CN102618664B - 一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法 - Google Patents
一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102618664B CN102618664B CN201210133660.8A CN201210133660A CN102618664B CN 102618664 B CN102618664 B CN 102618664B CN 201210133660 A CN201210133660 A CN 201210133660A CN 102618664 B CN102618664 B CN 102618664B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- mirna
- sequence
- probe
- tetra
- target
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明涉及一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法。本发明的miRNA检测探针包括三个部分:靠近3'端为G-四链体形成序列,中间是待测靶标miRNA互补序列,5'端为干扰序列。探针在通常条件下为hairpin结构,加入靶标后,由于DNA-RNA杂合体的碱基对数与稳定性均高于干扰序列形成的DNA双链,hairpin结构将打开。打开的hairpin结构在双链特异内切酶的作用下可释放出G-四链体形成序列,再在钠钾离子作用下使之形成G-四链体,与Hemin组装从而产生有过氧化物酶活性的催化剂。本发明检测miRNA的方法只需一条探针,产生的信号可视化,而且不需昂贵仪器。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学和核酸化学领域,涉及一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法。
背景技术
MicroRNAs(miRNAs)是真核细胞中发现的一类有调控功能的非编码RNA,通常大约有20~25个核苷酸。miRNAs是由较长的含有hairpin结构的前体经过Dicer酶的剪切加工形成的,随后与RNA诱导的沉默复合体(miRISCs)结合,并通过碱基互补配对识别相应的信使RNA(mRNA)。由于互补程度的不同,miRNA可以降解或阻遏靶mRNA阻遏靶mRNA的翻译。miRNA在动植物中有广泛表达,参与细胞增殖凋亡、发育、病毒防御、造血、器官形成、脂肪代谢等多种调节过程。miRNA具有保守性,特异性和时序性,只在特定的细胞和组织中表达,因此决定了细胞和组织功能的特异性。区别于寡核苷酸和RNA的降解片段,miRNA3’端为羟基,5’端有一个磷酸基。目前,miRNA的功能仅被部分阐明,近年来,有报道miRNA与细胞癌变具有密切关联。miRNA的功能类似于癌基因或抑癌基因,有些miRNA会协同行使癌基因的功能,使一些凋亡蛋白受到抑制而另外一些miRNA在正常组织中高表达,它们的缺失或低表达可以导致细胞的转化和一些癌基因的激活。因此,miRNA可以作为一个重要的肿瘤标识物,针对miRNA的检测对于早期诊断和愈后诊断有重要意义,同时也为其功能研究提供重要依据。
miRNA由于同源性高,长度较短,细胞或组织内含量低,针对它的高灵敏高选择性检测方法仍然有待进一步完善。目前的miRNA检测方法仍然以传统的Northern Blot为主,依赖于转印迹与杂交。这种方法主要的缺点在于工作流程长,操作复杂,费时,同时需要的样本量大,灵敏度有限,而且探针需要放射性或碱性磷酸酶等标记,这些都产生环境污染与资源浪费。近年发展了一些新的检测方法。芯片技术的发展为高通量检测及筛选带来重大突破,芯片的应用结合不同标记包括碱性磷酸酶,荧光标记,量子点纳米金等,提供了多种信号放大的途径,大大提高了检测的灵敏度。但是芯片及各种标记法均带来检测成本的提高。随后,分子信标的应用为miRNA的检测带来了新的途径,但是在检测miRNA的应用中由于miRNA长度的限制,使得分子信标环状区的长度局限于20-25个碱基左右,因而往往无法完全打开茎秆区而仅产生较低信号,同时分子信标荧光的产生只能是线性扩增,放大倍数不高。随后,RT-PCR的应用,滚环扩增,恒温指数扩增等均发展用来检测miRNA,这些方法各有优势,但是复杂的标记及探针设计,仪器的要求等仍然限制着它们的应用。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于提供一种miRNA检测探针和高灵敏低成本检测miRNA的方法。
本发明是基于G-四链体与血红素Hemin形成的复合物具有过氧化物酶活性,催化底物2,2′联氮双(3′-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二胺盐(ABTS)被过氧化氢氧化,产生绿色产物。
本发明的探针在靶标miRNA存在的条件下被双链特异性内切酶的酶切后释放出G-四链体形成序列,在钠钾离子及Hemin的共同作用下形成有过氧化物酶活性的复合物,对过氧化氢催化底物ABTS反应,产生绿色产物。此过程可肉眼观察,从而实现miRNA的可视化检测。工作原理如图1所示。
