 2002-05-10 2011-03-09 City of Hope Pyrophosphorolysis activated polymerization (PAP)

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6395524B2 (en) * 1996-11-27 2002-05-28 University Of Washington Thermostable polymerases having altered fidelity and method of identifying and using same
CA2283789C (en) * 1997-03-12 2005-07-05 The Perkin-Elmer Corporation Dna polymerases having improved labeled nucleotide incorporation properties
US7033763B2 (en) * 2000-02-23 2006-04-25 City Of Hope Pyrophosphorolysis activated polymerization (PAP)
US20040248102A1 (en) * 2003-06-03 2004-12-09 Diane Ilsley-Tyree Methods and compositions for performing template dependent nucleic acid primer extension reactions that produce a reduced complexity product
US7928207B2 (en) * 2004-06-28 2011-04-19 Roche Molecular Systems, Inc Synthesis and compositions of nucleic acids comprising 2′-terminator nucleotides
WO2010062779A2 (en) * 2008-11-03 2010-06-03 Kapabiosystems Modified dna polymerases

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2292787A1 (en) * 2002-05-10 2011-03-09 City of Hope Pyrophosphorolysis activated polymerization (PAP)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GARFORTH SCOTT J. 等: "Utilization of a deoxynucleoside diphosphate substrate by HIV reverse transcriptase", 《PLOS ONE》 *

Cited By (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014062848A1 (en) * 2012-10-16 2014-04-24 Dna Polymerase Technology, Inc. Inhibition-resistant polymerases
US10683537B2 (en) 2012-10-16 2020-06-16 Dna Polymerase Technology, Inc. Inhibition-resistant polymerases
CN105112514B (zh) * 2014-08-04 2019-04-19 天津精耐特基因生物技术有限公司 Gnas 基因突变检测试剂
CN105112514A (zh) * 2014-08-04 2015-12-02 丁少峰 Gnas 基因突变检测试剂
CN104894105A (zh) * 2014-12-04 2015-09-09 丁少峰 用于制备pap固体反应成分的冷冻干燥技术及由该技术获得的固体集成组合物与应用
US10745747B2 (en) 2014-12-16 2020-08-18 Life Technologies Corporation Polymerase compositions and methods of making and using same
US11319584B2 (en) 2014-12-16 2022-05-03 Life Technologies Corporation Polymerase compositions and methods of making and using same
CN107208074A (zh) * 2014-12-16 2017-09-26 生命技术公司 聚合酶组合物和制造与使用其的方法
EP3234115B1 (en) * 2014-12-16 2020-07-22 Life Technologies Corporation Polymerase compositions and methods of making and using same
US11091745B2 (en) 2015-05-12 2021-08-17 Dna Polymerase Technology, Inc. Mutant polymerases and uses thereof
US11814655B2 (en) 2015-05-12 2023-11-14 Dna Polymerase Technology, Inc. Mutant polymerases and uses thereof
CN106754812B (zh) * 2016-12-21 2019-03-19 南京诺唯赞生物科技有限公司 一种可提高加A效率的突变型Taq酶及其制备方法和应用
CN106754812A (zh) * 2016-12-21 2017-05-31 南京诺唯赞生物科技有限公司 一种可提高加A效率的突变型Taq酶及其制备方法和应用
US11655497B2 (en) 2017-09-26 2023-05-23 Ningbo Shining Biotechnology Co., Ltd Method of amplifying a target nucleic acid
WO2019062614A1 (en) * 2017-09-26 2019-04-04 Phocus Technology ( Shanghai) Co. Ltd METHOD FOR AMPLIFYING TARGET NUCLEIC ACID
CN110603326A (zh) * 2017-09-26 2019-12-20 风可生物科技(上海)有限公司 扩增靶核酸的方法
CN110603326B (zh) * 2017-09-26 2024-03-08 宁波尚宁生物技术有限公司 扩增靶核酸的方法
CN110592192A (zh) * 2018-06-12 2019-12-20 丁少峰 延迟性焦磷酸化激活性聚合反应
WO2023216030A1 (zh) * 2022-05-07 2023-11-16 深圳华大智造科技股份有限公司 一种占位引物和去除方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN103266103B (zh) 2016-08-31
US20140186840A1 (en) 2014-07-03
US20150299678A1 (en) 2015-10-22
US9133491B2 (en) 2015-09-15
US9926543B2 (en) 2018-03-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103266103A (zh) 用于扩增核糖核酸的方法及分析该方法中rna或dna模板的方法
US11466315B2 (en) Fast PCR for STR genotyping
JP6587544B2 (ja) 熱安定なＴｔｈＰｒｉｍＰｏｌを用いた増幅及び配列決定方法
EP1446508B1 (en) A method of reducing non-specific amplification in pcr
JP5938348B2 (ja) 反応特異性の増加のための非標準塩基を含む増幅プライマー
TWI688656B (zh) 具有增加的基因突變特異性的ｄｎａ聚合酶活性增強用ｐｃｒ緩衝液組合物
US20240076633A1 (en) Pcr buffer composition for increasing activity of dna polymerase with increased gene mutation specificity
US20120115145A1 (en) Strand displacement activity of modified polymerases and uses thereof
US20230063705A1 (en) Methods and kits for amplification and detection of nucleic acids
EP3740591A1 (en) Mutant dna polymerases
KR102106040B1 (ko) 자가혈당측정기를 활용한 표적핵산 검출방법
KR102030245B1 (ko) 치쿤군야 바이러스 검출용 올리고뉴클레오티드 세트 및 이의 용도
CN111334562A (zh) 一种含有修饰引物的核酸扩增方法和试剂盒
US20240117449A1 (en) Detecting Listeria Monocytogenes with Helicase-Dependent Amplification Assay
US20240117448A1 (en) Detecting cronobacter with helicase-dependent amplification assay
JP6593984B2 (ja) Ｒｎａ増幅法およびｈｉｖ−１感染診断方法
CN113528624A (zh) 扩增和检测核酸的方法及试剂盒

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C41 Transfer of patent application or patent right or utility model
TA01 Transfer of patent application right

Effective date of registration: 20160708

Address after: 300000 Tianjin city Beichen district north of the village of Tianjin glaucoma medicine and medical equipment Industrial Park

Applicant after: Tianjin Kinnet Gene Biotechnology Co., Ltd.

Address before: The highlands of California Ziniya Street No. 1310

Applicant before: Ding Shaofeng

Applicant before: Liu Qiang

C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant