CN101597652B - 实时荧光定量pcr检测柯萨奇病毒a16型的试剂盒 - Google Patents
实时荧光定量pcr检测柯萨奇病毒a16型的试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101597652B CN101597652B CN 200810028596 CN200810028596A CN101597652B CN 101597652 B CN101597652 B CN 101597652B CN 200810028596 CN200810028596 CN 200810028596 CN 200810028596 A CN200810028596 A CN 200810028596A CN 101597652 B CN101597652 B CN 101597652B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- pcr amplification
- test kit
- pcr
- reaction liquid
- amplification reaction
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明涉及实时荧光PCR检测试剂盒,特别是涉及以实时荧光定量聚合酶链反应技术早期、快速诊断柯萨奇病毒A16型感染的试剂盒。本试剂盒针对柯萨奇病毒A16型特异的核苷酸序列设计引物和探针,采用一步荧光RT-PCR方法对样本进行扩增,根据扩增曲线判定样本中是否有柯萨奇病毒A16型,并利用线性定量参考品对病毒含量进行定量。通过本发明的试剂盒可实现对粪便、血清、咽拭子、脑脊液、疱疹液等样品中的柯萨奇病毒A16型的检测和定量分析。
Description
技术领域
本发明涉及实时荧光PCR检测试剂盒,特别是涉及以实时荧光定量聚合酶链反应技术早期、快速诊断柯萨奇病毒A16型感染的试剂盒。通过本发明的试剂盒实现对粪便、血清、咽拭子、脑脊液、疱疹液等样品中的柯萨奇病毒A16型的检测和定量分析。
背景技术
柯萨奇病毒A16型(CA16)是小RNA病毒科(Picornaviridae)肠道病毒属(Enterovirus)成员,柯萨奇病毒分为A、B两组,其中A组又分24个血清型,B组分6个血清型。各血清型引起的临床综合病征,由于侵犯的器官不同而表现各异,重则可造成死亡,妊娠期感染可引起非麻痹性脊髓灰质炎性病变,并致胎儿宫内感染和致畸。柯萨奇病毒A型感染儿童多见,成人感染占21.7%(Robinson,1958)。临床表现除上述外,主要特点为急性发烧、皮疹。脑膜脑炎伴有Guillain-Barré综合征和急性病毒性心肌病。
自1959年由人类肠道病毒(enterovirus,EV)导致手足口病(hand,foot and mouthdisease,HFMD)报道以来,HFMD已经在全球多次暴发。在我国,1985年以前柯萨奇病毒A16型(CA16)是该病的唯一病原,1983年天津暴发柯萨奇病毒A16型引起的手足口病,5~10月发病7000余例;而近年来手足口病暴发流行的主要是肠道病毒71型(EV71)和CA16引起,流行病学研究表明二者常常伴随流行引起手足口病暴发。CA16往往是主要的病原,常常超过感染总人数的60%。二者在遗传学上密切相关。
通常情况下,EV71与CA16引起的手足口病在临床症状等方面难以区别,而目前CA16的常规诊断方法还是病毒分离培养、中和抗体检测等方法,这些方法费时、费力,均不能提供一个快速的诊断工具,然而与肠道病毒相关的急性症状可发展迅速,尤其是在病毒流行期间,需要同时快速处理大量样本的,但是市面上还没有一个可用的诊断试剂盒。因此,开发早期、快速、特异、敏感的检测试剂盒非常必要。
近年来,随着分子诊断技术的飞速发展,逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)技术已经广泛应用于RNA病毒基因水平的研究,也给微生物的快速鉴定提供了可能。RT-PCR技术克服传统方法费时、费力且无法满足病毒流行期间同时处理大量样本的需要的缺点,已成为RNA病毒快速诊断的重要手段。一步法RT-PCR只要加入RNA和特异性引物即可实现在同一反应管内连续进行RNA→cDNA→PCR反应,中途不需加入任何试剂,在处理大量样品时易于操作,有助于减少残余污染,因为在cDNA合成和扩增之间不需要打开管盖。一步法可以得到更高的灵敏度,最低可以达到0.1pg总RNA。
