CN101720368A - 储备多样性最大化的功能性人化抗体文库之构建及应用 - Google Patents

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CN101720368A CN200880015319A CN200880015319A CN101720368A CN 101720368 A CN101720368 A CN 101720368A CN 200880015319 A CN200880015319 A CN 200880015319A CN 200880015319 A CN200880015319 A CN 200880015319A CN 101720368 A CN101720368 A CN 101720368A
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Abstract

本申请提供了一种免疫球蛋白文库。文库是由免疫球蛋白重链或轻链可变区FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4序列经任意组合而构成。文库所拥有的多样性组合储备，超过自然免疫系统，可用来表达新颖免疫球蛋白。文库可用于筛选具有感兴趣的靶标特异性的抗体。应用该文库所构建的抗体，是没有免疫原性的全人源化抗体。

Description

储备多样性最大化的功能性人化抗体文库之构建及应用
优先权
本申请要求2007年3月9日递交的美国临时申请号USP 60/906,108的权益，该临时申请的内容通过引用以其整体并入本文。
发明领域
本发明涉及抗体文库之构建，该文库所具有的抗体储备多样性(repertoirediversity)，超过自然免疫系统和现有的组合技术。该文库可用于筛选具有令人感兴趣的特异性的抗体，由此所构建的抗体被认为是功能性全人化抗体。
背景
单克隆抗体所具有的确切临床疗效和安全特性，使其成为代表性的专类治疗药物。出现于70年代中期的“杂交瘤技术”突破，为医学界带来了疾病治疗特异“魔弹”的希望。不过，直到一系列抗体技术出现，例如啮齿类抗体嵌合技术(参见美国专利USP Nos.4,816,567)和人源化技术(参见美国专利USP Nos.5,225,539；5,585,089；5,693,762；5,693,761)、噬菌体展示组合文库(Clackson et al.，Nature，352：624-628(1991)；Felici et al.，J Mol.Biol.，223：301-310(1991)；Markland et al.Gene，109：13-19(1991))、转基因鼠(huMab/Xeno mouse)制备人化抗体技术(参见美国专利USP Nos.6,075,181；6,150,584；7,041,870)，以及抗体工业化制备技术，特异性“魔弹”的希望才变成现实。抗CD20单抗——利妥昔(Rituximab)，开创了治疗性抗体时代的先河。迄今，至少有19个治疗抗体获美国食品和药品管理局(FDA)批准上市，处在不同临床试验阶段被评价的候选抗体多达数百个。
首先，抗体与对应靶抗原独一无二的位点结合，通过阻断靶细胞与配体的相互作用(如ReoPro(abciximab)、Remicade(infliximab)、Humira(adalimumab)单抗等)，或者通过介导免疫效应机制，清除肿瘤细胞(如Rituxan(rituximab、Herceptin(trasuzumab)、Campath-1(alemtuzumab)单抗等)，从而发挥治疗功效。抗体的靶向特异性，也被用以运载化学药物(如Myetotag(gemtuzumab))或放射同位素(Zevaline(ibritumomab)、Bexxar(tositumomab))，导向抵至靶细胞，而发挥对肿瘤细胞的毒性清除效应。治疗性抗体以其独有的靶向特异性、经证明的临床疗效和安全性，为实现最佳的疾病诊断、治疗和其它产业化应用，开辟了无限发展空间。
抗体多样性
抗体的重要特征之一是其多样性，机体能够针对各种抗原靶点特异性，对应产生独一无二的抗体。这是通过抗体基因重组和体细胞突变过程才得以实现。
小鼠和人类负责编码免疫球蛋白的三个多基因家族，分别定位于不同的染色体(表1)。
表1.免疫球蛋白(Ig)基因的染色体定位
Figure G2008800153194D00021
每一个基因家族所包含的编码序列称为基因片段。负责编码轻链的3个不同的基因片段是：可变区(V)基因片段(约300bp长)，连接区(J)基因片段(约50bp长)和恒定区(C)基因片段(约300bp长)。以上所有的这些基因片段由长度不等的非编码DNA序列分隔开来。胚系阶段如κ-和λ-轻链(也包括重链)基因片段都包含一DNA序列，它位于V基因之前，负责编码一段长19个氨基酸的先导序列。轻链V基因片段负责编码第1-95号氨基酸(含CDR1和CDR2)；J基因片段负责编码第96～108号氨基酸(含CDR3)，C基因片段编码剩余部分的氨基酸(图1A)。人类κ轻链大约有100个V基因片段，可与5个J基因片段组合。正是由于如此众多的V-J基因连接位点才构成了抗体多样性的遗传学基础(图2)。此外，在抗体的“成熟”过程中，可变区序列(由V-J基因重组连接而成)所发生的体细胞突变导致抗体的亲和力和特异性进一步强化。大多数突变事件(缺失、添加和序列替换)主要发生在CDR3基序中。人类λ轻链基因家族大约由100个V基因和6个J基因构成(图1A)。λ轻链的V-J基因在空间排列上与κ链略有不同，其余则非常相似。
重链基因片段的组成与轻链相似，只不过重链基因包含有多样性(D)基因片段(约50bp长)，而且每一个C基因片段都有一个或多个称为膜(M)外显子的关联编码片段。和轻链一样，每一个重链V基因都有一个前导序列。负责编码重链的有4个不同基因片段：VH，DH，JH，CH。VH基因片段编码第1～101号氨基酸(含CDR1和CDR2)，DH基因片段编码第102～106号氨基酸(CDR3之前)，JH基因片段编码第107～123号氨基酸，CH基因片段编码其余氨基酸(图1B)。人类重链基因大约有100个功能性V基因，25-30个功能性D基因，6个功能性J基因。由V-D-J基因重组而构成的重链可变区多样性与轻链类似，只不过由于重链DH基因的存在和参与使得发生在CDR3基序的多样性数量远多于轻链(图2)。
抗体多样性产生于以下几个层面：(a)胚系基因的可变性和V、D、J基因片段的多样性；(b)轻链V-J基因连接的自由组合、重链V-D-J基因连接的自由组合、重链与轻链的组合匹配；(c)由于不精确的DNA重排、以及在D-J基因或V-D-J基因重组过程中随机插入D-和J-基因之间的核苷，所导致的连接多样性；(d)体细胞高突变。
即使不考虑由体细胞高突变所增加的多样性，也可以推算出基因重组和连接所产生的多样性的数量，如表2所示。
表2.抗体多样性基线计算
轻链基因片段
重链基因片段
Figure G2008800153194D00032
此外，不同的组合连接也会增加基因的多样性基线。重链和轻链基因的组合就可能编码出43200×1200＝5.1×107种可能的免疫球蛋白。因此，不考虑体细胞高突变率的因素，估计人类免疫系统的抗体多样性为5.1×107。
抗体重塑技术
治疗性抗体在临床上的成功应用归因于抗体工程技术的突破，如嵌合技术和人源化技术。凭借这些技术，可以将大多数的鼠源抗体转化成为人源化抗体且不显著改变亲本抗体的特异性和与亲和力。
抗体嵌合技术(参见例如美国专利4,816,567)采用将鼠抗体重链和轻链可变区移植到人抗体的恒定区的方法，因此嵌合抗体会含有约1/3鼠源成分序列。理论上，反复注射这种抗体会对人体构成免疫原性。
传统的人源化抗体技术(参见例如美国专利5,225,539，5,585,089，5,693,762，5,693,761)通过将鼠源CDR移植到人源框架以达到降低鼠源成分比例的目的。人源化抗体中鼠源成分可低于10％。CDR移植技术并非完美。首先，CDR本身源自鼠源抗体是主要的免疫原；其次，将CDR直接移植到人源框架通常都会损失抗体的亲和力与特异性。虽然这一不足可以补救，即：通过鉴别与抗原结合位点相互作用的框架区关键氨基酸残基，再将鼠源残基回复突变至人源框架。通常，在CDR移植抗体的人源框架，引入多达7个以上的鼠源残基，这种状况并非罕见。传统CDR移植技术的主要缺陷在于：没有从免疫功能角度去检测抗体的“人化”程度；也忽视了人源框架中回复突变的鼠源残基所产生新的T-细胞表位的可能性。(图3)
为了避免在最终的抗体结构中应用鼠源CDR，已经开发了其它技术来产生全人化抗体。剑桥抗体科技(CAT)和Dyax公司从人类的免疫个体外周B淋巴细胞获得抗体cDNA，设计噬菌体展示库来鉴别抗体的可变区序列，即：将抗体的可变区序列与M13噬菌体基因III或VIII结构融合(Clackson et al.，Nature，352：624-628(1991)；Felici et al.，J Mol.Biol.，222：301-310(1991)；Markland et al.，Gene，109-13-19(1991)，所有这些文献通过引用以其整体并入本文)，抗体可变区以Fab或Fv单链形式(scFv)表达在噬菌体外壳。通过几轮次不同抗原结合条件的加压筛选，能表达针对特异抗原的Fab或scFv的噬菌体会被筛选分离，其可变区cDNA序列可以通过标准DNA测序解读。现有的抗体工程技术可以将这些特异的Fab序列与所需的同型抗体重新构建出一个完整的抗体，这种方法制备的抗体称为全人化抗体(包括CDR序列)。为了提高抗体的免疫反应性(抗原亲和力与特异性)，可以引入体外成熟步骤，包括：不同重链轻链的组合匹配，CDR3的缺失/添加/突变(模拟V-J，V-D-J基因重组连接)，随机突变(模拟体细胞突变)。应用该技术发展的肿瘤坏死因子TNF-α抗体-Adalimumab(商品名Humira)就是一个“全人化”抗体的例子，一个治疗性单克隆抗体，最近已获得美国FDA批准用于治疗类风湿性关节炎(RA)。
这项技术的不足在于：由于构建抗体的基因序列均源自于人类成熟B细胞，其基因的多样性有限；而且体外成熟过程中引入的突变可能成为潜在的T-细胞免疫原表位。如此看来，噬菌体展示抗体的“人化”程度仍有待商榷。
