CN102329359A - 一种制备18f-flt的工艺及其配套试剂盒 - Google Patents
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Abstract
一种制备18F-FLT的工艺及其配套试剂盒,涉及正电子药物及其试剂盒的制备,属于放射性药物及核医学技术领域。工艺步骤如下:a、用QMA柱对加速器生产的18F-进行捕获,然后用季铵盐TEABC或者TBAHCO3溶液将QMA柱上的18F-淋洗到反应管里;b、将步骤a中淋洗后所得18F-进行除水;c、将18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT用质子溶剂溶解,加入到步骤b所得的18F-进行亲核氟化反应;d、将步骤c所得亲核氟化产物用盐酸溶液水解,用碱性缓冲溶液中和;e、纯化步骤d的中和液得到产品18F-FLT。相对于现有合成工艺,本发明的方法是一种高效、高稳定性、高纯度的18F-FLT合成工艺,也可用于制造新型18F-FLT等正电子药物合成模块。
Description
技术领域
本发明涉及正电子药物及其试剂盒的制备,属于放射性药物及核医学技术领域。
背景技术
正电子发射计算机断层( PET) 是现代生物医学的尖端技术,它可从分子水平显示机体及病灶组织的细胞代谢、细胞功能、细胞增殖状况,是诊断肿瘤和评价肿瘤生物学特性的有利工具。目前常用的PET示踪剂是18F-FDG,但其主要反映体内葡萄糖代谢的情况,不能高特异性、高选择性地检测肿瘤,而且18F-FDG无法分辨肿瘤和炎症。相比之下,显像DNA合成途径可检测到肿瘤细胞增殖的改变,能分辨出肿瘤和炎症,从而能够特异地诊断肿瘤。
18F-FLT是一种胸腺嘧啶类似物,能够和胸腺嘧啶一样进人细胞内,并被细胞质内的人胸苷激酶-1(thymidine kinase-1, TK-1)磷酸化,但由于3'端氟原子的置换,其磷酸化后的代谢产物不能进一步参与DNA的合成,也不能通过细胞膜返回到组织液而滞留在细胞内。肿瘤细胞在增殖的过程中,DNA的合成需要TK-1上调,加快核苷类底物的合成利用,因而处于S期的细胞TK-1活性增强,18F-FLT PET通过反映TK-1的活性而间接反映肿瘤细胞的增殖状况,有助于对肿瘤进行良恶性鉴别、疗效评估和预后判断,是具有应用前景的PET用显像剂。
合成18F-FLT的前体较多,主要有5种,但目前报道合成效率最高的前体是MTR-Nos-Boc-LT(3-N-Boc-5-DMTr-3-Nos-2-脱氧-β-D-胸腺嘧啶核苷)。现有的制备方法,其主要步骤均是:1、K222/K2CO3将18F-离子从QMA柱淋洗下来,蒸发干燥;2、加入无水乙腈,干燥;3、加入前体,进行亲核取代反应;4、加入盐酸溶液,高温水解;5、加入氢氧化钠,中和;6、最后经纯化去除氟离子等杂质,过无菌滤膜得到无色透明的中性注射液。
主要反应如下:
但现有合成18F-FLT的工艺存在明显不足:(1)合成效率普遍较低,为了提高合成效率,需要的前体用量很大(多在30-40mg)且反应慢,而18F-FLT的前体价格贵,增加前体用量就增加了合成成本;(2)反应中需加入毒性很高的K222,为了去除该K222,现有技术均采用HPLC纯化方法,繁琐并需要时间长,而由于F-18的半衰期为110min左右,延长反应时间会降低合成效率;(3)另外,采用制备型HPLC分离时有比较多的放射性损失在柱上,降低了合成效率,工作量大,不宜推广。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有合成18F-FLT的工艺的缺陷,提供了一种合成效率高、成本低的合成工艺。
为了解决上述技术问题,本发明提供了如下的技术方案:
