CN102653737A - 海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法 - Google Patents

海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN102653737A
CN102653737A CN2012101087107A CN201210108710A CN102653737A CN 102653737 A CN102653737 A CN 102653737A CN 2012101087107 A CN2012101087107 A CN 2012101087107A CN 201210108710 A CN201210108710 A CN 201210108710A CN 102653737 A CN102653737 A CN 102653737A
Authority
CN
China
Prior art keywords
liquid
sod
superoxide dismutase
dismutase
crude enzyme
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN2012101087107A
Other languages
English (en)
Inventor
张庆芳
迟乃玉
窦少华
王晓辉
于爽
马莉
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Dalian University
Original Assignee
Dalian University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Dalian University filed Critical Dalian University
Priority to CN2012101087107A priority Critical patent/CN102653737A/zh
Publication of CN102653737A publication Critical patent/CN102653737A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本发明所述的一种海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法是将产生超氧化物歧化酶的海洋微生物进行定向驯化,使其在自然条件下生长良好;将定向驯化后的超氧化物歧化酶产生菌在8~14℃逐级扩大培养,按发酵液体积的4~10%接种量接入液体发酵培养基中,在8~14℃培养60~96h时,即海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶结束;发酵液在4,000~8,000rpm离心收集菌体,数次洗涤后收集沉淀,悬浮于缓冲液中,并加石英砂研磨,10,000~14,000rpm离心收集上清即为粗酶液;根据不同需要和使用对象不同,可以将粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的酶制剂。