由Abgenix公司和Mederax公司发展的人化鼠(Abgenix之Xenomouse，参见美国专利6,075,181和6,150,584；GenPharm-Medarex之HuMab mouse，参见美国专利7,041,870)，通过基因敲除和转染技术，将小鼠Ig基因替换为人Ig编码基因，可能是全人化抗体的最佳途径。用目标抗原免疫人化鼠，抗体亲合力的成熟过程在自然的体内免疫环境中进行。尽管轻链的V-J基因片段和重链的V-D-J基因片段是100％的人源基因，但发生在人化鼠V-J和V-D-J基因连接过程中的突变/缺失/添加以及体细胞突变，仍与人体有明显差异，也不能排除这些突变将成为新的T细胞免疫原表位的可能性。事实上，类风湿性关节炎临床试验显示，由HuMab鼠制备的全人抗体HuMax-CD20，免疫原性和输液反应高于嵌合抗体Rituximab(参见：编者按ostergaardet al.2006.First Clinical Result of Humax-CD20 Fully Human Monoclonal IgG1 antibodyTreatment in Rheumatoid Arthritis(RA).EULAR.Abstract P0018)。而且，由于能够引入鼠体的人Ig微小基因容量有限，抗体的多样性也不及人体自然免疫系统那么丰富。尽管如此，与其它方法相比，人化鼠产生的抗体仍是人源化程度最高的。
除了人化鼠技术，其他人源化技术大多着眼于抗体外观而非功能，构建外观相似的人化抗体已经成其最主要目标。然而，从免疫系统的角度来说，它会对免疫球蛋白进行检测、监控。抗原呈递细胞(APC)会将免疫球蛋白内化、酶解成线状短肽，短肽片段与APC细胞主要组织相容性复合物MHC-II结合。小部分短肽与MHC在细胞表面形成复合物，一经由T细胞特异受体所识别，便会触发一系列的免疫级联反应，包括T细胞激活分化为T辅助细胞、释放细胞因子介导抗原特性B细胞分化为分泌特异抗体的浆细胞。
细胞因子的释放导致抗原特异的B细胞分化成为抗体特异的浆细胞。只有当那些降解的Ig短肽被免疫系统视为“自我”才能逃避免疫监视，这样的抗体才是真正意义的人化抗体。
传统的CDR移植人源化技术，不能去除重组抗体中关乎抗原特异性和亲合力的鼠源CDR序列，而且，大多CDR移植方法中的回复突变可能引入新的T-细胞免疫原表位，从而导致CDR移植抗体成为潜在免疫原。尽管框架重塑技术(framework-patching or framework-reengineering)可以避免或减轻回复突变带来的影响，但鼠源CDR所固有的免疫原问题仍有待解决。Gillies认为(参见：美国专利PatNo 6992174)，如果治疗性蛋白序列不含有会被抗原提呈细胞视为“异己”(T表位)的线状肽段，蛋白将被免疫系统视作“自我”，在用作重复治疗时，可切实降低诱发变态反应的风险。据此设计的称为“肽段线展”(peptide threading)程序(计算机模拟肽段结合MHCII分子)，在计算机辅助下鉴别出延伸肽段中那些可能被MHC-II提呈的“异己”序列，然后通过替换其中的一个或二个氨基酸，将其转化为免疫系统认可为“自我”序列(不会与APC的MHCII结合)。理论上，任何有治疗潜力的高免疫原性蛋白(包括鼠抗体)，通过替换序列中个别氨基酸，可转为非免疫原性蛋白(去免疫原)(Adair F.，2000.Immunogenicity：The last hurdle for clinically successful therapeuticantibodies.BioPharm 13：42-46；Adair et al.2002.The immunogenicity of therapeuticproteins.BioPharm Feb Issue，p30-36)。这项技术需要对序列的必需条件有透彻的认识，哪些序列会被MHC提呈为“免疫原”？哪些会被视为“非免疫原”？此外，还需有设计精巧的肽序列分析程序。
如前所述，对于噬菌体展示文库或其它类似文库，仍需要加以改进，比如，核糖体展示文库(参见例如Hanes et al.1998.Ribosome display efficiently selects andevolves high affinity antibodies in vitro from immune libraries.PNAS 95：14130-14135)，使得对人体无免疫原性、对感兴趣的抗原具有特异性的功能人源化抗体的制备，成为可能。本发明将描述这些文库构建的改进和必要，并解决上述需要。
发明概述
本发明将提供各种免疫球蛋白序列数据库和对应的DNA文库。对于每一种免疫球蛋白轻链FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3，FR4片段、以及对于每一种免疫球蛋白重链FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3，FR4片段，提供了确切的独立的数据库和DNA文库。
本领域技术人员将理解，本发明的一个或多个方面可可满足某些目的目的，尽管一个或多个其他方面可满足某些其它目的。在其所有方面，每一个目的可能不等同地适用于本发明的每一方面。所以，以下目的应被视为有关本发明任何的一个方面的应用选择。
本发明第一方面提供了确切的免疫球蛋白轻链可变区序列数据库，数据库的具体方式如存储介质，例如电子、磁性或光学存储介质、或打印的形式。该数据库包含某单一种属哺乳动物轻链可变区的氨基酸序列、或编码这类氨基酸的序列的核苷酸序列，数量至少是2，5，10，20，50，100，200，500，1000，2000，5000或10000个。上述轻链可变区任意组合、首尾相连且与自然状态的序列排列一致，其中的FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4片段序列可源自哺乳动物V、J基因，也可源于一个或多个数据库、或公开出版文献，这些数据库或者文献含有已知的免疫球蛋白、或者哺乳动物免疫球蛋白轻链氨基酸序列或核苷序列。在一些实施方式中，数据库不包含某一种属的已知免疫球蛋白轻链可变区的任何序列，例如：数据库不包括众所周知的哺乳动物轻链V基因FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3的连接。在优选实施方式中，数据库序列来自人。在一些实施方式中，数据库只含有κ链序列。在其它实施方式中，数据库只有λ链序列。在还有其他实施方式中，数据库含有来自κ链和λ链的序列。
在进一步的方面，本发明提供了DNA文库，含有编码前述免疫球蛋白轻链可变区序列数据库中至少2，5，10，20，50，100，200，500，1000，2000，5000或10000个轻链可变区氨基酸序列的DNA序列。
在另一方面，本发明提供了确切形式的免疫球蛋白重链可变区序列数据库，数据库的具体方式如存储介质，例如电子、磁性或光学存储介质、或打印形式。该数据库包含某单一种属哺乳动物重链可变区氨基酸序列、或编码这类氨基酸的核苷酸序列，数量至少是2，5，10，20，50，100，200，500，1000，2000，5000或10000个。这些重链可变区任意组合、首尾相连且与自然状态的序列排列一致，其中的FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4片段序列源自哺乳动物重链V、D、J基因，或源于一个或多个数据库、或公开出版文献，这些数据库或者文献含有已知的免疫球蛋白、或者哺乳动物免疫球蛋白重链氨基酸序列或核苷酸序列。在一些实施方式中，数据库不包含某一种属的已知免疫球蛋白重链可变区的任何序列，例如：数据库不包括众所周知的哺乳动物重链V基因FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3的连接。在优选实施方式中，数据库序列来自人。在一些实施方式中，数据库只有γ链序列。在其它实施方式中，数据库包含其它类型重链的序列(如γ1，γ2，γ3，γ4，μ，α1，α2，δ，或ε)。在还有其他实施方式中，数据库含有源自上述重链类型的任意可能组合的序列。
在进一步的方面，本发明提供了DNA文库，含有负责编码前述免疫球蛋白重链可变区序列库中至少2，5，10，20，50，100，200，500，1000，2000，5000或10000个重链可变区氨基酸序列的DNA序列。
在另一方面，本发明提供了单链Fv(scFv)免疫球蛋白序列的数据库。数据库包含至少2，5，10，20，50，100，200，500，1000，2000，5000或10000个scFv的氨基酸序列或编码这类氨基酸的核苷酸序列。每一scFv片段的基本组成是：某一哺乳动物轻链可变区通过连接体序列与同一种种属重链可变区相连。轻链可变区之间任意组合、首尾相连且与自然状态的序列排列一致，其中的FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4片段序列可源自哺乳动物V、J基因，也可源于一个或多个数据库、或公开文献，这些数据库或者文献含有已知的免疫球蛋白、或者哺乳动物免疫球蛋白轻链氨基酸序列或核苷酸序列。重链可变区任意组合、首尾相连且与自然状态的序列排列一致，其中的FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4片段序列可源自哺乳动物重链V、D、J基因，也可源于一个或多个数据库、或公开出版文献，这些数据库或者文献含有已知的免疫球蛋白、或者哺乳动物免疫球蛋白重链氨基酸序列或核苷酸序列。在一些实施方式中，数据库内不包含已知免疫球蛋白的轻链或重链可变区的任何序列，如数据库内可不包括在所有已知的哺乳动物轻链和重链V基因内存在的FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3的连接。在优选实施方式中，数据库序列来自人。在一些实施方式中，，数据库scFv序列的轻链序列只有κ链的序列。在其它实施方式中，只有λ链的序列。在其它实施方式中，均有κ和λ链的序列；在一些实施方式中，scFv数据库的重链序列只有γ链。在其它实施方式中，由其它序列组成(如γ1，γ2，γ3，γ4，μ，α1，α2，δ，或ε)。在其它实施方式中，上述重链的任意可能组合。
在还有另一方面，本发明提供了能够表达前述scFv数据库中的至少部分scFv片段的噬菌体展示文库。
本发明还提供了非天然存在的免疫球蛋白。该免疫球蛋白包含重链和轻链可变区序列，分别源自前述重链和轻链可变区数据库。该免疫球蛋白亦可是scFv片段，其序列源自前述scFv序列数据库，或是由前述噬菌体展示文库表达的scFv片段。
