CH601479A5 - Injectable Bordetella bronchiseptica vaccine - Google Patents

Injectable Bordetella bronchiseptica vaccine

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CH601479A5
CH601479A5 CH262077A CH262077A CH601479A5 CH 601479 A5 CH601479 A5 CH 601479A5 CH 262077 A CH262077 A CH 262077A CH 262077 A CH262077 A CH 262077A CH 601479 A5 CH601479 A5 CH 601479A5
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bordetella
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infection
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William Paul Switzer
Daniel Owen Farrington
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Univ Iowa State Res Found Inc
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Description


  
 



   La présente invention est relative à un vaccin destiné à l'immunisation des animaux et en particulier du porc contre une infection due au Bordetella   hronchiseptica.   



   On a établi que le Bordetella hronchiseptica est la cause principale de la maladie qui est largement répandue chez le porc et que   l'on    appelle habituellement atrophie turbinée parce que, après l'infection primaire, les os turbinés du nez subissent fréquemment une sérieuse détérioration. On peut se reporter à cet effet à  Canad. J. Comp. Med. ,   31,53-57(1967)    et aux références bibliographiques qui y sont citées. La bactérie Bordetella   hronchiseptica    peut persister dans les cavités nasales, en menant à une infection des produits des truies d'élevage.



   Les porcelets sont infectés très tôt par le Bordetella   hronchisep-    tica (avant l'âge de quatre semaines), ce qui soulève le problème particulièrement difficile d'une protection efficace, car le système d'immunisation des très jeunes porcelets n'est pas sensible aux vaccins de manière satisfaisante. Pour une production efficace d'anticorps, on administre habituellement les vaccins aux porcs à l'âge d'environ six à huit semaines. A ce moment, si les porcs ont déjà été infectés par le Bordetella   bronchîseptica,    une détérioration des os turbinés peut se produire, même si les porcs sont ensuite immunisés contre l'infection.



   Le premier traitement qui s'est montré intéressant pour réduire le problème de l'infection chez les porcelets a consisté en l'administration d'un agent thérapeutique sulfamidé, tel que de la sulfaméthazine ou de la sulfaéthoxypyridazine, et ce dans les rations données aux troupeaux d'élevage. On a signalé cette méthode dans la littérature et elle a été brevetée par le dr William
P. Switser:  Vet. Med. , 58, 571-574 (1963); brevet des Etats
Unis d'Amérique   N"    3336190. Toutefois, l'efficacité d'une thérapeutique par sulfamidé pour l'élimination d'une infection due au
Bordetella bronchiseptica a été limitée par le développement de souches de l'organisme qui sont résistantes aux sulfamidés.

  A titre d'exemple, une étude faite en 1967 a montré que des matières isolées de Bordetella bronchiseptica, récupérées de 80% des animaux inspectés étaient résistantes aux   sulfamidés    [ Am. J. Vet.   Res. ,    30,   1621-I 624 (sep.      1969)]    Ces résultats ont mis en évidence la nécessité de pouvoir disposer de médicaments supplémentaires ou, plus particulièrement d'agents efficaces d'immunisation. Avant la présente invention, aucun autre traitement préventif utilisable dans l'élevage industriel des porcs n'a toutefois été proposé.



   On a trouvé que l'introduction de cellules vivantes d'une souche à faible virulence de Bordetella   bronchiseprica    dans les cavités nasales de porcs non immunisés produit une infection relativement modérée et que, par la suite, le porc est immunisé contre une infection ultérieure, notamment une infection par des souches plus virulentes de l'organisme [voir  J. Vet. Res.  30, 1161-1166 (juillet   1969)].    Une telle souche de faible virulence, qui n'a pas été disponible au public, a été identifiée par le code privé souche D-l.



  C'est cette même souche qui a été utilisée pour préparer le vaccin à cellules entières tuées, utilisable par voie parentérale, suivant la présente invention. Toutefois, au cours des travaux antérieurs, on a trouvé que des cellules vivantes de la souche D-l persistaient dans les cavités nasales des porcs guéris. Par conséquent, la souche   D- 1    a été écartée en tant que vaccin intranasal à cellules entières vivantes. De plus, on ne connaît aucune autre souche de
Bordetella hronchiseptica qui assurerait une immunité et qui s'éliminerait ensuite d'elle-même des conduits nasaux des porcs immunisés.



