CN102002517B - 制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵培养基及其发酵方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵培养基及其发酵方法。本发明所提供的制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵方法包括以下步骤:将重组菌接种于所述发酵培养基,发酵培养,得到发酵液,即得到重组白细胞介素-1受体拮抗剂;所述重组菌为向大肠杆菌中导入序列表中序列1所示基因,得到的重组大肠杆菌,所述序列中序列1所示基因通过如下重组表达载体导入大肠杆菌:将序列中序列1所示基因插入PET-30a载体的多克隆位点得到的重组表达载体。本方法可重复性好;菌体生长快,可大幅缩短发酵周期;菌体产量高,可满足高密度发酵需要和目标蛋白表达率高,且可溶性良好。
Description
技术领域
本发明涉及制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵培养基及其发酵方法。
背景技术
重组白细胞介素-1受体拮抗剂(简称IL-1ra)是一种存在于人体的蛋白质类细胞因子受体拮抗剂,通过结合白细胞介素-1(IL-1)受体,特异性地封闭IL-1的活性。
自Arend等1990年克隆出人IL-1ra的cDNA以来,各国学者都在对IL-1ra进行更为全面、深入的研究。同时,众多制药厂商也都在致力于IL-1ra的开发,2003年美国FDA批准Amgen公司生产的重组人IL-1ra(商品名Kineret)用于治疗类风湿性关节炎。我国SFDA 2008年批准西藏华西药业生产的重组人IL-1ra用于治疗眼部非感染性炎症,虽然也有厂家申请IL-1ra用于治疗类风湿性关节炎,但是至今未有产品正式上市销售。
目前制备重组人白细胞介素-1受体拮抗剂的方法有真核表达和原核表达两种。真核表达产量低,成本高,但蛋白活性好。原核表达(大肠杆菌)表达分包涵体表达和可溶性表达。
发明内容
本发明的一个目的是提供一种用于制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵培养基。
本发明所提供的发酵培养基,由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠、葡萄糖、十二水磷酸氢二钠、磷酸二氢钾、氯化钙、硫酸镁、维生素B1、丙三醇聚氧丙烯聚氧乙烯醚和水;
以上成分在所述发酵培养基中浓度分别为:
胰蛋白胨32g/L、酵母粉20g/L、氯化钠0.5g/L、葡萄糖2g/L、十二水磷酸氢二钠15g/L、磷酸二氢钾3g/L、氯化钙0.011g/L、硫酸镁0.96g/L、维生素B10.033g/L、丙三醇聚氧丙烯聚氧乙烯醚0.2ml/L。
本发明的另一个目的是提供制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的方法。
本发明所提供的制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的方法,包括以下步骤:将重组菌接种于所述发酵培养基,发酵培养,得到重组白细胞介素-1受体拮抗剂;
所述重组菌为向大肠杆菌中导入序列表中序列1所示基因,得到的重组大肠杆菌,所述序列中序列1所示基因通过如下重组表达载体导入大肠杆菌:将序列中序列1所示基因插入PET-30a载体的多克隆位点得到的重组表达载体。
所述方法中,在所述发酵培养前,包括如下种子培养的步骤:
(1)一级种子培养:将重组菌接种于种子培养基A,在PH值为7.2、37℃和200rpm的条件下培养12小时得到一级种子液;
所述种子培养基A由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠和水;
以上成分在所述种子培养基A中浓度分别为:
胰蛋白胨10g/L、酵母粉5g/L、氯化钠10g/L;
(2)二级种子培养:将步骤(1)得到的一级种子液按1%接种量接入种子培养基B,在PH值为7.2、37℃和200rpm的条件下培养7-8小时得到二级种子液;
