CN103224945B

CN103224945B - 一种来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列及其克隆方法

Info

Publication number: CN103224945B
Application number: CN201310176006.XA
Authority: CN
Inventors: 李晚忱; 雍太明; 付凤玲; 刘艳萍; 于好强; 邓龙群; 佘跃辉; 周树峰
Original assignee: Sichuan Agricultural University
Current assignee: Sichuan Agricultural University
Priority date: 2012-05-15
Filing date: 2013-05-13
Publication date: 2015-02-18
Anticipated expiration: 2033-05-13
Also published as: CN102660563A; CN103224945A

Abstract

本发明公开了一种来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列，该基因具有如SEQ ID NO.1所述的核苷酸序列。上述基因编码的钼辅助因子硫酸化酶具有如SEQ ID NO.2所述的氨基酸序列。此核苷酸序列是新的基因序列。本发明还公开了一种上述来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶基因序列的克隆方法。

Description

一种来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列及其克隆方法

技术领域

本发明涉及一种来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因及其对应编码的氨基酸，此外本发明也涉及到该基因的克隆方法。

背景技术

矮沙冬青(Ammopiptanthus nanus Cheng f.)又名新疆沙冬青、小沙冬青、矮黄花木，属于豆科(Leguminosae)、黄华族(Thermopsideae)、沙冬青属(Ammopiptanthus Cheng f.)，为第三纪孑遗植物，被列为国家一级保护植物。主要分布在海拔1800～2800m的干旱荒山和石质戈壁类型的内蒙古西部和宁夏、甘肃、矮的部分沙漠、荒漠地带，是该区唯一的常绿阔叶灌木，分布区内气候干旱，降水量远小于蒸发量，年平均气温6.8℃，气温变化极值可达70℃以上。沙冬青具有很强的抗逆性，在相对瘠薄的土壤条件下仍能在高达70℃左右的地表沙温和低至零下20℃ ~30℃的环境中正常生长发育。有很强的抗寒、抗旱和耐盐碱等抗逆特性。国内外关于沙冬青属植物的报道包括生理生化特性的研究、抗寒、抗旱机理及相关的超微结构；染色体数目及核型、减数分裂期染色体行为、开花物候、和引种栽培试验等。这些研究都证实了沙冬青抗旱耐冻的特性，因此它是珍贵的抗旱耐冻遗传资源。

钼辅助因子硫酸化酶是脱落酸生物合成过程中的关建酶。被硫酸化后的钼辅助因子是植物脱落酸生物合成途径中参与最后一步反应的脱落酸醛氧化酶所必需的辅助因子，因此能够调节脱落酸介导的植物寒冷和渗透逆境反应的相关基因表达。

矮沙冬青作为优秀的抗逆植物，克隆以上抗逆基因对玉米及其他作物的基础和应用研究具有重要意义。

发明内容

本发明的主要目的就是针对荒漠抗逆植物矮沙冬青的抗逆基因开发研究的局限性，提供一种来源于植物矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列，以期应用于其它转基因作物中使之具有相应的优良抗逆性能。

本发明的另一个目的是提供一种上述基因序列的克隆方法。

为了实现上述发明目的，本发明采用的技术方案如下：

一种来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列，该序列具有如SEQ ID NO.1所述的核苷酸序列以及该基因对应的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所述。

上述核苷酸序列，可通过包括下述步骤的方法，从植物矮沙冬青叶片中提取总RNA、设计引物、进行PCR扩增、测序等克隆得到：

（1）总RNA的提取和纯化：

可采用各种通用的RNA提取方法和纯化方法，从植物矮沙冬青叶片中提取得到纯化的矮沙冬青叶片总RNA；常用的RNA提取方法很多，如试剂盒法、热硼酸法、异硫氰酸胍法、苯酚法、十二烷基硫磺酸钠法、十六烷基三甲基溴化铵法、及各种改进方法等，均可用于矮沙冬青叶片总RNA的提取；本发明中可优选试剂盒法（北京天恩泽基因科技有限公司的柱式植物RNA_OUT2.0提取试剂盒，CAT#90404-50），进行矮沙冬青叶片总RNA提取。

纯化主要是为了去除总RNA中的DNA污染，获得纯化的矮沙冬青叶片总RNA，以满足后续对目的基因的表达进行定量检测等需要。常用的RNA纯化方法包括：DNA酶消化法(简称 D法)、酸酚变性法(简称S法)、EDTA法(简称 E法)等；本发明中可优选DNA酶（北京天恩泽基因科技有限公司的柱式植物RNA_OUT2.0提取试剂盒，CAT#90404-50）消化法。

（2）中间片段的克隆：

A、中间片段cDNA第一链的合成

以上述步骤（1）纯化的矮沙冬青叶片总RNA作为模板，使用3´ RACE Adaptor（可优选TaKaRa公司3´-Full RACE Core Set Ver.2.0（Code：D314）试剂盒）进行反转录，得到的cDNA第一链，作为下述步骤B中PCR扩增的模板。