实时荧光PCR技术是二十世纪末迅速发展起来的一种核酸检测技术,TaqMan PCR技术是实时荧光PCR的一种,与传统的PCR相对比,其在反应体系中增加了一条两端分别标记荧光报告基团和淬灭基团的探针。与普通PCR相比,TaqMan PCR技术具有如下优点:通过对扩增曲线以及对数增长期的循环阈值(Ct)的分析,摒弃普通PCR方法受多种因素干扰的终点分析方法,能够对检测样品进行准确定量分析,从而有效监测药物治疗的效果;将DNA扩增与检测过程融合为一体,可以实时、动态监测DNA扩增的全过程,省掉了PCR后处理过程大大缩短了结果分析时间,使得该方法更加快捷、方便;由于采取一种封闭的检测模式,从而减少了气溶胶污染和由此造成的假阳性;由于在普通PCR基础上增加了一条可与模板互补配对的荧光探针,进一步提高了检测靶多核苷酸的特异性。因此,该技术在靶多核苷酸样品的检测和定量分析中,已逐渐取代传统的PCR方法,得到十分广泛的应用。
CA16是引起儿童手足口病的主要病原体之一,由于还没有成熟的用于该病毒筛查和诊断的病毒核酸检测试剂盒,严重影响了对该种病毒的诊断和流行监控。本发明设计的试剂盒通过对CA16核酸进行直接检测和定量研究,不仅对于了解患病程度、预测、评价治疗效果有十分重要意义,而且有利于儿童手足口病的预防和控制。
发明内容
本发明涉及检测粪便、血清、咽拭子、脑脊液、疱疹液等样品中的CA16病毒存在的试剂盒,特别是涉及以实时荧光定量聚合酶链反应技术早期、快速诊断CA16病毒感染的试剂盒。
因此,本发明的目的是提供一种使用实时荧光PCR技术来定性及定量检测样品中CA16病毒的试剂盒,特别是涉及CA16病毒的早期感染在实验室诊断中的应用。基本原理是利用一对靶多核苷酸的特异性引物和一条靶多聚核苷酸的特异性探针,在耐热DNA聚合酶(Taq酶)、逆转录酶(RT酶)、RNA酶抑制剂(RNasin)、高质量的脱氧核糖核苷三磷酸(dNTPs)以及Mg2+等PCR反应缓冲液中,通过市售的荧光PCR扩增仪实现靶多核苷酸的循环扩增,从而达到快速、实时、定量检测靶多核苷酸的目的。
本发明所提供的检测样品中CA16病毒的试剂盒包括:(1)分别装有RNA提取液(即TRIZOL核酸抽提试剂)、PCR扩增反应液、阴性质控品、阳性质控品和定量参考品并加盖密封的多个试剂瓶或管,和(2)分隔并集中包装这些试剂瓶或管的包装盒。其特征在于PCR扩增反应液中用于靶多核苷酸扩增的正反向引物的序列分别是:
正向引物CA16-F1:5’-CAT GCA GCG CTT GTG CTT-3’(SEQ ID NO:1);
CA16-F2:5’-CAT GCA ACG ACT GTG CTT TC-3’(SEQ ID NO:2);
反向引物CA16-R1:5’-CAC ACA ATT CCC CCG TCT TAC T-3’(SEQ ID NO:3);
CA16-R2:5’-CAT AAT TCG CCC GTT TTG CT-3’(SEQ ID NO:4)
其中正向引物CA16-F1和CA16-F2可向5’和3’端方向各延伸10个碱基,反向引物CA16-R1和CA16-R2可向5’和3’端方向各延伸10个碱基。
根据本发明的一个优选实施方案,PCR扩增反应液中用于靶多核苷酸扩增和监测体系的寡核苷酸探针CA16-P1的序列是CA16-P15’-CGC TTG TGC TTT CCA GTG TCG GTG-3’(SEQ IDNO:5)和CA16-P25’-CGA CTA TGC TTC CCT GTC TCG GTG CA-3’(SEQ ID NO:6)其中该寡核苷酸探针序列可向5’和3’端方向各延伸10个碱基。
根据本发明的另一个优选实施方案,其中PCR扩增反应液由(a)耐热DNA聚合酶(Taq酶)、(b)逆转录酶(RT酶)、(c)RNA酶抑制剂(RNasin)、(d)脱氧核糖核苷三磷酸(dNTPs)、(e)能够与双链靶多核苷酸的第一条链结合的正向引物,(f)能够与双链靶多核苷酸的第二条链结合的反向引物,(g)和能够与靶多核苷酸结合并且两末端分别结合有荧光发生基团和荧光淬灭基团的寡核苷酸探针组成。
根据本发明的另一个优选实施方案,其中用于PCR扩增反应液中的最佳引物浓度为0.42μmol/L、探针浓度为0.21μmol/L;
根据本发明的另一个优选实施方案,其中用于PCR扩增反应液中的最佳镁离子浓度为2.15mmol/L、Taq酶最佳用量为5U/反应、RT酶最佳用量为100U/反应、RNasin最佳用量为20U/反应、脱氧核糖核苷三磷酸最佳浓度为0.20mmol/L。
根据本发明的另一个优选实施方案,其中用于PCR扩增的最佳反应温度和时间为:40℃逆转录30min;然后94℃预变性3min;最后93℃15s,55℃45s,40个循环。
根据本发明的另一个优选实施方案,其中阴性质控品为生理盐水。
根据本发明的另一个优选实施方案,其中阳性质控品为含有CA16病毒多聚蛋白基因片段的质粒,包括1×106copy/ml的强阳性质控品和1×103copy/ml的临界阳性质控品。
