CN102586260A

CN102586260A - 三疣梭子蟹PtCrustin-1基因及其编码蛋白和应用

Info

Publication number: CN102586260A
Application number: CN2012100644419A
Authority: CN
Inventors: 崔朝霞; 刘媛; 宋呈文; 李希红
Original assignee: Institute of Oceanology of CAS
Current assignee: Institute of Oceanology of CAS
Priority date: 2012-03-13
Filing date: 2012-03-13
Publication date: 2012-07-18

Abstract

本发明属于分子生物学技术领域，具体的说是一种三疣梭子蟹PtCrustin-1基因及其编码蛋白和应用。本发明利用cDNA文库和RACE技术从三疣梭子蟹中扩增到PtCrustin-1基因cDNA，该基因在三疣梭子蟹免疫防御方面发挥着重要作用。重组的PtCrustin-1蛋白对革兰氏阴性菌铜绿假单胞菌、革兰氏阳性菌金黄色葡萄球菌和藤黄微球菌的生长都具有明显的抑制效果，最小抑菌浓度分别为1.50μM、24.03μM、24.03μM、48.06μM；而对革兰氏阴性菌溶藻弧菌和真菌毕赤酵母没有明显的抑制作用。本发明为三疣梭子蟹的病害防治、基因辅助选育和饲料添加剂开发奠定基础。

Description

三疣梭子蟹PtCrustin-1基因及其编码蛋白和应用

技术领域

本发明属于分子生物学技术领域，具体的说是一种三疣梭子蟹PtCrustin-1基因及其编码蛋白和应用。

背景技术

Crustin是在甲壳动物体内发现的一种富含半胱氨酸残基的阳离子抗菌肽。它的分子量大小为7-14kDa，等电点在7.0-8.7之间，N端包含信号肽，C端包含WAP(whey acidic protein)结构域，该结构域是由8个Cys组成的四个二硫键核心(4-DSC)构成。根据在信号肽和WAP结构域之间的中间序列区结构，Crustin可分为I-III三种类型。I型Crustin主要存在于蟹、龙虾和螯虾中；II型和III型Crustin主要发现于对虾中。

Crustin最初被命名为carcinin，是从Carcinus maenas的颗粒血细胞中发现，而且对革兰氏阳性菌有明显的抑制作用。目前已有70多条Crustin序列在不同的甲壳动物中报道，包括蟹、龙虾、对虾和螯虾等。研究表明这些天然纯化或者体外重组的Crustin蛋白都具有明显的抑制革兰氏阳性菌生长的作用，而且都是高水平的组成型表达，提示Crustin在甲壳动物固有免疫系统中发挥重要作用。

三疣梭子蟹(Portunus trituberculatus)是一种重要的海产经济蟹类，由于其营养价值丰富、生长迅速等优点，已成为我国重要海水养殖品种。但随着养殖规模不断扩大以及集约化程度不断提高，由细菌、真菌等引起的各种疾病日趋严重，给梭子蟹养殖业造成巨大的经济损失。病害的不断爆发和病因的多样性迫切需要从三疣梭子蟹自身的免疫防御因子入手研究其抗病机制和开发新型的抗菌药物。

到目前为止，关于三疣梭子蟹Crustin的研究尚少。因此，识别、定性抗菌效应分子-Crustin对研究三疣梭子蟹的免疫防御机制和进行病害防治具有重要的理论和实践意义。

发明内容

本发明的目的是提供一种三疣梭子蟹PtCrustin-1基因及其编码蛋白和应用。

为实现上述目的，本发明采用的技术方案为：

一种三疣梭子蟹PtCrustin-1基因为序列表SEQ ID No.1中的碱基序列所示。

三疣梭子蟹PtCrustin-1基因编码蛋白为序列表SEQ ID No.2中氨基酸序列所示。

三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的应用：所述三疣梭子蟹PtCrustin-1基因编码蛋白的重组表达产物用于制备抗菌药物、免疫增强剂、饲料添加剂、防腐剂或保鲜剂。

所述三疣梭子蟹PtCrustin-1基因编码蛋白的重组表达产物可用于制备革兰氏阴性菌、革兰氏阳性菌的抑菌药物。所述革兰氏阴性菌为铜绿假单胞菌，革兰氏阳性菌为金黄色葡萄球菌、藤黄微球菌。