B、PCR扩增

以前述步骤A所得中间片段的cDNA第一链作为模板，利用下述兼并上游引物（jf1）和兼并下游引物（jx1），进行PCR扩增。

钼辅助因子硫酸化酶基因中间片段扩并引物为：

jf1: 5´- GTCGGAGAGRCKTTTCCRTGG -3´，jx1: 5´- TGCACAWGCDCCWGGATTR -3´；

扩增得到矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶基因cDNA中间片段，通过克隆测序，得到中间片段序列。

本步骤中，扩增体系可优选为：

TaqPlusPCR Master Mix 20 μL ，cDNA模板 2 μL ，

2×引物（jx1/jf1） 1 μL ，ddH₂O 16 μL 。

扩增程序可优选为：

95℃，3min；95℃，30 s，60 ℃，30 s，72℃，50 s（35个循环）；72℃，8 min；4℃保温。

（3）3´端的克隆：

C、3’-outer PCR扩增

根据上述步骤（2）得到的中间片段序列，设计并合成特异性上游引物GSP1-3´-outer，以前述步骤（2）A所得的cDNA第一链为模板，利用特异性上游引物GSP1-3´-outer和3´端下游引物3´-RACE outer（可优选TaKaRa公司3´-Full RACE Core Set Ver.2.0（Code：D314）试剂盒），进行3´端outer PCR扩增：

钼辅助因子硫酸化酶基因3’端的特异性上游outer引物为：

GSP1-3´-outer: 5´- GCATGGCGATGGATCTAGCATGTGCAT -3´；

3´端下游引物3´-RACE outer为：

3´-RACE outer: 5´- TACCGTCGTTCCACTAGTGATTT -3´；

扩增得到的产物为cDNA 3´端。

本步骤中，扩增体系可优选为：

1×cDNA Dilution Buffer II 8 μL ，cDNA模板 2 μL ，

2×引物（GSP1-3’-outer/3’-RACE-outer） 1 μL ，

10×LA PCR Buffer II（Mg²⁺ Free） 4 μL，MgCl₂（25 mM） 3 μL，

TaKaRa LA Taq（5 U/μl） 0.25 μL，ddH₂O 28.75 μL 。

扩增程序可优选为：

95℃，3 min；95℃，30 s；

55℃，30 s；72℃，1 min 30 s（35个循环）；

72℃，8 min；4℃保温。

D、3’-inner PCR扩增

根据前述步骤（2）所得中间片段端序列，设计并合成特异性上游引物GSP1-3´-inner，以前述步骤C所得3´端的outer PCR产物模板，利用特异性上游引物GSP1-3´-inner和3´端下游引物3´-RACE inner（可优选TaKaRa公司3´-Full RACE Core Set Ver.2.0（Code：D314）试剂盒），进行3´端inner PCR扩增：

钼辅助因子硫酸化酶基因3’端的特异性上游inner引物为：

GSP1-3´-inner: 5´- GGCTCTTGGTATGGATACCGTGAAGTGG -3´；

3´端下游引物3´-RACE inner为：

3´-RACE inner: 5´- CGCGGATCCTCCACTAGTGATTTCACTATAGG -3´；

扩增得到的产物为cDNA 3´端inner PCR产物，通过克隆测序，得到3´端完整序列。

本步骤中，扩增体系可优选为：

dNTP Mixture（2.5 mM each） 8 μL ，3’-outer PCR 产物 2 μL ，

2×引物（GSP1-3’-inner/3’-RACE-inner） 1 μL ，10×LAPCR Buffer II（Mg²⁺ Free） 4 μL，

MgCl₂（25 mM） 3 μL，TaKaRa LA Taq（5 U/μl） 0.25μL，ddH₂O 28.75 μL 。

扩增程序可优选为：

95℃，3 min；95℃，30 s；

55℃，30 s；72℃，1 min 30 s（35个循环）；

72℃，8 min；4℃保温。

（4）5´端的克隆：

E、合成5´端的cDNA第一链：

以上述步骤（1）纯化的矮沙冬青叶片总RNA作为模板，经过对RNA进行预处理（可优选Ambion公司FirstChoice® RLM-RACE Kit，SKU #：AM1700试剂盒），加入5´ RACE Adapter进行反转录，通过所述预处理实现对非完整mRNA的脱磷酸化和对完整mRNA的脱帽处理，排除非完整mRNA干扰，使得完整的mRNA能够高效地与5´ RACE Adapter连接。

所述5´ RACE Adapter为：

5´ RACE Adapter：5´-GCUGAUGGCGAUGAAUGAACACUGCGUUUGCUGGCUUUGAUGAAA -3´；

合成得到反转录产物5´端的cDNA第一链。

F、5’-outer PCR扩增

根据上述步骤（2）得到的中间片段序列，设计并合成特异性下游引物GSP1-5´-outer，以前述步骤E所得反转录产物的cDNA第一链为模板，利用特异性下游引物GSP1-5´-outer和5´端上游引物5´-RACE outer（可优选FirstChoice® RLM-RACE Kit试剂盒），进行5´端outer PCR扩增：

