CN101551392A - 一种检测人乳头瘤病毒中和抗体的方法 - Google Patents

一种检测人乳头瘤病毒中和抗体的方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一种高效、简便的人乳头瘤病毒中和抗体的检测方法,该方法可适用于对人乳头瘤病毒中和抗体的高通量检测。本发明方法的特征在于用斑点检测法来检测被人乳头瘤病毒或假病毒感染的细胞。本发明同时还公开了上述方法在筛选和鉴定中和性HPV单克隆抗体、评价人乳头瘤病毒疫苗免疫保护性、人乳头瘤病毒疫苗效力试验(ED50测定)等方面的用途。

Description

一种检测人乳头瘤病毒中和抗体的方法
技术领域
本发明涉及人乳头瘤病毒抗体检测领域。更具体地,本发明涉及通过联合应用带有报告基因的人乳头瘤病毒假病毒和自动扫描仪器,对人乳头瘤病毒中和抗体进行检测的方法。
背景技术
人乳头瘤病毒(HPV)感染的流行范围广,所引发的相关致死性的恶性肿瘤和多种性传播疾病对人类健康具有严重的危害性,开发安全有效的预防或治疗性疫苗具有重大意义。针对HPV的中和抗体水平是HPV疫苗研究开发的关键性指标,因此建立高效、准确和便捷的中和抗体检测方法十分重要。然而,由于HPV具有严格的宿主特异性,同时其病毒复制与宿主细胞的分化状态密切相关,目前难于在体外对HPV进行快速高效的组织培养,也缺乏适宜的动物模型。因此探索建立可及时快速鉴定或筛选中和抗体和评估待选疫苗保护性的方法是十分必要的。
目前,已发展出多种不同类型的HPV中和抗体评估方法,如基于免疫缺陷小鼠组织移植模型的评估方法(White WI等,病毒学杂志,1998年,72卷:959-964页)、基于体外感染原代上皮组织的评估方法(Meyers C等,科学,1992年,257卷:971-973页)、基于HPV类病毒颗粒(VLP)的ELISA方法(1999年,Semin Cancer Biol)以及血凝抑制实验(Roden RB等,病毒学杂志,1996年,70卷:3298-3301页)等,但这些方法分别存在操作复杂、效率低、实验周期长或不能准确反映抗体的中和保护作用等问题。因此,迫切需要发展能够便捷、有效地检测HPV中和抗体的方法,同时希望新方法能够适合于进行高通量的检测。近来,研究显示HPV VLP具有可非特异性包裹质粒核酸的特点,因此可构建携带报告质粒的HPV假病毒(HPVpseudovirus)用于体外有效模拟HPV感染过程,并可用于对HPV中和抗体进行快速检测(Buck CB等,病毒学杂志,2004年,78卷:751-757页)。基于HPV假病毒的中和抗体检测方法相比其它传统方法具有较为明显的简便、效率高的优点,实验周期缩短,对于不同的HPV亚型具有较好的通用性。目前,基于HPV假病毒的中和抗体检测方法已得到日益广泛的应用。
然而随着研究的深入,对HPV中和抗体检测提出了更高的要求,除了灵敏度和准确度好外,同时要求能够更为快速、简便,能够更准确地进行客观的量化检测以提高重复性。当前基于HPV假病毒的中和抗体检测方法,主要有2种:(1)以绿色荧光蛋白(GFP)为报告基因,构建带有GFP报告基因表达元件的HPV假病毒,在感染293TT细胞后用荧光显微镜目测或流式细胞仪(FACS)检测发绿色荧光的细胞(被感染细胞),通过检测HPV中和抗体对假病毒感染的阻断能力评估其效价;(2)以分泌型碱性磷酸酶(SEAP)为报告基因,构建带有SEAP报告基因表达元件的HPV假病毒,感染293TT细胞后通过离心收集细胞培养上清,之后通过SEAP化学发光检测试剂盒进行显色,再用化学发光酶标仪获得结果,通过检测HPV中和抗体对假病毒感染的阻断能力评估其效价。在应用中发现,上述第一种方法的操作较为复杂耗时,需要进行细胞消化操作,然后逐孔用FACS进行检测,1个96孔板的检测过程通常需要2至3个小时,耗时费力;第二种方法的操作可使用类似酶标仪的仪器进行快速扫描判定,有利于批量检测,但其试剂盒成本较高,其主要检测酶促显色反应程度,同时这种方法存在灵酶度的问题,细胞在被少量感染时SEAP分泌量低就会存在读值的阳性/阴性值比(P/N比)低的问题,会影响结果判定。因此为了提高P/N比,就需要使用更大量的假病毒,不利于提高实验效率。
本发明建立了一种简单、准确而又高灵敏度的HPV中和抗体检测方法,可更好地满足对HPV中和抗体检测实验的要求。
发明概述
本发明的目的是建立简便、有效、高灵酶度的,并且能够更适合于进行高通量检测的HPV中和抗体检测方法。本发明在检测中引入了具有快速扫描检测能力的斑点检测仪器,采用斑点检测法检测被HPV或HPV假病毒感染的细胞,同时相应采用了可使被感染细胞产生颜色标记信号以适于应用斑点检测仪器进行检测的报告基因,从而组合建立了一种新型高效的HPV中和抗体检测模式,并将这种模式应用于HPV中和抗体的检测方法,可用于检测不同亚型HPV的中和抗体。
本发明的HPV中和抗体检测方法具有简便、快速、更适于进行高通量检测的特点。在一个实施方案中,应用本发明方法和当前常用方法对同一样品进行了对比检测实验,结果显示二者具有高度的重合性,说明了本发明的方法同样具有很好的灵敏度。由于本发明的方法采用斑点检测法,是一种原位检测的方式,在检测过程中采用自动化连续检测的斑点检测仪器,可显著减少检测过程中的人工干预,从而能够显著提高检测的效率。
具体地,本发明的HPV中和抗体检测方法涉及了将使被HPV或HPV假病毒感染的细胞产生颜色标记的方法和斑点检测仪器检测方法组合应用于HPV中和抗体检测的方法。
本发明提供了可使被HPV或HPV假病毒感染的细胞产生颜色标记的方法,通过构建带有报告基因表达元件的HPV假病毒,其感染细胞后可介导报告基因的表达,其产物可直接作为信号产生体或间接(如通过催化作用等)导致另外的信号产生体产生可被本发明所述的斑点检测仪器所识别检测的信号。本发明还提出了其它的可使被HPV或HPV假病毒感染的细胞产生颜色标记的方法,通过一种改造后的细胞,该细胞的基因组中或者基因组外携带了其表达产物可以直接或间接导致细胞产生能够被斑点检测仪器检测的信号的报告基因的编码核酸序列,该编码核酸序列与表达控制序列可操作地连接,表达控制序列在HPV假病毒或HPV感染后可启动报告基因的表达,从而使被HPV或HPV假病毒感染后的细胞产生可被斑点检测仪器检测的信号。
本发明涉及了将斑点检测仪器应用于HPV中和抗体检测。斑点检测仪器的主要特征是能够用于从细胞群体中分辨和测算与正常细胞不同颜色的细胞的数量,同时最好还能够进行连续自动检测。在一个具体实施方案中,本发明以目前广泛应用于细胞免疫检测实验的仪器Elispot为示例。Elispot的性能符合本发明提出的对斑点检测仪器的要求,能够有效地满足本发明的检测方法的需要。目前,还尚未有Elispot用于HPV中和实验的报道。
本发明还涉及了选择适合本发明的HPV中和抗体检测方法要求的报告基因。该报告基因具有的特征是:其在细胞中的表达产物可以直接或间接导致细胞产生能够被斑点检测仪器检测的信号。在一个具体实施方案中,本发明以β-半乳糖苷酶报告基因为示例。β-半乳糖苷酶报告基因在细胞中的表达产物5-半乳糖苷酶在显色底物(如X-gal或bluo-gal等)存在的情况下,可使所表达细胞产生出区别于未表达细胞的可被斑点检测仪器(如Elispot)识别的蓝色信号。本发明还提供了构建可用于本发明的HPV中和抗体检测方法的HPV假病毒的构建方法。
本发明还涉及本发明的HPV中和抗体检测方法在筛选HPV中和性单克隆抗体中的用途。
本发明还涉及本发明的HPV中和抗体检测方法在检测HPV中和抗体效价中的用途。
本发明还涉及本发明的HPV中和抗体检测方法在制备HPV中和抗体诊断试剂盒中的用途。
本发明还涉及本发明的HPV中和抗体检测方法在HPV疫苗开发和质控中的用途。
本发明还涉及本发明的HPV中和抗体检测方法在筛选或制备抗HPV或其相关疾病药物中的用途。
本发明还涉及本发明的HPV中和抗体检测方法在治疗HPV感染中的用途。
下面结合附图对本发明进行更详细的说明。从下文的详细描述中,本发明的上述方面和本发明的其他方面将是明显的。
