CN103130807A - 桑黄菌中环二肽c9的分离技术 - Google Patents
桑黄菌中环二肽c9的分离技术 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种桑黄菌(火木层孔菌Phellinus igniarius(LexFr)Quel、裂蹄木层孔菌phellinus linteus(BerketCurt)Teng、鲍氏层孔菌、哈蒂针层孔菌Phellinus hartigii(AlleschetSchnabl)Imaz)中环二肽C9的分离方法。首先制备桑黄菌粗提物,然后进行正相硅胶层析,然后是甲醇梯度洗脱,再次正相硅胶层析,接下来是HPLC检测,然后进行常压反相制备,再次进行HPLC检测,最后1D-HNMR检测,即得环二肽C9,即(3R,8aS)-六氢-3-甲基吡咯并[1,2-a〕吡嗪-1,4-二酮。
Description
技术领域
本发明属于生物工程制药领域。
背景技术
桑黄(Phellinus),子实体无柄,菌盖扁半球形或马蹄形,2-12*3-21厘米,厚1.5-10厘米,木质,浅肝褐色至暗灰色或黑色,老时常龟裂,无皮壳,初期有细微绒毛,后变无毛,有同心环棱.边缘钝,深肉桂色至浅咖啡色,下侧无子实层.菌肉深咖啡色,硬,木质.菌管与菌肉近同色,多层,但层次不明显,年老的菌管层充满白色菌丝.管口锈褐色至酱色,圆形,每毫米4-5个.孢子近球形,光滑,无色,5-6*3-4微米.刚毛顶端尖锐,基部膨大,10-25*5-7微米.菌丝不分枝,无横隔,直径3-5微米。
目前,真菌产物的纯化方法较多,主要有分级沉淀法、制备性高效液相层析、柱层析法、超滤法、离心沉淀色谱法、等几种方法。而其中应用最多的当属柱层析法,分为两类:一是只有分子筛作用的凝胶柱层析, 常用的凝胶有葡聚糖凝胶及琼脂糖凝胶。二是离子交换层析。但,主要用于分离多糖,透明质酸等,多数分离后得到的产物为混合物。本发明使用多种层析技术相结合,分离度高,应用此发明可以精致到纯品。
发明内容
本发明公开了一种桑黄菌(火木层孔菌Phellinus igniarius(L ex Fr) Quel、裂蹄木层孔菌 phellinus linteus (Berk et Curt) Teng 、鲍氏层孔菌、哈蒂针层孔菌 Phellinus hartigii (Allesch et Schnabl) Imaz)中环二肽C9的分离方法。首先制备桑黄菌粗提物,然后进行正相硅胶层析,然后是甲醇梯度洗脱,再次正相硅胶层析,接下来是HPLC检测,然后进行常压反相制备,再次进行HPLC检测,最后1D-HNMR检测,即得环二肽C9,即(3R,8aS) - 六氢-3 - 甲基吡咯并[1,2-a〕吡嗪-1,4 - 二酮。此化合物目前已报道是一种呈味物质。
本发明的技术方案如下:
桑黄粗提物,由下述方法制得:
(1)发酵培养基配方以克/100毫升计是:
玉米淀粉 1-5% 葡萄糖 1-5%
蛋白胨 0.1-0.5% 酵母膏 0.1-0.5%
硫酸镁 0.1-0.5% 磷酸二氢钾 0.01-0.05%
(2)将桑黄菌种以常规方法接种到装有液体培养基的三角烧瓶内,以20~35℃温度,摇瓶转速为80~280r/min,pH 3~8条件下,震动培养7~15天;培养中当pH值降到2.5~4时,将摇瓶中的种子接种到50L发酵罐的培养液中,以温度20~35℃,发酵罐压力0.1~0.2公斤/平方厘米,pH 3~8,通气量0.5~1.1vvm,搅拌速度100~280转/分的条件,培养7~15天,即可利用桑黄菌丝体发酵全液制备桑黄粗提物;
(3)取步骤(2)中所得桑黄菌丝体发酵全液,将其以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/2~1/5;
(4)用体积百分比为60~95%的乙醇对上述步骤(3)浓缩后的发酵液进行提取,其中,加入乙醇的量是浓缩液体积的2~5倍,能够使提取液中乙醇浓度达到60~90%;