本发明所具有的优点：本发明利用表达序列标签技术(EST)、RACE技术从三疣梭子蟹中克隆到PtCrustin-1基因cDNA全长序列，通过PCR技术扩增编码PtCrustin-1成熟肽的基因片段并将其克隆到pET32a(+)表达载体中，在大肠杆菌BL21(DE3)-plysS实现体外重组表达。重组蛋白经TALON柱纯化和透析后，对革兰氏阴性菌铜绿假单胞菌、革兰氏阳性菌金黄色葡萄球菌和藤黄微球菌具有显著的抑菌活性，最小抑菌浓度分别为1.50μM、24.03μM、24.03μM、48.06μM；而对革兰氏阴性菌溶藻弧菌、真菌毕赤酵母没有明显的抑制作用。

本发明基因及其重组蛋白主要在药物生产、免疫增强剂、饲料添加剂以及防腐剂和保鲜剂生产中应用，另外还可以为进一步研究三疣梭子蟹免疫防御机制提供基础，并为三疣梭子蟹的病害防治和基因辅助选育提供参考。

附图说明

图1为本发明实例提供的纯化的三疣梭子蟹PtCrustin-1编码成熟肽的基因扩增产物电泳图(其中，M：DNA marker，1：成熟肽的基因扩增产物)。

图2为本发明实例提供的诱导和纯化的三疣梭子蟹PtCrustin-1重组蛋白电泳图(其中M：蛋白marker；1：未诱导菌体中表达的蛋白；2：IPTG诱导后表达的蛋白；3：纯化的重组蛋白)。

具体实施方式

下面的实施例中将本发明作进一步阐述，但本发明不限于此。

本发明中的三疣梭子蟹PtCrustin-1的cDNA序列克隆包括下列步骤：

a)三疣梭子蟹总RNA的提取及mRNA的纯化；

b)三疣梭子蟹cDNA文库构建；

c)三疣梭子蟹cDNA文库EST序列的大规模测定；

d)三疣梭子蟹EST序列的同源性分析及PtCrustin-1基因片段的筛选；

e)RACE扩增获得PtCrustin-1的全序列以及全序列的验证。

实施例1.

三疣梭子蟹PtCrustin-1基因为SEQ ID No.1中所示的碱基序列。

序列表SEQ ID No.1为：

(a)序列特征

●长度：1105bp(有效长度86-382)

●类型：碱基序列

●链型：单链

●拓扑结构：线性

(b)分子类型：双链DNA

(c)假设：否

(d)反义：否

(e)最初来源：三疣梭子蟹(Portunus trituberculatus)

(f)特异性名称：CDS

构建具体操作如下：

1.三疣梭子蟹总RNA的提取及mRNA的纯化：利用Invitrogen公司的Trizol试剂提取三疣梭子蟹总RNA，利用QIAGENE公司的Oligitex mRNA纯化试剂盒纯化mRNA。

2.三疣梭子蟹cDNA文库构建：利用Clontech公司的Creator SmartcDNA Library Construction Kit试剂盒使用说明构建cDNA文库。以纯化后的mRNA为模板，SMART IV Oligonucleotide(5′AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTGGCCATTACGGCCGGG 3′)和CDS III/3′PCR Primer(5′ATTCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACATG-d(T)30N_1N 3′)为引物，在反转录酶(MMLV reverse transcriptase)作用下转录合成cDNA第一链。用5′PCRPrimer(5′AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT 3′)和CDS III/3′PCR Primer(5′ATTCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACATG-d(T)30N_1N 3′)为引物经longdistance(LD-PCR)合成cDNA第二链。双链cDNA(ds cDNA)在45℃条件下经蛋白酶K(0.8mg/ml)消化20min，然后用SfiI酶进行酶切，酶切产物经1.5％琼脂糖凝胶电泳，利用QIAGEN公司QIAEX II Agarose GelExtraction Kit回收1-3kb的片段。将回收的片段与载体pDNR-LIB连接后纯化，通过电转化导入大肠杆菌感受态细胞，37℃条件下220rpm/min培养1h，加入终体积20％的甘油，即为全长cDNA原始文库。

3.三疣梭子蟹cDNA文库EST序列的大规模测定：文库中筛选阳性克隆，使用载体通用引物M13F(5′TGTAAAACGACGGCCAGT 3′)在ABI3730xl测序仪上进行序列测定，将得到的原始峰图文件(*.ab1，*.abd文件)数据经Phred程序处理转化为序列文件(*.seq)和质量文件(*.seq.qual)，依据质量文件提供的数值确定获得序列的误差概率，去除低质量的碱基，用cross-match程序屏蔽数据中的载体序列，从得到的数据中选取连续碱基质量大于Q13(准确率大于95％)且长度大于100bp的序列作为EST数据，具体《基因表达序列(EST)数据分析手册》(胡松年著，浙江大学出版社，2005年)。