附图说明
图1显示了使用斑点检测仪器Elispot对包装有β-半乳糖苷酶报告质粒的HPV假病毒感染后并经显色反应后的293FT细胞的检测结果,被感染细胞可显示出蓝色,区别于未感染细胞,可被Elispot所识别检测,每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数量可显示于各孔图像的左上方。
图2显示了本发明的HPV中和抗体检测方法的示例简图。
图3显示了分别应用本发明的HPV中和抗体检测方法与目前常用的HPV中和抗体检测方法对同一经梯度稀释的HPV16中和性单克隆抗体8A9的中和效价的检测结果的相关性比较结果,
图4显示了应用本发明的HPV中和抗体检测方法检测HPV16 VLP免疫后的兔、羊的血清样品中的HPV16中和抗体的水平。
图5显示了应用本发明的HPV中和抗体检测方法在HPV16疫苗供试品免疫保护性评价实验中的检测结果。
具体实施方式
除非另外定义,这里所用的所有技术和科学名词都表达的是在本发明涉及领域里的熟练技术人员所理解的通常含义。这里所用的命名和在细胞培养、分子生物学、生物化学、免疫学实验室操作步骤均为相应领域内广泛使用的常规步骤。
一方面,本发明提供一种通过斑点检测法高通量检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞或其数量的方法。
在一个实施方案中,可以通过使用斑点检测仪器检测感染细胞特有(未感染细胞不具有)的信号来检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞或其数量。
本发明还提供一种高通量检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞或其数量的方法,包括:(1)使被HPV假病毒或病毒感染的细胞带有适于斑点检测仪器检测的信号,但未被感染的细胞不带有该信号;和(2)通过使用斑点检测仪器检测该信号(或带有该信号的细胞)来检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞或其数量。
在一个具体实施方案中,使被HPV假病毒或病毒感染的细胞带有适于斑点检测仪器检测的信号是通过如下方法获得的:报告基因表达元件在感染细胞中表达产生报告蛋白,该报告蛋白可直接产生或间接(例如通过显色反应)产生能够被斑点检测仪器检测的信号。
在一个具体实施方案中,所述的报告基因在感染细胞中的表达是通过人乳头瘤病毒假病毒或病毒感染细胞实现的。报告基因表达元件可通过带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒感染细胞而导入细胞中表达,或者,也可通过人乳头瘤病毒假病毒或病毒感染带有报告基因表达元件的细胞后激活该报告基因表达元件表达,优选带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒的方式。
在一个具体实施方案中,所述的报告基因为其表达产物可以直接或间接导致产生能够被斑点检测仪器检测的信号的基因,如β半乳糖苷酶基因等。
优选地,本发明检测感染细胞的方法用于被HPV假病毒或病毒感染的细胞的计数。因此,本发明还提供一种高通量检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞数量的方法。
所述细胞通常是培养细胞。
本发明还提供一种采用斑点检测法检测样品中的人乳头瘤病毒中和抗体的方法。
本发明还提供一种通过使样品中可能存在的人乳头瘤病毒中和抗体与人乳头瘤病毒假病毒或病毒接触以阻止人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染细胞(通常是培养细胞),并检测被人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染的细胞,来检测样品中的人乳头瘤病毒中和抗体的方法,其特征在于:采用斑点检测法高通量检测被人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染的细胞或其数量。
在一个实施方案中,可以通过使用斑点检测仪器检测感染细胞特有(未感染细胞不具有)的信号来检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞或其数量。
在一个具体实施方案中,所述高通量检测被人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染的细胞或其数量采用如下方法来进行,所述方法包括:(1)使被HPV假病毒或病毒感染的细胞带有适于斑点检测仪器检测的信号,但未被感染的细胞不带有该信号;和(2)通过使用斑点检测仪器检测该信号(或带有该信号的细胞)来检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞。
另一方面,本发明涉及一种简便、高效、适于进行高通量检测的HPV中和抗体检测方法,可用于检测样品中是否存在HPV中和抗体,也可用于评价样品中HPV中和抗体的效价。本发明的方法可适用于检测不同亚型HPV的中和抗体,在本发明的具体实施方案中,作为示例,本发明的HPV中和抗体检测方法被应用于分别检测HPV16、HPV18、HPV6、HPV11中和抗体,也可以应用于检测其他HPV亚型的中和抗体,如HPV33、HPV35、HPV34、HPV52、HPV45、HPV59、HPV31、HPV56、HPV58等。
在本发明所述方法中,所述样品为来自待检个体的分离的生物学样品,优选所述样品为血清;也来自组织培养的生物学样品。
所述HPV中和抗体检测方法可用于检测样品中人乳头瘤病毒中和抗体的存在与否和/或其效价。
在本发明中,所述斑点检测法中检测数据优选是通过使用斑点检测仪器获得的。斑点检测仪器能够用于从细胞群体中分辨和测算产生特定信号(例如颜色)的细胞的数量,优选Elispot。斑点检测仪器(如Elispot)一般可以通过检测带有由报告蛋白直接或间接产生的信号的细胞来检测被感染细胞的数量。
在一个具体实施方案中,使感染细胞产生能够被斑点检测仪器检测的信号是通过如下方法获得的:报告基因表达元件在感染细胞中表达产生报告蛋白,该报告蛋白可直接产生或间接(例如通过显色反应)产生能够被斑点检测仪器检测的信号。
在一个具体实施方案中,所述的报告基因在感染细胞中的表达是通过人乳头瘤病毒假病毒或病毒感染细胞实现的。报告基因表达元件可通过带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒感染细胞而导入细胞中表达,或者,也可通过人乳头瘤病毒假病毒或病毒感染带有报告基因表达元件的细胞后激活该报告基因表达元件表达,优选带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒的方式。
在一个具体实施方案中,所述的报告基因为其表达产物可以直接或间接导致产生能够被斑点检测仪器检测的信号的基因,如β半乳糖苷酶基因等。
在一个具体实施方案中,本发明提供一种HPV中和抗体检测方法,该方法包括以下步骤:
A)将细胞培养于固相培养载体(例如细胞培养皿、细胞培养板等,优选细胞培养板,更优选96孔细胞培养板)上,作为人乳头瘤病毒或人乳头瘤病毒假病毒感染的靶细胞;所述细胞为动物细胞,特别是哺乳动物细胞,也可以是一种改造的细胞,其可在人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染后表达报告蛋白;
B)根据所需要检测的人乳头瘤病毒中和抗体所属的人乳头瘤病毒型别,准备需要的人乳头瘤病毒或人乳头瘤病毒假病毒,例如带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒;
