BE680242A - - Google Patents

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BE680242A
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amyloglucosidase
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transglucosidase
sep
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2408Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2411Amylases
    • C12N9/2428Glucan 1,4-alpha-glucosidase (3.2.1.3), i.e. glucoamylase

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Description


   <Desc/Clms Page number 1> 
 



  "Purification de   l'amyloglucosidase"   
La présente invention se rapporte à un procédé de purification de   l'amyloglucosidase.   Elle concerne plus particulièrement l'utilisation de matières d'échan- ge d'ions cationiques pour enlever de l'amyloglucosidase la transglucosidase qui constitue une impureté. 



     L'amyloglucosidase,   enzyme qui a été 'également dénommée glucamylase, enzyme glucogène, glucogénase de 
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 l'amidon, gamma-amylase et alpha-'1.4-glucan-glucohydrase, est une matière bien connue qui catalyse l'hydrolyse de l'amidon, des dextrines ou du maltose en dextrose. Cette 

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 enzyme parait faciliter la formation de dextrose direc- tement à partir   de,l'amidon   sans formation de produits intermédiaires comme des sucres supérieurs et des dex- trines solubles- Cette enzyme est également capable de catalyser l'hydrolyse des produits intermédiaires de l'hydrolyse de l'amidon en dextrose. 



     L'amyloglucosidase   est comme on le sait préparée par des procédés de fermentation utilisant certaines souches de mycètes appartenant au genre Aspergillus nier et certaine? souches de l'espèce Rhizopus. Des mycètes illustratifs sont ceux des espèces Aspergillus niger,   Aspergillus     oryzae,   Rhizopus delemar, Aspergillus phosnicis, etc. 



   Les souches cryptogamiques productrices d'amylo- glucosidase sont éGalement connues pour produire d'au- tres enzymes comme la transglucosidase. la transgluco- sidase facilite la formation, en particulier à partir du maltose et du glucose, d'hydrates de carbone non-fermen- tescibles. En présence de transglucosidase comme   impu-   reté dans l'amyloglucosidase utilisée pour hydrolyser l'amidon en dextrose, on obtient des rendements en dex- trose inférieurs à ceux qu'on obtient en l'absence de transglucoisdase. La présence de transglucosidase dans les préparations usuelles d'amyloglucosidase est géné- ralement connue et des travaux considérables ont été effectués pour diminuer et sensiblement supprimer la transglucosidase présente comme impureté dans l'amylo- gluccsidase. 



   Les procédés antérieurs d'enlèvement de la trans- glucosidase de l'amyloglucosidase avaient recours à l'ar- gile, au silicate de magnesium synthétique, à la terre à 

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 foulon et à des matières d'échange d'ions 9,;..8a pour adsorber sélectivement la trangglucsidasCj. Çge procédés comportent en général l'adsorpton (le la tptg-- lité de l'amyloglucosidase et de la transgluSjLda a-yerc élution sélective de l' auylo7.ucos.das$ sous tourne pu- rifiée. Ces procédés d'"adsorption-élutlOZl'I\ s-Q-.1il1i ççw plaxes et ne sont pas complet "ment satiefaîLsts <Q..9 également utilisé la précipitation séeQ-t4,ye.. su. 4 ces procédés antérieurs ,,La purification a'en#,é4y.j 1L.p. totalité de la transglucosidase. Kgaleent Les 9ççl; antérieurs de purification impliquent géneE'ajLen't! use perte d'amyloglosidase. 



  4a présente invention se 'oropose d.9 -ucnix' un procédé simple qui enleva toutes les quantités 44,çç.- lables de transglucosidase de J. J é;u!1ylot51'.cosi9- l- u psi 4'un minimum de perte d' amyl,o;7.ucosidas 
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 Sur le dessin annexé : 
 EMI3.3 
 La fiS. 1 est un schéma de v.eJ1.st4,e 4''. chomata#ramme éleccrophorétique obtenu à -10a;M 41,igrft am7lo6lucosidaee antérieure contenant de la %?Bn4yÀ.v cosidase cammù impureté. 



