CN101509004B - 7、8-脱氢酶基因的克隆与表达 - Google Patents

7、8-脱氢酶基因的克隆与表达 Download PDF

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本发明是针对一种7、8-脱氢酶基因的克隆与表达,该编码7、8-脱氢酶的基因是从已构建的果蝇cDNA文库中获得,该酶可以转化胆固醇为7-脱氢胆固醇,为生物法合成7-脱氢胆固醇提供一种新方法,得到的可以缩短维生素D3的工艺路线,降低生产成本,减少环境污染。

Description

7、8-脱氢酶基因的克隆与表达
技术领域
本发明属于基因工程和酶工程领域,具体涉及7、8-脱氢酶基因的克隆与表达。
背景技术
维生素D3是人与动物生长、发育、繁殖、维持生命和保持健康必不可少的一种脂溶性维生素。它的主要作用是调节钙磷代谢,促进肠内钙磷吸收和骨质钙化,维持血钙和血磷的平衡,可用作药物制剂、食品和饲料添加剂等,在临床上还可用于治疗佝偻病、老年骨质疏松、甲状腺机能减退症等。目前维生素D3是采用光化学法生产,即以7-脱氢胆固醇(7一DHC)为原料,经紫外照射后转变为维生素D3前体(PreD3),再热异构化而得。作为主生产原料的7-脱氢胆固醇,可采用多种不同的原料和工艺路线,通过化学合成法制备。如可从羊毛脂提取胆固醇,再进行酯化、氧化生成7-酮胆固醇酯,后者可还原成7α和7β-羟基胆固醇酯,再通过消除反应生成7-脱氢胆固醇。我国中科院感光化学所(现为理化所)张建成等人的工艺路线,则以胆固醇为基本原料,经氧化、加成等一系列反应得到7-脱氢胆固醇。
随着世界人口的不断增加和各国国民经济的发展,以及人们生活水平的提高,市场对维生素D3的需求量也呈上升趋势。但迄今,无论采用何种化学合成法制备原料7-脱氢胆固醇,都有反应步骤长,总产率不高,副反应多,条件难控制,效率偏低,成本高等缺点,从而影响维生素D3的生产成本、销售价格、市场推广。因此,目前研究开发工艺路线短、成本低的7-脱氢胆固醇生产方法变得十分迫切和必要。
发明内容
本发明的目的是提供一种能够克服现有技术中的不足之处,采用生物工程方法,研究开发工艺路线短、成本低的7-脱氢胆固醇生产路线。
本发明是从果蝇cDNA文库中克隆一种编码7、8-脱氢酶的基因,其目的是提供一种克隆与表达7、8-脱氢酶的方法,该发明可以获得有酶活的7、8-脱氢酶。
目前有关蜕皮激素合成机理的研究发现,某些昆虫的幼虫,在蜕皮激素生物合成的第一步,其体内有种脱氢酶,先将胆固醇7、8号位上的氢原子脱除,得到中间产物7-脱氢胆固醇,进而在P450酶系其它酶的作用下,经多步酶促反应合成蜕皮激素。基于这种理论,我们从果蝇cDNA文库中克隆一种编码7、8-脱氢酶的基因,并成功表达。通过控制合适的酶反应条件,发现该7、8-脱氢酶能将胆固醇转化为7-脱氢胆固醇。这样的结果,十分有利于下一步研究高酶活、低成本的脱氢酶制造方法,从而开发一种全新的、生物法合成7-脱氢胆固醇工艺路线,并最终实现大幅度降低7-脱氢胆固醇和维生素D3生产成本的目的。
本发明的技术方案如下:
1、从果蝇中获取cDNA文库和pSE380质粒,保存于实验室中。
2、基因的克隆与测序,自行设计的引物进行PCR扩增,PCR产物经0.8%琼脂糖凝胶电泳检测,回收后与pGM-T vector连接,得到重组质粒,用连接液转化感受态E.coli DH5α,在含Amp、IPTG、X-gal的LB平板上挑取白色菌落,接种于含Amp的LB培养基中,抽提质粒进行PCR和酶切验证、测序。
3、根据上述扩增得到的片段,采用上述设计的引物进行片段的扩增。以重组克隆载体为模板进行降落PCR扩增,回收产物和pSE380分别经过EcoR I和BamH I进行双酶切,回收后连接,转化E.coli DH5α,Amp抗性筛选,抽提重组质粒进行PCR,酶切鉴定,将鉴定后的重组质粒测序,进一步验证。