钼辅助因子硫酸化酶基因5’端的特异性下游outer引物为：

GSP1-5´-outer: 5´- TTCACCAAGTCAAGGCCAAATCTC -3´；

5´端上游引物5´-RACE outer为：

5´-RACE outer: 5´- GCTGATGGCGATGAATGAACACTG -3´；

扩增得到的产物为cDNA 5´端。

本步骤中，扩增体系可优选为：

cDNA模板 1 μL，10X PCR Buffer 5 μL，dNTP Mix4 μL，

2×引物（GSP1-5´-outer/5´-RACE outer） 2 μL，

ThermostabLe DNA poLymerase† (0.25 μL of 5U/μL)1.25 μL，ddH₂O 34.75 μL 。

扩增程序可优选为：

95℃，3 min；

95℃，30 s；60℃，30 s；72℃，1 min/kbp（35个循环）；

72℃，8 min；12℃保温。

G、5’-inner PCR扩增

根据前述步骤（2）所得中间片段序列，设计并合成特异性下游引物GSP1-5´-inner，以前述步骤F所得5´端的outer PCR产物模板，利用特异性下游引物GSP1-5´-inner和5´端上游引物5´-RACE inner（可优选FirstChoice® RLM-RACE Kit试剂盒），进行5´端innerPCR扩增：

钼辅助因子硫酸化酶基因5’端的特异性下游inner引物为：

GSP1-5´-inner: 5´- CATCACCTGTTGGCTCTCCCTC -3´；

5´端上游引物5´-RACE inner为：

5´-RACE inner: 5´- CGCGGATCCGAACACTGCGTTTGCTGGCTTTGATG-3´；

扩增得到的产物为cDNA 5´端inner PCR产物，通过克隆测序，得到5´端完整序列。

本步骤中，扩增体系可优选为：

5’-outer PCR 产物 1 μL，10X PCR Buffer 5 μL，dNTP Mix 4 μL，

2×引物（GSP1-5´-inner/5´-RACE inner） 2 μL，

扩增程序可优选为：

95℃，3 min；

95℃，30 s；60℃，30 s；72℃，1 min/kbp （35个循环）；

72℃，8 min，12℃保温。

（5）全长序列拼接和基因分析：

将上述步骤（2）所得中间片段、步骤（3）所得3´端inner PCR扩增序列和述步骤（4）所得5´端inner PCR扩增序列用DNAman软件进行完整序列的拼接，然后通过NCBI里ORF finder工具分析开放阅读框，即完整的基因序列。

（6）钼辅助因子硫酸化酶基因的克隆：

将上述步骤（5）所分析的完整基因序列作为模板，设计上游引物ORF1-S和下游引物ORF1-A，并进行PCR扩增：

钼辅助因子硫酸化酶基因扩增引物为：

ORF1-S: 5´- ATGGACGACGCCAAAAAAGAG -3´，

ORF1-A: 5´- TTAAATTGCACAATAGCATGAACTT-3´；

扩增得到的产物为完整的矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶基因，通过克隆测序，即得其基因序列。

本步骤中，扩增体系可优选为：

dNTP Mixture（2.5 mM each） 4 μL ，2×引物（ORF1-S/ORF1-A） 1 μL ，

cDNA模板 1 μL ， 5×PrimeSTAR Buffer（Mg²⁺ plus） 10 μL ，

PrimeSTAR HS DNA PLoymerase（2. 5 U/μL） 0.5 μL，ddH₂O 32.5 μL 。

钼辅助因子硫酸化酶基因扩增程序可优选为：

98℃，30 s；61℃，30 s；72℃，2 min 30 s （35个循环）；

与现有技术相比，本发明的有益效果是：

本发明是一种来源于植物矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列是新的基因序列，使人们对这些基因的研究对象从细菌及其他植物体进一步扩展到矮沙冬青。

并且，根据在矮沙冬青植物的这些基因所具备的优良的抗旱、耐盐等性能可以预料：如果将其通过转基因技术导入玉米等其他植物的基因中，将可培育出具有相应的优良的抗旱、耐盐等性能的植物新品种。

附图说明

图1为AnMCSU基因电泳检测结果图，

图2为AnMCSU基因中间片段电泳检测结果图，

图3为AnMCSU基因3´端inner PCR电泳检测结果图，

图4为AnMCSU基因5´端inner PCR电泳检测结果图，

图5为AnMCSU基因编码的氨基酸与其他物种同源基因编码的氨基酸的进化树分析图，

图6为AnMCSU基因编码的氨基酸所具有的保守结构域分析图，

图7为AnMCSU基因转化拟南芥在盐胁迫下的对照试验图。

具体实施方式

下面结合具体实施方式对本发明的上述发明内容作进一步的详细描述。

但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于下述实施例。在不脱离本发明上述技术思想情况下，根据本领域普通技术知识和惯用手段，做出各种替换和变更，均应包括在本发明的范围内。

在下述各实施例中，将矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶基因简称为AnMCSU。通过各实施例，最终得到来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶基因核苷酸序列（如SEQ ID NO.1所述）及其对应的氨基酸序列（如SEQ ID NO.2所述）。

实施例1

本实施例为矮沙冬青叶片总RNA的提取和纯化，总RNA提取使用北京天恩泽基因科技有限公司的柱式植物RNAOUT_2.0提取试剂盒，CAT#90404-50，包括下述步骤：