在还有另一方面，本发明提供了构建前述免疫球蛋白轻链可变区序列数据库的方法。本发明进一步的目的是通过增加一种或多种核苷酸序列来增加文库多样性的方法，这些核苷酸序列编码免疫球蛋白轻链可变区氨基酸序列。
在还有另一方面，本发明提供了构建前述免疫球蛋白重链可变区序列数据库的方法。本发明进一步的目的是通过增加一种或多种核苷酸序列来增加文库多样性的方法，这些核苷酸序列编码scFv氨基酸序列。
在还有另一方面，本发明提供了构建前述免疫球蛋白scFv片段数据库的方法。本发明进一步的目的是通过增加一种或多种核苷酸序列来增加文库多样性的方法，这些核苷酸序列编码轻链可变区氨基酸序列。
在还有另一方面，本发明提供了构建前述噬菌体展示文库的方法。在一个实施方式中，，本发明提供了产生人免疫球蛋白噬菌体展示文库的方法和如此产生的人免疫球蛋白噬菌体展示文库，所述方法包含以下步骤：
制备第一组核苷酸序列，所述序列编码人免疫球蛋白轻链可变区，其中该第一组的序列包含人轻链cDNA片段的序列，用来编码FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4，其中cDNA片段被随机选择和连接，以编码轻链可变区，按顺序包括FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4；
制备第二组核苷酸序列，所述序列编码人免疫球蛋白重链可变区，其中该第二组的序列包含人重链cDNA片段的序列，用来编码FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4，其中cDNA片段被随机选择和连接，以编码重链可变区，按顺序包括FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4；
制备第三组核苷酸序列，所述序列编码免疫球蛋白单链Fv，其中该第三组的序列包含第一组的轻链序列、连接体、和任意选择的第二组的重链序列，其中连接体将轻链和重链序列共价连接，所构成的第三组序列编码免疫球蛋白单链Fv；以及
将第三组核苷酸序列导入噬菌粒克隆载体，构建噬菌体展示文库。
如上所述方法，可能优选地是，第一组核苷酸序列的人轻链cDNA片段仅编码κ链。可选地，第一组核苷酸序列的人轻链cDNA片段可仅编码λ链。可选地，第一组核苷酸序列的人轻链cDNA片段可编码κ和λ两轻链。同样，第二组核苷酸序列的人重链cDNA片段，可仅编码γ重链，仅编码γ1、γ2、γ3、γ4、μ、α1、α2、δ、或ε重链的序列，或其组合。
在人选的优选实施方式中，由上述方法所构建的本发明的噬菌体展示文库排除了FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3的的连接。
本发明进一步的目的还提供了一种抗原结合分子的鉴别方法。该方法包括筛选表达文库的步骤，这些表达文库表达免疫球蛋白轻链，含有包含在前述免疫球蛋白轻链可变区数据库中的轻链可变区序列、或者包含在前述免疫球蛋白重链可变区数据库中的重链可变区序列。在一些实施方式中，该方法涉及前述scFv数据库的筛选。筛选过程也涉及测试表达的免疫球蛋白与选择的抗原的结合。筛选过程的结果是鉴定与选择的抗原结合的免疫球蛋白。
结合阅读下文专利详述以及图例实证，本发明之目的和特性将变得更清晰明了。不过，对于前述的发明总结以及下文的详述，应该理解为本发明所优选的具体应用，而非对发明和应用选择的限制。尤其当本发明结合一系列具体应用实例来描述时，这些实例描述并不是用来对本项发明进行限制。对于本领域的技术人员而言，正如附带的权利要求所描述地，只要不脱离本发明范畴的精髓，就可以有各种各样的变通应用。同样，前述本发明总结和下文的具体应用实例，能更清晰地了解本发明的各种内容、特性、好处和优势，并容易地为具备抗体设计和文库构建知识的技术人员所理解。当结合考虑具体实例、数据、图例、以及所引用的参考文献，就更易理解本发明的内容、特性、好处和优势。
附图简述
结合阅读以下图例说明和本发明后面的详述，易于理解本发明的其它特点和优势。
图1表示人(A)κ链和λ链和(B)重链的胚系类免疫球蛋白的结构。
图2表示免疫球蛋白(Ig)基因片段(外显子)和轻和重(λ)链结构域之间的关系。Ig轻链是由2个不连续的或分隔的外显子(V和J)和1个完整的外显子(C)编码。Ig重链，此处为膜式μ链，是由3个不连续的或者分隔的外显子(V、D和J)和6个完整的外显子(CH1-4外显子，以及跨膜外显子(TM)和胞浆外显子(CY))编码。链内、链间的二硫键(S-S)、碳水化合物(·)、以及CDRS(阴影框)的大致位置已作标示。
图3表示经典CDR枝接技术实现人源化的过程的图解。仅显示重链可变区的CDR枝接。
图4显示在人免疫系统的监视下传统人源化抗体如何可能是功能上外源的。尽管含有回复突变的鼠源框架残基(o)的CDR枝接抗体具有看上去人的外观，但当被抗原呈递细胞(APC)内化时抗体将经蛋白质水解被降解为短肽。随后这些残基与MHC II复合物结合而呈递给T辅助细胞。当含有回复突变鼠源框架残基的肽作为新的T细胞抗原表位出现时，它经由MHC II呈递并激活T辅助细胞，进而导致针对CDR枝接抗体的级联免疫反应。
图5由5个不同V-、J-基因中的FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3片段任意组合而产生的储备多样性。图中只说明VL的重组。
图6由5个不同V-、J-基因中的V-J基因重组而产生的系统多样性。图中只说明了VL的重组。
图7描述了CA9的轻链可变区核苷酸序列和氨基酸序列。框匣部分为CDRs序列。
图8描述了CA9和其他人源序列的VK区的序列比对。(A)核苷酸序列比对；(B)氨基酸序列比对。框匣部分为CDRs序列。
图9描述了PCR产物的1％琼脂糖凝胶电泳分析。PCR产物源自连续的寡核苷酸V区连接。第1-4道，连续的寡核苷酸V区连接的PCR扩增产物对应的孔分别含有12.5、25、50、100pmole固定化的FR4。可见约～320bp大小的电泳带。第5道为bp标记。空白对照孔不含固定化的FR4，没有电泳带(未显示)。
图10描述了用于评价TNF-α功能活性的测定方法(A)，TNF-α可介导L929细胞的细胞毒效应，和证明中和抗体，如CA9嵌合抗体如何能以剂量依赖方式抑制TNF-α介导的L929细胞毒效应。
图11在不同稀释度比较了scFv-噬菌体和scFv-噬菌体克隆的中和活性，所述scFv-噬菌体含有原始CA9VK和VH序列(对照scFv-噬菌体)，所述scFv-噬菌体克隆含有来自微小多样性VK文库的VK序列和来自原始CA9的VH(scFv(VK文库/VH CA9)噬菌体)。模拟噬菌体不含scFv。
发明详述
本发明对噬菌体展示文库(或其它类似文库，如核糖体展示文库)领域进行了重大改进，用以构建功能性人化抗体。本发明特别提供了各种免疫球蛋白序列数据库和其DNA文库。对于每种免疫球蛋白轻链FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4片段、以及对于每种免疫球蛋白重链FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4片段，提供独立的确切形式的数据库和DNA文库。
在实施或尝试本发明的具体项目时，虽然有相似或等同的材料方法可供应用，此处仍详尽描述了本发明偏好的实施方法、设施、和材料。由于这些因素会根据常规实验的优化状况而作出变通调整，因此，应该理解本发明不应受限于所描述的某一具体组分、方法和步骤。此外，所使用的专门术语也仅仅是为了描述特定内容或实例具体，并不意味着对本发明范畴有何限制。本发明的权利诉求有专门的限制条款。
除非另有定义，所用技术和科学术语都有相同含义，且为该领域的普通技术人员所知悉。若有歧义，以本发明为准。
除非专门说明，本发明用词“一种”、“一个”，意义为“至少一种、一个”。
如上所述，本发明提供了一种构建噬菌体展示文库的方法，特别是所构建的人免疫球蛋白文库，最大程度地扩展了抗体多样性贮备。众所周知，噬菌体展示文库可用于鉴别新颖的抗原结合分子。尤其当文库初始抗体基因储备得到扩展、并将潜在的功能片段表达于噬菌体表面，然后通过传统的文库筛选方法，迅速将各种特异性抗体分离出来。抗体展示噬菌体的筛选过程，可应用自动化操作，如AutoPan和CysDisplay技术，高亲和力结合分子单次洗脱，将具有潜力的候选分子数量降低到数百个或数千个。然后用AutoScree自动368-孔ELISA，对这些候选分子进行筛选。阳性克隆自动进行验证、测序、录入中央数据库。
此处所述的“一种免疫球蛋白”，是指由免疫球蛋白基因编码的一条多肽或几条多肽构成。典型的免疫球蛋白由两条重链和两条轻链配对而成。重链全长分子量约50kD(长约446个氨基酸)，由重链可变区基因(约116个氨基酸)和恒定区基因编码。重链恒定区的各种同种型(isotype)，如α、γ(IgG1、IgG2、IgG3、IgG4)、δ，ε和Mu序列，分别由对应的恒定区基因编码。轻链全长分子量约25kD(长约214个氨基酸)，由轻链可变区基因(约110个氨基酸)和κ或者λ恒定区基因编码。天然免疫球蛋白称之为抗体，通常是由两条相同的重链和轻链配对所形成的四聚体分子。抗体的抗原结合是由配对轻重链的可变区来共同负责，而抗体的典型效应功能则由恒定区负责。
本发明所应用的材料和方法，可用于鉴定和分离新颖的、无免疫原性的全人化抗体。本发明所述的全人化抗体须具备以下特征：
(1)免疫原性显著降低、最优选完全消除，因此，抗体可用于人体反复注射；
(2)对原始抗原的免疫反应性的影响最小，包括抗原结合特异性和亲和力(3倍以内)；
(3)能够介导人免疫效应子功能，例如补体固定、补体介导细胞毒性、抗体依赖型细胞毒性，等等。
抗体的免疫原性可进行常规分析测定，比如，典型的是在灵长类和人体临床试验测定。治疗性抗体的免疫原性，可以通过所诱发的特异性T细胞表位鉴定来分析，或者通过测定正血色素红细胞(NCE)刺激辅助T细胞反应、和/或者诱导迟发过敏样反应来分析，可采用Antitope公司(英国剑桥)的EpiScreen技术完成自动测定。
本发明所构建的免疫球蛋白，是新颖的、无免疫原性、功能性全人化抗体，治疗性抗体通常可单独临床应用，也可与其它治疗手段联合应用，用于治疗抗体基治疗容易治疗的疾病。例如，免疫球蛋白可用于过继性免疫、或者通过补体介导的溶解作用来清除靶细胞和靶抗原，而不会像先前的抗体治疗那样，引发免疫副作用(如过敏性休克)。可选择地，本发明的免疫球蛋白还可用作体外目的，例如作为特异性抗原检测的诊断工具等。