根据本发明的另一个优选实施方案,其中定量参考品为含有CA16病毒多聚蛋白基因片段的质粒,包括4个浓度梯度:1×107copy/ml、1×106copy/ml、1×105copy/ml、1×104copy个/ml。
本发明提供的实时荧光定量PCR检测试剂盒可以检测出CA16病毒的最低浓度为2.0×102copy/ml,说明本试剂盒具有非常好的灵敏度。
本发明针对CA16病毒基因片段设计特异引物和探针,可检测出CA16病毒,但不能检测出非CA16病毒病原体,说明本试剂盒具有很好的特异性。
本发明提供的实时荧光定量PCR检测试剂盒可以检测粪便、血清、咽拭子、脑脊液、疱疹液等样品中的CA16病毒;可为灵敏、快速早期诊断CA16病毒感染提供可靠的实验证据;同时由于能准确定量,所以可对临床用药进行有效监测。
附图说明
图1显示试剂盒检测CA16三个阳性参考品的检测结果图,3个阳性参考品的Ct值在16-25之间(分别为19.94、22.01、30.32),扩增曲线有明显指数增长期,成S型,可明确判定为阳性
图2显示阴性参考品的检测结果图,7个阴性参考品的扩增曲线平直或斜向下且与基线无交叉,没有Ct值,可明确判定为阴性。7个阴性参考品包括与CA16感染有相似症状的EV71、埃可病毒、腺病毒、轮状病毒、诺沃克病毒、脊髓灰质炎病毒以及正常人的粪便样品。
图3显示试剂盒定量检测时的扩增曲线,针对模板数为104~108拷贝/ml的不同浓度梯度的样本进行RT-PCR分析。
图4显示试剂盒定量检测时Std curve窗口下的标准曲线,绘制得到的标准曲线相关系数达到0.9991。
图5显示阳性质控品扩增曲线。图示扩增曲线为S型曲线,且CT值<27,说明检测体系进行了有效扩增。
图6显示阴性质控品扩增曲线。图示扩增曲线为不规则的折线,与荧光检测阈值线没有交点,且曲线不呈S型,说明检测过程中没有CA16的污染。
图7显示5个阳性标本的扩增曲线。5个标本的Ct值分别是24.35,26.69,27.67,29.91,31.07;结合扩增曲线有明显指数增长期,均能够判定为阳性。
具体实施方式
下列实施例旨在举例说明而不是限制本发明。
实施例1:柯萨奇病毒A16型荧光PCR检测试剂盒及其使用
1、制备包括下列组成成分的试剂盒:RNA提取液(50ml/管)1管、PCR扩增反应液(20μl/管)24管、阴性质控品(100μl/管)1管、阳性质控品(100μl/管)1管、定量参考品(50μl/管)4管。
2、标本采集、运送和保存
(1)标本采集:标本采集对象是暴发疫情出现时手足口病的临床诊断病例和病例发病所在社区(村)的临近无病例的社区(村)或托幼机构的5岁以下的儿童(作为健康对照人群)。
用于病毒分离的标本包括粪便、咽拭子和疱疹液,如果患者出现神经系统症状,可以采集脑脊液标本。临床标本在运输和贮存过程中要避免反复冻融,如果不能确保-20℃的条件,应该在0~8℃运输和保存。标本应冷冻运输,运输时要附有必要的信息,如标本编号、发病日期和标本采集日期。
(2)标本保存和运送:
①粪便标本
采集病人发病7日内的粪便标本,用于病原检测。粪便标本采集量5~8g/份,采集后立即放入无菌采便管内,4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。
②咽拭子标本
采集病人发病3日内的咽拭子标本,用于病原检测。用专用采样棉签,适度用力拭抹咽后壁和两侧扁桃体部位,应避免触及舌部;迅速将棉签放入装有3~5ml保存液(维持液或生理盐水,推荐使用维持液)的采样管中,在靠近顶端处折断棉签杆,旋紧管盖并密封,以防干燥。4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。
③血清标本
静脉采集3~5ml全血,置于真空无菌采血管中,自凝后,分离血清,将血清置于-20℃以下冰箱中冷冻保存。
④疱疹液
同时采集多个疱疹作为一份标本。先用75%的酒精对疱疹周围的皮肤进行消毒,然后用消毒针将疱疹挑破用棉签蘸取疱疹液,迅速将棉签放入内装有3~5ml保存液(维持液或生理盐水,推荐使用维持液)的采样管中,在靠近顶端处折断棉签杆,旋紧管盖并密封。所采集标本4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。
⑤脑脊液标本
出现神经系统症状的病例,要采集脑脊液标本,采集时间为出现神经系统症状后3天内,采集量为1.0~2.0ml。采集后立即装入无菌带垫圈的冻存管中,4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。
3、检测步骤
(1)RNA提取