所述种子培养基B由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠和水;
以上成分在所述种子培养基B中浓度分别为:
胰蛋白胨16g/L、酵母粉10g/L和氯化钠5g/L。
所述发酵培养的温度为37℃;
所述接种量为9%-10%,具体为9%和10%;
所述发酵培养中,使发酵体系的溶氧量保持在30%-50%,具体为30%、40%和50%;
所述发酵体系的pH值为7.0-7.2,具体为7.0、7.1和7.2;
所述发酵体系为发酵容器内的所有物质。
所述发酵培养过程中,包括如下补料的步骤:在所述发酵体系的OD600达到7.0-9.0时,开始向发酵体系中补加补料培养基;
所述补加的补料培养基与所述发酵培养基的体积比为1∶3;
所述补料培养基由以下成分组成:
酵母粉、胰蛋白胨、甘油、葡萄糖、氯化铵、硫酸镁、维生素B1和水;
以上成分在所述补料培养基中浓度分别为:
酵母粉200g/L、胰蛋白胨20g/L、甘油200ml/L、葡萄糖10g/L、氯化铵10g/L、硫酸镁5g/L、维生素B10.1g/L。
所述发酵培养中,包括如下诱导培养步骤:在发酵体系的OD600值达到35-45时,向发酵体系中加入异丙基-β-D硫代半乳糖苷进行诱导培养,使异丙基-β-D硫代半乳糖苷在发酵体系中的浓度为0.1mmol/L-0.2mmol/L,诱导培养的时间为3h-4h;
所述大肠杆菌为大肠杆菌菌株BL21(DE3)。
本发明的制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵培养基及其发酵方法,适合重组大肠杆菌的生长和目标蛋白的表达。本工艺可重复性好;菌体生长快,可大幅缩短发酵周期;菌体产量高,可满足高密度发酵需要和目标蛋白表达率高,且可溶性良好。
附图说明
图1为PET-30a-IL-1Ra表达质粒构建示意图。
图2为IL-1ra PCR鉴定图。
图3为pET-hIL-1ra表达质粒酶切图谱
图4为IL-1ra大肠杆菌表达结果。
图5为IL-1ra工程菌划种LB琼脂平板的结果。
图6为电镜检查IL-1ra工程菌的形态。
图7为20100623批发酵SDS-PAGE电泳。
图8为20100205批发酵菌体生长曲线图。
图9为质谱分析测定IL-1ra工程菌发酵液样品的C末端序列结果。
图10为EDMAN降解蛋白质N-末端氨基酸的序列分析方法测定IL-1ra工程菌发酵液样品的N-末端氨基酸的序列。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1、构建IL-1ra工程菌
大肠杆菌表达载体PET-30a购自Novagen公司,产品目录号:69909-3;
大肠杆菌JM109菌株购自Promega公司;
大肠杆菌菌株BL21(DE3)购自MERCK公司;
PHA刺激的人外周血T细胞cDNA文库,购自美国Clontech Laboratories.Inc。
一、获得IL-1ra基因
1、IL-1ra cDNA的PCR扩增
以PHA刺激的人外周血T细胞cDNA文库为模板,加入合成的IL-1ra引物和dNTP,上游引物为:5′-GGCATATGCGACCCTCTGGGA-3′,下游引物为:5′-GGAGGACGAGTAAGTCGACAA-3′,上游引物引入NdeI酶切位点,从编码成熟人IL-1ra的第一个氨基酸开始,下游引物导入大肠杆菌高效终止密码TAA和SalI酶切位点。95℃5’变性后加入pfu DNA聚合酶2.5U,95℃1’,50℃1’30”,72℃1’30”一轮,经35轮反应,最后一轮72℃15’,得到的PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳进行鉴定,电泳结果如图2所示。利用美国Promega公司的Magic PCR纯化试剂盒纯化IL-1raPCR产物。
2、IL-1ra表达质粒的构建
将大肠杆菌表达载体PET-30a用NdeI和SalI酶切,将步骤1的PCR产物用NdeI和SalI酶切,与上面处理好的PET-30a连接,所用连接酶为T4DNA连接酶,构建成IL-1ra表达质粒PET-30a-IL-1Ra(图1)。