（1）估算组织细胞的用量。每次微量提取一般需要100-200 mg植物叶片或50-100 mg植物种子或200-500 mg植物果实。

（2）先将新鲜植物组织剪切成小块(保存在RNALOCKER中的植物组织需用纸吸去RNALOCKER液体后再剪切成小块)，放入10-15 mL塑料离心管中，加入1 mL 65℃预热的溶液A（用前需要摇晃混匀），然后用匀浆器匀浆5-20秒。匀浆时会产生泡沫，但不影响提取效果。也可以使用液氮砚磨法破碎植物组织，砚磨完后加入1 mL溶液A，但效果比较差，因为研钵本质是二氧化硅，在溶液A存在时会吸附RNA。

（3）将匀浆物或砚磨物转移至干净的1.5 mL塑料离心管中(可以不必转移非液体的细胞碎片)。有的植物组织（比如果实）含有大量水份，匀浆液会多于1 mL，转移时也只取1 mL。

（4）在离心管中加入0.3 mL的溶液B和0.2 mL自备氯仿，在振荡器上振荡30秒混匀，此时溶液呈均匀的乳浊状。振荡器振荡时必须使管底溶液震荡起来。

（5）室温12000 rpm离心3-5分钟，两相间有约5mm厚的细胞破碎物。

（6）将上清液(约0.6 mL)转移到另一干净的1.5 mL塑料离心管中，下层有机相和中间层含有DNA、蛋白质和其他杂质，避免触及或吸取。最好留下100 uL上清液不取。

（7）加入等体积的溶液C，充分颠倒混匀。

（8）将一半溶液转移到离心吸附柱(60911B)中，12000 rpm室温离心半分钟，弃穿透液。注意不要跟用于RNA提取的吸附柱（60911D）混用。

（9）将剩下的一半溶液转移到同一离心吸附柱中， 12000 rpm室温离心半分钟，弃穿透液。

（10）将0.7 mL 通用洗柱液加入到离心吸附柱中，12000 rpm室温离心10-30秒，弃穿透液。

（11）12000 rpm室温离心10秒以便去除残留液体。

（12）将10 uL（10 U）的RNase-free DNase加入到50 uL37℃预热的DNA膜反应液中，吹打混匀配制成DNase工作液。

（13）将DNase工作液在37℃预热1分钟，然后全部加入到离心吸附柱中，室温放置5分钟。注意：5分钟一般足够降解大多数情况下的DNA污染。如果DNA没有彻底降解（可能由于样品中残留的杂质抑制了DNase的活性），此步的保温时间可以适当延长到10分钟或15分钟。

（14）直接在离心吸附柱中加入0.7 mL通用洗柱液，盖上盖后颠倒数次混匀。

（15）12000 rpm室温离心半分钟，弃穿透液。

（16）再加0.3 mL通用洗柱液到离心吸附柱，12000 rpm室温离心半分钟，弃穿透液。

（17）12000 rpm室温离心半分钟。此步十分重要，否则残留乙醇会影响RNA的使用。

（18）将离心吸附柱转移到RNase-free收集管中，加入30-50 uL RNA洗脱液，室温放置1-2分钟。

（19）12000 rpm室温离心半分钟，离心管中溶液即为RNA样品。本产品提供的离心吸附柱吸附力较强，一次洗脱不能全部将膜上RNA洗下，如有必要，可以再加入30-50 uL RNA洗脱液一次。

实施例2

本实施例为矮沙冬青总RNA的反转录，其反转录得到的cDNA第一链用于基因中间片段和3’端扩增的模板，按照Takara公司的3´-Full RACE Core Set Ver.2.0，Code：D314试剂盒说明书进行cDNA第一链合成。

实施例3

本实施例为AnMCSU基因中间片段的克隆，方法如下：

以拟南芥ABA3/LOS5（NM_101519.2）为询问序列，参考豆科植物中与其序列其保守性较高的大豆（XM_003534387.1）序列设计一对兼并引物jf1/jx1：

jf1: 5´- GTCGGAGAGRCKTTTCCRTGG -3´；

jx1: 5´- TGCACAWGCDCCWGGATTR -3´。

以实施例2的cDNA第一链为模板，以设计的兼并引物jf1和jx1进行AnMCSU基因cDNA中间片段的扩增。

扩增体系为：

TaqPlusPCR Master Mix 20 μL，cDNA模板 2 μL，

2×引物（jx1/jf1） 1 μL，ddH₂O 16 μL

扩增程序为：95℃，3min；

95℃，30 s，60℃，30 s，72℃，50 s（35个循环）；

72℃，8 min；4℃保温。

取所得扩增产物20 μL经1%非变性琼脂糖凝胶100 V电泳30 min，GoLdenView染色后紫外线检测扩增片段，结果如图2所示。

扩增得到的产物为AnMCSU基因cDNA中间片段，通过包括下述步骤的方法克隆测序，得到的中间片段序列如SEQ ID NO.3所述：

①目的片段的回收与纯化：

将扩增出来的特异条带用干净刀片在紫外光下快而准确的从琼脂糖中挖出，置于1.5 mL离心管中，用凝胶回收试剂盒（OMEGA公司的E.Z.N.A.TM GeL Extraction Kit）回收胶中的DNA片段；