   On a également procédé à des essais pour créer un vaccin au départ de cellules tuées de Bordetella   bronchiseprica,    vaccin qui pourrait créer une immunité par une administration parentérale.



  L'un des premiers vaccins expérimentaux de ce genre a été préparé au départ d'une souche virulente de Bordetella hronchiseptica (identifiée sous le nom de souche B). Toutefois, ce vaccin à cellules entières n'est pas parvenu à créer une résistance à l'infection nasale, comme signalé par Harris D.L. et Switzer W.P.:  Am. J.



  Vet. Res. , 30, 1161-1166 (juillet 1969). En raison de cette défaillance de tels vaccins à cellules entières, utilisés par voie parentérale, Harris et Switzer ont supposé que:  Une exposition du porc aux antigènes internes de Bordetella hronchiseptica peut être nécessaire à la création d'une résistance contre l'infection nasale ,  Am. J. Vet. Res. , 33, 1975, 1981-1982 (octobre 1972). Cette théorie s'est révélée incorrecte. Des vaccins préparés au départ de cellules rompues de Bordetella hronchiseptica, souche D- I, ne sont pas parvenus à empêcher une infection par le Bordetella   hronchi-    septica, mais ont supposé une élimination accélérée lors d'un essai ultérieur d'une quarantaine   dejours      ( A.J.    Vet.   Res. ,    33, 1975,
 1979 et 1981).

  On en a conclu que le type de résistance créé par un vaccin parentéral contenant les antigènes libérés de cellules tuées étaient différent de l'immunité du porc qui avait été guéri d'une infection intranasale avec du   Borcletella      hronchiseptica    vivant. Le but d'une immunisation efficace contre l'infection restait à atteindre et aucune solution à ce problème déroutant n'était donc perceptible.



   L'état de la technique dans ce domaine a été résumé par
D.O. Farrington et W.P. Switzer, à savoir les inventeurs dans le cas présent, dans un article intitulé  Resistance to   hor < letella      zhiní-    tis , Proceedings, The George A. Young Conference on Advances in Swine Repopulation and the Thirteenth Annual Nebraska SPF
Conference, Lincoln, Nebraska, 23-24 juillet 1973, pages   44-52;    à la page 46 de cet article, on a signalé ce qui suit:

    On sait qu'une immunisation parentérale du porc avec des bactérins (vaccins bactériens) de Bordetella hronchiseptica accélère l'élimination nasale des infections de ce Bordetella   bronchiseptica.    En outre, le développement des fortes lésions associées à la rhinite atrophique semble être inhibé de façon significative chez les porcs convenablement immunisés.  Les essais réalisés avec des bactérins de
Bordetella bronchiseptica expérimentaux ont été résumés dans le tableau 1 de cet article. On en a conclu que, alors que  des bactérins parentéraux ont montré un certain degré de libération accélérée des infections nasales dues au Bordetella   bronchiseptica ,     de nombreuses questions restaient sans réponse avant que le développement d'un agent d'immunisation pratique contre la rhinite due au Bordetella devienne une réalité .



   Comme on l'a mentionné antérieurement, l'infection due au
Bordetella   bronchiseptica    est la cause principale de la rhinite atrophique. Fréquemment, à la suite de l'infection, les os turbinés subissent une sérieuse atrophie. Dans la colonisation des conduits nasaux par les organismes de Bordetella, ces organismes pénètrent dans la couche de mucus et s'accrochent en colonies aux cellules épithéliales. Durant l'infection, des substances toxiques sont produites, ces substances atteignant le tissu sous-jacent et, en particulier, les cellules de formation osseuse des crêtes turbinales. On croit que ces substances toxiques produisent des lésions créant l'atrophie turbinée.

  La présente invention apporte des moyens pour assurer une immunisation efficace contre les substances toxiques qui créent l'atrophie turbinée, sans empêcher l'infection primaire de Bordetella bronchiseptica. De façon plus particulière, au cours des travaux qui ont mené à la présente invention, on a découvert qu'un vaccin à cellules entières tuées pourrait être préparé au départ d'une souche de Bordetella bronchiseptica identifiée par ATCC   NO    31124, ce vaccin, lorsqu'il est administré en une dose critique, étant capable d'assurer une protection efficace du porc contre le développement de l'atrophie turbinée. En outre, bien que le porc vacciné ne soit pas immunisé contre l'infection, on obtient habituellement une élimination accélérée de l'infection due au Bordetella bronchiseptica. 