为实现上述目的,本发明所提供的检测探针如下:
一种miRNA检测探针,包括三个部分:靠近3′端为G-四链体形成序列,中间是待测靶标互补序列,5′端为干扰序列;
所述G-四链体形成序列含有4段GGG序列参与G-四链体形成;
所述待测靶标互补序列为loop环,与相应的靶miRNA完全互补;
所述干扰序列有5-10个与G-四链体形成序列互补的碱基。
所述G-四链体形成序列在非工作条件下,与干扰序列互补配对而不形成G4,整个探针为hairpin结构。仅当有待测靶标存在时,hairpin结构打开,在双链特异内切酶的作用下,G4序列被释放出来形成四链体结构,产生过氧化物酶活性。
在没有靶标miRNA的情况下,由于干扰序列形成双链区具备一定的稳定性,hairpin结构仍然保持。加入靶标后,由于DNA-RNA杂合体的碱基对数与稳定性均高于干扰序列形成的DNA双链,hairpin结构将打开。我们引入一种双链特异的内切酶,只对双链DNA及DNA-RNA杂合体中的DNA链切割,而对于单链DNA及RNA不切割。打开的hairpin结构在这种酶切的作用下可释放出G-四链体形成序列,再在钠钾离子作用下使之形成G-四链体,从而产生有过氧化物酶活性的催化剂。
为减少探针自身在钠钾离子条件下形成G-四链体或干扰序列在酶作用下被切割而释放出G-四链体导致的背景升高,我们对干扰序列的长度进行了优化。优化结果显示,当干扰序列的长度为8个碱基时,其检测的效果是最佳的,阳性信号和阴性信号的差别最大,可以达到16。
为方便使用,本发明还提供包括含有上述miRNA检测探针的试剂盒。
本发明还提供一种可视化检测miRNA的方法,其包括如下步骤:
1)、设计DNA过氧化物酶检测探针体系:根据待测miRNA设计合成本发明所述的miRNA检测探针;
2)、将合成的miRNA检测探针与待测miRNA互补配对,并加入双链特异内切酶,通过酶切释放出G-四链体;
3)、加入钠钾离子,并与Hemin共同培育,然后通过过氧化物酶所催化的显色反应,来检测相应靶miRNA。
当待测miRNA为miR141时,上述检测方法的优选的条件是:
miRNA检测探针干扰序列的长度设置为8个碱基,miRNA检测探针的浓度为1000nM,双链特异性核酸内切酶的用量为0.1U。
本发明的优点和有益效果在于:
1、本发明的检测miRNA的方法中,设计的每一个探针针对一个特定的miRNA序列;只需单一探针,不需要额外模板序列,组装探针或是竞争序列;信号强度与背景可相差16倍,探针对靶标的特异性识别,在其他不与之完全配对的miRNA存在的情况下不产生明显增强信号;所有结果均仅用肉眼观察即可明确地区分靶标miRNA。
2、本发明的miRNA检测探针可满足不同检测需要。探针可用于快速筛查样本中是否含有靶标miRNA;对于已知存在靶标miRNA的,通过本探针与标准品作工作曲线从而计算出实际样品的靶标含量。
3、本发明设计的探针对实际临床样本中的靶标有较好响应,且对于不同表达量的样品有较好区分度。
附图说明
图1本发明的可视化检测miRNA方法的工作原理图。
图2实施例1所检测的miRNA序列。
图350nM MiR141存在条件下系列优化探针干扰片段长度的响应。
图4不同浓度双链特异内切酶和DNA探针条件下的响应
图5探针浓度1μM,DSN浓度为0.1U时,miR141的浓度梯度。
图6不同浓度miR141体系产生的最大紫外吸收信号。
图7特异设计针对miR141的探针分别对miR141及miR429的响应。
图8从MCF-7及HeLa细胞提取的miRNA样本中,利用本发明设计的探针检测miR141的响应。
具体实施方式
以下实施例用于进一步说明本发明,但不应理解为对本发明的限制。若无特别说明,本发明中所涉及到的实验均为本领域技术人员所熟知的常规操作。
实施例1
1.miRNA检测探针体系的设计
(1)探针包含三个部分,G-四链体序列,该G-四链体即为通常意义上的信号部分;干扰序列;与靶标互补序列,这部分序列设计为特异检测目标miRNA。探针在通常条件下为hairpin结构,其中干扰序列与3′端G-四链体形成序列部分互补形成双链,待测miRNA的互补序列为loop环。
(2)所需达到的检测目标:对于相应靶标miRNA探针能产生很好信号响应,颜色足够能达到肉眼可见,并且对非靶标miRNA不产生背景。为达到此目的,设计一系列探针,探针的显色序列一致,在探针的干扰序列之间彼此相差一个碱基。
2.验证探针的灵敏性和选择性
(1)寡核苷酸定量
根据各寡核苷酸(探针A,B,SIB,待测片段C)样品管上所标注的纳摩尔数加入10倍微升数的超纯水(电阻率为1018Ω),充分溶解。取10μL寡核苷酸母液加入990μl双蒸水中,即稀释100倍,用于寡核苷酸定量,定量溶液95℃加热5分钟,取出迅速置于冰上冷却,混匀后离心,破坏高浓度寡核苷酸母液中可能存在的二级结构,保证寡核苷酸为单链状态。测定寡核苷酸定量溶液在260nm处的紫外吸收值,根据各寡核苷酸的毫摩尔吸光系数,得到母液浓度,根据需要将各寡核苷酸母液稀释成100μM或50μM,-20℃保存。
(2)双链特异性内切酶酶切反应