C)使待检测样品与步骤B)中所述的人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒接触,使得样品中的人乳头瘤病毒中和抗体,如果存在的话,会与人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒结合,从而能够阻止人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒对步骤A)中所述靶细胞的感染;该接触在允许样品中的中和抗体与人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒结合的条件下进行,如在4℃放置1小时;
D)使步骤C)的产物(检测样品与人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒的混合液)和步骤A)的产物(培养于固相培养载体的细胞)接触,该接触在允许细胞正常生长的条件下进行,如在37℃ CO2培养箱中培养72小时;
E)应用斑点检测仪器(如Elispot)(通过例如检测带有由报告蛋白直接或间接产生的信号的细胞)检测被感染细胞的数量;
F)根据步骤E)获得的结果测算样品中是否有人乳头瘤病毒中和抗体和/或其效价。
在一个优选实施方案中,A)中所述的细胞在被B)中所述的人乳头瘤病毒或者人乳头瘤病毒假病毒感染后能够表达报告蛋白,该报告蛋白能直接产生或间接(例如通过显色反应)产生能够被斑点检测仪器检测的信号。
步骤A)中所述的细胞为动物细胞,特别是哺乳动物细胞;也可以是一种改造的细胞。所述的“改造的细胞”为其在基因组中或者基因组外携带包含报告基因编码序列的编码核酸序列,这些编码核酸序列与表达控制序列可操作地连接,表达控制序列在人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染后可启动报告基因的表达。其中所述的报告基因需具有如下特征:其表达产物可以直接或间接导致所表达的细胞产生能够被斑点检测仪器检测的信号,如β半乳糖苷酶基因等。其中所述的“表达控制序列”是实现基因表达所需要的控制序列,是本领域熟知的,通常必须包括启动子(可以是任何适于在细胞中表达目的基因的启动子。可以是组成型的,优选是诱导型的。还可以是复合启动子,如双启动子),常常也包括转录终止序列,也可以包含其他序列,如增强子序列;基因表达对于蛋白质编码序列通常是指转录和翻译,产生成熟的蛋白质。其中所述的“可操作地连接”是指所连接的分子的连接方式使得能够实现预期的功能,例如,表达控制序列与基因编码序列的可操作的连接可实现表达控制序列对基因编码序列的表达控制作用。在制备本发明所述的“改造的细胞”的方法中,可以通过用包含所述的报告基因编码核酸序列的表达载体(如质粒载体或病毒载体等)转化或转染或转导细胞来获得本发明改造细胞,只要最终得到的细胞包含所述的报告基因的编码核酸序列即可。
步骤B)中所述的带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒通过例如如下方法获得的:将带有报告基因表达元件(报告基因编码序列的编码核酸序列与表达控制序列可操作地连接)的报告质粒,与可表达HPV L1蛋白和L2蛋白的表达载体质粒共转染入细胞(如293FT细胞),在转染后收集细胞的裂解液,该裂解液中含有包装有报告质粒的HPV假病毒。其中所述的报告基因需具有如下特征:其表达产物可以直接或间接导致所表达的细胞产生能够被斑点检测仪器检测的信号,如β半乳糖苷酶基因、HIV TAT基因等。其中所述的“表达控制序列”是实现基因表达所需要的控制序列,是本领域熟知的,通常必须包括启动子(可以是任何适于在细胞中表达目的基因的启动子。可以是组成型的,也可以是诱导型的。还可以是复合启动子,如双启动子),常常也包括转录终止序列,也可以包含其他序列,如增强子序列;基因表达对于蛋白质编码序列通常是指转录和翻译,产生成熟的蛋白质。其中所述的“可操作地连接”是指所连接的分子的连接方式使得能够实现预期的功能,例如,表达控制序列与基因编码序列的可操作的连接可实现表达控制序列对基因编码序列的表达控制作用。
步骤E)应用斑点检测仪器(如Elispot)检测被感染细胞的数量通过例如如下方法来进行:细胞如被本发明所述的人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染后,通过人乳头瘤病毒假病毒导入的或细胞内的报告基因获得表达产生报告蛋白,该报告蛋白可直接作为信号产生体产生信号,也可通过反应(如酶促反应等)使其它信号产生体产生信号,其产生信号的方法可以采用已知或已公开的方法或者本发明实施例中涉及的方法;细胞是否被感染的判定标准是细胞是否具有由信号产生体产生的信号;检测具有由信号产生体产生的信号的细胞的数量。
本发明的方法中,信号产生体产生的信号为颜色信号,可使细胞产生与正常细胞不同的颜色(如蓝色),该颜色信号可被斑点检测仪器(如Elispot)所检测。
本发明的方法中,信号产生体可以是任何能够使细胞产生可被斑点检测仪器(如Elispot)检测的信号的物质,例如可以是酶、蛋白质、化学发光物质、同位素、稀土元素。
在本发明所述的方法的一个具体实施方案中,涉及了对上述HPV假病毒的效价进行鉴定的方法。在一个具体实施方案中,本发明还涉及应用本发明的HPV中和抗体检测方法筛选HPV中和性单克隆抗体的方法。在一个具体实施方案中,本发明还涉及应用本发明的HPV中和抗体检测方法检测HPV中和抗体效价的方法。在一个具体实施方案中,本发明还涉及应用本发明的HPV中和抗体检测方法在HPV疫苗开发和质控中的应用方法。本发明的HPV中和抗体检测方法可用于制备HPV中和抗体诊断试剂盒。
本发明还提供斑点检测仪器或斑点检测法或本发明感染细胞或抗体检测方法在检测人乳头瘤病毒中和抗体中的用途、在筛选HPV中和性单克隆抗体中的用途、在检测HPV中和抗体效价中的用途、在制备HPV中和抗体诊断试剂盒中的用途、在HPV疫苗开发和质控中的用途、在筛选或制备抗HPV或其相关疾病药物中的用途、或在治疗HPV感染中的用途
下面结合具体实施例与所附图表,对本发明进一步加以描述。所述实施例旨在以举例方式具体阐明本发明。试剂、试剂的浓度、温度和其他变量的值以及载体和细胞的选择只是举例说明本发明的应用,而不构成对本发明的限制。
实施例
一.本发明涉及的HPV假病毒的制备和鉴定
实施例1.HPV结构蛋白表达载体的构建
HPV的病毒颗粒由L1蛋白和L2蛋白共同组成。研究已显示,在细胞中共表达L1和L2蛋白可组装获得HPV的类病毒颗粒,其结构特点与天然病毒颗粒结构相似(Roden RB等,病毒学杂志,1996年,70卷:5875-5883页)。本发明中,根据源自Genbank的HPV的基因数据,采用基因合成的方法分别设计合成包含不同亚型HPV(这里包括了HPV16、HPV18、HPV6、HPV11、HPV52、HPV58作为示例,但是也可以包括其他HPV亚型)的L1和L2蛋白的基因片段,片段的5’端添力NotI位点,3’端添加XbaI位点;基因片段经NotI、XbaI酶切后与经同样酶切的哺乳动物细胞表达载体pCDNA3.1(+)质粒连接,构建获得可分别表达不同亚型HPV L1和L2蛋白的表达载体,分别命名为:pCDNA3.1(+)-16L1、pCDNA3.1(+)-16L2、pCDNA3.1(+)-18L1、pCDNA3.1(+)-18L2、pCDNA3.1(+)-11L1、pCDNA3.1(+)-11L2、pCDNA3.1(+)-6L1、pCDNA3.1(+)-6L2、pCDNA3.1(+)-52L1、pCDNA3.1(+)-52L2、pCDNA3.1(+)-58L1、pCDNA3.1(+)-58L2。