(5)对步骤(4)所得提取液在50~70℃条件下,加热1~2小时;以常规方法进行分离,并通过二级过滤除去杂质,分离获得乙醇提取液;将上述乙醇提取液以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/5~1/10;
(6)将将步骤(5)所得的浓缩液以低温冷冻干燥的方法进行干燥,得桑黄粗提物。
分离环二肽C9的方法:
桑黄菌粗提物→正相硅胶层析→甲醇梯度洗脱→正相硅胶层析→HPLC检测→常压反相制备→HPLC检测→1D-HNMR→环二肽C9。
具体方法为:
(1)制备桑黄粗提物;
(2)将上述步骤(1)所得的桑黄粗提物与正相硅胶混匀搅拌,并干燥,进行硅胶正相柱层析,用洗脱剂洗脱2-5次;
(3)收集上述步骤(2)中最后一次的洗脱液,减压浓缩,使用甲醇溶解,甲醇凝胶柱层析,用洗脱剂洗脱;
(4)将步骤(3)得到的产物进行正相硅胶层析,用洗脱剂洗脱;
(5)使用HPLC检测收集步骤(4)的洗脱液,适当合并洗脱液,减压干燥;
(6)将步骤(5)得到的产物进行常压反相层析,洗脱剂为甲醇与水;
(7)HPLC检测,减压干燥,即为环二肽C9。
本发明由桑黄菌中环二肽C9的分离技术的显著优势:本方法采用多种层析技术相结合,可以精致到结构明确,纯度大于95%的环二肽C9。技术路线成熟明确,高效精确。
附图说明
图1为环二肽C9的结构式;
图2为环二肽C9的一维核磁共振H谱。
具体实施方式
实例1:
桑黄粗提物,由下述方法制得:
(1)发酵培养基配方以克/100毫升计是:
玉米淀粉 1% 葡萄糖 1%
蛋白胨 0.1% 酵母膏 0.1%
硫酸镁 0.1% 磷酸二氢钾 0.01%
(2)将桑黄菌种以常规方法接种到装有液体培养基的三角烧瓶内,以25℃温度,摇瓶转速为110r/min,pH 7条件下,震动培养7天;培养中当pH值降到3时,将摇瓶中的种子接种到50L发酵罐的培养液中,以温度25℃,发酵罐压力0.1公斤/平方厘米,pH 3,通气量0.5-1.1vvm,搅拌速度100转/分的条件,培养7天,即可利用桑黄菌丝体发酵全液制备桑黄粗提物;
(3)取步骤(2)中所得桑黄菌丝体发酵全液,将其以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/3;
(4)用体积百分比为70%的乙醇对上述步骤(3)浓缩后的发酵液进行提取,其中,加入乙醇的量是浓缩液体积的5倍,能够使提取液中乙醇浓度达到55%;
(5)对步骤(4)所得提取液在70℃条件下,加热1小时;以常规方法进行分离,并通过二级过滤除去杂质,分离获得乙醇提取液;将上述乙醇提取液以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/5;
(6)将将步骤(5)所得的浓缩液以低温冷冻干燥的方法进行干燥,得桑黄粗提物。
称取粗提物125g与等体积的100目正相硅胶混匀,硅胶正相柱层析。层析固定相为200目正相硅胶,柱高1m,直径15cm,洗脱剂为分别为氯仿,氯仿:甲醇=60:1(只有两种洗脱剂,与后面洗脱次数不符)分别洗脱3,4,4个柱体积。将最后一次的洗脱液适当合并减压蒸干,以甲醇溶解,进行甲醇凝胶层析。收集洗脱液,适当合并减压蒸干,与等体积100目硅胶拌样,使用200目正相硅胶装柱,再次进行甲醇正相层析。洗脱剂为氯仿与甲醇。收集洗脱液,进行HPLC检测,0min:100%水,10min:100%甲醇,出峰时间为5.79min。。进行常压反相层析,洗脱剂为甲醇水溶液。收集洗脱液,减压蒸干,HPLC检测,0min:100%水,10min:100%甲醇,出峰时间为5.80min。,出峰时间为5.90,适当合并,进行1D-HNMR核磁共振分析,频率为400MHZ,分析结果为δ 7.37 (s, 1H), 4.15 – 4.07 (m, 1H), 4.04 (dd, J = 7.1, 4.1 Hz, 1H), 3.65 (dt, J = 11.8, 8.3 Hz, 1H), 3.59 – 3.49 (m, 1H), 2.45 – 2.32 (m, 1H), 2.15 – 2.01 (m, 2H), 2.01 – 1.84 (m, 2H), 1.49 (d, J = 7.2 Hz, 3H).证明是(3R,8aS) - 六氢-3 - 甲基吡咯并[1,2-a〕吡嗪-1,4 - 二酮。