4、E.coli BL21(DE3)plysS的转化和7、8-脱氢酶的诱导表达,将重组pSE380转化感受态的BL21,取160μL转化液涂布于LB平板上,35-38℃培养至出现单菌落,并用含有空白载体pSE380的菌株作为空白对照。从转化平板上挑取单菌落到5mL LB液体培养基中,35-38℃ 220r/min摇床培养至OD600=0.6左右,添加IPTG至终浓度为1mmol/L,同时将含有空白载体pSE380的菌株作为空白对照。通过SDS-PAGE分析,发现有特异性条带出现。
5、重组菌粗酶液提取,按照上述方法进行摇瓶培养,将培养诱导所得菌液8000r/min离心5min,取菌体沉淀悬浮于PBS缓冲液中,超声波破壁,离心取上清液即得粗酶液。取上清液300ml通过切向流膜过滤分离系统浓缩纯化分离蛋白酶,最终获得粗酶液20ml,用于酶学性质等方面的研究。
6、以胆固醇为底物进行酶学性质鉴定,将1g胆固醇溶解于含Tween 80、pH 7.4的磷酸缓冲溶液中,与10ml粗酶液混合,常温避光反应12h,反应液用有机溶剂萃取,萃取剂与反应液体积比为5∶1,萃取温度38-40℃,萃取时间50-80min,用反相高效液相色谱法检测反应结果,检测发现反应液中有7-脱氢胆固醇,其出峰时间与标品7-脱氢胆固醇一致;所述的萃取的有机溶剂是石油醚。所述的检测条件为:C18柱(5μm,250mm×4.6mm),流动相乙腈-异丙醇(7∶3),柱温30℃,流速1.0mL/min,检测波长280nm。
上述第2步中,从已构建的果蝇cDNA文库中获得一种编码7、8-脱氢酶的基因以及该基因编码的酶,该酶特征在于此酶由438个氨基酸组成,其分子量为51307.89 Da。此酶被命名为7、8-脱氢酶。且由下列氨基酸序列组成:
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上述编码7、8-脱氢酶的基因,其核苷酸序列如下:
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本发明的有益效果:
1、从果蝇中获取7、8-脱氢酶基因;
2、涉及到7、8-脱氢酶基因的cDNA序列及克隆、与之相对应的蛋白质序列及其在大肠杆菌中的表达,并且该酶可以转化胆固醇为7-脱氢胆固醇,为生物法合成7-脱氢胆固醇提供一种新方法。
3、该方法简单高效,实现7-脱氢胆固醇直接转化,即一步酶法转化胆固醇为7-脱氢胆固醇,既提高其转化效率、缩短维生素D3的工艺路线、降低生产成本又减少环境污染。
附图说明
图1为重组质粒EcoR I、BamH I双酶切和降落PCR鉴定图。
图2为表达载体物理图谱。
图3为酶促反应液高效液相色谱图。
图4为标品7-脱氢胆固醇高效液相色谱图。
本发明是一种7、8-脱氢酶的基因克隆与表达,将结合附图简要说明:
图1为重组质粒EcoR I、BamH I双酶切和降落PCR鉴定图
以重组克隆载体为模板进行降落PCR扩增,回收产物和pSE380分别经过EcoR I和BamH I进行双酶切,其结果通过0.8%琼脂糖凝胶电泳检测。
图2为表达载体物理图谱
将重组基因转化入E.coli(DE3)plysS所用的质粒载体是pSE380,该质粒具有如下特征:带有Amp选择标记;4476bp;被克隆的基因受控于TRC启动子;带有多克隆位点(ploylinker site)。
图3为酶促反应液高效液相色谱图
将酶促反应液预处理后,用反相高效液相色谱法检测反应结果,检测条件为:C18柱(5μm,250mm×4.6mm),流动相乙腈-异丙醇(7∶3),柱温30℃,流速1.0mL/min,检测波长280nm。