Genbank公开的HPV L1和L2基因序列如下:HPV16 L1的基因序列(Genbank号AJ313179)、HPV16 L2的基因序列(Genbank号AJ313180)、HPV18 L1的基因序列(Genbank号AY383628)、HPV18L2的基因序列(Genbank号AY383629)、HPV6 L1的基因序列(Genbank号FJ615300)、HPV6 L2的基因序列(Genbank号FJ615301)、HPV11L1的基因序列(Genbank号AY541029)、HPV11 L2的基因序列(Genbank号FJ615302)、HPV52 L1的基因序列(Genbank号FJ615303)、HPV52L2的基因序列(Genbank号FJ615304)、HPV58 L1的基因序列(Genbank号FJ615305)、HPV58 L2的基因序列(Genbank号FJ615306)。
实施例2.报告基因表达质粒的选择
本发明采用斑点检测仪器(如Elispot)对HPV假病毒或HPV对靶细胞的感染效果进行检测,因此由HPV假病毒或HPV感染靶细胞后介导的报告基因表达产物产生的信号必须能够被斑点检测仪器所识别和检测,即需要选择其表达产物能够导致产生合适信号的报告基因。本实施例中,我们以β-半乳糖苷酶作为报告基因进行示例,β-半乳糖苷酶报告基因表达元件在导入细胞后可表达获得β-半乳糖苷酶,在显色底物(如X-gal或bluo-gal等)存在的情况下,可使所表达的细胞产生出明显的蓝色信号,这种信号的产生可以不需要其它光源的辅助,并且这种信号可以被斑点检测仪器(如Elispot)所识别和检测。
斑点检测仪器(如Elispot)是目前细胞免疫研究最常用的检测仪器之一,其检测原理是通过高灵敏度的摄像头采集样品板(可以是细胞培养板、专用显色板、显色用膜等)上的细胞显色图像,通过软件分析测算显色细胞的数量或空斑数量,具有很好的精确度和灵敏度,其灵敏度可以分辨出显色的单细胞。Elispot的检测自动化水平高,可适用于包括96孔细胞培养板在内的多种常用的细胞培养容器,可进行全板范围的快速连续自动扫描检测。目前,尚未有将Elispot应用于HPV中和抗体检测实验的报道。
本实施例中作为示例的β-半乳糖苷酶基因编码序列位于pCMVβ质粒(clotech公司,cat.Number 631719)中,该质粒可用于在细胞中表达β-半乳糖苷酶。
实施例3.HPV假病毒的制备
本发明通过磷酸钙多质粒共转染方法在293FT细胞(invitrogen公司,catalog no.R700-07)中制备HPV假病毒。将可表达HPV L1和L2蛋白的表达质粒与报告基因表达质粒(如pCMVβ)共转染入293FT细胞中,在转染48小时后收集合有HPV假病毒的细胞裂解液。
实验方法:
293FT细胞培养于10cm细胞培养皿中,培养基为DMEM培养基(添加10%FBS,2mM L-glutamine,0.1mM MEM Non-Essential Amino Acids及1%penicillin-streptomycin),汇合率约为80%。
12小时后每皿细胞转染40μgHPV L1表达质粒、40μg报告基因表达质粒和4μg HPV L2表达质粒,转染试剂为磷酸钙,转染方法参见该试剂的操作指南。在共转染48小时后分别收集细胞进行裂解。
转染48小时后,离心收集细胞,用适当体积的裂解液(含有0.25%Brij85,9.5mM MgCl2的DPBS溶液)重悬,每皿细胞使用250μL裂解液,37℃孵育16小时后,离心收集含有HPV假病毒的上清液。加入0.17倍体积的5M NaCl溶液,分装成50μL一份,-80℃保存。
实施例4.HPV假病毒对细胞的感染效果
研究已证明,293FT细胞可以作为HPV假病毒的易感细胞,适于进行HPV假病毒的感染实验(卢五迅等,生物工程学报,2006年,22卷:990-995页)。将收获的HPV假病毒分别感染293FT细胞,检测其对293FT细胞的感染效果及所介导的报告基因β-半乳糖苷酶在细胞中的表达效果。
实验方法:
293FT细胞培养于96孔细胞培养板中,约1.5×104/孔,培养基为DMEM培养基(添加10%FBS,2mM L-glutamine,0.1mM MEMNon-Essential Amino Acids及1%penicillin-streptomycin),汇合率约为80%。培养8h后每孔分别加入0.1μL HPV16假病毒、HPV18假病毒、HPV6假病毒、HPV11假病毒、HPV52假病毒、HPV58假病毒。继续培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1% 2M MgCl2,3% 40mg/mL X-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时,2小时后吸弃板中的显色液终止显色。实验对照为未进行感染实验的293FT细胞。
实施例5.应用斑点检测仪器Elispot检测HPV假病毒对细胞的感染效果
本发明中,我们构建的HPV16假病毒、HPV18假病毒、HPV6假病毒、HPV11假病毒、HPV52假病毒、HPV58假病毒可有效感染细胞,并介导所包装的β-半乳糖苷酶报告基因在靶细胞中表达,被感染细胞通过显色反应可显示出清晰的蓝色信号。这种信号在可见光下即可被观察,可以不需要特殊光源(如激光、限定波长范围的汞灯光源等)的激发,适合于用斑点检测仪器Elispot进行检测。目前,经典的检测β-半乳糖苷酶表达的方法是对显色细胞的数量进行人工计数,费力耗时,不适于进行高通量检测实验;且缺乏客观性,人为误差大,容易影响实验结果的重复性。应用斑点检测仪器Elispot进行检测,具有灵酶度高、特别是能够进行连续自动的快速扫描检测,短时间内即可获得大量样品的检测结果,可满足高通量检测的要求。
我们应用斑点检测仪器Elispot对HPV16假病毒、HPV18假病毒、HPV6假病毒、HPV11假病毒、HPV52假病毒、HPV58假病毒感染并进行显色后的293FT细胞进行了检测。
实验方法:293FT细胞培养于96孔细胞培养板中,约1.5×104/孔,培养基为DMEM培养基。培养8小时后每孔分别加入0.1μL HPV16假病毒、HPV18假病毒、HPV6假病毒、HPV11假病毒、HPV52假病毒、HPV58假病毒。37℃培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mL x-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在仪器的取样板上,用仪器检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。实验对照为未进行感染实验的293FT细胞。
通过自动连续扫描检测,可迅速获得所检测细胞板上各个孔的显色细胞数量即被感染细胞数量,结果如图1所示。各个孔中显色细胞数量即被HPV假病毒感染的细胞数量标于各孔图像的左上方,未进行感染实验的细胞孔未检测到显色细胞。这说明了本发明的设计思路的可行性,带有β-半乳糖苷酶报告基因的HPV假病毒感染细胞后可使细胞产生可被斑点检测仪器Elispot识别的标记信号,同时使整个检测过程十分的简便和迅速。
实施例6.HPV假病毒感染效价的测定
根据病毒效价空斑测定法的原理,在稀释度足够的情况下,HPV假病毒感染细胞后表达报告蛋白产生可被检测仪器检测的信号,信号阳性细胞数即被感染细胞数可以认为是在该次感染实验中使用了多少感染单位的HPV假病毒。我们以梯度稀释蓝斑计数方法检测所构建的HPV假病毒的效价。本实施例中我们以检测HPV16假病毒、HPV18假病毒的效价作为示例,也可以包括检测其他亚型HPV假病毒的效价。
效价测定方法:将293FT细胞铺于96孔细胞培养板中,1.5×104个/孔,培养基为DMEM培养基,37℃培养8小时。取HPV假病毒原液一份(50μL)以10%DMEM培养基2倍连续梯度稀释,最终使每100μL培养基中分别含有0.5μL、0.25μL、0.125μL...等10个浓度梯度的病毒稀释液。将各梯度的病毒稀释液取100μL加入预铺于96孔细胞培养板中的293FT细胞中,每个梯度采取4孔重复。将96孔板放入37℃培养。培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mL x-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在仪器的取样板上,用仪器检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。实验对照为未进行感染实验的293FT细胞(阴性孔)。结果如表1所示,与不同的假病毒原液用量对应的为被感染细胞的数量(为4孔平均值)。