待测miRNA选取被研究较多的miRNA200家族的miR141及miR429,如图2所示。系列探针分别在在探针的干扰序列之间彼此相差一个碱基,这样可以影响探针在hairpin结构时的稳定性,使得探针既能在与靶标miRNA结合后能被打开,从而避免干扰序列形成的双链被酶切产生背景,又不至于在不存在靶标时由于自身不稳定而形成单链,在后续过程中形成G-四链体而产生背景。
每个样品为50μL反应体系,包括DEPC水,10×DSN缓冲溶液,双链特异内切酶(DSN)酶,RNA酶抑制剂,探针和靶标miRNA。具体的,取洁净无RNase的PCR管,按顺序加入上述组分,保证探针终浓度1μM,DSN酶0.1U,miRNA浓度梯度稀释。混匀后59℃温浴20min,之后冷至室温。从系列探针优化来看,干扰序列为8个碱基是响应最强,且背景相对较低,如图3所示,在图中,最高的一条曲线是干扰片段为8个碱基时对于50nM miR141的信号响应(当没有miRNA时,其背景为最低的曲线),第二高的一条曲线是干扰片段为7个碱基时对于50nMmiR141的信号响应(当没有miRNA时,其背景为第三低的曲线),第三高的一条曲线是干扰片段为9个碱基时对于50nM miR141的信号响应(当没有miRNA时,其背景为第二低的曲线)。双链特异内切酶原则上只切10个以上碱基对形成的双链或RNA-DNA杂合体,对10个以下碱基对不切割,但实验中发现对于干扰序列仍有少量切割,因此如果酶过量势必增加非特异切割,通过增加DNA探针用量并减少酶量发现,探针量为1000nM且酶量为0.1U每个反应的时候相对的信号强度和背景比例正合适,如图4所示。在图中,最高的曲线是探针量为1000nM且酶量为0.1U时的信号响应(当没有miRNA时,其背景为最低的曲线),第二高的曲线是探针量为500nM且酶量为0.2U时的信号响应(当没有miRNA时,其背景为第二低的曲线)。
(3)检测样品的动力学测试
DNA过氧化物酶催化H2O2氧化ABTS2-所生成的ABTS·-在414nm处有最大吸收,我们通过监测检测体系在414nm的吸收来判断检测体系的过氧化物酶活性,进而推断靶miRNA存在与否。DNA过氧化物酶反应在缓冲液:25mMHEPES-NH4OH(pH8.0)、200mM NaCl、20mM KCl、及1%DMSO中进行,反应底物H2O2和ABTS2-的浓度均为2mM。每个样品含有指定浓度的各种寡核苷酸和50nM Hemin。从检测结果看,miRNA141浓度最低到20pM时,体系仍有明显响应,高浓度到200nM时有16倍信号增强,如图5及图6所示。在图中,曲线的高度依次降低时,分别反映的是从200nM miRNA、50nM、10nM、2nM、400pM、80pM、20pM以及没有miRNA时的信号响应。
具体步骤,取1.5mL离心管,加入约270μL超纯水、40μL 10×混合盐溶液、40μL 10×H-Buffer,之后加入每个在步骤(1)中经DSN酶切的反应体系。样品混和均匀后离心,95℃加热5分钟,取出冷却至室温;每个样品中加入4μL12.5μM Hemin溶液,Hemin终浓度为125nM,混匀后离心,室温放置1小时或4℃放置3小时。
检测反应在室温下进行,用Shimadzu UV-2550型分光光度计的动力学模式监测反应的动力学过程。414nm为监测波长,1秒记录1次数据,记录3分钟。反应前,每个样品中加入1.6μL 50mM ABTS溶液,混匀,取500μL样品于参比池,再取1.6μL 1MH2O2粘附在样品池内壁,将剩下的500μL样品沿粘附有H2O2的样品池内壁注入,关闭样品仓门,点击“开始”按钮,开始记录数据。从结果看,50nM miRNA浓度时,有很深肉眼可见的绿色产生,2nM时有肉眼可见绿色。特异设计针对miR141的探针对于miR141响应很强,针对与miR141同源的miR429序列响应很弱,如图7所示。
3.利用探针对细胞内提取的miRNA进行检测
选取miRNA141高表达及低表达的两种细胞MCF-7和HeLa细胞作对比。细胞按106个/瓶的密度接种于T25培养瓶,24小时后提取miRNA。具体依照miRNA提取试剂盒提取高纯度miRNA。流程如下:
a.胰酶消化并收集106个细胞,PBS洗涤一次,离心(400×g)5min取细胞,弃上清。加入1ml裂解液MZ,振荡器振荡或移液器吸打数次混匀,整个过程避免降解miRNA。
b.将匀浆样品在室温放置5分钟,使得核酸蛋白复合物完全分离。
c.4℃13,400×g离心5分钟,取上清,转入一个新的无RNase的离心管中。
d.加入200μl氯仿,盖好管盖,剧烈振荡15秒,室温放置5分钟。
e.4℃13,400×g离心15分钟,样品会分成三层:黄色的有机相,中间层和无色的水相,RNA主要在水相中,水相的体积约为500μl。把水相转移到新管中,进行下一步操作。
f.加215μl无水乙醇,混匀,出现少许沉淀。将得到的溶液和沉淀一起转入miRspin column中,室温13,400×g离心30秒,离心后弃掉miRspin column,保留流出液。
g.加525μl无水乙醇,混匀,出现少许沉淀。将得到的溶液和沉淀一起转入miRelute column中,室温13,400×g离心30秒,离心后弃掉流出液,保留miRelute column。
h.向miRelute column中加入500μl去蛋白液MRD,室温静置2分钟,室温13,400×g离心30秒,弃废液。