  Toutefois, le résultat nouveau et principal de la présente invention est qu'on obtient une immunisation contre les lésions turbinées accompagnant l'infection due au
Bordetella   bronchiseptica.    Cela est important, car de telles lésions et la détérioration résultante des os des cavités nasales sont une cause importante de pertes économiques pour les éleveurs de porcs. En raison de la prédominance des organismes de Bordetella hronchiseptica dans les troupeaux d'élevage et de la grande difficulté pratique de maintenir ces troupeaux sans ces organismes, il  est extrêmement difficile d'éviter une infection des jeunes porcs à un âge auquel ceux-ci y sont sujets.



   On développe   ci-apres    d'autres détails importants en ce qui concerne la préparation de vaccins sous la forme de doses, suivant la présente invention, et également concernant la méthode d'utilisation de ces vaccins. On a trouvé que des bactérins parentéraux à cellules entières tuées, préparés au départ de la souche ATCC   NO    31124, sont efficaces pour empêcher l'atrophie turbinée et pour réduire la durée d'une infection due au Bordetella hronchiseptica.



  De plus, on a trouvé que des porcelets âgés de moins de 4 semaines répondent de façon satisfaisante aux bactérins suivant l'invention. La présente invention apporte, par conséquent, des moyens pour assurer aux porcelets une protection par anticorps contre l'atrophie turbinée, avant que ces porcelets aient eu l'occasion   d'être    infectés avec des lésions résultantes des os du nez.



   Avant le dépôt de la demande de brevet d'origine aux Etats
Unis d'Amérique, on a placé en dépôt auprès de l'organisation
Americain Type Culture Collection, Rockville, Maryland, USA, des échantillons viables de la souche de Bordetella   hro)lchiseptica,    que   l'on    peut utiliser comme cultures d'ensemencement pour la production du vaccin suivant la présente invention. Les échantillons identiques déposés, identifiés antérieurement par le code privé souche D-l, ont reçu le ATCC   N"    31124, que   l'on    utilisera par conséquent comme numéro d'identification dans la présente description et les revendications. La description taxonomique disponible de la souche Bordetella hronchiseptica ATCC   N"      311 24    est donnée ci-après.



  Description taxonomique:
 On a récupéré   l'ATCC      N"    31124 des produits d'exsudation du nez et de la trachée d'un jeune chien bâtard qui présentait des signes cliniques de la maladie des chiens. On a ensuite déterminé que cette souche est avirulente pour le porc et qu'elle présente les caractéristiques suivantes d'identification:
 1. Petit bâtonnet Gram négatif.



   2. Aérobie.



   3. Colonie d'un diamètre d'environ 1 mm après incubation sur
 gélose à 5% de sang de cheval, pendant 48 h, à   37"C.   



   4. Colonie circulaire, de faible convexité, entière, opaque, lisse,
 homogène avec un bord ondulé, sur gélose à 5% de sang de
 cheval.



   5. Alcalinisation d'un bouillon de lactose en 18-24 h sans forma
 tion de gaz.



   6. Alcalinisation d'un bouillon de dextrose en 18-24 h sans for
 mation de gaz.



   7. Positive à l'uréase en 2-12 h.



   8. Positive au citrate en 12-24 h.



   9. Positive au nitrate.



   10. Alcalinisation de la teinture de tournesol en 48 h.



   11. Motilité par flagelles péritrichiques.



   12. Croissance sur gélose de MacConkeys en présence de sels
 biliaires.



   13. Sensible à la sulfaméthazine au taux de 5 mg/ml lors d'une
 détermination sur disques.



   14. Résistante à 0,02 mg/ml de furaltadone (NF-260).



   15. Positive à l'hémagglutination (suspension à 2,8% de globules
 rouges du mouton).



   16. Hémolytique sur gélose à 5% de sang de cheval après incuba
 tion à   37"C    pendant 24 h.



   17. Pas de formation de spores.



   18. Positive à la catalase.



   19. Positive à l'oxydase.



   20. Négative à l'indole.



   21. Négative à l'hydrogène sulfuré.



   22. Négative à la liquéfaction de la gélatine.



   Dans la préparation du vaccin suivant la présente invention,
 on introduit des cellules viables de la souche ATCC   N"    31124 de
 Bordetella   hronchiseptica,    qui peuvent avoir été soumises à une lyophilisation pour la conservation, dans un milieu de culture approprié que   l'on    soumet ensuite à incubation à une température favorisant la croissance de l'organisme. D'une manière générale, on peut utiliser les procédés déjà publiés pour la culture des organismes de Bordetella   hronchiseptica    et on peut se reporter à cet effet, par exemple, à    Am.    J. Vet. Res , 30, 1161, 1162 (1969), et à  Am. J. Vet. Res , 33, 1975, 1976 (1972). De façon plus particulière, on peut utiliser un bouillon de tryptose phosphate (TPB) pour la propagation de l'organisme.