HPV假病毒效价计算方法:
感染效价(TU/mL)=检测孔被感染细胞数/检测孔假病毒原液用量(mL)。
其中,上述公式中“检测孔被感染细胞数”和“检测孔假病毒原液用量”选择被感染细胞数最接近于50且不低于50的检测孔的被感染细胞数与其对应的假病毒原液的用量。
例如,本实施例中,HPV16假病毒效价检测实验中,被感染细胞数最接近于50且不低于50的检测孔的被感染细胞数为102与其对应的假病毒原液用量为6.25×10-5mL,检测孔的假病毒稀释液用量为0.1mL,代入上述公式即可计算获得该HPV16假病毒效价为1.63×106(TU/mL)。同样,在本实施例的HPV18假病毒效价检测实验中,被感染细胞数最接近于50且不低于50的检测孔的被感染细胞数为66与其对应的假病毒原液用量为3.13×10-5mL,检测孔的假病毒稀释液用量为0.1mL,代入上述公式即可计算获得该HPV16假病毒效价为2.11×106(TU/mL)。
表1HPV假病毒的不同用量与被感染细胞数量的关系
二.本发明的HPV中和抗体检测方法的建立
实施例7.一种新的HPV中和抗体检测方法
HPV中和抗体水平是评估HPV疫苗的关键性指标,因此建立高效、准确和便捷的中和抗体评估方法十分重要。本发明应用前面所述的HPV假病毒和斑点检测仪器(如Elispot)建立了一种新的HPV中和抗体检测方法。该方法既具有高效、准确的优点,同时更有利于提高工作效率,更适于进行高通量检测。该方法的流程示意简图可见图2。
方法流程描述:
(1)293FT细胞铺于96孔细胞培养板中,1.5×104个/孔,培养基为DMEM培养基(添加10%FBS,2mM L-glutamine,0.1mM MEMNon-Essential Amino Acids及1%penicillin-streptomycin),37℃培养8小时;
(2)取HPV假病毒原液(如需要检测的是HPV16中和抗体,可以使用HPV16假病毒;如是检测针对HPV18中和抗体,可以使用HPV18假病毒;检测针对其它亚型HPV的中和抗体,则可分别使用其它亚型的HPV假病毒),用上述的DMEM培养基(也可以根据需要选择其它合适的细胞培养基或缓冲液)进行稀释,稀释比例根据如下方法计算:稀释后HPV假病毒液的用量为96孔细胞培养板每个孔加50μL HPV假病毒稀释液,以每孔1.5×104细胞估算,HPV假病毒对细胞的MOI为0.02,以此用量计算HPV原液的稀释比例;
(3)将待检测的样品(如单克隆抗体样品、血清样品、腹水样品、细胞培养上清液样品、细胞裂解液样品等)用上述的DMEM培养基(也可以根据需要选择其它合适的细胞培养基或缓冲液)进行稀释(可以根据需要选择合适的稀释倍数);
注:实验对照设置为未进行感染实验的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔)和只进行HPV假病毒感染的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
(4)稀释后的待检测的样品各取50μL分别与50μL稀释后的HPV假病毒(MOI=0.02)混合,4℃孵育1小时;
(5)将孵育后的样品-假病毒混合液分别加入上述(1)预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中,37℃培养72小时;
(6)显色反应:培养72小时后进行显色反应,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2MMgCl2,3%40mg/mL X-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。
(7)结果检测:启动斑点检测仪器Elispot,将显色反应后的细胞培养板放在取样板上,扫描检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤可见该仪器的操作说明书。
(8)结果判定:
具有中和能力的定义为:在经20倍稀释后(也可以根据需要选择合适的稀释倍数,也可以为原倍,优选20倍稀释)能达到50%以上感染抑制率的样品视为具有中和能力。
中和抗体效价的定义为:以达到50%感染抑制率以上的最大稀释倍数作为该样品的中和效价。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
实施例8.与当前常用的HPV中和抗体检测方法的对比
本实施例中,我们将本发明的HPV中和抗体检测方法与目前常用的HPV中和抗体检测方法进行了对比实验。本实施例中,我们应用两种方法同时对中和性HPV16单克隆抗体8A9(也可以采用其它抗体,例如市售抗体)的中和效价进行检测,对两种方法的应用效果进行对比。
实验方法:
(1)应用本发明的HPV中和抗体检测方法:将293FT细胞铺于96孔细胞培养板中(1.5×104/孔)。8小时后将单克隆抗体样品8A9(1mg/mL)用10%DMEM进行连续倍比稀释(以1∶2稀释为起点,进行5倍比稀释),然后各取50μL分别与50μL稀释于10%DMEM的HPV16假病毒(MOI=0.02)混合。4℃混合孵育1小时后分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。培养72小时后进行显色反应,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mL x-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。
启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在取样板上,检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。实验对照设置为未进行感染实验的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔)和只进行HPV16假病毒感染的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
中和效价的判定方法:
抗体中和效价的定义为:以达到50%感染抑制率以上的最大稀释倍数作为该单克隆抗体样品的中和效价。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
(2)应用当前常用的HPV中和抗体检测方法:具体操作步骤可参见文献(卢五迅等,生物工程学报,2006年,22卷:990-995页)。这里简述如下:将293FT细胞铺于96孔细胞培养板中(1.5×104/孔)。8小时后将单克隆抗体样品8A9(1mg/mL)用10%DMEM进行连续倍比稀释(以1∶2稀释为起点,进行5倍比稀释),然后各取50μL分别与50μL稀释于10%DMEM的包装有增强型绿色荧光蛋白(EGFP)的HPV16假病毒(MOI=0.2)混合。4℃混合孵育1小时后分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。37℃培养72小时后,消化并吹下各孔细胞,分别用流式细胞仪进行检测各样品的感染率。实验对照设置为未进行感染实验的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔)和只进行包装有EGFP的HPV16假病毒感染的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
中和效价的判定方法:
抗体中和效价的定义为:以达到50%感染抑制率以上的最大稀释倍数作为该单克隆抗体样品的中和效价。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔感染率/阳性感染孔感染率)×100%。
检测结果:
在本实施例中,我们分别应用上述两种方法分别对同样的中和性HPV16单克隆抗体8A9样品的中和效价进行了检测,结果如图3所示,应用本发明的HPV中和抗体检测方法获得的检测结果与目前较广泛使用的HPV中和抗体检测方法相同,具有高度的重合性。
三.本发明的HPV中和抗体检测方法的应用
实施例9.在筛选中和性HPV单克隆抗体中的应用
本发明建立的HPV中和抗体检测方法可应用于筛选中和性HPV单克隆抗体。本实施例中我们以筛选中和性HPV16单克隆抗体、中和性HPV18单克隆抗体、中和性HPV6单克隆抗体、中和性HPV11单克隆抗体作为示例,也可以包括筛选其他HPV亚型中和性单克隆抗体。
本实施例中HPV单克隆抗体的制备方法为:将不同亚型的HPV VLP(HPV16 VLP(公开号:CN101293918A,制备方法见实施例1、2、3、4)、HPV18 VLP(申请号:200810093817.2,制备方法见实施例1、2、3、4)、HPV6 VLP(申请号:200810111390.4,制备方法见实施例1、2、3、4)、HPV11 VLP(申请号:200810111389.1,制备方法见实施例1、2、3、4))分别免疫Balb/c小鼠,初免(剂量为80μg/只)与等量福氏完全佐剂混合,加强免疫(剂量为40μg/只)则与等量福氏不完全佐剂混合,进行肌肉注射,初免后分别于4、8周各加强一次。加强免疫3次后进行单克隆抗体的筛选和制备,细胞融合、克隆化、腹水制备及纯化参见单克隆抗体的常规方法(Harlow E等,抗体:实验室手册,1998年,139-312页)。
实验方法:将293FT细胞铺于96孔细胞培养板中(1.5×104/孔)。8h后将待筛选的单克隆抗体样品用10%DMEM进行1∶20稀释,然后取50μL分别与50μL同样稀释于10%DMEM的HPV假病毒(MOI=0.02)混合(如需要筛选的是针对HPV16的中和性单克隆抗体,可以使用HPV16假病毒;如需要筛选的是针对HPV18的中和性单克隆抗体,可以使用HPV 18假病毒;筛选针对其它亚型HPV的中和性单克隆抗体,则分别使用其它亚型的HPV假病毒)。4℃混合孵育1h后分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。37℃培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μLD-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mL x-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。
启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在取样板上,检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。实验对照设置为未进行感染实验的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔)和只进行HPV假病毒感染的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
中和性HPV单克隆抗体的判定标准:在经20倍稀释后能达到50%以上感染抑制率的HPV单克隆抗体视为具有中和能力。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
在本实施例中,我们应用上述方法分别对多株HPV16、HPV18、HPV6、HPV11单克隆抗体进行了中和单克隆抗体筛选,结果如表2、表3、表4、表5所示。
表2:筛选获得的HPV16中和性单克隆抗体
表3:筛选获得的HPV18中和性单克隆抗体
Figure A20091000111300272
表4:筛选获得的HPV6中和性单克隆抗体
Figure A20091000111300273
Figure A20091000111300281
表5:筛选获得的HPV11中和性单克隆抗体
Figure A20091000111300282
实施例10.在检测中和性HPV单克隆抗体中和效价中的应用
本发明建立的HPV中和抗体检测方法可应用于检测中和性HPV单克隆抗体的中和效价。本实施例中我们以检测中和性HPV16单克隆抗体、中和性HPV18单克隆抗体、中和性HPV6单克隆抗体、中和性HPV11单克隆抗体的中和效价作为示例,也可以包括检测其他HPV亚型中和性单克隆抗体的中和效价。
实验方法:将293FT细胞铺于96孔细胞培养板中(1.5×104/孔)。8h后将待检测的单克隆抗体样品用10%DMEM进行连续倍比稀释(以1∶20稀释为起点,可以进行2倍比稀释,也可以进行5倍比稀释,也可以进行10倍比稀释或其它类型的稀释比例,其中优选进行2倍比稀释),然后各取50μL分别与50μL稀释于10%DMEM的HPV假病毒(MOI=0.02)混合(如需要检测的是针对HPV16的中和性单克隆抗体的中和效价,可以使用HPV16假病毒;如是检测针对HPV18的中和性单克隆抗体的中和效价,可以使用HPV18假病毒;检测针对其它亚型HPV的中和性单克隆抗体的中和效价,则可分别使用其它亚型的HPV假病毒)。4℃混合孵育1小时后分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。37℃培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mLx-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。
启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在取样板上,检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。实验对照设置为未进行感染实验的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔)和只进行HPV假病毒感染的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
中和效价的判定方法:
抗体中和效价的定义为:以达到50%感染抑制率以上的最大稀释倍数作为该单克隆抗体样品的中和效价。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
在本实施例中,我们应用上述方法分别检测了多个HPV16、HPV18、HPV6、HPV11中和性单克隆抗体的中和效价,结果分别如表6、表7、表8、表9所示。
表6:HPV16中和性单克隆抗体的中和效价
Figure A20091000111300291
表7:HPV18中和性单克隆抗体的中和效价
Figure A20091000111300301
表8:HPV6中和性单克隆抗体的中和效价
Figure A20091000111300302
表9:HPV11中和性单克隆抗体的中和效价
实施例11.在检测血清样品的HPV中和抗体效价中的应用
本发明建立的HPV中和抗体检测方法可应用于检测血清样品中的HPV中和抗体效价。本实施例中我们检测血清样品中HPV16中和抗体作为示例,也可以包括检测血清样品中其他亚型HPV中和抗体。
待检测血清样品:为HPV16 VLP免疫后的兔和羊血清。
兔:普通级,雌性,购自广西省疾病预防与控制中心,并在该中心饲养。用纯化的HPV16 VLP(公开号:CN101293918A,制备方法见实施例1、2、3、4)初免(剂量为100μg/只)与等量福氏完全佐剂混合,加强免疫(剂量为50μg/只)则与等量福氏不完全佐剂混合,进行肌肉注射,初免后分别于4、10周各加强一次。免疫后,每周抽取外周静脉血,分离血清待检。