图4为标品7-脱氢胆固醇高效液相色谱图
标品7-脱氢胆固醇的反相高效色谱法检测结果,检测条件为:C18柱(5μm,250mm×4.6mm),流动相乙腈-异丙醇(7∶3),柱温30℃,流速1.0mL/min,检测波长280nm。
具体实施方式
以下通过实施例对本发明做进一步的描述:
实施例1
1文库来源和质粒
果蝇cDNA文库和pSE380均由本实验室保存。
2主要试剂
pGM-T Simple连接试剂盒购自天根生化科技有限公司,BioSpin胶回收试剂盒、BioSpin PCR产物纯化试剂盒均购自杭州博日科技有限公司。EcoR I和BamH I酶均购自Fermentas公司。
3方法
3.1基因的克隆与测序
以自行设计的引物进行PCR扩增,上游引物:5-GGGGAATTCCCTACTAGAAAATGACTGGAAGC-3,下游引物为5-GGGGGATCCTTTTGCAACATAGGTTCGACC-3。采用25μL的反应体系:10×buffer 2.5μL,dTNP 0.5μL,正反向引物各0.5μL,cDNA模板0.5μL,rTaq酶0.25μL,补水至25μL。降落PCR条件为:95℃ 5min,94℃ 50s,59℃ 45s,72℃ 2min;先循环5次,每次下降一度;然后94℃ 50s,54℃ 45s,72℃ 2min循环25次。PCR产物经0.8%琼脂糖凝胶电泳检测,回收后与pGM-T vector连接,得到重组质粒。连接体系为:pGM-T vector 1μL,PCR产物5μL,10×T4 ligase buffer 1μL,T4 DNA连接酶1μL,双蒸水2μL,16℃连接过夜。用连接液转化感受态E.coliDH5α,在含Amp、IPTG、X-gal的LB平板上挑取白色菌落,接种于含Amp的LB培养基中,抽提质粒进行PCR和酶切验证、测序。
3.2 pSE380表达载体的构建
根据上述扩增得到的片段,采用上述设计的引物进行片段的扩增。以重组克隆载体为模板进行降落PCR扩增,见附图1。回收产物和pSE380分别经过EcoR I和BamH I进行双酶切,回收后连接,转化E.coli DH 5α,Amp抗性筛选,抽提重组质粒进行PCR,酶切鉴定,将鉴定后的重组质粒测序,进一步验证。
3.3E.coli BL21(DE3)plysS的转化和7、8-脱氢酶的诱导表达
将重组pSE380转化感受态的BL21(DE3)plysS,取160μL转化液涂布于LB(含氨苄青霉素0.1g/ml)平板上,37℃培养至出现单菌落,并用含有空白载体pSE380的菌株作为空白对照。从转化平板上挑取单菌落到5mL LB(含Amp 100μg/mL)液体培养基中,37℃220r/min摇床培养至OD600=0.6左右,添加IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷)至终浓度为1mmol/L进行诱导表达,同时将含有空白载体pSE380的菌株作为空白对照。通过SDS-PAGE分析,发现有特异性条带出现。
3.4重组菌粗酶液提取
按照上述方法进行摇瓶培养,将培养诱导所得菌液8000r/min离心5min,取菌体沉淀悬浮于PBS缓冲液中,超声波破壁,离心取上清液即得粗酶液。取上清液300ml通过切向流膜过滤分离系统浓缩纯化分离蛋白酶,最终获得粗酶液20ml,用于酶学性质等方面的研究。
3.5以胆固醇为底物进行酶学性质鉴定
将1g胆固醇溶解于含Tween 80、pH 7.4的磷酸缓冲溶液中,与10ml粗酶液混合,常温避光反应12h。反应液用有机溶剂萃取,萃取剂(石油醚)与反应液体积比为5∶1,萃取温度38-40℃,萃取时间50-80min。为提高收率,可重复萃取2-3次。用反相高效液相色谱法检测反应结果,检测条件为:C 18柱(5μm,250mm×4.6mm),流动相乙腈-异丙醇(7∶3),柱温30℃,流速1.0mL/min,检测波长280nm。检测发现反应液中有7-脱氢胆固醇,其出峰时间与标品7-脱氢胆固醇一致,结果参见附图3,图4。