Description

海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法
技术领域
本发明涉及微生物学、酶工程、发酵工程、生物化学等领域,具体涉及一种低温SOD海洋微生物发酵生产方法。该方法生产的低温SOD作为生物体内超氧阴离子自由基清洁剂,主要应用于医学、食品、化妆品等行业,尤其在防辐射、抗衰老、消炎、抑制肿瘤、癌症和自身免疫治疗等方面显示出独特的优越性。
背景技术
超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,EC 1.15.1.1,简写SOD)是一类广泛存在于生物体内的金属酶,能够催化超氧阴离子自由基发生歧化反应生成过氧化氢和分子氧,从而清除生物体内的氧自由基,起到保护生物体免受伤害作用(自俊青,大理师专学报,1998)。1969年Mccord和Fridovich发现该酶生物催化活性并命名为超氧化物歧化酶(林庆斌,化学世界,2006)。按其结合的金属元素种类不同,可将其分为三类:一类是蓝绿色Cu,Zn-SOD,相对分子量约32000,主要存在于真核细胞的胞液和叶绿体中,是研究最多、最深入的一类;第二类是紫红色Mn,Fe-SOD,相对分子量约40000,主要存在于原核生物细胞及线粒体的基质中;第三类是黄褐色Fe-SOD,相对分子量约38700,主要存在于原核细胞及一些植物中(陈惠芳,生命的化学,2003)。
SOD作为生物酶制剂,医疗上主要用于辅助放疗与化疗,肾、肝、心脏等器官的保护和移植,消除辐射引起的副作用,以及作为某些疾病的探针等;食品工业作为添加剂应用于饮料和啤酒等。近年来SOD被广泛用于治疗氧中毒、老年性白内障、糖尿病、心血管疾病、各种炎症等多种疾病(张博润等,微生物学通报,1992);几十年来SOD一直是国内外研究热点,起初阶段多集中于从动物血液或植物组织中提取SOD,中期阶段普通微生物发酵生产SOD的研究开始起步并日渐增多,目前普通微生物生产SOD已然成为研究的主体。普通微生物发酵生产的SOD最适作用温度一般为45~55℃,而人体的生理温度一般为36.5~37℃,致使普通微生物发酵生产的SOD不能充分发挥作用,出现治疗效果差或没有效果(曾胤新,微生物学杂志,2004)。海洋微生物(低温、寡营养、低光照、高压)发酵生产的SOD最适作用温度一般为35~40℃,比较接近人体的生理温度,应用于治疗效果比较明显。而海洋微生物发酵生产SOD研究尚在起步阶段,产业化、规模化海洋微生物发酵生产SOD还未见报道。鉴于动物SOD血液来源困难、安全性以及普通微生物发酵生产的SOD应用最适作用温度的局限性,利用海洋微生物发酵生产的低温SOD具有很大的应用优势。海洋低温SOD对热反应极为敏感,且在自然环境温度下具有高酶活力及高催化效率,经过温和的热处理即可使低温酶的活力丧失,如果将SOD应用于食品工业从而大大缩短处理过程的时间并省却昂贵的加热或冷却费用,且不影响产品品质(郑洲等,极地研究,2007),这将有助于低温SOD的推广和使用,从根本上摆脱繁琐的提取工艺及中温酶的加热、冷却设备和流程。鉴于海洋微生物发酵生产的SOD在自然和生理温度下的应用优势,海洋低温SOD在医疗保健、食品、化妆品等方面具有广泛的应用前景和开发潜力。
发明内容
本发明的目的是提供一种海洋微生物发酵生产低温SOD的方法,该发明主要是海洋微生物经过定向驯化后,按常规方法液体发酵生产低温SOD的方法,这种生产方法获得的低温SOD活性可以达到180U/ml,如再经过分离和纯化,可以得到不同浓度和纯度的酶制剂。该酶制剂最适作用温度接近人体生理温度,医疗效果显著;在食品加工中应用操作简单、方便、快捷、成本低,可以从根本上避免中温酶的加热、冷却设备和工艺。
本发明所述的一种海洋微生物发酵生产低温SOD的方法具体包括以下步骤:
(1)将产生SOD的海洋微生物进行定向驯化,使其在自然条件下生长良好;
(2)按常规方法将定向驯化后的SOD产生菌8~14℃逐级扩大培养,制备成液体一级种子和二级种子;
(3)将液体一级种子或二级种子,按发酵液体积的4~10%接种量接入液体发酵培养基中,在8~14℃培养60~96h时,即海洋微生物发酵生产低温SOD结束;
(4)将(3)的发酵液4,000~8,000rpm离心收集菌体,用蒸馏水洗涤数次之后离心收集沉淀;
(5)将沉淀悬浮于缓冲液中,加石英砂研磨破碎,10,000~14,000rpm离心,收集的上清为SOD粗酶液;
(6)根据不同需要和使用对象不同,将(5)得到的粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的酶制剂。
本发明中使用的菌种来源于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC),初期活化和生长条件按菌种保藏单位提供的说明进行。SOD产生菌(CGMCC编号:1.3或1.11)先活化、定向驯化后,按本发明产酶条件发酵生产低温SOD,驯化后的菌株在4℃中可保存2个月,用10~25%甘油制成的菌悬液、在-80℃条件下可以长期保藏。
具体实施方式
实施例一:
(1)培养基制备
①菌种活化培养基:葡萄糖10.0g,牛肉膏14.0g,蛋白胨7.0g,酵母粉4.0g,琼脂20.0g,蒸馏水1.0L,pH值自然,121℃高压蒸汽灭菌30min。
②菌种定向驯化培养基:葡萄糖8.0~16.0g,牛肉膏12.0~24.0g,蛋白胨4.0~12.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,琼脂15.0~30.0g,蒸馏水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
③液体种子培养基:葡萄糖8.0~15.0g,牛肉膏8.0~16.0g,蛋白胨5.0~15.0g,酵母粉2.0~10.0g,NaCl 5.0~10.0g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