本发明抗体适合以裸抗体格式用作疾病治疗目的，剂量范围可以是50-400mg/m2，给药途径可以是病灶局部、皮下、静脉、和肌肉注射等。以不同给药间隔重复治疗可望达到理想的临床效果，如间隔一周、每周一剂共四周。本发明抗体可联合其它治疗手段应用，如化疗药物(如CHOP、阿霉素、5-氟脲嘧啶等)、放射治疗、放射免疫疗法、疫苗、酶、毒素/免疫毒素、或其它抗体等。例如，如果本发明免疫球蛋白是一个特异于抗肿瘤抗体独特型的抗体，就可用作疫苗来刺激机体产生抗肿瘤的Ab3抗体反应。医药界所熟知的其它各种药剂、或药剂组合，也可与抗体联合应用。
本发明抗体还可用作为各种药物的构成组分。可以是裸抗体，或者与其它组分相偶联，如药物、放射性核素、毒素、细胞因子、可溶因子、激素、酶(如羧酸酯酶、核糖核酸酶)、肽、抗原(如肿瘤疫苗)、DNA、RNA、或者其它具有特异治疗功效的分子，抗体作为这些偶联分子的特异性靶向载体。此外，本发明免疫球蛋白或其衍生物，如抗体片段、单链Fv，双抗体等，可用作融合蛋白与其它功能分子融合，如其它发明的抗体或抗体衍生物(例如双特异抗体)、毒素、细胞因子、可溶因子、激素、酶、肽等。医药界所熟知的其它各种药物组合，也可联合应用。
本发明的材料和方法可用于筛选抗原特异性的候选抗体。前文述及，本发明所构建的是新颖的、无免疫原性的、功能性全人化抗体，具有临床治疗和诊断价值。因此，本发明并不局限于特异性抗原范畴。本发明适用的靶点抗原的实例包括(但不限于此)，血小板表膜CD41 7E3糖蛋白IIb/IIIa受体(关联心血管疾病)、肿瘤坏死因子TNF(炎性疾病)、CD52(慢性淋巴细胞白血病)、IL-2a(移植排斥反应)、VEGF(黄斑变性、结直肠癌)、CD3(移植排斥反应)、T细胞VLA受体(多发性硬化症)、CD11a(炎性疾病，如银屑病)、CD20、CD22、CD19、恒定链li(非何杰金淋巴瘤、自身免疫疾病)、CD33(急性髓性白血病)、炎性IgE(过敏性哮喘)、呼吸道合胞病毒F蛋白(RSV感染)、ErbB2(乳腺癌)、CEA(结直肠癌、乳腺癌等肿瘤)、Mucin(乳腺癌、胰腺癌)、CD147(肝癌)、β-淀粉样蛋白(老年痴呆症)。
所构建抗体的抗原结合特性，可通过传统技术方法来测试，例如，直接或竞争性细胞结合分析(如细胞ELISA、流式细胞分析)、ELISA(抗原包被酶标板，酶标仪比色分析结合抗体)、Biacor测试(如抗体亲和力测定)、等等。
本发明抗体的临床治疗或诊断价值，也可通过传统技术分析确认，例如，诱发靶细胞的补体介导细胞毒效应(CMC)、或抗体依赖细胞介导性细胞毒(ADCC)、或者阻断酶和功能蛋白的特异活性(如，白介素抗体对白介素依赖的细胞增殖效应的特异阻断)。
具有高度多样性的功能人化抗体文库的构建
先前的抗体技术，如CDR移植，已经成功地减少了治疗抗体的免疫原性。然而，这类抗体的多样性，仍受制于可用人源框架序列数量、选择与亲代抗体高度同源的天然单一V基因框架序列(含FR1，FR2和FR3)。本发明所构建的免疫球蛋白，当被分解成短肽、并呈递给宿主免疫系统后，将被视为“功能人化”，即，不对人体构成免疫原性。
在结构和功能上，免疫球蛋白可变区分为7个伸展的线状序列，即FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4。CDR1，CDR2和CDR3序列主要决定抗体特异性和亲和力。这些CDRS形成物理间隔以划分不同FRS。虽然整个FRS框架平台对于支撑CDR架构非常重要，FRS中的关键残基会与CDRS相互作用，从而影响到抗体亲和力和特异性。
虽然，天然免疫球蛋白FR1，CDR1，FR2，CDR2和FR3在遗传学上是不可分隔的，只能在单一的V基因内编码(图2)。通过分子生物学技术处理，可从不同的V基因即人类V基因中分离出编码FR1，CDR1，FR2，CDR2和FR3片段的核酸序列。同理，也可以从不同的J基因中分离出编码免疫球蛋白可变区CDR3/FR4部分的核酸序列。
因此，本发明的一种表现形式是，提供一个编码免疫球蛋白轻链可变区的核酸序列数据库。该数据库包含源自V基因的随机组合序列，独立编码FR1，CDR1，FR2，CDR2及FR3；源自J基因的随机组合序列独立编码轻链可变区CDR3，FR4。这些序列组合形成核酸集和，每一个核酸集合中包含随机选择的片段组合，依次编码轻链可变区FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4的氨基酸序列。
在另一实施方式中，本发明提供一个能够编码免疫球蛋白重链可变区的核酸序列数据库。该数据库包含源自V基因的随机组合序列，独立编码FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，和部分CDR3；源自D基因的序列编码部分CDR3的；源自J基因的序列编码部分CDR3和FR4。这些序列组合形成核酸集和，每一个核酸集合中包含随机选择的片段组合，依次编码重链可变区FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4的氨基酸序列。
本发明数据库中的序列片段源自哺乳动物V-，D-，J-基因，或是源自哺乳动物免疫球蛋白已知的核酸或氨基酸序列。所有序列最好选择同一种属，最佳选择是人类基因或者人免疫球蛋白序列。对数据库的某些天然核酸进行修饰，可根据密码兼并性保留原来编码，或以完成一些事先设计的突变，比如，突变用以确保免疫球蛋白多肽链正确折叠，或者用以维持/提高抗原结合特异性。
从不同人免疫球蛋白V-、J-基因的集合体所构建的Ig序列，其重组的抗体蛋白仍可以被人体自身免疫系统视为功能上人化。首先，每一个片段(包括CDRS)都是人源的、并且经过免疫系统甄别为“没有免疫原性”，因此没必要用繁复的“肽段线性拉伸”来检查是否还存在免疫原性线段，选择替换氨基酸而降低免疫原性。其次，任意组合不同人抗体V基因的框架区和CDRS所达成的多样性，已经超越自然重组过程。因此，自由组合人FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4片段所构建的文库，不仅能表达功能人化抗体，而且，文库所具有的无穷多样性(取决于人免疫球蛋白序列储备量)，可能超过自然多样性容量。
本发明描述了由可变区序列FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4(图5)任意组合而构建抗体文库的方法，其合成的免疫球蛋白是功能上的人化抗体。
数据库的多样性由5种V基因和1种J基因任意组合决定，可通过所处情形的方法计算：
情形1：系统多样性包括所有框架区和CDRS的任意组合
5(FR1)×5(CDR1)×5(FR2)×5(CDR2)×5(FR3)×5(CDR3)×1(FR4)＝56＝15,625
情形2：由于框架区对抗原特异性和亲和力没有太多影响，多样性计算只考虑CDRS组合
5(CDR1)×5(CDR2)×5(CDR3)＝53＝125
因此，采用本发明由5种V基因和1种J基因产生的系统多样性范围是125到15,625(图5)。天然免疫系统能产生的多样性只是5(图6)，前者具有显著的多样性优势。
前文曾述及，天然免疫系统的多样性约5.1×107(不考虑体细胞超突变)。鉴于本数据库中FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4，可从100种人重链和轻链V基因序列任意组合，因此可估计出不同情形多样性水平：
情形1：FR和CDR多样性数量是1006＝1012/每一链
合计组合1012×1012＝1024
情形2：重链和轻链CDRS随意组合的数量是2003＝2×106/每一链
合计组合＝2×106×2×106＝4×1012
情形3：相关链中CDRS数量是1003＝106/每一链
合计组合＝106×106＝1012
在情形1，多样性的主要贡献来自不同的CDRS和FR任意组合。多样性最高值为1024，由于FR主要构成CDRS的支撑平台，FR对多样性的贡献可能不及CDRS。在情形2，多样性估算没有考虑框架区的贡献，但可以考虑重链和轻链对应CDRS的任意组合。例如，重链CDR1可用于构建轻链数据库中的CDR1，数据库的多样性可达4×1012；退而次之，比如重链CDRS只能用于对应重链的对应位置(即重链CDR1只能用以构建重链数据库中对应位置的CDR1)，多样性水平仍达到1012。上述任意一种情形，仅仅从100种V基因构建的轻、重链数据库，其多样性都远胜于天然免疫系统(5.1×107)。
人类抗体丰富的序列数据库，将为构建轻链和重链可变区FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4，提供大量线性序列。理论上，其多样性至少可匹敌天然免疫系统。
事实上，现有数据库(Kabat’s数据库)，大约有170种重链和170种轻链(κ+λ)的可变区序列。以前述三种情形为例，数据库多样性在2.4×1013-1.68×1031范围。通过不断扩大抗体FR和CDR数据库容量，将能建立具有超高多样性的功能人化抗体数据库。
根据本发明，通过随机组合FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4编码序列，数据库既可一次构建完成，亦可分步构建。如果在某一时期内所能采用的FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4序列数量有限，也能籍此构建出一个初始数据库，以后随着新序列增添，数据库规模也会不断扩增。本发明还包括一种提升抗体数据库多样性的方法，依据前述组合策略，向数据库添加一个或多个编码轻重链可变区或scFV的核酸序列，从而丰富数据库的序列组合。
可以从不同种族或患者供体来构建人免疫球蛋白数据库。构建类似的数据库，也可经由靶抗原(如AIDS)免疫的灵长类动物。
本发明所述的每一个文库，其所包含的核苷酸序列都可列入数据库，具体保存形式可以是储存介质或是打印形式，比如电子的、磁性的或光学储存介质，或是计算机可读取的任何处储存介质。本发明数据库可与计算机联机，联机内存的指令由程序执行。具有基本专业技能的人员都可应用本发明之数据库，通过处理器执行指令，如脚本、编程、或其它适用元件如可下载Java程序、插件，对数据进行分析和处理。可将一组定义数据库功能的指令或程序，以多种方式传达给处理器，范例包括永久信息(储存于不可写介质如只读存储器，可借助输入输出设备阅读)，可变信息(储存于可写介质如软盘、硬盘或闪盘，通过传媒介质、或由普通专业人员采用的恰当方式传递给计算机)。