3、质粒酶切鉴定
将表达质粒PET-30a-IL-1Ra转入大肠杆菌JM109菌株,抗性筛选,挑取阳性克隆,将阳性克隆进行液体培养,提纯PET-30a-IL-1Ra表达质粒,经酚抽提,乙醇沉淀后,经内切酶KpnI、SalI消化,1%琼脂糖电泳鉴定,其酶谱与预期结果一致(图3:泳道1为λDNA+Hind III分子量标准;泳道2为PET-30a-IL-1Ra/Kpn I;泳道3为PET-30a-IL-1Ra/SalI;泳道4未切的pET-hIL-1ra。
4、目的基因的序列分析
PET-30a-IL-1Ra质粒高保真Taq酶PCR(上游引物为:5′-GGCATATGCGACCCTCTGGGA-3′,下游引物为:5′-GGAGGACGAGTAAGTCGACAA-3′),产物片段连入pGEM-T质粒(购自Promega公司)的克隆位点,构建成pGEM-T-IL-1Ra质粒,利用Pharmacia Biotech公司的自动DNA测序仪进行DNA的自动测序。
目的基因的DNA序列分析结果如下:
pGEM-T-IL-1Ra质粒的插入片段的序列为序列表中序列1,经序列分析证明与公布的序列完全一致,无突变点出现。序列表中序列1为完整的成熟区IL-1ra cDNA序列。成熟区IL-1ra cDNA编码152个氨基酸,包括N端附加的甲硫氨酸共为153个氨基酸(序列表中序列2)。
二、构建表达载体
1、人重组IL-1ra在大肠杆菌的表达
表达载体PET-30a-IL-1Ra转化宿主菌BL21(DE3)细胞,构建IL-1ra工程菌。同时用转空载体对照质粒PET-30a转化宿主菌BL21(DE3)细胞,构建转空载体对照菌。挑取单个菌落,接种IL-1ra工程菌和转空载体对照菌于LB培养基中(含100μg/ml Kana)在37℃培养振荡过夜,再以2%浓度接种于LB培养液中,到OD600为0.4左右,添加0.2mMIPTG开始诱导,继续培养4小时。将诱导表达的细菌离心,收集菌体,直接加入含SDS的裂解液进行SDS-PAGE分析及等电点分析。
诱导表达后的细菌裂解物通过SDS-PAGE分析,发现pET-30a-hIL-1ra克隆出现明显的表达带,分子量20KD,与文献报道分子量一致,而转空载体对照菌未出现分子量为20KD的表达带(见图4,图4为IL-1ra大肠杆菌表达结果,其中,泳道1为蛋白质分子量标准;泳道2为转空载体对照菌;泳道3为诱导后全菌;泳道4为菌体超声上清。)。经薄层扫描结果,表达量占菌体总蛋白的30%以上。
三、鉴定IL-1ra工程菌
(一)种子库鉴定
(1)菌种检定:划种LB琼脂平板
IL-1ra工程菌呈典型大肠杆菌集落形态,无其他杂菌生长。菌落圆形、小、隆起、透明或半透明、整齐、发亮(图5)。
(2)涂片革兰氏染色
在光学显微镜下观察为典型的革兰氏阴性杆菌。
(3)电镜检查
IL-1ra工程菌呈典型的大肠杆菌形态,无支原体、病毒样颗粒及其他微生物污染(图6)。
(4)生化反应
IL-1ra工程菌生化反应检测结果如表1所示。
表1IL-1ra工程菌生化反应检测结果
DP3(三氯新) | - | OFG(葡萄糖氧化) | + | GC(阳性生物抑制) | + |
ACE(乙酰氨) | + | ESC(七叶树苷) | - | PLI(植物尿蓝母) | - |
URE(尿素) | + | CIT(枸椽酸盐) | + | MAL(丙二酸盐) | + |
TDA(苯丙氨酸) | - | PXB(多粘菌素B) | - | LAC(乳糖) | + |
MLT(麦芽糖) | - | MAN(甘露醇) | + | XYL(木糖) | + |
RAF(棉子糖) | - | SOR(山梨糖) | + | SUC(蔗糖) | - |
INO(肌醇) | - | ADO(侧金盏花醇) | - | COU(香豆酸) | + |
H2S(硫化氢) | - | ONP(β-半乳糖苷酶) | + | RHA(鼠李糖) | + |
ARA(阿拉伯糖) | + | GLU(葡萄糖发酵) | + | ARG(精氨酸) | - |
LYS(赖氨酸) | - | ORN(鸟氨酸) | - | OXI(氧化酶) | - |