羊:普通级,雌性,购自广西省疾病预防与控制中心,并在该中心饲养。用纯化的HPV16 VLP初免(剂量为1mg/只)与等量福氏完全佐剂混合,加强免疫(剂量为0.5mg/只)则与等量福氏不完全佐剂混合,进行肌肉注射,初免后分别于4、10、18周各加强一次。免疫后,每周抽取外周静脉血,分离血清待检。
中和实验方法:将293FT细胞铺于96孔细胞培养板中(1.5×104/孔)。8小时后将待检测的血清样品用10%DMEM进行连续倍比稀释(以1∶20稀释为起点,可以进行2倍比稀释,也可以进行5倍比稀释,也可以进行10倍比稀释或其它类型的稀释比例,其中优选进行10倍比稀释),然后各取50μL分别与50μL稀释于10%DMEM的HPV假病毒(MOI=0.02)混合(如需要检测的是针对HPV16的中和抗体效价,可以使用HPV16假病毒;如是检测针对HPV18的中和抗体效价,可以使用HPV18假病毒;检测针对其它亚型HPV的的中和抗体效价,则可分别使用其它亚型的HPV假病毒)。4℃混合孵育1h后分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。37℃培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μLD-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mL x-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在取样板上,检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。实验对照设置为未进行感染实验的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔)和只进行HPV假病毒感染的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
中和效价的判定方法:
抗体中和效价的定义为:以达到50%感染抑制率以上的最大稀释倍数(稀释起点为1∶20)作为该血清样品的中和效价。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
在本实施例中,我们应用上述方法分别检测了HPV16 VLP免疫后的兔、羊血清中的HPV中和抗体效价,结果如图4所示。结果显示,在HPV16 VLP初免及加强后,可诱导出高滴度的中和抗体,HPV16中和抗体效价迅速上升。
实施例12.在评价HPV疫苗免疫保护性中的应用
本实施例中,我们将本发明建立的HPV中和抗体检测方法应用于HPV疫苗免疫保护性评价实验。本实施例中我们以HPV16疫苗免疫保护性评价实验作为示例,也可以包括其他亚型HPV疫苗的免疫保护性评价实验。
HPV16疫苗(公开号:CN101293918A,制备方法见实施例1、2、3、4、5)供试品预处理:取10支疫苗供试品混匀,用疫苗稀释液一步稀释到80μg/mL,后进行2倍系列稀释得终浓度分别为40μg/mL、20μg/mL的供试品系列溶液。
恒河猴:普通级,雌性,2岁,购自广西省疾病预防与控制中心,并在该中心饲养。
免疫方法:用上述疫苗供试品系列溶液进行左上肢三角肌注射,分5ug、10ug、20ug三个剂量,每个剂量3只恒河猴,每只250μL,同时用疫苗稀释液同法操作免疫对照组。饲养9周,每周采血一次,血样于37℃放置1.5小时后,10,000rpm离心5分钟,收集血清。
中和抗体检测方法:
(1)293FT细胞预铺于96孔细胞培养板中,1.5×104个/孔,37℃培养8小时;
(2)用10%DMEM培养基在96孔细胞培养板上对血清样品进行连续倍比稀释(以1∶20稀释为起点,可以进行2倍比稀释,也可以进行5倍比稀释,也可以进行10倍比稀释或其它类型的稀释比例,其中优选进行2倍比稀释),稀释总体积为50μL;
(3)取-80℃保存的HPV假病毒原液一份,按MOI=0.02加入适量10%DMEM稀释;
(4)往稀释好的血清中加入50μL HPV假病毒稀释液。枪尖吹吸3次混匀,4℃孵育1小时;
注:实验对照设置:未进行感染实验(加入100μL 10%DMEM培养基)的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔);只进行HPV假病毒感染(50μL 10%DMEM培养基及50μL HPV假病毒稀释液)的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
(5)将各个样品混合液及对照样品分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。37℃培养72小时;
(6)培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mLx-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。
(7)启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在取样板上,检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。
C.结果分析
血清样品中和抗体效价的定义:以达到50%感染抑制率以上的最大稀释倍数作为该血清样品的中和效价。
感染抑制率的计算方法:各样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
在本实施例中,我们应用上述方法对HPV16疫苗供试品进行了免疫保护性评价实验,结果如图5所示。结果显示,实验猴经HPV16疫苗供试品初免及加强后,可诱导出高滴度的中和抗体,中和抗体效价迅速上升。
实施例13.在HPV疫苗效力试验(ED50测定)中的应用
本实施例中,我们将本发明建立的HPV中和抗体检测方法应用于HPV疫苗效力试验(ED50测定)。本实施例中我们以HPV16疫苗效力试验作为示例,也可以包括其他HPV亚型疫苗的效力试验。
小鼠:SPF级BALB/c小鼠,雌性,6~8周龄,体重约为18~22g。
免疫40只小鼠前后采集的共7次血清进行了中和性评价。
HPV16疫苗(申请号:200710097762.8)供试品预处理:取10支疫苗供试品混匀,用疫苗稀释液一步稀释到0.1μg/mL,后进行3倍系列稀释得终浓度分别为0.033μg/mL、0.011μg/mL、0.004μg/mL的供试品系列溶液。
实验方法:
A.用上述疫苗供试品系列溶液进行小鼠腹腔注射(每个浓度1组小鼠),每只1mL,同时用疫苗稀释液同法操作免疫对照组。饲养5周进行眼眶采血,血样于37℃放置1.5小时后,10,000rpm离心5分钟,收集血清。
B.中和实验
(1)293FT细胞预铺于96孔平底细胞培养板中,1.5×104个/孔,37℃培养8h;
(2)用10%DMEM将血清样品在96孔细胞培养板上做1∶50稀释(1.0μL血清+59μL培养基);
(3)取-80℃保存的HPV16假病毒原液一份,按MOI=0.02加入适量10%DMEM稀释;
(4)往稀释好的血清中加入50μL HPV假病毒稀释液。枪尖吹吸3次混匀,4℃孵育1小时;
注:实验对照设置:未进行感染实验(加入100μL 10%DMEM培养基)的293FT细胞(称为阴性孔,每个96孔板设置3个孔);只进行HPV假病毒感染(50μL 10%DMEM培养基及50μL HPV假病毒稀释液)的293FT细胞(称为阳性感染孔,每个96孔板设置6个孔)。
(5)将各个样品混合液及对照样品分别加入预铺有293FT细胞的96孔细胞培养板中。37℃培养72小时;