水样粪便、血清、脑脊液、疱疹液等液态样本各100μl(样品不足100μl时请补加适量生理盐水重悬),放置于1.5ml灭菌离心管,加入200μl Trizol试剂及100μl氯仿,用振荡器强力振荡20秒后静置3分钟;
2~8℃下12,000rpm离心10min,吸取上清至另一干净的1.5ml离心管;
加入0.2ml氯仿,盖紧盖子,手动用力颠倒摇动15s(不可用振荡器),室温孵育2~3min;
2~8℃下12000rpm离心15min后,取最上层的上清液至另一干净的1.5ml离心管;
加入0.5ml预冷的异丙醇,缓慢颠倒充分混匀后,-20℃静置15min,2~8℃,12000rpm离心10min,小心弃尽上清液;
加入1ml预冷的70%的冰冷乙醇,手动颠倒数次洗涤沉淀,2~8℃,8000rpm离心5min,小心弃尽上清液;
空气或真空干燥5~10min,加入50μl DEPC H2O,55~60℃下孵育10min,手指轻轻弹打管底,使其充分溶解,直接用于实验或-70℃保存备用。
(2)RT-PCR检测
分别取阴性质控品、标本、阳性质控品、定量参考品品各5μl,加入PCR反应管中进行PCR扩增。PCR循环条件是:40℃逆转录30min;然后94℃预变性3min;最后93℃15s,55℃45s,40个循环。选择荧光定量PCR仪上FAM/TAMRA通道进行荧光信号检测。
(3)结果分析
反应结束后保存检测数据文件。根据扩增曲线设置Baseline的start值、stop值以及Threshold的Value值(start值可以在1~10、stop值可以在5~20、Value值可以在0.01~0.2范围选择),在Analysis菜单下选择Analyze自动分析结果。
(4)结果判定
扩增曲线呈S形,且CT值小于37,待检样本判为CA16病毒(参见附图1);
扩增曲线不呈S形,或CT值大于37,待检样本判为CA16病毒阴性(参见附图2)。
实施例2:CA16病毒核酸定量检测试剂盒中定量参考品和质控品的配制及使用
CA16病毒核酸定量检测试剂盒中定量参考品为含有CA16病毒核酸特异序列的质粒,用于制备标准曲线,对待检样本进行准确定量,可直接用于RT-PCR检测;质控品包括阳性质控品和阴性质控品,用于临床试验中质量控制,操作方法同待检样本。
经一步法或两步法扩增后,保存检测数据文件。根据分析后图像调节分析参数使标准曲线(Std curve)窗口下的标准曲线图达到最佳(即相关性(correlation)数值<-0.95)。最后由仪器自动分析装置计算出未知标本的测定数值(Qty),即标本中CA16病毒的RNA含量。其中一步法定量参考品制备的标准曲线的扩增曲线参见附图3,其标准曲线相关信息参见附图4;
质量控制标准:要求在一次实验中同时满足以下条件——阳性质控品为阳性(参见附图5)、阴性质控品为阴性(参见附图6)、定量参考品制备得到的标准曲线相关系数大于0.95;否则,结果无效,需重新检测。
实施例3:应用CA16病毒荧光PCR检测试剂盒定量检测临床样品
样品来自广东省疾病预防控制中心,包括粪便、咽拭子、血清、脑脊液等样品类型;标本RNA提取、PCR反应与结果分析参照实施例1进行。
PCR反应结束后,根据扩增曲线先调节分析参数,使标准曲线(Std curve)窗口下的标准曲线达到最佳(即相关性数值绝对值>0.97),然后分析临床样品。临床样品的检测结果如附图7所示:5个临床阳性标本扩增曲线的Ct值分别是24.35,26.69,27.67,29.91,31.07,结合扩增曲线有明显指数增长期,均能够判定为阳性;参照同一次试验中线性定量参考品的标准曲线图(如附图4所示)可以判定5个临床阳性标本的CA16病毒浓度分别为:1.44×107copy/ml、3.54×106copy/ml、1.65×106copy/ml、3.87×105copy/ml、1.81×105copy/ml。
序列表
<110>中山大学达安基因股份有限公司
<120>实时荧光定量PCR检测柯萨奇病毒A16型的试剂盒
<140>
<141>
<160>6
<210>1
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据特定核苷酸序列设计,以用作PCR扩增的引物。
<400>1
catgcagcgcttgtgctt
<210>2
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据特定核苷酸序列设计,以用作PCR扩增的引物。
<400>2
catgcaacgactgtgctttc
<210>3
<211>22
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据特定核苷酸序列设计,以用作PCR扩增的引物。
<400>3
cacacaattcccccgtcttact
<210>4