4.三疣梭子蟹EST序列的同源性分析及PtCrustin-1基因片段的筛选：将获得的全部有效的EST数据进行聚类拼接，生成Contigs和Singletons，分别将所获得的Contigs与Singletons在数据库中进行BLASTn和BLASTx分析，结果显示在EST序列中发现了与眼斑龙虾Panulirusargus Crustin基因相似性较高(53％)的序列，根据相似性分析结果确定了三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的EST序列。

5.三疣梭子蟹PtCrustin-1基因cDNA全长序列的克隆：根据与PtCrustin-1基因同源的EST序列设计特异引物F1(5′GAATCAGGTTTTGCCACTACG 3′)和R1(5′TTGCTGAAGGTGGAAGTGA 3′)，分别利用载体通用引物M13F(5′TGTAAAACGACGGCCAGT 3′)和M13R(5′CAGGAAACAGCTATGACC 3′)进行3′和5′末端的扩增。PCR产物用1.5％琼脂糖凝胶电泳进行检测，用Axygen胶回收试剂盒进行PCR产物回收和纯化，再与pMD-18T载体(大连宝生物工程有限公司)连接，然后转化大肠杆菌感受态Trans1-T1(北京全式金生物技术有限公司)，挑选阳性克隆用载体引物M13-47和RV-M进行测序，所得结果经Phred/Phrap软件进行拼接，得到三疣梭子蟹PtCrustin-1基因全长cDNA序列见SEQ ID No.1。

6.三疣梭子蟹PtCrustin-1基因cDNA全长的验证：在测序拼接的PtCrustin-1全长序列上设计一对引物F2(5′TACACATCATGCAGAACCGAGTCG3′)和R2(5′TTGCTGAAGGTGGAAGTGA 3′)，以cDNA为模板进行全长的验证。测序及分析同5。

3′RACE扩增反应体系及反应条件：

25μl反应体系：

反应在TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Model TP600(Takara BioInc.)中进行，反应条件为：94℃变性3min；94℃变性30s，57℃退火50s，72℃延伸1min，34个循环；72℃延伸10min。

5′RACE扩增反应体系及反应条件：

25μl反应体系：

反应在TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Model TP600(Takara BioInc.)中进行，反应条件为：94℃变性3min；94℃变性30s，56℃退火50s，72℃延伸1min，34个循环；72℃延伸10min。

全长验证的PCR反应体系和反应条件为：

25μl反应体系：

序列表SEQ ID No.1从三疣梭子蟹中克隆到PtCrustin-1基因cDNA全长1105p，其中开放阅读框297bp，5′非翻译区85bp，3′非翻译区723bp，有多聚腺苷酸尾巴。

实施例2.

三疣梭子蟹PtCrustin-1序列表SEQ ID No.1所述碱基序列，所述的氨基酸序列如序列表SEQ ID No.2所述。

序列表SEQ ID No.2为：

其具有完整的编码蛋白含有98个氨基酸，其中编码序列的1-21个氨基酸为信号肽，成熟肽包含77个氨基酸，预测的分子量为8.78kDa，等电点为4.97。成熟肽具有典型的I型Crustin模式结构，包含一个富含半胱氨酸的区域(Cys-rich region)和一个WAP结构域(WAP domain)。其中，富含半胱氨酸的区域中4个半胱氨酸残基排列较为保守，呈C-(X3)-C-(X8-12)-C-C模式；WAP结构域包含8个半胱氨酸残基，它们能够形成四个二硫键核心(4-DSC)。