  On peut se procurer un tel milieu TPB auprès de la société Difco Laboratories, Inc., Detroit,
Michigan. D'autres milieux de culture utilisables sont: gélose de
Bordet-Gengou (Difco), bouillon d'infusion de cervelle   cceur      (Difco),    bouillon tryptone-soya (Oxoid Limited, Londres,
Grande-Bretagne). Des températures de propagation de 36-38' C sont favorables. Des directives plus détaillées concernant une telle propagation sont données dans les exemples suivants.



   Après propagation, la culture de   l'ATCC      N"    31124 est tuée sans rupture des parois cellulaires. Des agents appropriés pour tuer cette culture comprennent une concentration finale de 0,2% de formaldéhyde ou de 1/10000 de   thimérosal    (éthylmercurithiosalicylate de sodium). Un procédé préféré consiste à ajouter de la formaline, à savoir une solution aqueuse à 37% de formaldéhyde.



  Des concentrations finales de formaldéhyde de 0,1 à 0,2% suffisent pour assurer une inactivation totale lorsque les cellules sont maintenues pendant 24 h à la température ambiante (20-25' C).



  Après cette opération, les cellules intactes peuvent être conservées sous réfrigération (à savoir à 4 C). Les concentrations préférées   dela bactérie vont d'environ 109à 101l cellules par ml; par    exemple   1010    cellules   par ml.    De tels concentrés de cellules tuées conviennent bien pour la préparation de vaccins sous la forme de doses pour la mise en oeuvre de la présente invention.



   Comme on le sait dans la technique de préparation de vaccins
 parentéraux, on peut mélanger un adjuvant approprié avec les cel
 lules tuées dans la préparation du vaccin en vue de son adminis
 tration. Une quantité efficace d'un adjuvant mélangé avec les cel
 lules tuées peut augmenter la production d'anticorps dans les ani
 maux vaccinés. Pour des animaux de boucherie, tels que le porc, il
 est désirable que l'adjuvant soit absorbable, qu'il soit injecté par
 voie sous-cutanée ou par voie intramusculaire. Il est par conséquent désirable, tout au moins en vue d'une utilisation aux Etats
 Unis d'Amérique, d'employer un adjuvant qui a été approuvé par
 le U.S. Department of Agriculture, Veterinary Biologics Division,
 pour l'administration à des animaux de boucherie.

  L'hydroxyde
 d'aluminium (crème d'alumine) est intéressant comme adjuvant
 dans les vaccins de la présente invention et il s'agit d'un produit
 approuvé pour une utilisation chez les animaux de boucherie.



   L'utilisation de cet adjuvant est illustrée dans les exemples sui
 vants. Un autre adjuvant utilisable est celui que   l'on    prépare de la
 façon décrite dans le brevet des Etats-Unis d'Amérique   N     3149036. Une forme commerciale de cet adjuvant est vendue
 par la société Merck  & Co., Inc., Rahway, New Jersey, Etats
 Unis d'Amérique, sous la dénomination Merck Adjuvant 65. La
 préparation et l'utilisation de cet adjuvant sont également décrites
 dans les exemples.



   Le vaccin suivant la présente invention, sous la forme d'une
 dose injectable par voie parentérale, consiste essentiellement en
 l'adjuvant susdit en mélange avec environ 109 et 1011 cellules
 entières tuées de cette souche ATCC   N"    31124. La dose préférée
 de vaccin contient de 5 à 15 x 109 cellules de cette souche. De telles doses de vaccin conviennent particulièrement bien pour
 l'immunisation du porc contre le développement de l'atrophie tur
 binée. Le volume total de la dose du vaccin comprendra le volume
 des cellules plus le volume de l'adjuvant absorbable et injectable.

