CN101239948A - 格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法 - Google Patents
格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101239948A CN101239948A CNA2007101663420A CN200710166342A CN101239948A CN 101239948 A CN101239948 A CN 101239948A CN A2007101663420 A CNA2007101663420 A CN A2007101663420A CN 200710166342 A CN200710166342 A CN 200710166342A CN 101239948 A CN101239948 A CN 101239948A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- gdm
- geldanamycin
- gdmn
- derivative
- gene
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
本发明涉及利用基因工程技术改造制备抗生素的新衍生物,具体而言,涉及利用基因工程技术获得格尔德霉素C19位进行修饰的新衍生物4,5-双氢-7-氧-脱氨甲酰基-7-羟基-19-氧-甘氨酰格尔德霉素(Gdm-CT-1-1)及其制备方法,通过同源基因双交换阻断技术,破坏吸水链霉菌17997中的格尔德霉素生物合成基因gdmN,在其变株发酵液中直接获得Gdm新衍生物,其水溶性比格尔德霉素高500倍,为研制临床疗效更好的药物奠定了基础。
Description
技术领域:
本发明涉及利用基因工程技术改造制备抗生素的新衍生物,具体而言,涉及利用基因工程技术获得格尔德霉素的新衍生物CT-1-1及其制备方法。
技术背景:
吸水链霉菌17997(Streptomyces hygrocopicus 17997)是中国医学科学院医药生物技术研究所从我国土壤中分离到的,经鉴定其可以产生格尔德霉素(geldanamycin,Gdm)。Gdm具有抗原虫、抗肿瘤、抗病毒以及免疫调节等多种生物学活性[Sasaki K et al.J Antibiot(Tokyo)1979,32(8):849-51];[陶佩珍等,中国抗生素杂志,1997,22:368-372]。根据最近报道,Gdm还具有调节上皮氮氧合酶活性以及抗炎等作用[Murphy P et al Journal of Neuroscience Research,2002,67(4):461-470]。经研究证实,格尔德霉素的特异性作用靶点是热休克蛋白90(heat shockprotein 90,Hsp90)。Hsp90是许多信号蛋白的伴侣分子,Gdm通过对Hsp90的抑制,可以间接影响细胞内信号蛋白的功能,因此,有望成为一种颇具潜力的抗肿瘤和抗病毒药物。但是Gdm还存在毒性大及水溶性差等缺点,水溶性差会影响其生物利用度,这些缺陷将限制其开发成为有效药物。所以,寻找一种毒性低、水溶性好的衍生物,已成为其深入研究的主要目标。目前,已有两个在C17位进行取代的Gdm衍生物17-AAG和17-DMAG,相继在美国进行II期和I期临床试验[Goetz MP et al J Clin Oncol,2005,23(6):1078-1087];[Glaze ER et al.,CancerChemother Pharmacol.2005,56(6):637-647]。
Gdm的生物合成,是以3-氨基-5-羟基苯甲酸为起始物,2C单位为延伸单位,包括1个丙二酰,4个甲基丙二酰和2个甲氧基丙二酰,在荷载域和7个聚酮合酶(polyketide synthase,PKS)模块,顺序进行碳链的延伸反应形成聚酮链骨架,再经过酰胺合酶的环化,形成格尔德霉素前体原Gdm。然后通过后修饰过程,包括:C17位的羟基化及氧甲基化、C21位的氧化、C7位的氨甲酰基化和C4,5位的氧化,最终形成Gdm。为了实现对Gdm生物学方法的改造,本实验室从Streptomyces hygroscopicus 17997基因文库中克隆了与Gdm生物合成相关的基因簇[高群杰等,中国抗生素杂志,2002,27(1):13-27];[赫卫清,王以光,中国生物工程学报,2006,22:902-906]。通过阻断吸水链霉菌17997中的格尔德霉素生物合成基因-氨甲酰基转移酶基因(gdmN)的方法,获得一种新的格尔德霉素衍生物4,5-双氢-7-氧-脱氨甲酰基-7-羟基-19-甘氨酰格尔德霉素(4,5-dihydro-7-O-descarbamoyl-7-hydroxy-19-glycylgeldanamycin),命名为Gdm-CT-1-1。Gdm-CT-1-1水溶性比Gdm增加了500多倍。本发明所述通过基因工程技术在C19位进行修饰获得Gdm新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法,为制备水溶性好的Gdm衍生物提供了新的途径。
利用生物学方法在Gdm C19位进行修饰获得新衍生物的研究,迄今为止,尚未见有国内外的相关报道。