④发酵产酶培养基:葡萄糖15.0~25.0g,(NH4)2SO43.0~10.0g,玉米浆5.0~15.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,CaCO31.0~6.0g,MgSO40.1~0.9g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
(2)将产生SOD的菌种,按中国普通微生物菌种保藏管理中心(CGMCC)提供的菌株说明进行初始活化;
(3)将(2)活化好的菌种进行定向驯化,使其在自然条件下生长良好;
(4)按常规方法将定向驯化后的SOD产生菌在8~14℃培养24~36h,按5~8%的接种量进行逐级扩大培养,制备成液体一级种子和二级种子;
(5)将(4)制备的二级种子按发酵液体积4~6%的接种量接入10L的产酶培养基中,在8~10℃培养84~96h时,即海洋微生物发酵生产低温SOD结束;
(6)将(5)的发酵液4,000~8,000rpm离心收集菌体,用蒸馏水洗涤数次之后离心收集沉淀;
(7)将沉淀悬浮于缓冲液中,加石英砂研磨破碎,10,000~14,000rpm离心,收集到的上清为SOD粗酶液;
(8)根据不同需要和使用对象不同,将(7)得到的粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的低温SOD制剂。
实施例二:
(1)培养基制备
①菌种活化培养基:葡萄糖10.0g,牛肉膏14.0g,蛋白胨7.0g,酵母粉4.0g,琼脂20.0g,蒸馏水1.0L,pH值自然,121℃高压蒸汽灭菌30min。
②菌种定向驯化培养基:葡萄糖8.0~16.0g,牛肉膏12.0~24.0g,蛋白胨4.0~12.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,琼脂15.0~30.0g,蒸馏水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
③液体种子培养基:葡萄糖8.0~15.0g,牛肉膏8.0~16.0g,蛋白胨5.0~15.0g,酵母粉2.0~10.0g,NaCl 5.0~10.0g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
④发酵产酶培养基:葡萄糖15.0~25.0g,(NH4)2SO43.0~10.0g,玉米浆5.0~15.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,CaCO31.0~6.0g,MgSO40.1~0.9g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
(2)将产生SOD的菌种,按中国普通微生物菌种保藏管理中心(CGMCC)提供的菌株说明进行初始活化;
(3)将(2)活化好的菌种进行定向驯化,使其在常规压力、盐浓度条件下生长良好;
(4)按常规方法将定向驯化后的SOD产生菌在8~14℃培养24~36h,按5~8%的接种量进行逐级扩大培养,制备成液体一级种子和二级种子;
(5)将(4)制备的二级种子按发酵液体积6~8%的接种量接入50L的产酶培养基中,在10~12℃培养72~84h时,即微生物发酵生产低温SOD结束;
(6)将(5)的发酵液4,000~8,000rpm离心收集菌体,用蒸馏水洗涤数次之后离心收集沉淀;
(7)将沉淀悬浮于缓冲液中,加石英砂研磨破碎,10,000~14,000rpm离心,收集到的上清为SOD粗酶液;
(8)根据不同需要和使用对象不同,将(7)得到的粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的低温SOD制剂。
实施例三:
(1)培养基制备
①菌种活化培养基:葡萄糖10.0g,牛肉膏14.0g,蛋白胨7.0g,酵母粉4.0g,琼脂20.0g,蒸馏水1.0L,pH值自然,121℃高压蒸汽灭菌30min。
②菌种定向驯化培养基:葡萄糖8.0~16.0g,牛肉膏12.0~24.0g,蛋白胨4.0~12.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,琼脂15.0~30.0g,蒸馏水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
③液体种子培养基:葡萄糖8.0~15.0g,牛肉膏8.0~16.0g,蛋白胨5.0~15.0g,酵母粉2.0~10.0g,NaCl 5.0~10.0g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
④发酵产酶培养基:葡萄糖15.0~25.0g,(NH4)2SO43.0~10.0g,玉米浆5.0~15.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,CaCO31.0~6.0g,MgSO40.1~0.9g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
(2)将产生SOD的菌种,按中国普通微生物菌种保藏管理中心(CGMCC)提供的菌株说明进行初始活化;
(3)将(2)活化好的菌种进行定向驯化,使其在常规压力、盐浓度条件下生长良好;
(4)按常规方法将定向驯化后的SOD产生菌在8~14℃培养24~36h,按5~8%的接种量进行逐级扩大培养,制备成液体一级种子和二级种子;
(5)将(4)制备的二级种子按发酵液体积8~10%的接种量接入200L的产酶培养基中,在12~14℃培养60~72h时,即微生物发酵生产低温SOD结束;
(6)将(5)的发酵液4,000~8,000rpm离心收集菌体,用蒸馏水洗涤数次之后离心收集沉淀;
(7)将沉淀悬浮于缓冲液中,加石英砂研磨破碎,10,000~14,000rpm离心,收集到的上清为SOD粗酶液;
(8)根据不同需要和使用对象不同,将(7)得到的粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的低温SOD制剂。