 

   Le volume de la dose sera habituellement de plus de 0,5   ml    et de
 moins de 3,0   ml,    mais il devrait être d'une valeur suffisante pour
 englober une quantité efficace de l'adjuvant. Des volumes de dose
 de 0,8 à 2,5 ml conviennent particulièrement bien pour une admi
 nistration intramusculaire ou sous-cutanée. Dans une préparation  que   l'on    préfère, on a de 10 à 15 x 109 cellules, et le volume total de la dose est de 1,8 à 2,2 ml.



   On peut également utiliser le vaccin suivant l'invention pour la protection des produits d'une truie gravide contre le développement de l'atrophie turbinée. A titre d'exemple, on administre au moins une dose du vaccin contenant de 109 à 1011 cellules entières tuées de la souche ATCC   N"    31124, par voie parentérale, à la truie gravide, au moins   14j    avant que la truie ne mette bas. Suivant un procédé préféré, on administre 2 à 3 doses du vaccin à la truie gravide à des intervalles non inférieurs à 5 j entre les doses.



  A titre d'exemple, on peut prévoir 2 injections du vaccin, respectivement environ   28j    et environ   14j    avant que la truie ne mette bas.



   Des procédés de mise en oeuvre de la présente invention sont plus particulièrement illustrés encore par les exemples suivants:   Exenipie 1:   
 On peut produire des bactérins utilisables dans la mise en oeuvre de la présente invention par le procédé suivant:
 1. On retire une souche D-l (ATCC   N"    31124) lyophilisée, d'une conservation à   20    C et on soumet à incubation pendant la nuit à 37 C dans du TPB (bouillon de tryptose phosphate).



   2. On transfère la culture dans le TPB dans une quantité désirée de TPB se trouvant dans un récipient approprié.



   3. On procède à une incubation aérobie pendant 24-48 h.



   4. On vérifie la pureté et on détermine les unités de formation de colonies sur de la gélose à 5% de sang de cheval.



   5. On ajoute du formaldéhyde en solution à 37% (J.T. Baker,
Phillipsburg, N.J., Etats-Unis d'Amérique) jusqu'à une concentration finale de formaline de 1/1000 et on mélange convenablement.



   6. On procède à incubation pendant la nuit à la température ambiante, on mélange convenablement, puis on inactive et on vérifie la stérilité sur de la gélose à 5% de sang de cheval.



   7. On conserve à 4 C.



     Eremple    2:
 On peut préparer de la façon suivante des adjuvants appropriés pour la mise en oeuvre de la présente invention:
 Adjuvant   d'hy dr onde    d'aluminium
 1. On mélange une quantité appropriée d'un gel comprimé d'hydroxyde d'aluminium, par exemple 384 g, contenant environ 9,5% de   A12O3,    avec de l'eau désionisée en quantités variables pour donner une solution finale à 20% d'hydroxyde d'aluminium.



   2. La solution finale donnera environ 2%   d'AkO3.   



   3. On échantillonne en autoclave.



   4. On conserve à la température ambiante.



   Adjuvant d'huile d'arachide
 1. L'adjuvant est composé de 85,0% d'huile d'arachide, de 10,6% de mono-oléate de mannide (Arlacel A), et de 4,4% de monostéarate d'aluminium.



   2. On mélange une quantité appropriée de chaque ingrédient dans les proportions précédentes, dans un récipient approprié, sur un dispositif d'agitation et de chauffage.



   3. On élève la température à raison de   4    C/mn jusqu'à   120    C.



   4. On agite constamment le mélange avec une baguette de verre durant le chauffage.



   5. On répartit la matière homogène dans des bouteilles de couleur ambre et on traite à l'autoclave.



   6. On conserve à la température ambiante.



   Cet adjuvant est appelé Adjuvant 65 et peut s'obtenir de la société Merck  & Co., Inc., Rahway, N.J., Etats-Unis d'Amérique (voir le brevet des Etats-Unis d'Amérique N  3149036).



     E.remple    3:
 Des procédés appropriés de préparation de vaccins en utilisant les adjuvants de l'exemple 2 sont développés ci-après.



      Préporation 'l'un i'a:cin Oi.CC un a±ljui'oiit (I 'hi 'hox3(Ie 'l'ahnnhiiu,ii   
 1. Des volumes égaux de l'adjuvant d'hydroxyde d'aluminium
 (solution à 20%) et de la culture en bouillon de la souche D-l
 dans du TPB à l'état inactivé sont convenablement mélangés dans
 un récipient approprié pour former le vaccin complet.