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据特定核苷酸序列设计,以用作PCR扩增的引物。
<400>4
cataattcgcccgttttgct
<210>5
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据特定核苷酸序列设计,以用作PCR扩增的探针。
<400>5
cgcttgtgctttccagtgtcggtg
<210>6
<211>26
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据特定核苷酸序列设计,以用作PCR扩增的探针。
<400>6
cgactatgcttccctgtctcggtgca
Claims (9)
1.一种检测样品中柯萨奇病毒A16型存在的试剂盒,该试剂盒包括:(1)分别装有RNA提取液、PCR扩增反应液、阴性质控品、阳性质控品和定量参考品并加盖密封的多个试剂瓶或管,和(2)分隔并集中包装这些试剂瓶或管的包装盒,其中PCR扩增反应液由耐热DNA聚合酶、逆转录酶、RNA酶抑制剂、脱氧核糖核苷三磷酸、正向引物、反向引物,两末端分别结合有荧光发生基团和荧光淬灭基团的寡核苷酸探针组成,其特征在于PCR扩增反应液中用于靶多核苷酸扩增的正向和反向引物的序列分别为:
正向引物CA16-F1:5’-CAT GCA GCG CTT GTG CTT-3’
CA16-F2:5’-CAT GCA ACG ACT GTG CTT TC-3’
反向引物CA16-R1:5’-CAC ACA ATT CCC CCG TCT TAC T-3’
CA16-R2:5’-CAT AAT TCG CCC GTT TTG CT-3’
PCR扩增反应液中所使用的寡核苷酸探针的序列为:CA16-P1 5’-CGC TTG TGC TTT CCA GTG TCGGTG-3’和CA16-P2 5’-CGA CTA TGC TTC CCT GTC TCG GTG CA-3’。
2.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于PCR扩增反应液中正向引物浓度为0.42μmol/L、反向引物浓度为0.42μmol/L、寡核苷酸探针浓度为0.21μmol/L。
3.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于PCR扩增反应液中的耐热DNA聚合酶的浓度为5U/反应。
4.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于PCR扩增反应液中的逆转录酶的浓度为100U/反应。
5.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于PCR扩增反应液中RNA酶抑制剂的浓度为20U/反应。
6.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于PCR扩增反应液中镁离子浓度为2.15mmol/L。
7.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于PCR扩增反应液中脱氧核糖核苷三磷酸的浓度为0.20mmol/L。
8.根据权利要求1的试剂盒,其特征还在于用于PCR扩增的反应温度和时间为:40℃逆转录30min;然后94℃预变性3min;最后93℃ 15s,55℃ 45s,40个循环。
9.根据权利要求1中试剂盒,其特征还在于所检测的样品选自粪便、血清、咽拭子、脑脊液、疱疹液样品。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200810028596 CN101597652B (zh) | 2008-06-06 | 2008-06-06 | 实时荧光定量pcr检测柯萨奇病毒a16型的试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200810028596 CN101597652B (zh) | 2008-06-06 | 2008-06-06 | 实时荧光定量pcr检测柯萨奇病毒a16型的试剂盒 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101597652A CN101597652A (zh) | 2009-12-09 |
CN101597652B true CN101597652B (zh) | 2012-01-04 |
Family
ID=41419247