Claims (3)

1.一种微生物发酵生产低温SOD的方法,其包括以下步骤:
(1)将产生超氧化物歧化酶的海洋微生物进行定向驯化,使其在自然条件下生长良好;
(2)按常规方法将定向驯化后的超氧化物歧化酶产生菌在8~14℃逐级扩大培养,制备成液体一级种子和二级种子;
(3)将液体一级种子或二级种子,按发酵液体积的4~10%接种量接入液体发酵培养基中,在8~14℃培养60~96h时,即海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶结束;
(4)将(3)的发酵液4,000~8,000rpm离心收集菌体,用蒸馏水洗涤数次之后离心收集沉淀;
(5)将沉淀悬浮于缓冲液中,加石英砂研磨破碎,10,000~14,000rpm离心,收集到的上清为超氧化物歧化酶粗酶液;
(6)根据不同需要和使用对象不同,还可以将(5)得到的粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的酶制剂。
2.根据权利要求1所述的方法,在步骤(6)之后进一步包括:将步骤(6)得到的粗酶液进一步浓缩、分离纯化,制备成不同活性、纯度和剂型的酶制剂。
3.根据权利要求1或2所述的方法,其中菌种定向驯化培养基、液体种子培养基、发酵产酶培养基分别为:
(1)菌种定向驯化培养基:葡萄糖8.0~16.0g,牛肉膏12.0~24.0g,蛋白胨4.0~12.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,琼脂15.0~30.0g,蒸馏水1.0L,p值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
(2)液体种子培养基:葡萄糖8.0~15.0g,牛肉膏8.0~16.0g,蛋白胨5.0~15.0g,酵母粉2.0~10.0g,NaCl 5.0~10.0g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
(3)发酵产酶培养基:葡萄糖15.0~25.0g,(NH4)2SO43.0~10.0g,玉米浆5.0~15.0g,酵母粉2.0~8.0g,NaCl 5.0~10.0g,CaCO31.0~6.0g,MgSO40.1~0.9g,自来水1.0L,pH值7.0,121℃高压蒸汽灭菌30min。
CN2012101087107A 2012-04-13 2012-04-13 海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法 Pending CN102653737A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2012101087107A CN102653737A (zh) 2012-04-13 2012-04-13 海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2012101087107A CN102653737A (zh) 2012-04-13 2012-04-13 海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN102653737A true CN102653737A (zh) 2012-09-05

Family

ID=46729468

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2012101087107A Pending CN102653737A (zh) 2012-04-13 2012-04-13 海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN102653737A (zh)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103881929A (zh) * 2014-03-13 2014-06-25 湛江德玥生物工程有限公司 净化用复合菌和净化用复合益生菌制剂及制备方法
CN104630188A (zh) * 2015-02-16 2015-05-20 大连大学 海洋微生物发酵生产低温葡甘聚糖酶的方法
CN105920580A (zh) * 2016-04-28 2016-09-07 中山大学 海洋微生物来源化合物p-3在制备抗衰老药物中的应用
CN106987565A (zh) * 2017-05-22 2017-07-28 大连大学 一种海洋低温超氧化物歧化酶提取分离工艺
CN107890108A (zh) * 2017-11-10 2018-04-10 大连大学 一种抗皮肤氧化的sod保健品
CN107927763A (zh) * 2017-11-10 2018-04-20 大连大学 一种抗衰老的海洋低温sod保健品