三疣梭子蟹PtCrustin-1重组蛋白的获得，具体操作如下：

根据SEQ ID No.2对应的cDNA序列，设计含有限制性内切酶BamHI和XhoI酶切位点的特异性引物F3(5′GGATCCTCCTCCTGCAGCACCTTTTGCA 3′)和R3(5′CTCGAGTTAGGGATCGGCAAGTTTGCAC 3′)，通过PCR技术扩增编码PtCrustin-1成熟肽的基因片段(参见图1)，反应在TaKaRa PCR ThermalCycler Dice Model TP600(Takara Bio Inc.)中进行，反应条件为：94℃变性3min；94℃变性30s，59℃退火50s，72℃延伸30s，34个循环；最后72℃延伸10min。然后通过酶切将其克隆到pET32a(+)表达载体中，转化到大肠杆菌BL21(DE3)-plysS，测序确认表达框正确后，接种阳性克隆到LB培养基中，37℃振荡培养至O.D.₆₀₀＝0.4-0.6，加入IPTG至终浓度为1mM诱导4小时后离心收集菌体。菌体在冰浴条件下用超声波180W处理30-60min(每次2s，间隔2s)，离心去掉上清，收集沉淀(含重组蛋白包涵体)。沉淀以8M的尿素溶解后，利用Clontech公司的TALON柱纯化重组产物。将纯化的重组蛋白转移到透析袋中，4℃条件下，在含有2mM还原谷胱苷肽、0.2mM氧化谷胱苷肽、1mM EDTA、50mM Tris-HCl、50mM NaCl、10％甘油和1％甘氨酸的及梯度降低的尿素(6M、5M、4M、3M、2M、1M、0M)的透析复性液(pH＝8.0)中透析，使重组蛋白复性，最后在50mM Tris-HCl(pH＝8.0)的缓冲液透析2次，以除去溶液中其它成分。透析复性后的重组蛋白经PALL公司的Microsep Advance超滤离心浓缩管进行浓缩，用碧云天公司的BCA蛋白浓度测定试剂盒测得三疣梭子蟹PtCrustin-1重组蛋白的浓度为5.09mg/ml(参见图2)。

实施例3.

三疣梭子蟹PtCrustin-1重组蛋白的体外抑菌试验：

1.微生物的培养及制备：溶藻弧菌用TSB培养基28℃，铜绿假单胞菌用TSB培养基37℃，金黄色葡萄球菌用LB培养基37℃，藤黄微球菌用LB培养基37℃，毕赤酵母用YPD培养基28℃，上述各菌株用摇床220rpm/min培养使菌浓度达到对数生长期时，分别用50mM Tris-HCl(pH＝8.0)缓冲液稀释菌体，分别使其每毫升菌液中的菌落数约为1×10³。

2.重组蛋白PtCrustin-1抑菌活性测定：利用上述实施例所得重组蛋白PtCrustin-1用Tris-HCl(50mM，pH＝8.0)梯度稀释(1、1/2、1/4、1/8、1/16、1/32、1/64、1/128、1/256)后，取50μl加到无菌平底96孔板(Costar，Fisher)中，50μl Tris-HCl(50mM，pH＝8.0)设为对照，然后加入50μl稀释好的菌悬液，并且混匀。只加入50μl菌液的孔为空白孔。96孔板在菌液的培养温度下孵育3小时后，加入相应的培养基150μl，空白孔加入培养基200μl，孵育过夜。加溶藻弧菌、铜绿假单胞菌、毕赤酵母的96孔板在波长为560nm的可见光下读数，加金黄色葡萄球菌和藤黄微球菌的96孔板在波长为600nm的可见光下读数。发现上述实施例重组蛋白PtCrustin-1对革兰氏阴性菌溶藻弧菌和铜绿假单胞菌、革兰氏阳性菌金黄色葡萄球菌和藤黄微球菌有明显的抑制作用，最小抑菌浓度分别为1.50μM、24.03μM、24.03μM、48.06μM；而对真菌毕赤酵母没有明显的抑制作用。

上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。

Claims

1.一种三疣梭子蟹PtCrustin-1基因，其特征在于：三疣梭子蟹PtCrustin-1基因为序列表SEQ ID No.1中的碱基序列所示。

2.一种权利要求1所述的三疣梭子蟹PtCrustin-1基因编码蛋白，其特征在于：所述PtCrustin-1基因编码蛋白为序列表SEQ ID No.2中氨基酸序列所示。

3.一种按权利要求1所述的三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的应用，其特征在于：所述三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的编码蛋白重组表达产物可制备抗菌药物、免疫增强剂、饲料添加剂、防腐剂或保鲜剂。

4.按权利要求3所述的三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的应用，其特征在于：所述三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的编码蛋白重组表达产物用于制备革兰氏阴性菌、革兰氏阳性菌的抑菌药物。

5.按权利要求4所述的三疣梭子蟹PtCrustin-1基因的应用，其特征在于：所述革兰氏阴性菌为铜绿假单胞菌，革兰氏阳性菌为金黄色葡萄球菌、藤黄微球菌。