(二)工程菌传代稳定性
1.酶切鉴定
根据IL-1ra基因和载体质粒pET-30a酶切图谱,IL-1ra基因序列中有KpnI、PvuII的单酶切位点。从工程菌原代开始每传五代提一次质粒,并用KpnI和PvuII分别酶切质粒,一直到第50代,其酶谱与预期结果一致。
2.抗性鉴定
将LB平板分成左右两个区,从工程菌原代开始,每传五代,划一次LB平板,一直到第50代,结果表明工程菌的Kana抗性很稳定。
3.工程菌传代表达稳定性
(1)实验材料:试管Φ10、100;甘油(分析纯);甘油冻存菌(-20℃、-70℃);1L中含有LB培养基:Tyrptone 10g;
Yeast extract 5g;
NaCl 10g;
卡那霉素 0.5g;
氢氧化钠 调PH7.2
(2)使用设备:空气恒温摇床G24(NBS);超净工作台JS-90(北京);恒温培养箱HHX-50(湖北);灭菌锅(日本);扫描仪Alpha Image 1220(美国)
(3)实验方法:
A.配置LB培养基:称取Tyrptone 5g、Yeaster extract 2.5g、NaCl 5g,放到1L烧杯中加纯水溶解,用1N NaOH调pH为7.2,定容到500ml,分装到两只500ml三解瓶中,121℃、30分钟灭菌。待冷却到50℃,加卡那霉素使终浓度为100μg/ml,超净台中分装试管2ml/只,4℃保存备用。
B.培养:取甘油保存(-20℃)菌种一支,向LB试管加入0.1ml菌种,37℃培养箱培养过夜。将培养好的菌种各取0.1ml分别加入三只新的LB试管中,一支放到37℃培养箱中培养,作为下代菌种,其余两支入到摇床中37℃、250转/分培养4小时,然后取出其中一支作为诱导前对照,将另一支试管进行诱导4小时。以上步骤重复50代。
C.制样:SDS-PAGE:各取摇床中培养好的两支试管中1ml菌液,离心,去上清,加入0.2ml纯水,振荡使菌体混悬,加入0.1ml buffer水煮5分钟。制成样品。上样20μl进行SDS-PAGE电泳,常规脱色后,进行表达量分析。各代菌种蛋白表达量扫描结果见表2。
表2各代菌种蛋白表达量扫描结果
由表2可见,各代菌种蛋白表达量相对稳定。
实施例2、重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵工艺
一、摇瓶发酵
1、种子培养
将IL-1ra工程菌单克隆接种于装有50mlLB培养基(LB培养基的组成为:胰蛋白胨10g/L、酵母粉5g/L和氯化钠10g/L)的250ml三角瓶,37℃,200rpm,振荡培养12-15h,得到种子。
2、发酵瓶培养
在步骤1的基础上,按1%接种量将种子接入2×YT培养基(2×YT培养基的组成为:胰蛋白胨16g/L、酵母粉10g/L和氯化钠5g/L)发酵培养瓶,37℃,200rpm,振荡培养2-2.5h,OD600达1.0左右开始加异丙基-β-D硫代半乳糖苷(IPTG)诱导培养。
3、IPTG诱导浓度摸索
采用摇瓶,在发酵液OD600达到1.0时分别加入IPTG,终浓度分别为0.0001mmol/L、0.001mmol/L、0.1mmol/L、0.1mmol/L和1.0mmol/L,诱导4h下瓶分析发酵液。
表3IPTG使用浓度与蛋白表达率
通过表3中目标蛋白表达情况来看,当培养基中TPTG在浓度为0.01mmol/以下时仍能起到诱导效果,但诱导能力明显下降。因此,在摇瓶实验中IPTG浓度不应该低于0.01mmol/L。
4、IPTG诱导时机摸索
采用摇瓶,在发酵生长阶段的2.5h、3h、3.5h和4h分别诱导,诱导4h下瓶分析发酵液。
表4IPTG诱导时机实验发酵数据
实验结果显示,随着诱导时OD600的增加,目标蛋白的表达率逐渐下降,杂蛋白量上升;菌体产量随着诱导时OD600的增加,先上升后下降。因此得出,从后期纯化角度看,在较低OD600(约1.0左右)时诱导时目标蛋白表达率高,有利于纯化;从菌体产量角度看,在较高OD600时诱导有助于提高菌体产量。
5、培养基优化
(1)碳源实验
以2×YT为发酵基础培养基,分别在基础料和在发酵诱导时补加不同浓度的葡萄糖和甘油,看其对菌体产量和目标蛋白表达率的影响。