②连接反应：

将回收的DNA片段克隆于TaKaRa公司的pMD19-T载体中。连接反应采用连接试剂盒（Takara公司），扩增体系总体积10 μL，16℃连接过夜；

②感受态细胞的制备：

Ⅰ、从LB平板上挑取新活化的E. coLi DH5α单菌落，接种于3-5mL LB液体培养基中，37℃，225 r/min振荡培养12 h左右，直至对数生长后期。将该菌悬液以1:100-1:50的比例接种于100 mL LB液体培养基中，37℃振荡培养2-3 h至OD600＝0.35-0.5左右；

Ⅱ、将培养液转入离心管，冰上放置10 min，然后于4℃下3000 r/min离心10 min；

Ⅲ、弃去上清，用预冷的0.05 moL/L的CaCL₂ 溶液10 mL轻轻悬浮细胞，冰上放置15-30 min后，4℃下3000 r/min离心10 min；

Ⅳ、弃去上清，加入4 mL预冷含15%甘油的0.05 moL/L的CaCL₂ 溶液，轻轻悬浮细胞，冰上放置几分钟，即成感受态细胞悬液；

Ⅴ、感受态细胞分装成100 μL的小份，贮存于-70℃可保存半年；

④质粒DNA的转化：

Ⅰ、从-80℃冰箱中取出一管大肠杆菌感受态细胞DH5α，置于冰上融化；

Ⅱ、在无菌条件下加入10 μL连接反应液，轻轻震摇混匀后，在冰上放置30 min；

Ⅲ、42℃水浴热击90 s，不要摇动，之后迅速放入冰浴冷却2-3 min；

Ⅳ、加入890 μL无Amp的LB液体培养基，混匀后，37℃、150 r/min摇床振摇培养，温育1 h；

Ⅴ、取100 μL已转化的菌液涂于一个LB/Amp的培养平板上，正面朝上放置30 min，待菌液完全被培养基吸收后，用封口膜封住，然后倒转培养皿，37℃避光培养12-16 h；随后筛选阳性菌落；

⑤重组菌落的鉴定与保存：

从外观上看，一般白色且圆的菌落为阳性，通过菌液PCR进一步鉴定：

Ⅰ、在过夜培养的平板上用灭菌的小枪头挑取几个白色菌落，分别点种于含0.1 g/L Amp的LB液体培养基的1.5 mL离心管中，37℃，150 r/min振摇培养4-6h；

Ⅱ、取1 μL菌悬液作为模板，用引物jf1/jx1进行PCR扩增，PCR反应条件中裂解时间延长至5min，用1% 的非变性琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物。如果产物为目的条带时，此菌落为阳性克隆，否则为阴性。同时设不加菌悬液的阴性对照；

Ⅲ、取已经鉴定的阳性克隆的菌落悬浮液750 μL，加入250 μL的灭菌甘油，混匀后，用液氮速冻，置于-80℃冰箱中保存备用；

Ⅳ、最后送英俊生物技术公司测序，所得序列在NCBI的BLastn 进行比对分析，验证克隆片段是否正确。

实施例4

本实施例为AnMCSU基因3´端的克隆，方法如下：

（1）3’-outer PCR扩增：

根据实施例3得到的中间片段序列，设计并合成特异性上游引物GSP1-3´-outer，以实施例2所得反转录产物的cDNA第一链为模板，利用特异性上游引物GSP1-3´-outer和TaKaRa公司3´-Full RACE CoreSet Ver.2.0（Code：D314）试剂盒中3´端下游引物3´-RACE outer，进行3´端outer PCR扩增：

GSP1-3´-outer: 5´- GCATGGCGATGGATCTAGCATGTGCAT -3´；

3´-RACE outer: 5´- TACCGTCGTTCCACTAGTGATTT -3´；

扩增体系为：

1×cDNA Dilution Buffer II 8 μL ，cDNA模板 2 μL，

2×引物（GSP1-3’-outer/3’-RACE-outer） 1 μL ，

10×LA PCR Buffer II（Mg²⁺ Free） 4 μL，MgCl₂（25 mM）3 μL，

TaKaRa LA Taq（5 U/μl） 0.25 μL，ddH₂O 28.75 μL。

扩增程序为：

95℃，3 min；

95℃，30 s；55℃，30 s；72℃，1 min 30 s（35个循环）

72℃，8 min；4℃保温。

（2）3’-inner PCR扩增：

根据实施例3得到的中间片段序列，设计并合成特异性上游引物GSP1-3´-inner，以上述（1）所得outer PCR产物为模板，利用特异性上游引物GSP1-3´-inner和TaKaRa公司3´-Full RACE Core Set Ver.2.0（Code：D314）试剂盒中3´端下游引物3´-RACE inner，进行3´端inner PCR扩增：