(6)培养72小时后,吸去各孔中的培养基,每孔中加入50μL固定液(含有1%甲醛,0.2%戊二醛的PBS溶液),静置4分钟;4分钟后吸去固定液,每孔中加入100μL D-Hank’s溶液洗细胞三次,再将D-Hank’s溶液吸弃;在每个孔中加入50μL显色液(含有2%0.2M亚铁氰化钾,2%0.2M铁氰化钾,0.1%2M MgCl2,3%40mg/mLx-gal的PBS溶液),放置在37℃中显色2小时;2小时后吸弃板中的显色液终止显色。
(7)启动斑点检测仪器Elispot,将进行显色反应后的细胞培养板放在取样板上,检测每个孔中的蓝色细胞数即被感染细胞数。Elispot的详细操作步骤见该仪器的操作说明书。
C.结果分析
具有中和能力的判定标准:以能在上述疫苗效力试验(ED50测定)中能达到50%以上感染抑制率的血清样品视为具有中和能力,该样品所在孔可称为阳性孔,反之称为阴性孔。
感染抑制率的计算方法:样品孔的感染抑制率=(1-样品孔被感染细胞数/(阳性感染孔被感染细胞数总和/6-阴性孔显色细胞数总和/3))×100%。
ED50的计算方法:分别统计HPV疫苗供试品的不同免疫剂量组的阳性孔数和阴性孔数,然后利用Reed-Munch公式计算各个免疫剂量的中和抗体阳性比例。
在本实施例中,我们应用上述方法对HPV16疫苗供试品进行了疫苗效力试验(ED50测定),结果如表10所示。
表10HPV16疫苗的ED50测定
Figure A20091000111300361
本领域的技术人员应当明了,尽管为了举例说明的目的本文描述了本发明的具体实施方案,但可以对其进行各种修改而不偏离本发明的精神和范围。因此,本发明的具体实施方案和实施例不应当视为限制本发明的范围。本发明仅受所附权利要求的限制。本申请中引用的所有文献均完整地并入本文作为参考。

Claims (15)

1、高通量检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞的方法,包括:(1)使被HPV假病毒或病毒感染的细胞带有适于斑点检测仪器(或,斑点检测法)检测的信号,但未被感染的细胞不带有该信号;和(2)通过使用斑点检测仪器(或,通过以斑点检测法)检测该信号来检测被HPV假病毒或病毒感染的细胞。
2、权利要求1的方法,用于被HPV假病毒或病毒感染的细胞的计数。
3、通过使样品中可能存在的人乳头瘤病毒中和抗体与人乳头瘤病毒假病毒或病毒接触以阻止人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染细胞(通常是培养细胞),并检测被人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染的细胞,来检测样品中的人乳头瘤病毒中和抗体的方法,其特征在于:采用权利要求1或2的方法来检测被人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染的细胞。
4、权利要求3所述方法,其中所述样品为来自待检个体的分离的生物学样品,优选所述样品为血清;或来自组织培养的生物学样品。
5、权利要求3-4任一项所述方法,其中所述方法用于检测样品中人乳头瘤病毒中和抗体的存在与否和/或其效价。
6、权利要求1-5之任一项所述的方法,其中所述斑点检测法中检测数据是通过使用斑点检测仪器获得的,斑点检测仪器能够用于从细胞群体中分辨和测算产生特定信号(例如颜色)的细胞的数量,优选Elispot。
7、权利要求1-6之任一项所述的方法,其中使感染细胞产生能够被斑点检测仪器检测的信号是通过如下方法获得的:报告基因表达元件在感染细胞中表达产生报告蛋白,该报告蛋白可直接产生或间接(例如通过显色反应)产生能够被斑点检测仪器检测的信号。
8、权利要求7所述的方法,其中所述的报告基因在感染细胞中的表达是通过人乳头瘤病毒假病毒或病毒感染细胞实现的;报告基因表达元件可通过带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒感染细胞而导入细胞中表达,或者,也可通过人乳头瘤病毒假病毒或病毒感染带有报告基因表达元件的细胞后激活该报告基因表达元件表达,优选带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒的方式。
9、权利要求1-8之任一项所述的方法,其中所述的报告基因为其表达产物可以直接或间接导致产生能够被斑点检测仪器检测的信号的基因,如β半乳糖苷酶基因等。
10、权利要求1-9之任一项所述的方法,其包括以下步骤:
A)将细胞培养于固相培养载体(例如细胞培养皿、细胞培养板等,优选细胞培养板,更优选96孔细胞培养板)上,作为人乳头瘤病毒或人乳头瘤病毒假病毒感染的靶细胞;所述细胞为动物细胞,特别是哺乳动物细胞,也可是一种改造的细胞,其可在人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染后表达报告蛋白;
B)根据所需要检测的人乳头瘤病毒中和抗体所属的人乳头瘤病毒型别,准备需要的人乳头瘤病毒或人乳头瘤病毒假病毒,例如带有报告基因表达元件的人乳头瘤病毒假病毒;
其中,A)中所述的细胞在被B)中所述的人乳头瘤病毒或者人乳头瘤病毒假病毒感染后能够表达报告蛋白,该报告蛋白能直接产生或间接(例如通过显色反应)产生能够被斑点检测仪器检测的信号;
C)使待检测样品与步骤B)中所述的人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒接触,使得样品中的人乳头瘤病毒中和抗体,如果存在的话,会与人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒结合,从而能够阻止人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒对步骤A)中所述靶细胞的感染;该接触在允许样品中的中和抗体与人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒结合的条件下进行;
D)使步骤C)的产物(检测样品与人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒的混合液)和步骤A)的产物(培养于固相培养载体的细胞)接触,该接触在允许细胞正常生长的条件下进行;
E)应用斑点检测仪器(如Elispot),通过检测带有由报告蛋白直接或间接产生的信号的细胞,检测被感染细胞的数量;
F)根据步骤E)获得的结果测算样品中是否有人乳头瘤病毒中和抗体和/或其效价。
11、权利要求10的方法,其中步骤E)应用斑点检测仪器(如Elispot)检测被感染细胞的数量通过如下方法来进行:细胞如被人乳头瘤病毒或人乳头瘤病毒假病毒感染后,细胞内或通过人乳头瘤病毒假病毒导入的报告基因表达产生报告蛋白,该报告蛋白可直接作为信号产生体产生信号,也可通过反应(如酶促反应等)使其它信号产生体产生信号;细胞是否被感染的判定标准是细胞是否具有由信号产生体产生的信号;检测具有由信号产生体产生的信号的细胞的数量。
12.权利要求9的方法,其中步骤A)中所述的“改造的细胞”为其在基因组中或者基因组外携带包含权利要求9中所述的报告基因编码序列的编码核酸序列,这些编码核酸序列与表达控制序列可操作地连接,表达控制序列在人乳头瘤病毒假病毒或人乳头瘤病毒感染后可启动报告基因的表达。
13、权利要求11的方法,其中信号产生体产生的信号为颜色信号,可使细胞产生与正常细胞不同的颜色(如蓝色),该颜色信号可被斑点检测仪器(如Elispot)所检测。
14、权利要求11的方法,其中信号产生体是酶、化学发光物质、同位素、或稀土元素。
15.斑点检测仪器或斑点检测法或权利要求1-14任一项的方法在检测人乳头瘤病毒中和抗体中的用途、在筛选HPV中和性单克隆抗体中的用途、在检测HPV中和抗体效价中的用途、在制备HPV中和抗体诊断试剂盒中的用途、在HPV疫苗开发和质控中的用途、在筛选或制备抗HPV或其相关疾病药物中的用途、或在治疗HPV感染中的用途。
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