Claims (6)

1.一种编码7、8-脱氢酶的基因,是从已构建的果蝇cDNA文库中获得,其特征在于:该基因编码的酶由438个氨基酸组成,其分子量为51307.89Da,氨基酸序列组成如下:
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2.根据权利要求1所述的编码7、8-脱氢酶的基因,其特征在于:其核苷酸序列如下所示:
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agtagtaatt cacagatcag cagcgaggca accaatattg gttggtcgtt gcaa。
3.一种重组质粒,其特征在于它含有权利要求1或2所述的基因。
4.根据权利要求3所述的重组质粒,其特征在于所述的基因连接在质粒pSE380上。
5.一种基因工程菌,其特征在于它被根据权利要求3或4所述重组质粒转化。
6.根据权利要求1所述的编码7、8-脱氢酶基因的克隆与表达的方法,其特征在于:
(1)从果蝇中获取cDNA文库,保存于实验室中;
(2)基因的克隆与测序,自行设计的引物进行PCR扩增,PCR产物经0.8%琼脂糖凝胶电泳检测,回收后与pGM-T载体连接,得到重组质粒,用连接液转化感受态E.coli DH5α,在含Amp、IPTG、X-gal的LB平板上挑取白色菌落,接种于含Amp的LB培养基中,抽提质粒进行PCR和酶切验证、测序;
(3)根据上述扩增得到的片段,采用上述设计的引物进行片段的扩增,以重组克隆载体为模板进行降落PCR扩增,回收产物和表达载体pSE380分别经过EcoRI和BamH I进行双酶切,回收后连接,转化E.coli DH5α,Amp抗性筛选,获得提取重组质粒pSE380,抽提重组质粒后进行PCR、酶切鉴定,将鉴定后的重组质粒测序,进一步验证;
(4)E.coli BL21(DE3)plysS的转化和7、8-脱氢酶的诱导表达,将重组质粒pSE380转化感受态的BL21,取160μL转化液涂布于LB平板上,37℃培养至出现单菌落,并用含有空白载体pSE380的菌株作为空白对照;从转化平板上挑取单菌落到5mL LB液体培养基中,37℃220r/min摇床培养至OD600=0.6左右,添加IPTG至终浓度为1mmol/L,同时将含有空白载体pSE380的菌株作为空白对照,通过SDS-PAGE分析,发现有特异性条带出现;
(5)重组菌粗酶液提取,按照上述方法进行摇瓶培养,将培养诱导所得菌液8000r/min离心5min,取菌体沉淀悬浮于PBS缓冲液中,超声波破壁,离心取上清液即得粗酶液;取上清液300ml通过切向流膜过滤分离系统浓缩纯化分离蛋白酶,最终获得粗酶液20ml,用于酶学性质的研究;
(6)以胆固醇为底物进行酶学性质鉴定,将1g胆固醇溶解于含Tween 80、pH 7.4的磷酸缓冲溶液中,与10ml粗酶液混合,25℃避光反应12h,反应液用有机溶剂萃取,萃取剂与反应液体积比为5∶1,萃取温度40℃,萃取时间60min,用反相高效液相色谱法检测反应结果,检测发现反应液中有7-脱氢胆固醇,其出峰时间与标品7-脱氢胆固醇一致;所述的萃取的有机溶剂是石油醚;所述的检测条件为:C18柱:5μm,250mm×4.6mm,流动相乙腈-异丙醇为7∶3,柱温30℃,流速1.0mL/min,检测波长280nm。
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