  La fi;. 2 est un schéma de dwnss%4A 1 chromatagramme Ó1eotrophOl'étique obteJÁ! ù :Va:1.4.e damy3. glucoaidaaa traitée par 10 procédé selon J :111.vEjnt1on, Confor,.iément à 1'invonbion, on met on eonteet une matière d'échange d'ions cationique avec une solu- tien d'amylolucosidase contenant de la bPanoglvoosidaeo comme impureté pour adsorbar sélectivement In tr,,aneZlu- cosidase sur la matière d'échange cationique sans a4- sorber une quantité appréciable quelconque d'amylogiMo". sidase, Ceci aleffuctue commodément par le procédé simple 

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 EMI4.1 
 Qaatat à fa ira aoulev une o:ut,o agwç*** daa,m'. 



  .0.upca3.da eonfenant de la traual,ascadae titre çlimpul,QV46 à %pqV4os un lit 4e!matir c1 y:hc d'ion% gatiptniqu 9t # pebirer la S01VtPR t6auy1¯qupd .. a1p,;\, uiis .u lit# La tra.sgl'.lcosj,da$ J?'&ste daze lQ lit. On Peut .égaiement :tnt:'Qd\Ú.e une noe%1é+e d\é,.., Qhango â'iQua cationique dans une solution da,..ait. 



  Qe5iÔaço, a l' 1aiaa jusqu'à ce que la trasgluetda ne a9J,t absorbée, puis séparer la at1èr0 ça%ioniqqe oataMit la tranagluoCa1daije Ç!. 1 'am:log:\,'Iços:i.dasQ, QQ pilocàaé #nlôV9 toutes les quantitéa décelables de tra luQ8tda prate à t.tra bimpuret3 de 'am11081ea. 



  ,9J.çleno au pniy d'un fiiinll-û4m de perte da celle-ci, Le PrQnêdd selon l'intention es proppe à la pQ 1ìçation da l!amylaluooaida3 sous ;ia¯raaa tQn4oa, 11 peut 4t:pQ eque fpyae dos oultupaa et bouillana dq ermantabin entie8 aqueux Qorüa..11 peut t9 aoua famo de nibiôow aeoh9 qui Qat alors dissoute dans des milieux aqueux pour dtru 1118ê Juns lu présent PvQeè. da. La 09nO@nto.'t10n d .' amr.lucoa.d,ea dana la 1301u- tion aqueuse n'oot pas Qr1tiUQ. Corme on 1Q sait les solutions étuneves Qx1ent 10 traitomont du grandes quantités de matière liquido à traiter pour puoeifior une quantité donnée d.'sm;yloe;luoo:1dt\f\o, Des solutions plus oonoontreea permettant de purifior une quantité donnée d'amyloelucoaidaao au prix de moine d'effort et en un 
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 temps plue court. 
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  Les matières cationiques d'ôchanga d'ions pro. prao au procédé nouveau sont do préf6vonce nous tome 
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 solide. Los formes solides, comme les résines solides, 

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 sont préférables étant donné qu'elles fournissent une phase séparée et sont   faciles à   séparer des solutions purifiées d'amyloglucosidase. Ces matières solides sont utilisées sous forme granulaire d'une dimension appro- priée pour qu'elles ne créent pas de résistance subs- tantielle à l'écoulement d'un fluide dans un lit garni de matières. Ces condidérations technologiques sont bien connues. Les matières cationiques d'échange d'ions sont bien connues et se trouvent dans le commerce selon diver- ses sources.