以下提供的实例是对本发明的说明、而非限制。
实例例1
人化抗体cDNA文库的构建
从供体扁桃腺或外周血分离出浆细胞和成熟B细胞，还可直接从切除的肿瘤组织中分离浸润B细胞或浆细胞。首先，实体组织经DMEM(Gibco，Rockville，MD)浸浴手工分解，此步和随后步骤须低温操作、动作轻柔，尽量减少细胞裂解所致的mRNA污染。组织和血液样本经Ficoll梯度低温离心纯化(Histopaque1083，Sigma，StLouis，MO)，转速2500r.p.m 20分钟，再经由4℃Sorvall离心富集浆细胞和淋巴细胞。细胞用10％DMSO悬浮、-80℃保存下备用。细胞用预冷PBS缓冲液洗涤一次，2000r.p.m离心2分钟收集沉淀细胞。浆细胞染色：按1∶50比例用DMEM稀释鼠抗人CD38荧光抗体(Caltag，Burlingame，CA)，4℃染色15分钟。IgG+B细胞染色：鼠抗人IgGFc荧光抗体(Caltag)，细胞经PBS洗涤一次，2000r.p.m离心2分钟后收集，PBS悬浮后经FACS分离(MOFLO cell sorter，cytomation，Fort Collins，CO)，FACS分离的前15％CD38+细胞，实际是纯浆细胞(Mervill et al.，J Exp.Med.，183，227-236(1996))。B细胞分离不需如此严格，因为其它细胞不表达膜Ig。
有多种方法获取人免疫球蛋白cDNA中V-基因序列。通常，采用特异于人γ重链、κ和λ轻链恒定区的反义引物来合成cDNA第一链。然后用一组包含大多V-基因序列的特异引物或兼并引物，来扩增cDNA的V-基因。V-基因序列扩增可按照标准RT-PCR程序(用几组套式引物)(参见：Li et al.，“Effect of VL and VH consensussequence-specific primers on the binding and expression of a mini-molecule antibodydirected towards human gastric cancer”，Chin Med Sci J.，15：133-139(2000)；Coronellaet al.，“Amplification of IgG VH and VL(Fab)from single human plasma cells and Bcells”，NAR 28，No20 e85(2000)；Wang et al.，“Human immunoglobulin variable regiongene analysis by single cell RT-PCR”，J Immunol Methods，20：244：217(2000))；或者通过寡聚核苷酸辅助分裂和链接法(ONCL)(Schoonbroosdt et al.，“Oligonucleotide-assisted cleavage and ligation：a novel directional DNA cloningtechnology to capture cDNAs”，Application in the construction of a human immuneantibody phage-display library，Nucl.Acid Res.，19：33(9)：e81(2005))。有多种不同方法获取cDNA V-基因序列，以下提供的实例是说明而非限制。
逆转录
短暂离心(30秒)后分别收集上清液和沉淀细胞(浆细胞和/或成熟B细胞)，此步及随后操作中须保持培养皿低温。工作区域和移液管事先灭菌，且与PCR操作区隔离。培养皿加入5μl预冷RT缓冲液B(含0.1％的Igepal CA-630(sigma)1μl，Oligo-d(T)16(Perkin Elmer，Norwalk，CT)1μl，DNase I-处理的酵母tRNA(BoehringerMannheim，Indianapolis，IN)0.25μl，5×第一链缓冲液1μl，40U/μl RNAsin(Promega，Madison，WI)0.5μl，DEPC H2O 1.5μl)。RT培养皿65℃加热1分钟，冷却至55℃30秒，45℃30秒，35℃30秒。23℃2分钟，4℃下置于PTC-100热循环仪(MJ ResearchInc.，Waltham，MA)。然后反应管中加入5μl预冷缓冲液C(含1μl的10mM dNTPmix，1μl的5×第一链缓冲液，1μl的SuperScript II RNase H-逆转录酶(Gibco)，2μl的DEPCH2O)，反应体积20μl。RT反应42℃恒温90分钟。
第一次PCR
每一样本进行3次PCR反应：λ轻链、κ轻链和γ重链。96孔培养板中Ready-To-Go反应珠(Pharmacia，Piscataway，NJ)用于随后所有的PCR反应。每次反应使用20μm的5’引物0.5μl，20μm的3’恒定区引物0.5μl，水25μl，以及及单个细胞cDNA5μl。5’引物组如Sblattero和Bradbury所描述(Sblattero et al.，Immunotechnolog，3：271-278(1998))，为克隆目的而增加末端限制位点。3’恒定区引物(λ恒定区引物CL2：CGCCG[TCTAGA]ACTATGAACATTCTGTAG(SEQ ID NO：1)；R恒定区引物CK1Z：GCGCCG[TCTAGA]ACTAACACTCTCCCCTGTTGAAGCTCTTTGTGACGGGCGATCTCA(SEQ ID NO：2)；IgG1铰链引物CG1Z：GCATCT[ACTAGT]TTTGTCACAAGATTTGGG(SEQ ID NO：3))如Burton和Barbas所描述(Burton et al.，Adv Immunol.，59：191-280(1994))。克隆不同V区序列的引物如Coronella等所述(2000.NAR.28：E85)，且能用于以下条件：λ：VL1B，VL3B，VL38B，VL4B，VL7/8B，VL9B，VL11B，VL13B，VL15B各0.5μl；CL20.5μl，水20μl，cDNA 5μl。κ：VK1B，VK2B，VK9B，VK12B各0.5μl；CK1Z 0.5μl，水22.5μl，cDNA 5μl。γ：VH4B，VH5B，VH6B，VH10B，VH12B，VH14B，VH22B各0.5μl；CG1Z 0.5μl，水21μl，cDNA 5μl。
第一次PCR反应需要在94℃下进行4分钟初始加热，随后经35次循环：94℃下1分钟(变性)，55℃下2分钟(退火)，72℃下3分钟(延长)。最后1分钟的延长也在72℃下完成。
或者，可以选择针对不同种免疫球蛋白IgA，IgM或IgD恒定区序列的特异引物，分别用以扩增IgA，IgM，IgD的V-片断序列。
第二次PCR
第一次PCR反应产物作为第二次套式PCR的模版，每次反应包含5’可变区引物0.5μl，3’恒定区引物0.5μl，水24μl，第一次PCR反应产物1μl，并使用Read-To-Go反应珠。λ套式3’引物(Lnest：GC[TCTAGA]ACTAATGCGTGACCTGGCAGCTGT)(SEQ ID NO：4)，κ(Knest：GC[TCTAGA]ACTAATGGGTGACTTCGCAGGCGTAGAC)(SEQ ID NO：5)和IgG重链(Hcnest：GG[ACTAGT]GTTGCAGATGTAGGTCTGGGTGC)(SEQ ID NO：6)也都用于第二次PCR反应。
扩增条件与第一次PCR相同，不同的是退火在60℃进行。
序列分析
第二次PCR产物(5μl)经琼脂糖凝胶电泳分析。反应产物经纯化(Qiagen Qiaquik，Valencia，CA)后直接克隆入TA载体(Invitrogen)，应用TA克隆载体特异引物(PerkinElmer ABI Prism染料终止序列)，对克隆cDNA序列进行自动测序析。然后用McVectorDNA软件将cDNA序列翻译成氨基酸序列，并与Kabat数据库进行比对，确认氨基酸序列是否源自免疫球蛋白。依据Kabat分类，所有免疫球蛋白V-基因片段序列分为FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4子片断，编码子片段的cDNA序列和这些子片段的氨基酸序列都将编入数据库，形成包含框架区和CDRS子库的集合体。
实施例2
含任意组合框架区和CDRS的人V区文库构建
如例1所述，含不同重链和轻链FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4编码序列的子库源自Kabat数据库(Kabat et al.，”Sequences of proteins ofimmunological interest”(5th edition)，US Dept Health and Human Services，USGovernment Pringting Offices(1991))。
所有FR和CDR片段均由化学合成的寡核苷酸组合而成。简言之，某一特定序列的互补DNA寡核苷酸经由化学合成。在退火条件下，等同分子浓度的互补寡核苷酸混合形成平端双链DNA。源自数据库的各种框架区和CDRS的序列片段，可经冷冻或冻干保存备用。当子库容量达到设定的多样性数量时，即可按恰当顺序，如FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4，顺次总装V-序列数据库。
VH和VL基因的组合起始于FR4有义链固定。编码FR4的寡核苷酸固定语凝胶垫或凝胶芯片。简言之，用亲和硅烷(LKB)处理玻板，然后在玻板表面聚合形成20μm后聚丙烯酰胺凝胶(8％丙烯酰胺/0.28％双丙烯酰胺)层。划线机从胶板X-Y方向切割胶条，筑成40×40μm(间隔80μm)或100×100μm(间隔200μm)的芯片阵列。聚丙烯酰胺凝胶经水合肼处理，凝胶胺基被肼基置换而活化，施用疏水硅烷(LKB)处理胶条间的玻璃空隙。固定用的寡脱氧核苷酸由3’端的3-甲基尿苷合成，经NaIO4氧化激活产生二醛基，而将凝胶的肼基交联起来。活化的寡核苷酸溶液经one-pin robot转移至微芯片，降温凝结芯片表面水。用矿物油(Nujolmineral oil，Schering-Plough)覆盖完全膨胀的凝胶芯片，置于20℃48小时以固定寡核苷酸，然后用乙醇和蒸馏水洗去矿物油。微芯片干燥备用，4℃可保存1年。示例参见：Yershov et al.1996.Proc.Natl.Acad.Sci.USA，93，4913-4918。