实例2:
桑黄粗提物,由下述方法制得:
(1)发酵培养基配方以克/100毫升计是:
玉米淀粉 3% 葡萄糖 2%
蛋白胨 0.5% 酵母膏 0.5%
硫酸镁 0.5% 磷酸二氢钾 0.05%
(2)将桑黄菌种以常规方法接种到装有液体培养基的三角烧瓶内,以30℃温度,摇瓶转速为180r/min,pH6条件下,震动培养15天;培养中当pH值降到2.5时,将摇瓶中的种子接种到50L发酵罐的培养液中,以温度30℃,发酵罐压力0.2公斤/平方厘米,pH 3,通气量0.5-1.1vvm,搅拌速度180转/分的条件,培养15天,即可利用桑黄菌丝体发酵全液制备桑黄粗提物;
(3)取步骤(2)中所得桑黄菌丝体发酵全液,将其以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/5;
(4)用体积百分比为90%的乙醇对上述步骤(3)浓缩后的发酵液进行提取,其中,加入乙醇的量是浓缩液体积的4倍,能够使提取液中乙醇浓度达到70%;
(5)对步骤(4)所得提取液在55℃条件下,加热2.5小时;以常规方法进行分离,并通过二级过滤除去杂质,分离获得乙醇提取液;将上述乙醇提取液以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/10;
(6)将将步骤(5)所得的浓缩液以低温冷冻干燥的方法进行干燥,得桑黄粗提物。
称取粗提物300g与等体积的100目正相硅胶混匀,硅胶正相柱层析。层析固定相为200-300目正相硅胶,柱高1.2m,直径20cm,洗脱剂为分别为氯仿,氯仿:甲醇=200:1,100:1,50:1,分别洗脱4,3,,5,5个柱体积。将最后一次的洗脱液适当合并减压蒸干,以甲醇溶解,进行甲醇凝胶层析。收集洗脱液,适当合并减压蒸干,与等体积100目硅胶拌样,使用200目正相硅胶装柱,再次进行甲醇正相层析,洗脱剂为氯仿与甲醇。收集洗脱液,进行HPLC检测,0min:100%水,10min:100%甲醇,出峰时间为5.76min。进行常压反相层析,洗脱剂为40%甲醇水溶液。收集洗脱液,减压蒸干,HPLC检测,0min:100%水,10min:100%甲醇,出峰时间为5.76min。,适当合并,进行1D-HNMR核磁共振分析,频率为400MHZ,分析结果为δ 7.37 (s, 1H), 4.15 – 4.07 (m, 1H), 4.04 (dd, J = 7.1, 4.1 Hz, 1H), 3.65 (dt, J = 11.8, 8.3 Hz, 1H), 3.59 – 3.49 (m, 1H), 2.45 – 2.32 (m, 1H), 2.15 – 2.01 (m, 2H), 2.01 – 1.84 (m, 2H), 1.49 (d, J = 7.2 Hz, 3H).证明是(3R,8aS) - 六氢-3 - 甲基吡咯并[1,2-a〕吡嗪-1,4 - 二酮。
Claims (11)
1.桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其步骤顺序如下:
(1)制备桑黄粗提物;
(2)将上述步骤(1)所得的桑黄粗提物与正相硅胶混匀搅拌,并干燥,进行硅胶正相柱层析,用洗脱剂洗脱2-5次;
(3)收集上述步骤(2)中最后一次的洗脱液,减压浓缩,使用甲醇溶解,甲醇凝胶柱层析,用洗脱剂洗脱;
(4)将步骤(3)得到的产物进行正相硅胶层析,用洗脱剂洗脱;
(5)使用HPLC检测收集步骤(4)的洗脱液,适当合并洗脱液,减压干燥;