表5基础料补加实验结果
表6诱导时补料实验结果
表5数据显示,基础料补加0.1-0.2%的葡萄糖可提高菌体产量,以0.1%葡萄糖效果最好,但补加葡萄糖使目的蛋白表达率下降;基础料补加甘油可以提高目标蛋白表达率,但菌体产量低,分析原因,葡萄糖为速效碳源,易被菌体利用,有利于提高菌体产量,但由于葡萄糖代谢产酸不利目标蛋白合成;甘油为缓慢利用碳源,代谢产酸量少,有利目标蛋白表达,但不利于菌体产量提高。
表6数据结果显示,在加IPTG诱导时补加葡萄糖和甘油均能提高菌体产量,补加0.2%的葡萄糖对提高菌体产量最有利,但蛋白表达率下降;补加甘油在提高菌体产量方面不如葡萄糖,补加2%甘油使目标蛋白表达率略有上升。由此得出,发酵中期补料应以甘油为主要碳源,适量配以葡萄糖。
(2)氮源实验
在发酵过程中补加酵母粉,蛋白胨,氯化铵不同氮源。采用正交实验法,做3因素3水平实验。
表7补加酵母粉、蛋白胨、氯化铵不同氮源的正交实验结果
经极差分析可知,3因素按重要性顺序为:酵母粉>胰蛋白胨>氯化铵,最佳配比为A3B3C3由此得出,补料氮源应该以酵母粉为主,适当配以胰蛋白胨和氯化铵。
(3)发酵培养基对照实验
采用5种不同发酵培养基进行发酵,进一步摸索最佳发酵培养基。5种培养基分别为①2×YT②超级肉汤(胰蛋白胨32g/L,酵母粉20g/L,氯化钠5g/L),③LB+M9(胰蛋白胨10g/L,酵母粉5g/L,氯化钠0.5g/L,葡萄糖2g/L,十二水磷酸氢二钠15g/L,磷酸二氢钾3g/L,氯化钙0.011g/L,硫酸镁0.24g/L)④2×YT+M9⑤超级肉汤+M9培养基配后调PH至7.30。
表8不同发酵培养基发酵实验结果
表8实验结果显示,超级肉汤+M9培养基在菌体产量和蛋白表达双方面均比其他培养基高,优势较为明显。
(4)无机盐及维生素实验
在超级肉汤+M9培养基基础上,调整硫酸镁和氯化铵用量,同时引入维生素B1,采用正交实验法,做3因素3水平实验。
表9硫酸镁、氯化铵用量和维生素B1正交实验结果
经极差分析可知,3因素按重要性顺序为:硫酸镁>维生素B1>氯化铵,最佳配比为A3B1C3,硫酸镁对菌体产量提高影响最大,维生素B1次之,氯化铵影响最小。
二、发酵罐实验
1、发酵培养基确定
以步骤一摇瓶发酵培养基优化的结果为依据,发酵罐基础料培养基以超级肉汤+M9培养基为基础,结合步骤一中无机盐及维生素实验的结果,发酵罐基础料培养基由以下成分组成:胰蛋白胨(购自OXOID,LOT:772424)32g/L,酵母粉(购自OXOID,LOT:1090788-02)20g/L、氯化钠0.5g/L、葡萄糖2g/L、十二水磷酸氢二钠15g/L、磷酸二氢钾3g/L、氯化钙0.011g/L、硫酸镁0.96g/L、维生素B10.033g/L和丙三醇聚氧丙烯聚氧乙烯醚0.2ml/L,其余为水(硫酸镁、氯化钙和维生素B1各自灭菌后加入;灭菌:维生素B1过滤除菌,其他同发酵罐一起118℃,30min高压蒸汽;灭菌前培养基调PH至7.20)。
发酵罐补料培养基以步骤一中碳源实验、氮源实验和无机盐及维生素实验的实验数据为依据,补料应当以浓缩液形式补加,将各组分扩大适当倍数。发酵罐补料培养基由以下成分组成:酵母粉200g/L、胰蛋白胨20g/L、甘油200ml/L、葡萄糖10g/L、氯化铵10g/L、硫酸镁5g/L和维生素B10.1g/L,其余为水(配后自然PH,118℃灭菌30min)。
2、发酵培养
(1)种子培养
一级种子培养:将IL-1ra工程菌单克隆接入装有8ml种子培养基A(即LB培养基)试管,在PH值为7.2、37℃和200rpm的条件下培养12小时得到一级种子液;
所述种子培养基A由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠和水;
以上成分在所述种子培养基A中浓度分别为:
胰蛋白胨10g/L、酵母粉5g/L和氯化钠10g/L;
(2)二级种子培养:按1%将一级种子液接种量接入装有150ml种子培养基B(即2×YT培养基)的1L三角瓶,共计2瓶,在PH值7.2、37℃和200rpm的条件下培养7-8小时得到二级种子。
所述种子培养基B由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠和水;