将预先合成的FR4有义链固定在固体支持物上(Khrapko et al.，FEBS Lett.，256：118-122(1989)；Khrapko et al.，DNA Seq.，1：375-388(1991)；Lamture et al.，NAR，22：2121-2125(1994)；Ghu et al.，NAR，22：5456-5465(1994))。或者，直接在固体支持物表面合成FR4有义链(Southern et al.，Genomics，13：1008-1017(1992)；Fodor et al.，Science，251：767-773(1991)；Pease et al.，PNAS，91：5022-5026(1994))。对固定的序列进行原位退火和连接。
将1pmol的FR4有义链寡核苷酸固定在凝胶芯片(100fmol/0.1×0.1×0.002mm芯片)。在10μl杂交缓冲液中进行退火，杂交缓冲液含1μM反义FR4(未磷酸化)。反义寡核苷酸溶液保存于90℃，取1滴10μl的热杂交溶液放在芯片上，加盖片室温温育5分钟。37℃下蒸馏水洗涤10分钟，洗去未退火的寡核苷酸。在与对应的有义链(未磷酸化)合成DNA双链(表达其余框架区和CDRs)之前，所有反义寡核苷酸(除FR4之外)须进行5’末端磷酸化。10μl反应混和物在37℃下磷酸化60分钟，反应混合物含1×PN激酶缓冲液(Epicentre Technologies，USA)，500pmol ATP，0.5U的T4多聚核苷激酶(Epicentre Technologies，USA)。这将确保平端定向连接是以正确次序、在正确片断上进行(有义链的磷酸化5’末端才能与固定的序列连接)。连接反应是在相似条件下进行。简言之，将4微升CDR3连接混合物置于芯片上，连接混合物含有：0.5倍稀释的4pmol平端-退火CDR3双链DNA和1U的T4DNA连接酶(Boehringer Mannheim，USA)，以及稀释1倍的连接缓冲液(Rapide DNA Ligation kit，Boehringer Mannheim，USA)。连接反应是在100％湿度、室温条件下进行12小时。洗去连接的CDR3DNA。依照双链FR3，CDR2，FR2，CDR1和FR1顺序，连接-洗涤循环反复进行。
也可经由定向粘性末端克隆，依序完成连接。图7说明了一种可能的方案。同样，除FR4之外，所有FR和CDR片段的反义链都要磷酸化，以确保定向连接。然而，带有突出粘性末端的双链DNAs被引入，FR4的5’突出粘性末端的带有3个交错的核苷酸(图7)。对于双链CDR3，磷酸化的反义链在CDR之外拥有3个外凸的5’突出粘性末端，5’突出粘性末端携带有简并核苷酸(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)(用XXX表示)；反义链还有3个外凸的3’突出粘性末端，带有源自CDR的界定序列(用OOO表示)。FR4有义链的5’突出粘性末端的界定序列，将选择CDR3的简并5’突出粘性末端的恰当序列进行退火，然后连接。此外，CDR3双链DNA的不兼容上游悬突结构和不对称磷酸化(只在反义链)，将确保粘性末端的定向连接。CDR3带有的简并序列不能退火，也不能与FR4的突出粘性末端序列连接，所以将被洗除。对于FR3的连接，未磷酸化的有义链在FR3序列之外具有3个外凸的3’突出粘性末端，突出粘性末端带有简并核苷酸；有义链还有3个外凸的5’突出粘性末端，带有界定的FR3序列。应用相似的替换策略，连接就能有效地定向进行(图7)。
一个通用的粘性末端序列，是在所有FR1片段的上游位置掺入，在所有FR4片段下游位置掺入，这样有利于随后的连接序列连接、亚克隆进入最终表达系统。例如，在VH-linker-VL排列结构中，Sfi I在FR1通用粘性末端序列的上游位置掺入，Not I在FR4通用粘性末端序列的下游位置掺入，以便于克隆进入噬菌粒载体如pCANTAB5E。这些序列组合进入以scFv或Fab为形式的噬菌体展示文库(Cai et al.，PNAS，93：6280-6285(1996)；Barbas et al.，PNAS，95：10164-10168(1992))。或者，组合进入筛选用核糖体展示系统(Hanes et al.，PNAS，95：14130-14135(1998)；Schaffitzelet al.，I Immunol Methods，231：119-135(1999))。
一个通用的引物序列，可在所有FR1上游位置随意掺入，而在所有FR4下游位置随意掺入，这样有利于后面的连接序列进行连接、亚克隆进入最终的表达系统。例如，在VH-linker-VL排列结构中，Sfi I位点带有5’-GAATTCGGCCCAGCCGGCC-3’(SEQ ID NO：7)序列，在所有VH FR1的上游位置掺入，部分连接序列(5’-GGCACCACGGTCACCGTC-3’)(SEQ ID NO：8)在所有VH FR4下游位置掺入(图8)。同理，部分连接序列(5’-GCTCACTCAGTCTCCA-3’)(SEQ ID NO：9)在所有VL FR1上游位置掺入，NotI(含5’-GCGGCCGCAGGTGCGCCG-3’序列)(SEQ ID NO：10)在所有VL FR4下游位置掺入。引物A(5’-GAATTCGGCCCAGCCGGCC-3’)(SEQ ID NO：11)和引物B(5’-GACGGTGACCGTGGTGCC-3’)(SEQ ID NO：12)用于PCR扩增所有的组合VH序列；引物C(5’-GCTCACTCAGTCTCCA-3’)(SEQ ID NO：13)和引物D(5’-CGGCGCACCTGCGGCCGC-3’)(SEQ ID NO：14)用于PCR扩增所有的组合VL序列(图8)。采用标准的重叠PCR连接扩增的VH与VL序列。对VH-linker-VL的PCR产物在Sfi I和Not I位点进行限制性酶解，以备随后的亚克隆进入噬菌粒载体pCANTAB 5E。也可应用其它噬菌粒载体。VH和VL序列掺入噬菌体展示库，如scFv(或Fab)展示库(Cai et al.，PNAS，93：6280-6285(1996)；Barbas et al.，PNAS，95：10164-10168(1992))。另一种方式是，VH和VL序列掺入筛选用的核糖体展示系统(Hanes et al.，PNAS，95：14130-14135(1998)；Schaffitzel et al.，I Immunol Methods，231：119-135(1999))。
实施例3
噬菌体展示库的构建
应用重叠PCR，以及VH和VL上下游通用粘性末端的特异引物，将源自不同FR和CDR片段(见例2)的可变区VH和VL序列连接起来，形成编码抗体单链可变区片段(scFv)的DNA序列。通过一序列为(GGGGS)3(SEQ ID NO：15)的连接肽(其它连接序列和长度亦可)，将VH和VL序列连接起来。参见图8。
PCR反应容积50μl，含1×PCR缓冲液(Invitrogen)，1.5mM的MgCl2(Invitrogen)，0.2mM的dNTP(Promega)，0.04U/μl的铂Taq聚合酶(Invitrogen)，各50ng合成Ig基因VH或VK，0.2μM引物。经过94℃3分钟的预变性后，在
Figure G2008800153194D00201
PCR仪(带有25孔铝板，Eppendorf)内进行25次延长循环，每个循环包括：94℃变性40秒，50℃退火40秒，72℃延长40秒，及随后的72℃再延长10分钟。每一连接体-连接的VH与VL的5μl PCR产物，用作重叠PCR的模板。
重叠PCR反应混和物容积50μl，含1×PCR缓冲液(Invitrogen)，2.5mM的MgCl2(Invitrogen)，0.2mM的dNTP(Invitrogen)，0.04U/μl的铂Taq聚合酶(Invitrogen)，5μl的第一步PCR反应产物(VH和VK)，0.2μM的侧翼引物。混合物在94℃下预变性3分钟，接着在
Figure G2008800153194D00202
PCR仪(带有25孔铝板，Eppendorf)内进行25次延长循环。每个循环包括：94℃变性60秒，50℃退火60秒，72℃延长60秒。在72℃延长温育10分钟之后，PCR产物(编码一个scFv的DNA)在4℃下保存备用。
经过重叠PCR之后，用QIAquick PCR Purification Kit(Qiangen)纯化单链可变区片段(scFv)。纯化PCR产物经由Sfi I酶解，50μl酶切溶液含1×NE缓冲液2(NewEngland Biolabs)，补充0.01％BSA，5U的Sfi I限制内切酶，1ug纯化scFv DNA。反应混合物37℃温育过夜，酶解产物经QIAquick Nucleotide Removal Kit(Qiagen)纯化回收，然后经由NotI酶解，50μl的反应溶液含1×NE缓冲液3(New EnglandBiolab)，补充0.01％BSA(1×NEB-BSA，New England Biolabs)，5U的Not I限制内切酶，以及经Sfi I-7水解后纯化的scFv的DNA。反应混合物37℃温育过夜，Sfi I/NotI水解后的scFv DNA经由凝胶纯化(QIAquick Gel Extraction Kit；Qiagen)，以备随后亚克隆。
噬菌粒载体pCANTAB 5E经Sfi I和Not I双解线化，将酶解scFv片段亚克隆至载体相应位点。然后在1×T4连接缓冲液(Invitrogen)中进行连接，载体与插入分子比例为1∶3，DNA总浓度＜100ng。