一种制备18F-FLT的工艺,步骤如下,a、用QMA柱对加速器生产的18F-进行捕获,然后用季铵盐溶液将QMA柱上的18F-淋洗到反应管里;b、将步骤a中淋洗后所得18F-进行除水;c、将18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT用质子溶剂溶解,加入到步骤b所得的18F-进行亲核氟化反应;d、将步骤c所得亲核氟化产物用盐酸溶液水解,用碱性缓冲溶液中和;e、纯化步骤d的中和液得到产品18F-FLT。
进一步地,所述步骤c的亲核氟化反应在密闭条件下加热至100-140摄氏度进行,反应时间5-20分钟。
所述步骤e的纯化过程为,粗产品依次经三氧化二铝柱、C-18柱纯化,再用注射用水洗柱,洗脱液经过无菌过滤后得终产品。
制备18F-FLT的工艺的配置试剂盒,包括前体瓶A、洗脱液瓶B、前体溶剂瓶C、酸瓶D和碱性缓冲溶液瓶E,每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的洗脱液瓶B内包括0.3-0.6ml水,0.3-0.6ml乙腈,10-40μl季铵盐,所述的季铵盐为TEABC或者TBAHCO3。每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的前体溶剂瓶C内包括1-4ml质子溶剂和0.1-0.4ml乙腈,所述的质子溶剂为叔丁醇或T -戊醇或2,3-二甲基-2-丁醇。每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的酸瓶D包括2-4ml浓度为1mol/L的盐酸。每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的碱性缓冲溶液B包括1.7-3.7ml浓度为1mol/L的氢氧化钠和2ml浓度为2mol/L的乙酸钠。
本发明的优点在于:用季铵盐代替K2.2.2/K2CO3,用惰性质子溶剂溶解前体进行氟化反应,制备中间体的反应是在密闭条件下进行的,盐酸水解完之后利用强碱和缓冲溶液进行中和,HPLC纯化,经过无菌滤膜得到可应用到临床的产品。本发明所述的合成工艺适用于现有的18F-FLT的自动化合成系统,相对于现有合成工艺,本发明的方法是一种高效、高稳定性、高纯度的18F-FLT合成工艺,也可用于制造新型18F-FLT等正电子药物合成模块。
附图说明
附图用来提供对本发明的进一步理解,并且构成说明书的一部分,与本发明的实施例一起用于解释本发明,并不构成对本发明的限制。在附图中:
图1是本发明合成的18F-FLT的HPLC分析图,其中,a:FLT,b:18FLT;
图2是本发明制备的18F-FLT的模型鼠MicroPET显像图:
图3是本发明制备的18F-FLT 的A549肿瘤MicroPET显像药效评价的时间活度曲线。
具体实施方式
以下结合附图对本发明的优选实施例进行说明,应当理解,此处所描述的优选实施例仅用于说明和解释本发明,并不用于限定本发明。
1、试剂盒的组成
制备100个18F-FLT试剂盒,每个试剂盒中的试剂均装在10ml安瓿瓶中,试剂盒包括如下主要部分:A:前体,在真空干燥条件下,将比例量18F-FLT前体平均分成100份,装在10ml安倍瓶中,氮气保护。B:洗脱液,C:前体溶剂,D:盐酸,E:缓冲溶液的比例量如表1所示。
表1 实施例1-9数据统计表
2、利用1的各实施例试剂盒制备18F-FLT的方法
各实施例的具体工艺参数如表1所示。
(1)加速器生产的18F-被阴离子柱QMA(Waters)捕获后,被比例量洗脱液洗脱,加热蒸发除水至干,再加入1.5ml乙腈,加热蒸发至干。
(2)冷却后向残留物中加入比例量的质子溶剂、乙腈溶解的前体,在密闭条件下加热反应,结束后加热除去反应溶剂,得中间体DMTR-18F-Boc_LT。
(3)冷却后向反应体系加入比例量的盐酸和乙腈,在密闭条件下加热至85摄氏度,反应5分钟,得到粗产品18F-FLT。
(4)向粗产品中加入比例量的浓度为1mol/L的氢氧化钠和浓度为2mol/L的乙酸钠缓冲溶液,中和后,溶液呈中性。