发明内容:
本发明提供了格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1,其结构如式(1)所示:
本发明还提供了新衍生物Gdm-CT-1-1的制备方法,具体步骤包括:
1、Gdm生物合成阻断变株的构建
采用具有氨苄青霉素抗性(AmpR)和硫链丝菌素抗性(TsrR)的大肠杆菌和链霉菌的穿梭载体pGH112构建基因阻断载体,以吸水链霉菌17997基因组为模板进行PCR,分别获得与gdmN基因同源的两个片段,在其中间以相应的酶切位点插入阿普拉霉素(apramycin,Am)抗性基因,并与pGH112载体进行连接,转化大肠杆菌DH5α,获得用于目的基因阻断的重组载体;
将重组载体转化到大肠杆菌ET12567/pUZ8002中,获得转化子,将其与吸水链霉菌17997的新鲜孢子共培养,通过接合转移,将重组载体导入吸水链霉菌中。接合转移子进行传代培养,筛选出AmR和TsrR的突变株CT-1。利用PCR方法鉴定确认,gdmN基因阻断变株是通过同源双交换在其中插入Am抗性基因的结果。
2、格尔德霉素新衍生物Gdm-CT-1-1的获得
将CT-1变株进行发酵培养,用等量乙酸己酯萃取发酵液上清,乙酸己酯萃取液经薄膜浓缩获得粗品,在硅胶柱用二氯甲烷洗脱,分部收集,以TLC或HPLC进行检测,再经制备型HPLC获得格尔德霉素新衍生物Gdm-CT-1-1纯品。
3、格尔德霉素新衍生物Gdm-CT-1-1的结构鉴定及水溶性测定
经高分辨质谱确定Gdm-CT-1-1的分子量和分子式,经1H和13C NMR分析,并通过化学结构解析,确定Gdm-CT-1-1的结构为4,5-双氢-7-氧-脱氨甲酰基-7-羟基-19-氧-甘氨酰格尔德霉素。测试结果表明,Gdm-CT-1-1的水溶性比Gdm提高500倍。
发明效果:
本发明通过同源基因双交换阻断技术,破坏吸水链霉菌17997中的格尔德霉素生物合成基因gdmN,在其变株发酵液中直接获得Gdm在C19位进行修饰的新衍生物Gdm-CT-1-1,且其水溶性比格尔德霉素高出500倍,为提供临床疗效更好的药物奠定了基础。
附图说明:
图1:gdmN基因阻断载体的构建
其中:AmR-阿普拉霉素抗性基因;
tsr-硫链丝菌素抗性基因;
Amp-氨苄青霉素抗性基因;
B-BamHI;
Bg-BglII;
E-EcoRI;
P-pstI;
S-SacI;
X-XbaI。
图2:PCR产物电泳
其中:M-λHind III; 1-17997原株; 2-CT-1。
图3:gdmN变株发酵产生的Gdm-CT-1-1HPLC检测图
其中:A-吸水链霉菌17997;保留时间为24.863分钟,
B-Gdm-CT-1-1,保留时间为12.925分钟。
图4:Gdm-CT-1-1高分辨质谱图谱
图5:Gdm-CT-1-11H氢谱
图6:Gdm-CT-1-113C碳谱
实施方案:
以下所列实施例是为帮助本领域技术人员更好地理解本发明,但不以任何方式限制本发明。
<实施例1>gdmN基因阻断重组载体的构建
根据gdmN基因序列(Genbank DQ914285)设计引物(N1-N4),提取吸水链霉菌17997(中国微生物菌种保藏委员会药学微生物菌种保藏中心,保藏号CPHCC200178)基因组DNA,以此作为模板进行常规PCR。在本实验中采用以下引物及设计的酶切位点,但不限于所说的引物序列和酶切位点。
上游引物(N1):5’-CCGGAATTCACGGCCTTGGCCAGATCC-3’带有EcoRI酶切位点;
下游引物(N2):5’-CGCGGATCCATCCACCCCGCCTCGCAC-3’带有BamHI酶切位点;扩增949bp片段1。
上游引物(N3):5’-AAAACTGCAGGCCGTTGAGGCTGGAGTT-3’带有PstI酶切位点;
下游引物(N4):5’-CTAGTCTAGACCGACTGGTTTGGGTGAT-3’带有XbaI酶切位点;扩增963 bp片段2。
回收PCR产物片段1和2,在其中间以BamHI-PstI酶切位点插入Am抗性基因,[来源于质粒载体pKC1139(Kieser T.et al.practical Streptomyces genetics.Norwich:John Innes Foundation.2000)],并以EcoRI-XbaI酶切位点与携带硫链丝菌素抗性的pGH112载体(莫宏波等生物工程学报,2004;20:662-666)相应酶切位点进行连接。连接产物转化大肠杆菌DH5α,提取转化子DNA,经酶切证明,获得基因阻断重组载体pGHEX-gdmN(图1)。
<实施例2>gdmN变株的基因鉴定
gdmN变株的筛选按照文献[赫卫清等中国抗生素杂志,2006,31(3):168-171]进行。将构建的基因阻断重组载体pGHEX-gdmN通过能与吸水链霉菌进行接合转移的大肠杆菌,如大肠杆菌ET12567/pUZ8002[Kieser T.et al.practicalStreptomyces genetics.Norwich:John Innes Foundation.2000]导入到吸水链霉菌17997中,并在MY培养基[赫卫清等 中国抗生素杂志,2006,31(3):168-171]中传3~4代后,再进行单克隆分离,筛选获得AmR、TsrS gdmN变株。对gdmN变株(CT-1)在基因整合水平进行PCR验证。以原株和CT-1变株的基因组为模板,选取gdmN基因两翼外测序列设计引物Pr1和Pr2(图1)进行PCR。结果表明,使用引物Pr1和Pr2原株基因组PCR产物大小约3.1kb左右,而在CT-1变株中扩增出将近4.5kb特异性条带(图2)。