由连接的DNA构建成scFv序列库(scFv-pCANTAB 5E)，电穿孔法将其导入大肠杆菌TG1(Stratagene)。简言之，将2μl scFv-pCANTAB 5E与20μl感受细胞TG1混合，置于无菌电穿孔管(0.1-cm-gap，BioRad)。样品经1次脉冲电击(2000V，25μF，200′Ω)后，加入SOC培养基1ml以悬浮细胞，然后将细胞移至无菌14-ml Falcon聚丙烯圆底离心管(BD Biosciences)，37℃摇床(250rpm)温育1小时。
合并全部转化培养，系列稀释(1×，10-1×，10-2×和10-3×)后涂布于SOBAG平板(SOBAG培养基，含1.5％Bacto-arga(BD Bioscience)和100μg/ml氨苄青霉素(Sigma)，30℃温育过夜，测算转化效率(文库容量)
剩余培养4℃离心(4000rpm)5分钟，用10ml SOBG培养液(含100μg/ml氨苄青霉素，5mM MgCl2)悬浮沉淀细胞，冰育15分钟，偶尔轻摇。分光光度计600nm吸光值测算细胞数量(108细胞/ml的OD600值为0.4)。
悬浮细胞中加入M13KO7援救噬菌体，感染复数比3∶1，M13KO7噬菌体感染：37℃静置温育30分钟，然后摇床(200rpm)温育30分钟。感染培养液4℃离心(4000rpm)10分钟，沉淀细胞以10ml 2X-YT培养液悬浮，培养液含100μg/ml氨苄青霉素和50μg/ml卡那霉素。悬浮细胞经系列稀释(1×，10-1×，10-2×和10-3×)后涂布SOBAG-K平板(SOBG培养基，含0.5％Bacto-arga，100μg/ml氨苄青霉素，50μg/ml卡那霉素)，37℃温育过夜(＞20小时)，测算噬菌体援救率。剩余悬浮细胞用2X-YT培养液(含100μg/ml氨苄青霉素和50μg/ml卡那霉素)补足至50ml，37℃摇床(250rpm)温育过夜，用于重组scFv-噬菌体制备。
实施例4
抗原特异性噬菌体展示文库的筛选
从例3获取的过夜培养物置冰上温育15分钟，4℃离心(6000rpm)10分钟。将含重组scFv-噬菌体的上清移至预冷的50ml离心管，每25ml上清中加入5mlPEG/NaCl溶液(20％聚乙二醇8000(Sigma)，2.5MNaCl(Sigma))，冰育1.5小时，4℃离心(10,000rpm)30分钟，收集重组噬菌体沉淀，用2ml 2X-YT培养液(含1％BSA)悬浮噬菌体。为确定scFv-噬菌体效价，取2μl悬浮噬菌体用200μl2X-YT培养液连续稀释(10-2×，10-4×，10-6×，10-8×和10-10×)。从每一滴度稀释液中取出2μl，加入200μl对数生长期大肠杆菌TG1，37℃温育30分钟(不需摇振)，以备scFv-噬菌体感染。
对数期TG1的制备：将100μl TG1接种入10ml 2X-YT培养液(含5mM MgCl2)，培养过夜。接种经37℃摇床(250rpm)温育，直至OD600吸光值达到0.4-0.5。细菌培养液用冰预冷20分钟备用。重组噬菌体感染后，将100μl感染TG1细胞涂布SOBAG板(SOBG培养基，含1.5％Bacto-arga和100μg/ml氨苄青霉素)，30℃温育过夜。
剩余重组噬菌体浓集物中加入2倍容积的scFv-噬菌体封闭缓冲液(含1×PBS，0.2％Trion X-100(Sigma)，0.01％NaN3(Riedel-de Haen)，0.1％BSA(Sigma)，10％脱脂奶(Nestle))，室温下预封闭30分钟。24孔培养板(Corning)预先包被特异抗原，每孔加入0.5ml封闭液稀释的重组噬菌体。亦可将50μl含有特异抗原的PBS包被于PVC微量滴定板上，室温下湿盒温育2小时，用PBS洗去游离抗原。示例参见Harlow E And Lane D.1988.In：Antibodies：A Lobroatory Mannual.p.564.CSHL Press。
提前1天准备筛选用的预封闭培养板，将特异抗原溶于包被缓冲液pH9.6(15mMNa2CO3(Sigma)，35mM NaHCO3(Sigma))，抗原终浓度10μg/ml，每孔井加入1ml抗原溶液。4℃轻微摇振温育过夜，孔井用3ml硼酸缓冲液pH8.0(26mM的Na2B4O7，100mM的H3BO3，0.1％BSA，100mM的NaCl，3mM的KCl，0.5％吐温-20)洗涤3次，再用2.5ml相同缓冲液37℃下封闭2小时，筛选前用3ml硼酸缓冲液洗涤3次。
筛选是在室温下轻微摇振温育2小时。去除游离scFv-噬菌体之后，以1×PBS用力震荡洗涤培养板孔井5次，每次30秒，再用2.5ml PBS(含0.1％Tween-20，USB)洗涤10次。洗涤完毕，用100μl 0.1M glycine-HCl缓冲液(pH2.2)将板孔上结合的scFv-噬菌体洗脱下来，并即用10μl1MTris-HCl缓冲液(pH8.0)中和。
合并洗脱的scFv-噬菌体，用于再感染50ml对数期TG1(含2％葡萄糖和5mMMgCl2)。再感染条件：37℃下静止温育30分钟，然后摇振(200rpm)温育30分钟。将100μl再感染TG1培养物作系列稀释(1×，10-1×，10-2×和10-3×)，涂布SOBAG板，30℃温育过夜，测算文库效价。
剩余再感染培养液中加入终浓度5×109pfu/ml的M13KO7辅助噬菌体(含100μg/ml氨苄青霉素)，进行噬菌体援救。超感染在37℃静止温育30分钟，，然后摇振(200rpm)温育30分钟。援救培养冰育10分钟，4℃离心(4000rpm)10分钟，将援救细胞沉淀悬浮于50ml2X-YT培养液中(含100μg/ml氨苄青霉素，50μg/ml卡那霉素)。将100μl援救培养物作系列稀释(1×，10-1×，10-2×和10-3×)，涂布SOBAG-K板，37℃温育过夜(＞20小时)，测算第二轮筛选文库的效价。剩余的援救培养液在37℃下摇床(250rpm)温育过夜，产生的重组噬菌体以备下一轮筛选。筛选过程重复2次，每次筛选都使用10倍系列稀释的包板抗原。
二轮筛选之后，用50ml对数期TG1(含2％葡萄糖，5mM MgCl2)的再感染第2轮洗脱物。混合物置37℃静止温育和摇振(200rpm)温育，将100μl再感染培养物作系列稀释(1×，10-1×，10-2×和10-3×)，涂布SOBAG板，测算效价。剩余的再感染培养液经4℃离心(4000rpm)10分钟，收集沉淀细胞并悬浮于8ml 2X-YT培养液(含20％葡萄糖)，分瓶于-70℃储存。
应用噬菌体-ELISA法，对每一单克隆的重组噬菌体的抗原特异性进行分析，以第2轮筛选的单克隆TG1接种1ml 2X-YT培养液(含2％葡萄糖，5mM的MgCl2，100μg/ml氨苄青霉素)，37℃摇振(250rpm)温育4-5小时，按100μl培养液制备甘油菌，-70℃储存。
剩余培养液中加入2×108pfu/ml M13KO7辅助噬菌体，援救培养置于37℃静止温育和200rpm摇振温育来辅助感染。培养液经4℃离心(4000rpm)10分钟后，沉淀细胞悬浮于2.5ml 2X-YT培养液(含100μg/ml氨苄青霉素和50μg/ml卡那霉素)，培养液置于37℃摇振(250rpm)温育过夜以制备重组噬菌体，4℃离心(4000rpm)15分钟。收集含上清液的scFv-噬菌体，4℃储存，用于噬菌体-ELISA检测。
用96孔ELISA板进行噬菌体-ELISA检测，板孔用50μl抗原溶液包被(pH9.6碳酸缓冲液，含50μg抗原)。4℃温育过夜，所孔用200μl的硼酸盐缓冲液(pH8.0)洗涤3次，再用硼酸盐缓冲液于37℃下封闭1小时。封闭之后，用200μl的硼酸盐缓冲液洗涤3次，孔井中加入100μl含scFv-噬菌体上清，37℃温育1小时。
温育后用200μl的硼酸盐缓冲液(pH8.0)洗涤板孔5次，加入100μl经硼酸缓冲液稀释5000倍的酶标抗体(HRP/anti-M13 mouse Ab，Amersham)，37℃温育1小时，200μl硼酸盐缓冲液洗涤3次，然后加入100μl邻苯二胺(OPD，Sigma)底物溶液显色。
底物溶液配制：将10mg OPD溶于10ml柠檬酸-磷酸缓冲液(24mM柠檬酸(sigma)，51mM Na2HPO4(sigma)，pH 5.0)，加入8μl 30％H2O2。室温显色1小时后，加入100μl 40％H2SO4(sigma)终止显色。呈色强度用Sunrise酶标仪(Tecan)测定。将OD450nm值大于1.5倍均值的样本视为潜力噬菌体而筛选出来，用对照抗原(BSA)和核苷酸序列，进一步对候选噬菌体进行噬菌体-ELISA测试分析。
实施例5
从阳性噬菌体库到功能化抗体的先导转化
对抗原特异性scFv-噬菌体进行DNA测序。用特异引物在恰当的克隆位点掺入，将scFv-噬菌体VH和VL进行PCR扩增，然后将VH和VL亚克隆至对应的阶段载体。
制备2个质粒载体以用于功能人化抗体基因的构建和表达，质粒pEγ1包含一个人IgG启动子和增强子、包括部分前置内含子的人染色体Cγ1片段、以及一个鸟嘌呤-次黄嘌呤磷酸核糖转移酶(gpt)基因；质粒pEκ与pEγ1相似，不同在于pEκ包含人染色体CK片段和潮霉素基因。
为表达功能人化抗体，用电穿孔法将重链和轻链质粒转染Sp2/0小鼠骨髓瘤细胞，选择潮霉素表达细胞。通过ELISA检测，选择具有最大抗体表达量的克隆。测定纯化抗体对特异性抗原(或者表达表面特异抗原的细胞)的结合力。
实施例6
在有限序列内构建一个抗TNF-α含任意组合框架区和CDRS的人轻链V区文库
为阐述本发明的概念，以抗TNF-α抗体CA9的轻链V-基因文库的构建来说明。图7列出抗TNF-α抗体CA9的轻链可变区(VK)的氨基酸及核酸序列。序列同源性检索(sequence homology search：IgBlast against Kabat system：http://www.ncbi.nlm.nih.gov/igblast/)找到两个与CA9的VK序列相似度高达65.4-66.4％的人轻链VK序列(图8)，分别为：CAG27043(Immunoglobulin kappa lightchain variable region[Homo sapiens])与ABA26038(Immunoglobulin light chain variableregion[Homo sapiens])。
以上被筛选过的人FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4序列(图8)可通过随机组合的方式，按FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4的排列顺序，制备一个小型的抗体文库。这样的随机组合，理论上可得出36(729)种不同序列。重组的单链序列可与原来的CA9重链可变区序列配对，制备一个scFv噬菌体展示文库。筛选后，强亲和力并特异于TNF-α抗原的scFv噬菌体会被扩增，其轻链V区序列会被测序。