GSP1-3´-inner: 5´- CATCACCTGTTGGCTCTCCCTC -3´；

3´-RACE inner: 5´- CGCGGATCCTCCACTAGTGATTTCACTATAGG -3；

扩增体系为：

dNTP Mixture（2.5 mM each） 8 μL ，cDNA模板2 μL，

2×引物（GSP1-3’-inner/3’-RACE-inner） 1 μL ，

10×LA PCR Buffer II（Mg²⁺ Free） 4 μL，MgCl₂（25mM） 3 μL，

TaKaRa LA Taq（5 U/μl） 0.25 μL，ddH₂O 28.75μL 。

扩增程序为：

95℃，3 min；

95℃，30 s；60℃，30 s；72℃，1 min 30 s（35个循环）；

72℃，8 min；4℃保温。

取所得扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测，结果如图3所示。

扩增得到的产物为AnMCSU基因3´端cDNA完整序列inner PCR产物，通过克隆测序（同实施例3），得到的3´端cDNA完整序列如SEQ ID NO.4所述。

实施例5

本实施例为5´端扩增的cDNA第一链合成：

以实施例1纯化的矮沙冬青叶片总RNA作为模板，经过Ambion公司FirstChoice® RLM-RACE Kit，SKU #：AM1700试剂盒对RNA处理，加入下述5´ RACE Adapter后，以Random Decamers进行反转录：

5´ RACE Adapter: 5´-GCUGAUGGCGAUGAAUGAACACUGCGUUUGCUGGCUUUGAUGAAA -3´；

合成得到反转录产物5´端的cDNA第一链；

实施例6

本实施例为AnMCSU基因5´端的克隆，包括下述步骤：

（1）5’-outer PCR扩增：

根据实施例3得到的中间片段序列，设计并合成特异性下游引物GSP1-5´-outer，以实施例5所得反转录产物的cDNA第一链为模板，利用特异性下游引物GSP1-5´-outer和试剂盒FirstChoice® RLM-RACE Kit，SKU #：AM1700中上游引物5´-RACE outer，进行5´端outerPCR扩增：

GSP1-5´-outer: 5´- TTCACCAAGTCAAGGCCAAATCTC -3´；

5´-RACE outer: 5´- GCTGATGGCGATGAATGAACACTG -3´；

扩增体系为：

cDNA模板 1 μL，10X PCR Buffer 5 μL，dNTPMix 4 μL，

2×引物（GSP1-5´-outer/5´-RACE outer） 2 μL，

扩增程序为：

95℃，3 min；

95℃，30 s；60℃，30 s；72℃，2 min 30 s（35个循环）；

72℃，8 min；12℃保温。

（2）5’-inner PCR扩增：

根据实施例3得到的中间片段序列，设计并合成特异性下游引物GSP1-5´-inner，以上述（1）所得outer PCR产物为模板，利用特异性下游引物GSP1-5´-inner和试剂盒FirstChoice® RLM-RACE Kit，SKU #：AM1700中上游引物5´-RACE inner，进行5´端inner PCR扩增：

GSP1-5´-inner: 5´- CATCACCTGTTGGCTCTCCCTC -3´；

5´-RACE inner: 5´- CGCGGATCCGAACACTGCGTTTGCTGGCTTTGATG-3；

扩增体系为：

5’-outer PCR 产物 1 μL，10X PCR Buffer 5 μL，dNTP Mix 4 μL，

2×引物（GSP1-5´-inner/5´-RACE inner） 2 μL，

扩增程序为：

95℃，3 min；

95℃，30 s；60℃，30 s；72℃，2 min 30 s（35个循环）；

72℃，8 min；12℃保温。

取所得扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测，结果如图4所示。

扩增得到的产物为AnMCSU基因5´端cDNA完整序列inner PCR产物，通过克隆测序（同实施例3），得到的5´端cDNA完整序列如SEQ ID NO.5所述。

实施例7

本实施例为AnMCSU基因全长序列拼接和基因分析，包括下述步骤：

将上述实施例3所得中间片段、实施例4所得3´端inner PCR扩增序列和实施例6所得5´端inner PCR扩增序列用DNAman软件进行完整序列的拼接，然后通过NCBI里ORF finder工具分析开放阅读框，即完整的基因序列。

实施例8

本实施例为AnMCSU基因克隆，方法如下：

以实施例7的基因分析设计上游引物ORF1-S和下游引物ORF1-A，以实施例5所得反转录产物的cDNA第一链为模板进行PCR扩增：

ORF1-S: 5´- ATGGACGACGCCAAAAAAGAG -3´，

ORF1-A: 5´- TTAAATTGCACAATAGCATGAACTT-3´；

扩增体系为：

dNTP Mixture（2.5 mM each） 4 μL ，2×引物（ORF1-S/ORF1-A） 1 μL ，

cDNA模板 1 μL ，5×PrimeSTAR Buffer（Mg²⁺ plus）10 μL ，

PrimeSTAR HS DNA PLoymerase（2. 5 U/μL） 0.5 μL，ddH₂O 32.5 μL 。

扩增程序为：

98℃，30 s；61℃，30 s；72℃，2 min 30 s （35个循环）；

取所得扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测，结果如图1所示。

扩增得到的产物为完整的AnMCSU基因序列，如SEQ ID NO.1所述；其对应的氨基酸序列（经BioEdit软件翻译得到）如SEQ ID NO.2所述。

实施例9

本实施例为AnMCSU基因编码的氨基酸的进化树分析，方法如下：

以实施例8所得的AnMCSU氨基酸序列，用MEGA4软件进行进化树分析，参与进化树分析的氨基酸及其物种名称分别为：AnMCSU，矮沙冬青；OsMCSU，水稻；ABA3/LOS5，拟南芥；RcMCSU，蓖麻；MtMCSU，蒺藜苜蓿；SlMCSU，番茄；TpMCSU，海链藻；ZmMCSU，玉米；CsMCSU，甜橙。结果如图5所示。