Pr1上游引物:5’CCCAAGCTTCTCGTGGACGGGTTGCT3’(HindIII)
Pr2下游引物:5’CTAGTCTAGATCGAACGCCTCCACCTC3’(XbaI)
PCR结果揭示,在同源基因片段之间,插入了1.5 kb左右的Am抗性基因,符合预期结果。gdmN变株在不加药连续传代中,Am抗性表型很稳定,说明该变株中确实发生了DNA同源重组双交换所造成的Am抗性基因插入,并使gdmN基因由于阻断而受到破坏。
<实施例3> Gdm-CT-1-1的制备
gdmN变株在MY固体培养基上培养7天,接种种子培养基50ml于250ml三角瓶,28℃摇床200rpm振荡培养2天,以5-10%接种量转种发酵培养基50ml(500ml三角瓶)或1000ml(5000ml)28℃摇床200rpm振荡培养3天[赫卫清等中国抗生素杂志,2006,31(3):168-171]。发酵液过滤后,用滤液二分之一体积的乙酸乙酯提取,薄膜浓缩后上硅胶柱,以二氯甲烷∶甲醇19-1进行洗脱,分部收集洗脱液,用岛津LC-10Avp高压液相色谱仪,SPD-M10AvP二极管阵列检测器,CLASS-VP工作站,以254nm进行HPLC检测(图3),汇总含Gdm-CT-1-1化合物部分洗脱液,浓缩后用制备型HPLC,ODS-C18柱(柱体积150×20毫米),甲醇∶水14∶11(v/v),流量每分钟5毫升,获得Gdm-CT-1-1纯品。
<实施例4>Gdm-CT-1-1结构的确定
Gdm-CT-1-1纯品经高分辨质谱分析,结果见图4,确定其分子量为615.2896(含钠),实际分子量为592,分子式为C30H44N2O14。1H和13C NMR数据见表1,图谱见图5,图6。
表1 Gdm-CT-1-1化合物的1H和13C NMR数据
位置 | δH | δC |
122-CH334566-OCH3788-CH391010-CH3111212-OCH3131414-CH315161717-OCH31819202119-OCOCH2NH219-OCOCH2NH2 | --1.805.621.99/2.050.98/1.083.063.443.37-.455.042.451.083.653.143.330.98/1.762.050.73.06/2.58--3.69-----3.55/3.33 | 176.2129.212.21133.423.429.981.957.5879.69133.410.41130.734.7417.3372.9481.2455.432.231.316.429.9120.04146.7060.01120.03123.2117.9148.6165.5229.21 |
化学解析结果表明,Gdm-CT-1-1的结构如式(1)所示:
<实施例5> Gdm-CT-1-1的水溶性测定
分别将Gdm-CT-1-1和Gdm在50mM,pH7.0的磷酸钠缓冲液中溶解,在室温闭光的情况下搅拌12小时,测定它们的溶解度。结果表明,Gdm的溶解度为每毫升0.007毫克,而Gdm-CT-1-1的溶解度为每毫升4.02毫克,化合物Gdm-CT-1-1比Gdm的水溶性高500多倍。
Claims (5)
2、制备权利要求1所述新衍生物Gdm-CT-1-1的方法,具体包括以下步骤:
A.Gdm生物合成阻断变株的构建;
B.Gdm生物合成阻断变株的发酵及Gdm-CT-1-1的提取和纯化。
3、如权利要求2所述的方法,其特征是,所说阻断变株的构建,是根据gdmN基因序列(Genbank DQ914285)设计引物,以吸水链霉菌17997基因组为模板,进行PCR,分别获得与gdmN基因同源的两个片段,在其中间以相应的酶切位点插入选择性标记基因,并与可转入吸水链霉菌17997的质粒载体进行连接,转化大肠杆菌DH5α,获得用于目的基因阻断的重组载体;将重组载体导入吸水链霉菌中;根据选择性标记筛选转化子;利用PCR方法鉴定确认gdmN基因序列插入了选择性标记基因,使gdmN基因遭到破坏,从而获得Gdm生物合成阻断变株CT-1-1。
4、如权利要求2所述的方法,其特征是,新衍生物Gdm-CT-1-1的制备是将CT-1变株直接进行发酵培养,用等量乙酸己酯萃取发酵液上清,乙酸己酯萃取液经薄膜浓缩获得粗品,在硅胶柱上用二氯甲烷洗脱,分部收集,以TLC或HPLC进行检测,再经制备型HPLC得到格尔德霉素新衍生物Gdm-CT-1-1纯品。
5、格尔德霉素新衍生物Gdm-CT-1-1作为先导化合物在开发制备有效药物中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNA2007101663420A CN101239948A (zh) | 2007-11-07 | 2007-11-07 | 格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNA2007101663420A CN101239948A (zh) | 2007-11-07 | 2007-11-07 | 格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101239948A true CN101239948A (zh) | 2008-08-13 |