(6)将步骤(5)得到的产物进行常压反相层析,洗脱剂为甲醇与水;
(7)HPLC检测,减压干燥,即为环二肽C9。
2.如权利要求1所述的一种从桑黄菌中分离苯乙醇的方法,其特征在于所述桑黄粗提物,由下述方法制得:
(1)发酵培养基配方以克/100毫升计是:
玉米淀粉 1-5% 葡萄糖 1-5%
蛋白胨 0.1-0.5% 酵母膏 0.1-0.5%
硫酸镁 0.1-0.5% 磷酸二氢钾 0.01-0.05%
(2)如权利要求1所述桑黄粗提物的发酵培养方法是,将桑黄菌种以常规方法接种到装有液体培养基的三角烧瓶内,以20~35℃温度,摇瓶转速为80~280r/min,pH 3~8条件下,震动培养7~15天;培养中当pH值降到2.5~4时,将摇瓶中的种子接种到50L发酵罐的培养液中,以温度20~35℃,发酵罐压力0.1~0.2公斤/平方厘米,pH 3~8,通气量0.5~1.1vvm,搅拌速度100~280转/分的条件,培养7~15天,即可利用桑黄菌丝体发酵全液制备桑黄粗提物;
(3)取步骤(2)中所得桑黄菌丝体发酵全液,将其以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/2~1/5;
(4)用体积百分比为60~95%的乙醇对上述步骤(3)浓缩后的发酵液进行提取,其中,加入乙醇的量是浓缩液体积的2~5倍,能够使提取液中乙醇浓度达到60~90%;
(5)对步骤(4)所得提取液在50~70℃条件下,加热1~2小时;以常规方法进行分离,并通过二级过滤除去杂质,分离获得乙醇提取液;将上述乙醇提取液以常规方式减压浓缩,使其体积浓缩到原体积的1/5~1/10;
(6)将将步骤(5)所得的浓缩液以低温冷冻干燥的方法进行干燥,得桑黄粗提物。
3.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于所述的环二肽C9为(3R,8aS) - 六氢-3 - 甲基吡咯并[1,2-a〕吡嗪-1,4 - 二酮。
4.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(2)中所述的拌样硅胶为100-200目正相硅胶,洗脱剂为氯仿和/或甲醇。
5.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(3)中所述的洗脱剂为甲醇。
6.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(4)中所述的正相硅胶为200-300目,洗脱剂为氯仿与甲醇。
7.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(5)中所述的HPLC条件为0min:100%水,10min:100%甲醇。
8.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(6)所述的反相材料为C-18或者C-8,使用常压反相制备。
9.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(6)所述的洗脱剂为甲醇:水=35%-85%。
10.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(6)所述的反相层析次数为2-3次。
11.如权利要求1所述的桑黄菌中环二肽C9的分离方法,其特征在于,步骤(7)所述的HPLC出锋时间为5.45-6.25min。
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吴秀丽,等,: "火木层孔菌液体培养物的化学成分研究", 《中国中药杂志》, vol. 36, no. 7, 30 April 2011 (2011-04-30) * |
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