i.向miRelute column中加入700μl漂洗液RW,室温静置2分钟,室温13,400×g离心30秒,弃废液。
j.向miRelute column中加入500μl漂洗液RW,室温静置2分钟,室温13,400×g离心30秒,弃废液。
k.将miRelute column放入2ml收集管中,室温13,400×g离心1分钟,去除残余液体。
l.将miRelute column转入一个新的1.5ml离心管中,加10μl RNase-freeddH20,室温放置2分钟,室温13,400×g离心2分钟。
结果显示,我们的方法可以检测到105个细胞抽提得到的microRNA样品,且发现MCF7的miR141水平显著高于Hela,这与已知文献高度一致,如图8所示。
Claims (6)
1.一种miRNA检测探针,其特征在于,包括三个部分:靠近3'端为G-四链体形成序列,中间是待测靶标互补序列, 5'端为干扰序列;
所述G-四链体形成序列含有4段GGG序列参与G-四链体形成;
所述待测靶标互补序列为loop环,与相应的靶miRNA完全互补;
所述干扰序列有5-10个与G-四链体形成序列互补的碱基。
2.根据权利要求1所述的miRNA检测探针,其特征在于,干扰序列的长度为8个碱基。
3.含有权利要求1或2所述miRNA检测探针的试剂盒。
4.一种可视化检测miRNA的方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)、根据待测miRNA设计合成权利要求1或2所述的miRNA检测探针;
2)、将合成的miRNA检测探针与待测miRNA互补配对,并加入双链特异内切酶,通过酶切释放出G-四链体;
3)、加入钠钾离子,并与Hemin共同培育,然后通过过氧化物酶所催化的显色反应,来检测相应靶miRNA。
5.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于,待测miRNA为miR141。
6.根据权利要求5所述的检测方法,其特征在于,miRNA检测探针干扰序列的长度设置为8个碱基,miRNA检测探针的浓度为1000 nM,双链特异性核酸内切酶的用量为0.1U。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210133660.8A CN102618664B (zh) | 2012-05-03 | 2012-05-03 | 一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210133660.8A CN102618664B (zh) | 2012-05-03 | 2012-05-03 | 一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102618664A CN102618664A (zh) | 2012-08-01 |
CN102618664B true CN102618664B (zh) | 2014-01-01 |
Family
ID=46558867
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201210133660.8A Expired - Fee Related CN102618664B (zh) | 2012-05-03 | 2012-05-03 | 一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102618664B (zh) |
Families Citing this family (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104250645B (zh) * | 2013-06-27 | 2017-05-03 | 昆山彭济凯丰生物科技有限公司 | 一种rna片段及其制备方法和用途 |
CN103383355B (zh) * | 2013-07-12 | 2015-09-30 | 华南师范大学 | 基于非酶扩增及电化学发光原理的microRNA检测方法 |
US10460828B2 (en) * | 2016-09-30 | 2019-10-29 | Lifeos Genomics Corporation | Method of nucleic acid fragment detection |
CN106868118A (zh) * | 2017-02-10 | 2017-06-20 | 成都理工大学 | 一种基于两端锁定DNA酶的分子信标识别miRNA新方法 |
CN107385037B (zh) * | 2017-07-24 | 2021-04-13 | 东莞微量精准检测研究院有限公司 | 一种miRNA间接实时荧光定量PCR检测方法 |
CN108424953B (zh) * | 2018-05-11 | 2021-08-20 | 湘潭大学 | 一种基于同时检测DNA和miRNA的荧光检测试剂盒 |
CN110452965A (zh) * | 2019-05-28 | 2019-11-15 | 临沂大学 | 基于重组酶扩增和g-四连体的层出镰刀菌目视检测方法 |