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 200810028596 Active CN101597652B (zh) | 2008-06-06 | 2008-06-06 | 实时荧光定量pcr检测柯萨奇病毒a16型的试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101597652B (zh) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101713003B (zh) * | 2010-02-02 | 2012-10-17 | 北京爱普益生物科技有限公司 | 柯萨奇病毒a16型核酸检测试剂盒 |
CN102071253A (zh) * | 2010-12-08 | 2011-05-25 | 中国人民解放军第二军医大学 | 检测粪便中microRNA表达水平的方法和内参基因的选择方法 |
CN102286432B (zh) * | 2011-06-16 | 2013-06-12 | 中国食品药品检定研究院 | 建立ca16病毒感染动物模型的方法和试剂盒 |
CN103388032B (zh) * | 2012-05-07 | 2016-08-03 | 上海仁度生物科技有限公司 | 一种柯萨奇病毒a16型(ca16)实时荧光核酸恒温扩增检测试剂盒 |
WO2015096063A1 (en) * | 2013-12-25 | 2015-07-02 | Coyote Bioscience Co., Ltd. | Methods and systems for nucleic acid amplification |
CN112359099A (zh) * | 2013-12-25 | 2021-02-12 | 卡尤迪生物科技(北京)有限公司 | 用于核酸扩增的方法和系统 |
CN111748648A (zh) * | 2019-12-24 | 2020-10-09 | 深圳市人民医院 | 用于五种幼儿手足口病系列病毒检测的试剂盒及其应用 |
WO2023077484A1 (zh) * | 2021-11-06 | 2023-05-11 | 江汉大学 | 一种5种人肠病毒的mnp标记组合、引物对组合、试剂盒及其应用 |
-
2008
- 2008-06-06 CN CN 200810028596 patent/CN101597652B/zh active Active
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Eng Lee Tan et al.Development of multiplex real-time hybridization probe reverse transcriptase polymerase chain reaction for specific detection and differentiation of enterovirus 71 and coxsackievirus A16.《Diagnostic Microbiology and Infectious Disease》.2008,第61卷第294-301页. * |
Justin W.A. et al.Serotype-specific detection of coxsackievirus A61 in clinical specimens by reverse transcription-nested PCR.《Journal of Clinical Microbiology》.2001,第39卷(第10期),第3690-3692页. * |
Nahla Mohamed et al.A sensitive and quantitative single-tube real-time reverse transcriptase-PCR for detection of enteroviral RNA.《Journal of Clinical Virology》.2004,第30卷第150-156页. * |
Tsan-Chi Chen et al.Combining multiplex reverse transcription-PCR and a diagnostic microarray to detect and differentiate enterovirus 71 and coxsackievirus A61.《Journal of Clinical Microbiology》.2006,第44卷(第6期),第2212-2219页. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101597652A (zh) | 2009-12-09 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101597652B (zh) | 实时荧光定量pcr检测柯萨奇病毒a16型的试剂盒 | |