以上成分在所述种子培养基B中浓度分别为:
胰蛋白胨16g/L、酵母粉10g/L和氯化钠5g/L。
(2)发酵培养
以优化后的发酵罐基础料培养基和发酵罐补料培养基进行发酵实验。分别做三个批次发酵实验,三个批次发酵实验的条件分别为:
发酵批次20100205:将培养好的二级种子液接入装有3L基础料(即初始发酵培养基)发酵罐,接种量为9%(体积百分比,接种量=种子液体积/(种子液体积+基础料体积)×100%),37℃下进行发酵培养,发酵过程中保持发酵体系的溶氧为30%(通过如下方式保持溶氧:调节搅拌速度和向发酵体系中通入氧气与空气混合气,通气速率为1.0L/min/L初始发酵培养基)当发酵体系的OD600值达到7.0时(一般为发酵2.5-3h时),开始流加补料(发酵过程中流加补料的量为:发酵0h-发酵1h:以50ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵1h-发酵2h:以100ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵2h-发酵3h:以150ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵3h-放罐前15分钟:以175ml-200ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料),发酵过程共计补料1L,即补加的补料培养基与初始发酵培养基的体积比为1∶3。当搅拌转速达到本次发酵预设最高转速(500rpm)后溶氧降至30%以下时,开始通氧气与空气混合气,以保持发酵体系的溶氧量在30%以上。当菌体生长至对数生长中后期即OD600达到35时,向发酵体系中加入IPTG进行诱导培养,使IPTG在发酵体系中的浓度为0.1mmol/L,诱导培养的时间为3h;发酵过程中通过2M氢氧化钠调节发酵体系的PH为7.0。
通过以上发酵方法得到发酵液,发酵液为容器内的所有物质,发酵体系也为发酵容器内的所有物质。
发酵批次20100623:将培养好的种子液接入装有3L基础料发酵罐,接种量为10%,37℃下进行发酵培养,发酵过程中保持发酵体系的溶氧为40%(通过如下方式保持溶氧:调节搅拌速度和向发酵体系中通入无菌空气,通气速率为1.0L/min/L初始发酵培养基),当发酵体系的OD600值达到8.0时(一般为发酵2.5-3h),开始流加补料(发酵过程中流加补料的量为:发酵0h-发酵1h:以50ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵1h-发酵2h:以100ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵2h-发酵3h:以150ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵3h-放罐前15分钟:以175m1-200ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料),发酵过程共计补料1L。当搅拌转速达到本次发酵预设最高转速(500rpm)后溶氧降至40%以下时,开始通氧气与空气混合气,以保持发酵体系的溶氧量在40%以上。当菌体生长至对数生长中后期即OD600值达到40时,向发酵体系中加入IPTG进行诱导培养,使IPTG在发酵体系中的浓度为0.2mmol/L,诱导培养的时间为3h;发酵过程中通过2M氢氧化钠调节PH为7.1。
通过以上发酵方法得到发酵液,发酵液为容器内的所有物质,发酵体系也为发酵容器内的所有物质。