氨基酸序列同源性分析表明，矮沙冬青钼辅助因子硫酸化酶（AnMCSU）与拟南芥钼辅助因子硫酸化酶（ABA3/LOS5）同源性最高（58.01%）。

实施例10

本实施例为AnMCSU基因编码氨基酸序列的保守结构域分析，方法如下：

用NCBI的保守结构域分析工具CDD（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/cdd/）分析矮沙冬青MCSU基因编码蛋白质的保守结构域。结果如图6所示。

该图显示AnMCSU基因编码的蛋白含有3个超家族结构：一个是位于N-端的AAT_I超家族，出现在依赖吡哆醛磷酸盐的酶结构域中，将吡哆醛磷酸盐结α-氨基酸形成一类称为Schiff碱或醛亚胺中间物的化合物；第二个是位于中间的MOSC_N超家族，其功能目前不清楚；第三个是位于C-端的MOSC超家族，为一串β结构丰富的结构域，该结构域包含一个绝对保守的半胱氨酸并以单独或与其他结构域融合的形式出现在钼辅助因子硫酸化酶中。最终将多个超家族结构拼接的复杂结构域为PLN02724，即对应的钼辅助因子硫酸化酶。

实施例11

本实施例为拟南芥盐胁迫对照试验，步骤如下：

（1）取未转基因的突变体（CK）及转突变体的纯合阳性株系（AnMCSU）种子各30mg，4°C避光春化处理2天后，分别播种到含基质的培养钵（营养土：蛭石=4：1）；

（2）将播种后的培养钵转移至培养室培养，温度20-22°C，生长湿度为60-70%，光照10h/黑暗14h；

（3）待种子发芽14天后，取长势基本一致的幼苗分别移栽，各株系分别移栽6棵；培养室继续培养，温度20-22°C，生长湿度为60-70%，光照10h/黑暗14h；

（4）待移栽后的第27天，做最后一次浇水；第30天，用含200mM NaCl的水浸泡培养钵2h待培养钵中营养土充分吸收含NaCl的水分；5天后，再做一次相同的盐胁迫处理。

（5）处理结束1周后，转突变体的苗子长势均优于未转基因的突变体，生长较健壮。说明本发明所述的AnMCSU基因转到拟南芥后能正常表达并使转基因植株显示出耐盐功能。结果如图7所示。

Claims

1.一种来源于矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶的基因序列的应用，其特征在于，将其用于制备具有耐盐功能的拟南芥植株，所述基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示，其具体方法包括：

1)将所述基因通过转基因技术转入拟南芥突变体基因组中获得转突变体的纯合阳性株系种子；

2)取步骤1)所述转突变体的纯合阳性株系种子4℃避光春化处理2天后，分别播种到含基质的培养钵；

3)将播种后的培养钵转移至培养室培养，温度20-22℃，生长湿度为60-70％，光照10h/黑暗14h；

4)待种子发芽14天后，取幼苗分别移栽，获得具有耐盐功能的拟南芥植株。

2.根据权利要求1所述的基因序列的应用，其特征在于：该基因所述的核苷酸序列对应的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所述。

3.根据权利要求1所述的基因序列的应用，其特征在于，所述基因序列的制备方法包括下述主要步骤：

(1)总RNA的提取和纯化：

采用各种通用的RNA提取方法和纯化方法，从植物矮沙冬青叶片中提取得到纯化的矮沙冬青叶片总RNA；

(2)中间片段的克隆：

A、中间片段cDNA第一链的合成

以上述步骤(1)纯化的矮沙冬青叶片总RNA作为模板，以3′RACE Adaptor引物进行反转录，得到的cDNA第一链，作为下述步骤B中PCR扩增的模板，所述3′RACE Adaptor引物来自TaKaRa公司3′-Full RACE Core Set Ver.2.0，Code：D314试剂盒；

B、PCR扩增

以前述步骤A所得中间片段的cDNA第一链作为模板，利用下述上游引物jf1和下游引物jx1，进行PCR扩增：

jf1:5′-GTCGGAGAGRCKTTTCCRTGG-3′，jx1:5′-TGCACAWGCDCCWGGATTR-3′；

扩增得到矮沙冬青的钼辅助因子硫酸化酶基因cDNA中间片段，通过克隆测序，得到中间片段序列；

(3)3′端的克隆：

C、3’-outer PCR扩增

根据上述步骤(2)得到的中间片段序列，设计并合成特异性上游引物GSP1-3′-outer，以前述步骤(2)A所得的cDNA第一链为模板，利用下述特异性上游引物GSP1-3′-outer和3′端下游引物3′-RACE outer，进行3′端outer PCR扩增：