(5)粗产品纯化,粗产品依次经三氧化二铝柱,C-18柱纯化,再用5ml注射用水洗柱,洗脱液经过无菌滤膜后获最终无色透明的产品。
该方法简单,可在现有的制备18F-FDG或其它正电子药物合成模块上用20-25分钟完成制备;不矫正合成效率在50%以上,产品放化纯在95%以上,产品的的HPLC鉴定结果如图1所示。
3、体外稳定性:
(1)将上述实施例1制得的18F-FLT溶液在室温下放置不同时间(1、2、3、4、5和6小时),然后进行HPLC分析,计算放射化学纯度。实验结果表明:18F-FLT在室温下可稳定存在6小时以上,其外观和放射化学纯度均无明显变化。
(2)模型鼠MicroPET显像:
将上述实施例1制备的18F-FLT静脉注射A549裸鼠模型,用MicroPET显像。观察用药物治疗条件下,肿瘤的活性变化,如图2所示。
(3)药效评价结果
实施例1的药物治疗0、2、5、9天扫描MicroPET,观察肿瘤的形态(体积)及功能(细胞代谢活性)变化情况,从图3的“时间活度曲线”定量分析可以看出:药物治疗后早期(3-7天内)肿瘤细胞活性即有敏感改变,而肿瘤体积的缩小则一般需要两至三周时间或更长。
最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员来说,其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (7)
1.一种制备18F-FLT的工艺,其特征在于:步骤如下,a、用QMA柱对加速器生产的18F-进行捕获,然后用季铵盐溶液将QMA柱上的18F-淋洗到反应管里;b、将步骤a中淋洗后所得18F-进行除水;c、将18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT用质子溶剂溶解,加入到步骤b所得的18F-进行亲核氟化反应;d、将步骤c所得亲核氟化产物用酸溶液水解,用碱性缓冲溶液中和;e、纯化步骤d的中和液得到产品18F-FLT。
2.根据权利要求1所述的制备18F-FLT的工艺,其特征在于:所述步骤c的亲核氟化反应在密闭条件下加热至100-140摄氏度进行,反应时间5-20分钟。
3.根据权利要求1所述的制备18F-FLT的工艺,其特征在于:所述步骤e的纯化过程为,粗产品依次经三氧化二铝柱、C-18柱纯化,再用注射用水洗柱,洗脱液经过无菌过滤后得终产品。
4.权利要求1-3所述的制备18F-FLT的工艺的配置试剂盒,包括前体瓶A、洗脱液瓶B、前体溶剂瓶C、酸瓶D和碱性缓冲溶液瓶E,其特征在于:每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的洗脱液瓶B内包括0.3-0.6ml水,0.3-0.6ml乙腈,10-40μl季铵盐,所述的季铵盐为TEABC或者TBAHCO3。
5.根据权利要求4所述的制备18F-FLT的工艺的配置试剂盒,其特征在于:每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的前体溶剂瓶C内包括1-4ml质子溶剂和0.1-0.4ml乙腈,所述的质子溶剂为叔丁醇或T -戊醇或2,3-二甲基-2-丁醇。
6.根据权利要求4所述的制备18F-FLT的工艺的配置试剂盒,其特征在于:每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的酸瓶D包括2-4ml浓度为1mol/L的盐酸。
7.根据权利要求4所述的制备18F-FLT的工艺的配置试剂盒,其特征在于:每10-30mg 18F-FLT前体MTR-Nos-Boc-LT所对应的碱性缓冲溶液B包括1.7-3.7ml浓度为1mol/L的氢氧化钠和2ml浓度为2mol/L的乙酸钠。
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