CN110229872B (zh) * | 2019-06-14 | 2020-11-10 | 中国科学院化学研究所 | 一种基于G-四链体探针结构解旋的可视化识别microRNA的检测方法 |
CN110452810B (zh) * | 2019-08-15 | 2022-05-27 | 济南大学 | 一种检测MicroRNA的生物传感器及其制备方法和应用 |
CN112795626A (zh) * | 2021-02-05 | 2021-05-14 | 中国科学技术大学 | 一种同时检测两种循环miRNA的可视化检测方法及检测探针 |
-
2012
- 2012-05-03 CN CN201210133660.8A patent/CN102618664B/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102618664A (zh) | 2012-08-01 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102618664B (zh) | 一种miRNA检测探针和可视化检测miRNA的方法 | |
Wang et al. | A novel polydopamine-based chemiluminescence resonance energy transfer method for microRNA detection coupling duplex-specific nuclease-aided target recycling strategy | |
CN103789435B (zh) | 一种基于级联恒温扩增的miRNA荧光检测试剂盒及方法 | |
EP2315852B1 (en) | Method for determining the origin of a sample | |
CN102549166A (zh) | 从未吸烟者中的MicroRNA及相关材料和方法 | |
US9217180B2 (en) | Oligonucleotide primer with omega structure for detecting short-chain RNAs and use thereof | |
CN103160611B (zh) | 一种microRNA检测探针和检测microRNA的方法 | |
WO2023025259A1 (zh) | 检测微小rna的方法和试剂盒 | |
CN108642152A (zh) | 基因分型检测的试剂盒及方法 | |
WO2023098157A1 (zh) | 用于hpv分型的多靶标核酸检测试剂盒和检测方法 | |
CN106770143A (zh) | 一种检测MiRNA的生物传感器及其制备方法 | |
CN104569394A (zh) | 一种多重miRNA肿瘤标志物检测方法及其应用 | |
CN105745335A (zh) | 用于对cMET核酸进行多模态分析的组合物及方法 | |
CN109251964B (zh) | 循环microRNAs检测试剂盒和特异性检测循环microRNAs的方法及应用 | |
Jiang et al. | Target-triggered assembly of functional G-quadruplex DNAzyme nanowires for sensitive detection of miRNA in lung tissues | |
CN104962555B (zh) | 利用级联的dna链替换反应的细胞内非编码rna检测方法 | |
Huang et al. | Target-induced multiple palindrome-mediated strand displacement amplification of Scarecrow-shaped DNA nanoprobe for ultrasensitive detection of MicroRNA | |
CN104404140B (zh) | 一种microRNA比色传感器的制备与应用 | |
CN110358810B (zh) | 一种检测miRNA的生物探针及检测方法和用途 | |
CN116287129B (zh) | 一种基于回折crRNA的超短链miRNA检测方法及系统 | |
EP2711430A1 (en) | MicroRNA based method for diagnosis of colorectal tumors and of metastasis | |
CN111996250A (zh) | 用于开发胃腺癌诊疗产品的分子标志物 | |
Katchy et al. | Expression profiles of estrogen-regulated microRNAs in breast cancer cells | |
CN118185924A (zh) | 基于CRISPR/Cas13a系统的一步法无靶标扩增可视化RNA病毒检测方法 | |
CN105506035A (zh) | 以多重dna片段为模板制备rna或dna探针的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20140101 Termination date: 20170503 |