化学合成编码不同FR与CDR的互补寡核苷酸(Invitrogen)应有如下特性：
(1)在编码FR4段的有义链的5’末端胺化(amine-modified)，方便固定在DNA-BINDTM板上)；
(2)FR3除外，所有编码FR及CDR段的有义及反义链只来自一个合成循环内产生的寡核苷酸；
(3)编码不同CDR段分别在反义链5’突出粘性末端带有四个简并核苷(degenerate nucleotides)[(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)]，及3’突出粘性末端带有五个预设的序列；
(4)编码FR1与FR2的有义链均在3’突出粘性末端带有五个简并核苷(degenerate nucleotides)[(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)]，及5’突出粘性末端带有四个预设的序列；
(5)编码FR3的有义及反义链会分开两个半段合成；N-FR3代表N-端的半段，C-FR3代表C-端的半段；
(6)C-FR3段的有义链在3’突出粘性末端带有五个简并核苷(degeneratenucleotides)[(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)(A/T/G/C)]，N-FR3段的有义链在5’突出粘性末端带有四个预设的序列。
混合等渗浓度的FR4有义与反义链，94℃加热10分钟，室温下退火。双链FR4DNA用Oligo Binding Buffer(OPB)(50mM Na2PO4，pH 8.5，1mM EDTA)稀释。100 l稀释过的FR4段以12.5，25，50与100pmol/孔的浓度加到DNA-BINDTM版(Costar)。DNA-BINDTM板的聚苯乙烯表面共价连接了一层可与如伯胺等的亲核分子发生作用的N-氧琥珀酰亚胺酯(NOS)基团(Costar)。特异偶联在DNA-BINDTM表面的DNA并不容易洗掉。在4℃及加湿的培养箱温育过夜后，用无菌的DPBS(pH7.4)把没有偶联的寡核苷酸洗掉，DNA-BINDTM内余下活性基团用稀释于OPD内3％牛血清白蛋白(BSA)封锁。再用无菌的DPBS(pH7.4)清洗。
所有反义FR与CDR寡核苷酸的5’末端均用T4多核苷酸激酶(T4 polynucleotidekinase)磷酸化[25 l杂交缓冲液内包含1X前反应缓冲液(forward reaction buffer)(Invitrogen)，1mM ATP(Invitrogen)，10单位T4多核苷酸激酶(Invitrogen)，2 M反义寡核苷酸]。磷酸化在37℃进行，温育超过50小时后，再在65℃温育20分钟终止反应。
混合等渗浓度的有义链与相应的磷酸化反义链FR(FR4除外)与CDR寡核苷酸，保存94℃10分钟。室温下退火形成双链CDR3，N-FR3，C-FR3，CDR2，FR2，CDR1与FR1。
FR3合成在25微升的体积内加入等渗浓度的N-FR3及C-FR3，1X连接缓冲液(Invitrogen)与1U T4DNA连接酶(Invitrogen)。连接反应在4℃下温育过夜，再在65℃下终止反应。
连接反应在25微升的体积内进行；反应混合物包含4pM CDR3双链DNA，1XT4DNA连接缓冲液(Invitrogen)与1U T4DNA连接酶(Invitrogen)。
在4℃及加湿的培养箱温育8小时或过夜。用无菌的DPBS(pH7.4)把没有连接上的CDR3DNA洗掉。双链FR3，CDR2，FR2，CDR1与FR1会以方向性粘性末端克隆的方法连续顺序反复循环连接-洗涤完成。
在反义FR4的5’端及有义FR43’端加入了一个NotI限制性酶位点。连接-洗涤后，在50微升的体积内，加入1XNEBuffer 3(New England BioLabs)，1X BSA(New EnglandBioLabs)与10U NotI酶(New England BioLabs)。在37℃及加湿的培养箱温育过夜。反应混合物转置于0.5毫升微量离心管后温育65℃20分钟去终止反应。
一个通用的粘性末端序列，是在FR1片段的上游位置掺入(DL-R引物：AGCTCGACATCCAGCTGACTCAGTCTCCAG)及在FR4片段下游位置掺入(DL-F引物：TGAGCGGCCGCTTTGATCTCCA)。PCR反应容积50μl，含1XPCR缓冲液(Invitrogen)，1.5mM MgCl2(Invitrogen)，0.2mM dNTP(Promega)，0.04U/ml铂Taq聚合酶(Invitrogen)，与5μl NotI-酶解物。混合物预变性3分钟，接着在
Figure G2008800153194D00251
仪(带有25孔铝版，Eppendorf)内进行30次延长循环。每个循环包括：94℃变性45秒，60℃退火45秒，及72℃延长45秒。最后在72℃延长温育10分钟。PCR后，15μl的PCR产物以1％琼脂糖凝胶电泳UV照明分析。
在一个试合成实验，用如图9的序列排列，按照上术程序合成连接一轻链V序列。简言之，带有胺基的双链FR4被固定在DNA-BINDTM板表面，再顺序地将CDR3，FR3(连接N-FR3与C-FR3而成)，CDR2，FR2，CDR1，与FR1连接。连接后的成品通过NotI酶切释放，再以通用的侧翼引物组合(DL-R与DL-F引物)PCR放大。图9展示了合成后PCR产物的凝胶电泳分析，说明FR与CDR片段顺序连接可以得出完整的V区序列。
实施例7
特异TNF-α并带有CA9VH序列及在有限FR及CDR序列下随机组合合成轻链的scFv噬菌体鉴别及特性检测
例6描述的合成人VK序列与CA9 VH序列结合成的scFv噬菌体文库经过三次递增压力筛选循环，找出对TNF-α高亲和力的scFv噬菌体，如例四所术。TNF-α能诱导L929(鼠纤维肉瘤)细胞毒凋亡(图10A)。CA9的嵌合抗体可以中和TNF-α诱导的L929细胞毒效应(图10B)。相同的检测方法可以应用到评估scFv噬菌体对TNF-α诱导的细胞毒效应的中和能力。
通过三次不同递增压力筛选循环，克隆出一个scFv噬菌体。经过放大的scFv噬菌体以TNF-α诱导的细胞毒法来评估其中和能力。如图十一所示，相关的噬菌体以剂量依赖的方式中和TNF-α诱导的L929细胞毒效应，其中和能力比包含原来鼠CA9的VK与VH序列的对照噬菌体更高。
产业应用
本发明提供的免疫球蛋白序列数据库和对应DNA文库，包含随机组合的重链和轻链可变区FR1，CDR1，FR2，CDR2，FR3，CDR3和FR4序列，用于构建功能性人化抗体文库。文库具有超越天然免疫系统的多样性储备。应用本发明的人免疫球蛋白噬菌体展示文库，用来表达新颖的、无免疫原性的、全人化抗体，和用来筛选抗原靶点特异性的抗体。
本文所提及的所有专利和公开出版物，都作为参考文献引述。对于这些发明的引述，不应被解读为承认本项发明披露晚于这些引述的发明。
在描述本发明的细节和具体体现时，应该明白前文所述为实例性和解释性描述，用以说明本发明和其优选的具体实施方式。本领域技术人员通过常规实验，就能轻易找到本发明的各种变通和调整用途，但并不脱离本发明的精髓和范畴。在权利要求部分中，明显体现了本发明的优势和特性，权利要求的范围，是由合理的对等值判定，本领域技术人员对此易于理解。因此，本发明并不受前文描述的限制，而是受权利要求和其对等值来限定。

Claims (9)

1.用于构建人免疫球蛋白噬菌体展示文库的方法，所述方法包括以下步骤：
制备第一组核苷酸序列，所述序列编码人免疫球蛋白轻链可变区，其中所述第一组的序列包括人轻链cDNA片段的序列，负责编码FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4，其中所述片段经随机选择并连接，用以编码轻链可变区，所述轻链可变区按顺序包括FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR；
制备第二组核苷酸序列，所述序列编码人免疫球蛋白重链可变区，其中所述第二组的序列包括人重链cDNA片段的序列，负责编码FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3和FR4，其中所述片段经随机选择并连接，用以编码重链可变区，所述重链可变区按顺序包括FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR；
制备第三组核苷酸序列，所述序列编码免疫球蛋白单链Fv，其中所述第三组的序列包括所述第一组的轻链序列、连接体、和所述第二组的随机选择的重链序列，其中所述连接体将所述轻链序列和所述重链序列共价连接，构成第三组序列，用以编码免疫球蛋白单链Fv；以及
将所述第三组核苷酸序列导入噬菌粒克隆载体，构建噬菌体展示文库。
2.权利要求1所述的方法，其中所述第一组核苷酸序列的所述人轻链cDNA片段仅编码κ链。
3.权利要求1所述的方法，其中所述第一组核苷酸序列的所述人轻链cDNA片段仅编码λ链。
4.权利要求1所述的方法，其中所述第一组核苷酸序列的所述人轻链cDNA片段编码κ和λ链。
5.权利要求1所述的方法，其中所述噬菌体展示文库排除FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3组合。
6.权利要求1所述的方法，其中所述第二组核苷酸序列的所述人重链cDNA片段仅编码γ链。
7.权利要求1所述的方法，其中所述第二组核苷酸序列的所述人重链cDNA片段编码γ1、γ2、γ3、γ4、μ、α1、α2、δ、或ε重链。
8.用于鉴定对感兴趣的靶抗原具有结合特异性的抗原结合分子的方法，所述方法包括如下步骤：(a)以权利要求1中所述人免疫球蛋白噬菌体展示文库，筛选对所述靶抗原具有结合特异性的免疫球蛋白；(b)表达所述免疫球蛋白，并(c)测试所述表达的免疫球蛋白对所述靶抗原的结合。
9.人免疫球蛋白噬菌体展示文库，其通过权利要求1所述的方法构建。
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