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1807610A (zh) * 2006-01-23 2006-07-26 迟乃玉 微生物发酵生产低温纤维素酶的方法
US20080003641A1 (en) * 2006-05-16 2008-01-03 Pao-Chuan Hsieh The production of high-activity superoxide dismutase (sod) and application in methods of both the solid-state and liquid-state fermentation
CN102093987A (zh) * 2009-12-11 2011-06-15 大连大学 微生物发酵生产低温植酸酶的方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1807610A (zh) * 2006-01-23 2006-07-26 迟乃玉 微生物发酵生产低温纤维素酶的方法
US20080003641A1 (en) * 2006-05-16 2008-01-03 Pao-Chuan Hsieh The production of high-activity superoxide dismutase (sod) and application in methods of both the solid-state and liquid-state fermentation
CN102093987A (zh) * 2009-12-11 2011-06-15 大连大学 微生物发酵生产低温植酸酶的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
郑洲 等: "产低温超氧化物歧化酶南极菌株的筛选、鉴定及其部分酶学性质", 《极地研究》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103881929A (zh) * 2014-03-13 2014-06-25 湛江德玥生物工程有限公司 净化用复合菌和净化用复合益生菌制剂及制备方法
CN103881929B (zh) * 2014-03-13 2017-03-01 湛江德玥生物工程有限公司 净化用复合菌和净化用复合益生菌制剂及制备方法
CN104630188A (zh) * 2015-02-16 2015-05-20 大连大学 海洋微生物发酵生产低温葡甘聚糖酶的方法
CN105920580A (zh) * 2016-04-28 2016-09-07 中山大学 海洋微生物来源化合物p-3在制备抗衰老药物中的应用
CN106987565A (zh) * 2017-05-22 2017-07-28 大连大学 一种海洋低温超氧化物歧化酶提取分离工艺
CN107890108A (zh) * 2017-11-10 2018-04-10 大连大学 一种抗皮肤氧化的sod保健品
CN107927763A (zh) * 2017-11-10 2018-04-20 大连大学 一种抗衰老的海洋低温sod保健品

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102653737A (zh) 海洋微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法
CN103232963B (zh) 一种胶原蛋白酶产生菌
CN102676480B (zh) 一种应用自诱导培养基和双温度调控策略生产胞外普鲁兰酶的方法
CN103695341B (zh) 一种由海洋细菌分泌的褐藻胶裂解酶及其制备方法
CN104450561B (zh) 一株产甲壳素酶菌株及其利用蟹壳发酵产甲壳素酶的应用
CN105176883B (zh) 一株高产中温α-淀粉酶的枯草芽孢杆菌及其液体发酵方法
CN104388496B (zh) 一种酶法降解几丁质生产n‑乙酰氨基葡萄糖的方法
CN104403953B (zh) 一种饲料用酿酒酵母菌高密度发酵培养基配方及其应用
CN102559802B (zh) 一种培养基发酵高产银耳多糖的方法
CN104630167A (zh) 海洋微生物发酵生产低温葡萄糖氧化酶的方法
CN102093989B (zh) 微生物发酵生产低温生淀粉糖化酶的方法
CN107475273B (zh) 新几丁质酶p1724及其应用
CN102827777A (zh) 海绵共附生土曲霉及制备(+)-terrein的用途
CN102653733A (zh) 微生物发酵生产低温超氧化物歧化酶的方法
CN102093990A (zh) 微生物发酵生产低温淀粉酶的方法
CN102093992A (zh) 微生物发酵生产低温蛋白酶的方法
CN103898012A (zh) 一株海旋菌及制备琼胶酶的方法
CN102653746A (zh) 微生物发酵生产低温β-半乳糖苷酶的方法
CN104711208B (zh) 一种具有高的淀粉分解能力的乳酸菌
CN102653749A (zh) 微生物发酵生产低温壳聚糖酶的方法
CN101861796B (zh) 一种利用有色稻米发酵废糟培养豹斑毒鹅膏的方法
CN108531418A (zh) 一种壳聚糖酶的制备方法
CN105087427B (zh) 产琼胶酶的需钠弧菌及其应用
CN104789489B (zh) 一株高产精氨酸脱亚胺酶的蜡样芽孢杆菌及其应用
CN104630188A (zh) 海洋微生物发酵生产低温葡甘聚糖酶的方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20120905