GSP1-3′-outer:5′-GCATGGCGATGGATCTAGCATGTGCAT-3′，

3′-RACE outer:5′-TACCGTCGTTCCACTAGTGATTT-3′；

扩增得到的产物为cDNA 3′端；

D、3’-inner PCR扩增

根据前述步骤(2)所得中间片段端序列，设计并合成特异性上游引物GSP1-3′-inner，以前述步骤C所得3′端的outer PCR产物为模板，利用下述特异性上游引物GSP1-3′-inner和3′端下游引物3′-RACE inner，进行3′端inner PCR扩增：

GSP1-3′-inner:5′-GGCTCTTGGTATGGATACCGTGAAGTGG-3′，

3′-RACE inner:5′-CGCGGATCCTCCACTAGTGATTTCACTATAGG-3′；

扩增得到的产物为cDNA 3′端inner PCR产物，通过克隆测序，得到3′端完整序列；

(4)5′端的克隆：

E、合成5′端的cDNA第一链：

以上述步骤(1)纯化的矮沙冬青叶片总RNA作为模板，对RNA进行预处理，加入5′RACEAdapter引物进行反转录：

5′RACE Adapter：5′-GCUGAUGGCGAUGAAUGAACACUGCGUUUGCUGGCUUUGAUGAAA-3′；

合成得到反转录产物5′端的cDNA第一链；

F、5’-outer PCR扩增

根据上述步骤(2)得到的中间片段序列，设计并合成特异性下游引物GSP1-5′-outer，以前述步骤E所得反转录产物的cDNA第一链为模板，利用下述特异性下游引物GSP1-5′-outer和5′端上游引物5′-RACE outer，进行5′端outer PCR扩增：

GSP1-5′-outer:5′-TTCACCAAGTCAAGGCCAAATCTC-3′，

5′-RACE outer:5′-GCTGATGGCGATGAATGAACACTG-3′；

扩增得到的产物为cDNA 5′端；

G、5’-inner PCR扩增

根据前述步骤(2)所得中间片段序列，设计并合成特异性下游引物GSP1-5′-inner，以前述步骤F所得5′端的outer PCR产物为模板，利用下述特异性下游引物GSP1-5′-inner和5′端上游引物5′-RACE inner，进行5′端inner PCR扩增：

GSP1-5′-inner:5′-CATCACCTGTTGGCTCTCCCTC-3′，

5′-RACE inner:5′-CGCGGATCCGAACACTGCGTTTGCTGGCTTTGATG-3′；

扩增得到的产物为cDNA 5′端inner PCR产物，通过克隆测序，得到5′端完整序列；

(5)cDNA全长序列拼接和克隆：

将上述步骤(2)所得中间片段、步骤(3)所得3′端inner PCR扩增序列和步骤(4)所得5′端inner PCR扩增序列进行完整序列的拼接，即完整的基因序列；

(6)钼辅助因子硫酸化酶基因的克隆：

将上述步骤(4)合成5′端的cDNA第一链作为模板，根据上述步骤(5)的基因序列分析设计上游引物ORF1-S和下游引物ORF1-A，并进行PCR扩增：

ORF1-S:5′-ATGGACGACGCCAAAAAAGAG-3′，

ORF1-A:5′-TTAAATTGCACAATAGCATGAACTT-3′；

4.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(1)中，采用的RNA提取方法为试剂盒法；纯化方法为DNA酶消化法。

5.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(2)中进行PCR扩增时，

扩增体系为：

钼辅助因子硫酸化酶基因中间片段扩增程序为：

95℃，3min；

95℃，30s，60℃，30s，72℃，50s；35个循环；

72℃，8min；4℃保温。

6.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(3)中进行3’-outer PCR扩增时，

扩增体系为：

扩增程序为：

95℃，3min；

95℃，30s；55℃，30s；72℃，90s；35个循环；

72℃，8min；4℃保温。

7.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(3)中进行3’-inner PCR扩增时，

扩增体系为：

扩增程序为：

95℃，3min；

95℃，30s；55℃，30s；72℃，90s；35个循环；

72℃，8min；4℃保温。

8.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(4)中进行5’-outer PCR扩增时，

扩增体系为：

扩增程序为：

95℃，3min；

95℃，30s；60℃，30s；72℃，150s；35个循环；

72℃，8min；12℃保温。

9.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(4)中进行5’-inner PCR扩增时，

扩增体系为：

扩增程序为：

95℃，3min；

95℃，30s；60℃，30s；72℃，2min30s；35个循环；

72℃，8min，12℃保温。

10.根据权利要求3所述的基因序列的应用，其特征在于：所述基因序列的制备方法的步骤(6)中进行PCR扩增时，

扩增体系为：

钼辅助因子硫酸化酶基因扩增程序为：

98℃，30s；61℃，30s；72℃，2min30s；35个循环。