发酵批次20100714:将培养好的种子液接入装有3L基础料发酵罐,接种量为10%,37℃下进行发酵培养,发酵过程中保持发酵体系的溶氧为50%(通过如下方式保持溶氧:调节搅拌速度和向发酵体系中通入无菌空气,通气速率为1.0L/min/L初始发酵培养基),当发酵体系的OD600值达到9.0(一般为发酵2.5-3h时),开始流加补料(发酵过程中流加补料的量为:发酵0h-发酵1h:以50ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵1h-发酵2h:以100ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵2h-发酵3h:以150ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料,发酵3h-放罐前15分钟:以175m1-200ml/h/3L初始发酵培养基的速度补料),发酵过程共计补料1L。当搅拌转速达到本次发酵预设最高转速(500rpm)后溶氧降50%以下时,开始通氧气与空气混合气以保持发酵体系的溶氧量为50%以上。当菌体生长至对数生长中后期即OD600值达到45时,向发酵体系中加入IPTG进行诱导培养,使IPTG在发酵体系中的浓度为0.2mmol/L,诱导培养的时间为4h;发酵过程中通过2M氢氧化钠调节PH为7.2。
通过以上发酵方法得到发酵液,发酵液为容器内的所有物质,发酵体系也为发酵容器内的所有物质。
3、发酵结果
(1)目的蛋白的产率
通过多次发酵实验,优化后的培养基和发酵培养条件适合菌体生长和蛋白表达,实现高密度发酵目的。发酵水平稳定,每升发酵液收获湿菌保持在120g以上,目的蛋白表达率30%以上,且可溶性良好,表10为三个批次的发酵实验结果。
表10部分发酵批次情况
放罐即发酵结束。
湿菌重是按照如下方法得到的:取发酵结束后的发酵液,称量体积,经4℃,8000rpm冷冻离心10min,收集菌体称重,即得到湿菌重。
产率为每升发酵液经离心后得到的湿菌重量(发酵液指发酵容器内的所有物质)。
蛋白表达率是指目的蛋白占菌体总蛋白量的百分率。
(2)SDS-PAGE电泳检测
取40μL发酵液,加5×LoadingBuffer 10μL,沸水浴10min,10000rpm离心5min,取10μL上样,跑12%分离胶的SDS-PAGE电泳,考马斯亮蓝染色2h,经脱色液脱色,Bandscan5.0(凝胶图像分析软件)分析蛋白表达情况,结果如图7所示。图7为20100623批发酵SDS-PAGE电泳结果,由图中可见,诱导1小时、2小时、3小时以及放罐上清中均出现分子量20KD的表达带,而诱导前和超声沉淀中均未检测到该表达带。
优化后培养基和发酵工艺,适合重组大肠杆菌的生长和目标蛋白的表达。本工艺具有可重复性好;菌体生长快(图8),可大幅缩短发酵周期;菌体产量高,满足高密度发酵需要和目标蛋白表达率高,且可溶性良好等优点。发酵培养基中,酵母粉有助于提高菌体产量,甘油有助于目的蛋白表达。发酵过程中溶氧控制,诱导时OD600值,流加补料控制对于提高菌体产量至关重要。
三、分离提取重组白细胞介素-1受体拮抗剂并鉴定
1、分离提取重组白细胞介素-1受体拮抗剂
取发酵结束后的发酵液,称量体积,经4℃,8000rpm冷冻离心10min,收集菌体称重。将菌体悬于20mmol/LTris-HCl缓冲液中,超声破碎,离心,收集上清。
2、蛋白鉴定:
(1)质谱分析测定C末端序列
取分离提取后的IL-1ra工程菌发酵液样品溶液,用溴化氰裂解,裂解后的样品进行Q-TOF2串联质谱测序。检测条件:正离子检测方式;毛细管电压3000V,cone电压50V,Collision电压10V;MCP检测器电压2150V。检测环境:环境温度20.5℃;环境相对湿度37%。检测仪器名称及型号:Q-TOF2 ESI-MS/MS(Micromass),仪器允许误差为0.1Da。
Q-TOF2串联质谱序列分析结果见图9,该样品的C端氨基酸的序列为:Val Thr LysPhe Tyr Phe Gln Glu Asp Glu。此序列与IL-1ra cDNA编码的氨基酸(序列表中序列2)C端序列一致。
(2)N-末端氨基酸的序列分析
将菌体破碎后的上清液转膜后,用EDMAN降解蛋白质N-末端氨基酸的序列分析方法测定N-末端氨基酸的序列。检测仪器名称及型号为美国Applied Biosystems公司PROCISE491。检测环境为:室内温度25℃,相对湿度46.0%RH。检测图谱见图10,得到该样品的N-末端15个氨基酸的序列为:Met Arg Pro Ser Gly Arg Lys Ser Ser LysMet Gln Ala Phe Arg。此序列与IL-1ra cDNA编码的氨基酸(序列表中序列2)N-末端序列一致。