   2. Ce vaccin contient environ   1%      d'Al2O3.   



   3. La concentration finale du vaccin comporte environ
 1010) cellules par ml.



   4. On conserve le vaccin à 4 C jusqu'à son utilisation dans
 des ampoules de verre bouchées, d'une contenance de 100 ml,
 comportant un bouchon de caoutchouc.



   5. Pour l'administration à des porcelets, on utilise 2   ml    du
 vaccin par voie sous-cutanée.



      Préparation d'un vaccin alyec un adjuvant d 'l7uile c/'al d'ai.achùie   
 1. Des volumes égaux de l'adjuvant d'huile d'arachide et de la culture en bouillon de la souche D-l dans du TPB à l'état inactivé sont émulsionnés convenablement pour former le vaccin complet.



   2. La concentration finale du vaccin comporte environ   10111    cellules   par ml.   



   3. On conserve le vaccin à   4    Cjusqu'à son utilisation, dans des ampoules en verre fermées, d'une contenance de 100 ml, comportant des bouchons de caoutchouc.



   5. Pour l'administration à des porcelets, on utilise 2 ml du vaccin par voie sous-cutanée.



     Exemple    4:
 Un procédé préféré de vaccination pour les porcelets est le sui
 vant:
 1. On administre une dose de 2 ml de   l'un    ou l'autre des vaccins de l'exemple 3 à chaque porcelet à l'âge de 1 semaine et à l'âge de 4 semaines.



   2. Ce vaccin est injecté par voie sous-cutanée.



   Exemple 5:
 Un procédé préféré de vaccination pour les truies avant que
 celles-ci mettent bas est le suivant:
 1. On administre une dose de 2 ml de   l'un    ou l'autre des vac
 cins de l'exemple 3 à chaque truie respectivement 4 semaines et
 2 semaines avant qu'elle mette bas.



   2. Le vaccin est injecté par voie sous-cutanée.



   3. On peut s'attendre à ce que des truies présentant des taux
 élevés d'anticorps humoraux contre le Bordetella bronchiseptica
 transfèrent des taux élevés de ces anticorps anti-Bordetella bron
 chiseptica par l'intermédiaire du colostrum aux porcelets sujets à
 une telle infection.



   En résumé, pour protéger les porcs contre le développement
 de l'atrophie turbinée associée à une infection due au Bordetella
 bronchiseptica, on administre par voie parentérale à ces porcs, à
 l'âge de 2 à 56 j, au moins une dose d'un vaccin contenant de 109 à
 1011 cellules entières tuées de la souche de   Bordetella      hronchisep-   
 tica, identifiée par ATCC N  31124. Cette dose pourra contenir par exemple 5 à 15 x   109    cellules de la souche susdite. On admi
 nistre cette dose deux à trois fois à des intervalles non inférieurs à
 5 j. 

  Pour protéger les produits d'une truie gravide contre le déve
 loppement de l'atrophie turbinée associée à une infection due au
 Bordetella   bronchiseptîca,    on administre par voie parentérale à la
 truie gravide, au moins 14 j avant que cette truie mette bas, au
 moins une dose d'un vaccin comprenant de 109 à 1011 cellules
 entières tuées de la souche ATCC N  31124 de   Bordetella    hronchiseprica. On administre de préférence deux ou trois doses de ce
 vaccin aux truies gravides en prévoyant des intervalles non infé
 rieurs à 5 j entre les doses. 

Claims (1)

  1. REVENDICATION
    Procédé de préparation d'un vaccin destiné à protéger des animaux contre une infection par le Bordctello blonchisel7tica, carac térisé en ce qu'on cultive la souche de Bonietella bronchiseptica identifiée par ATCC N 31124, on tue les cellules cultivées sans rupture des parois cellulaires, et on prépare, au départ des cellules tuées, un vaccin sous forme d'une dose injectable par voie parentérale, contenant 109 à 1011 cellules par ml.
    SOUS-REVENDICATIONS I. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce que les cellules récoltées sont mélangées avec un adjuvant absorbable, injectable, convenant pour l'administration parentérale à des animaux de boucherie.
    2. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce que les cellules récoltées sont préparées sous forme d'une dose contenant de 5 à 15 x 109 cellules.
    3. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce que les cellules récoltées sont mélangées avec un adjuvant absorbable, injectable, convenant pour l'administration parentérale à des animaux de boucherie, et on prépare ce mélange sous forme de doses individuelles contenant de 5 à 15 x 109 cellules dans un volume total de 0,8 à 2,5 ml.
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