Family
ID=39931828
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CNA2007101663420A Pending CN101239948A (zh) | 2007-11-07 | 2007-11-07 | 格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101239948A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101792418A (zh) * | 2010-03-04 | 2010-08-04 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | 格尔德霉素生物合成类似物19-o-甘氨酰格尔德霉素 |
-
2007
- 2007-11-07 CN CNA2007101663420A patent/CN101239948A/zh active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101792418A (zh) * | 2010-03-04 | 2010-08-04 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | 格尔德霉素生物合成类似物19-o-甘氨酰格尔德霉素 |
CN101792418B (zh) * | 2010-03-04 | 2012-02-15 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | 格尔德霉素生物合成类似物19-o-甘氨酰格尔德霉素 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN107475146B (zh) | 一种链霉菌及其代谢产物粉蝶霉素类化合物在抗肾癌中的应用 | |
CN112592259A (zh) | 一类化合物、其合成基因簇及应用 | |
CN110484481B (zh) | 一种通过改造林可链霉菌slcg_3128基因提高林可霉素产量的方法 | |
CN104357506A (zh) | 增加前体物供应以提高盐霉素发酵水平的方法 | |
CN101239948A (zh) | 格尔德霉素的新衍生物Gdm-CT-1-1及其制备方法 | |
CN110563783B (zh) | 一种高效低毒四霉素b衍生物及其定向高产代谢工程方法 | |
CN100393867C (zh) | 格尔德霉素基因工程高产菌株的构建 | |
EP2731435B1 (en) | Uk-2 biosynthetic genes and method for improving uk-2 productivity using the same | |
CN109136253A (zh) | 一种通过糖多孢红霉菌sace_5754基因途径提高红霉素产量的方法 | |
CN115368439A (zh) | 一组fk228衍生物及其制备方法与应用 | |
CN110551165B (zh) | 一种高效低毒四霉素b衍生物及其制备和应用 | |
CN106188093B (zh) | 一种雷帕霉素结构类似物及其制备方法 | |
CN102030764B (zh) | 4,5双氢噻嗪酮格尔德霉素及其制备方法 | |
CN102993168B (zh) | 链黑菌素类似化合物及其制备方法、用途 | |
CN102174531B (zh) | 谷田霉素的生物合成基因簇 | |
CN105969714A (zh) | 厦门霉素高产菌株及其培养基、用途 | |
CN110484576A (zh) | 一种提高榴菌素和榴菌素b产量的方法 | |
CN103409358A (zh) | 一株高产自溶霉素的基因工程菌 | |
CN112430555B (zh) | 一种放线菌底盘菌株及其应用 | |
CN114875095B (zh) | 一种丙氨酰美登醇及其合成方法和应用 | |
CN102994585B (zh) | 淡紫醌霉素及其甲酯的制备方法 | |
CN114437155B (zh) | 两个大环内酯化合物及其在制备抗菌、抗癌药物中的应用 | |
CN106191156A (zh) | 提高格尔登素发酵水平的方法 | |
CN114457101B (zh) | 通过改造糖多孢红霉菌sace_1558基因提高红霉素产量的方法及应用 | |
CN109824746B (zh) | 一种友霉素类化合物及其制备方法和应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Open date: 20080813 |