由以上样品中蛋白C末端序列和N-末端氨基酸的序列的分析结果可知,分离提取获得的蛋白即为重组白细胞介素-1受体拮抗剂。
Claims (7)
1.一种用于制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的发酵培养基,由以下成分组成:胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠、葡萄糖、十二水磷酸氢二钠、磷酸二氢钾、氯化钙、硫酸镁、维生素B1、丙三醇聚氧丙烯聚氧乙烯醚和水;
以上成分在所述发酵培养基中浓度分别为:
胰蛋白胨32g/L、酵母粉20g/L、氯化钠0.5g/L、葡萄糖2g/L、十二水磷酸氢二钠15g/L、磷酸二氢钾3g/L、氯化钙0.011g/L、硫酸镁0.96g/L、维生素B1 0.033g/L、丙三醇聚氧丙烯聚氧乙烯醚0.2ml/L。
2.制备重组白细胞介素-1受体拮抗剂的方法,包括以下步骤:将重组菌接种于权利要求1所述发酵培养基,发酵培养,得到重组白细胞介素-1受体拮抗剂;
所述重组菌为向大肠杆菌中导入序列表中序列1所示基因,得到的重组大肠杆菌,所述序列表中序列1所示基因通过如下重组表达载体导入大肠杆菌:将序列中序列1所示基因插入PET-30a载体的多克隆位点得到的重组表达载体。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:所述方法中,在所述发酵培养前,包括如下种子培养的步骤:
(1)一级种子培养:将重组菌接种于种子培养基A,在PH值为7.2、37℃和200rpm的条件下培养12小时得到一级种子液;
所述种子培养基A由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠和水;
以上成分在所述种子培养基A中浓度分别为:
胰蛋白胨10g/L、酵母粉5g/L和氯化钠10g/L;
(2)二级种子培养:将步骤(1)得到的一级种子液按1%接种量接入种子培养基B,在PH值为7.2、37℃和200rpm的条件下培养7-8小时得到二级种子液;
所述种子培养基B由以下成分组成:
胰蛋白胨、酵母粉、氯化钠和水;
以上成分在所述种子培养基B中浓度分别为:
胰蛋白胨16g/L、酵母粉10g/L和氯化钠5g/L。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于:
发酵培养的温度为37℃;
发酵培养中,接种量为9%-10%;
发酵培养中,使发酵体系的溶氧量保持在30%-50%;
发酵培养中,发酵体系的pH值为7.0-7.2;
所述发酵体系为发酵容器内的所有物质。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于:所述发酵培养过程中,包括如下补料的步骤:在所述发酵体系的OD600值达到7.0-9.0时,开始向发酵体系中补加补料培养基;
所述补加的补料培养基与权利要求1所述发酵培养基的体积比为1∶3;
所述补料培养基由以下成分组成:
酵母粉、胰蛋白胨、甘油、葡萄糖、氯化铵、硫酸镁、维生素B1和水;
以上成分在所述补料培养基中浓度分别为:
酵母粉200g/L、胰蛋白胨20g/L、甘油200ml/L、葡萄糖10g/L、氯化铵10g/L、硫酸镁5g/L和维生素B10.1g/L。
6.根据权利要求5所述的方法,其特征在于:所述发酵培养中,包括如下诱导培养步骤:在发酵体系的OD600值达到35-45时,向发酵体系中加入异丙基-β-D硫代半乳糖苷进行诱导培养,使异丙基-β-D硫代半乳糖苷在发酵体系中的浓度为0.1mmol/L-0.2mmol/L,诱导培养的时间为3h-4h。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:所述大肠杆菌为大肠杆菌菌株BL21(DE3)。
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