Bi et al. | Hepatitis E virus and blood transfusion safety | |
CN100368560C (zh) | 一种呼吸道病原体的实时荧光聚合酶链式反应检测方法 | |
CN107513584B (zh) | 一种检测肠道病毒的五重荧光定量试剂盒 | |
CN103060451A (zh) | 一种肺炎支原体mp检测试剂盒 | |
CN100451129C (zh) | 猪瘟病毒荧光定量rt-pcr诊断试剂盒 | |
CN101660001B (zh) | 一种轮状病毒核酸检测试剂盒 | |
CN101490275A (zh) | 淋病奈瑟氏球菌特异性寡核苷酸序列 | |
CN101608210B (zh) | 幽门螺旋杆菌核酸定量检测试剂盒 | |
CN105483283A (zh) | 丙型肝炎病毒hcv实时荧光核酸恒温扩增检测试剂盒 | |
CN103184294A (zh) | 人乳头瘤病毒(hpv)16,18型多通道荧光pcr检测方法与试剂盒 | |
CN101638693A (zh) | 实时荧光定量pcr检测人肠道病毒的试剂盒 | |
Pankovics et al. | Four-year long (2014-2017) clinical and laboratory surveillance of hepatitis E virus infections using combined antibody, molecular, antigen and avidity detection methods: Increasing incidence and chronic HEV case in Hungary | |
Rauf et al. | Prevalence of hepatitis B and C virus in the general population of Hill Surang area, Azad Jammu and Kashmir, Pakistan | |
CN111647686B (zh) | 肠道病毒ev71、ca16、ev通用型核酸检测试剂 | |
CN101709331B (zh) | 一种定量检测食品及临床样品中副溶血性弧菌的试剂盒 | |
CN101580882B (zh) | 实时荧光定量pcr检测人肠道病毒71型的试剂盒 | |
CN107502681A (zh) | 一种a组轮状病毒快速实时荧光rt‑pcr检测试剂盒 | |
CN110168111A (zh) | 用于检测丙型肝炎病毒的方法和装置 | |
CN112813202A (zh) | 一种柯萨奇病毒a16型和肠道病毒71型荧光rt-pcr检测试剂及方法 | |
CN108753768A (zh) | 用于检测肠道病毒的核酸及其应用 | |
CN101550458B (zh) | 食品中甲型肝炎病毒的检测方法 | |
CN102071262A (zh) | 一种单纯疱疹病毒基因分型检测方法及试剂盒 | |
CN101580883A (zh) | 呼吸道合胞病毒实时荧光pcr检测试剂盒 | |
CN103173565A (zh) | 低危型人乳头瘤病毒hpv6/11检测试剂盒 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CP01 | Change in the name or title of a patent holder |
Address after: 510665 No. 19 incense Hill Road, hi tech Industrial Development Zone, Guangdong, Guangzhou Patentee after: Guangzhou Da'an gene Co.,Ltd. Address before: 510665 No. 19 incense Hill Road, hi tech Industrial Development Zone, Guangdong, Guangzhou Patentee before: DA AN GENE CO., LTD. OF SUN YAT-SEN University |
|
CP01 | Change in the name or title of a patent holder |