   Ainsi des matières types acides d'échange de cations et leur préparation sont décrites par exemple dans les brevets des Etats-Unis d'Ämérique n  2.340.110 du 25 Janvier   1944 ;     2.366.007   du 26 Décembre   1944   et 
2.681.320 du 15 Juin 1954. Ces matières peuvent par exem- ple consister en un polymère de styrène-divinyl-benzène contenant des sites actifs d'échange d'ions. On peut également utiliser d'autres matières comme des résines de phénol-formaldéhyde, du polystyrène et des dérivés de houille contenant des sites actifs appropriés. Dans les matières fortement acides d'échange de cations les + sites actifs sont généralement des groupes acide   sulo-   sites nique.

   Dans les matières d'échange de cations moyenne- c ment acides les actifs sont généralement des groupes acide phosphorique. Dans les matières d'échange de ca- tions faiblement acides les sites actifs sont généra- lement des groupes acides carboxyliques. On peut éga- lement utiliser des sels des groupes acides ci-dessus, tels que ceux de sodium et de potassium, comme sites actifs dans les matières cationiques d'échange d'ions. 



   D'autres matières cationiques d'échange d'ions utiles 

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 dans l'invention sont la cirboxymét'iyl-oellulose et le phosphate de cellulose décrit dans T. Am. Chem. Soc. 78,   751-755   (1956). 



   Des matières d'échange de cations fortement acides utiles dans l'invention sont vendues sous les noms déposés suivants par les fabricants. 
 EMI6.2 
 



  Groupe actif ,¯,¯ I'ora Fabricant 
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<tb> Sulfonique <SEP> Dowex <SEP> 50w-x-8 <SEP> Dow <SEP> Chemical <SEP> Co
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<tb> 
<tb> Sulfonique <SEP> Amberlite <SEP> 200 <SEP> Rohm <SEP> and <SEP> Haas <SEP> Co
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<tb> Sulfonique <SEP> Amberlite <SEP> IR-120 <SEP> Rohm <SEP> and <SEP> Haas <SEP> Co
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<tb> Sulfonique <SEP> Perutit <SEP> Q <SEP> The <SEP> Parmutit <SEP> Co
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<tb> @ <SEP> Sulfonique <SEP> Zeo-Karb <SEP> The <SEP> Pormutit <SEP> Co
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<tb> ;

   <SEP> Sulfonique <SEP> lialcita <SEP> HCR <SEP> National <SEP> Aluminate <SEP> Co
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<tb> Sulfonique <SEP> Nalcite <SEP> HGR <SEP> National <SEP> Aluminate <SEP> Co
<tb> 
 
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 1 --SulfoniQua-- Naicita HDR National Aluminate 
Des matières d'échange de cations moyennement acides utiles dans l'invention sont vendues sous les noms déposés suivants par le fabricant indiqué. 
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  Gre actif - - . Hom déposé Fabricant 1 Phos'Phor¯iQ..W..-.. Duc:Lite C-6Z"" Chemical Process 00 
Des résines d'échange de cations faiblement acides propres à la présente invention sont vendues sous les noms déposés suivants par les fabricants indiqués. 
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<tb> Groupe <SEP> actif <SEP> Nom <SEP> déposé <SEP> Fabricant
<tb> 
<tb> 
<tb> Carboxylique <SEP> Amberlite <SEP> IRC-50 <SEP> Rohm <SEP> and <SEP> Haas <SEP> Co
<tb> 
<tb> 
<tb> 
<tb> 
<tb> Carboxylique <SEP> $Permutit <SEP> H-70 <SEP> The <SEP> Permutit <SEP> co
<tb> 
 les matières cationiques d'échange   d'ions   doivent! être convenablement purifiées et mises sous la forme active désirée avant d'être utilisées dans le présent procédé.

   Les matières, qui sont vendues sous la 

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 forme acide libre, sont laissées en contact avec de l'eau distillée ou désionisée à la température ambiante pandant plusieurs heures pour enlever toute couleur ou autre.matière susceptible de lixiviation. La matière est alors lavée à plusieurs reprises à l'eau distillée, .filtrée et utilisée. Si on désire que la matière ait un pH acide particulier, on la traite uu moyen d'un acide comme l'acide chlorhydrique quis on la   lave à   l'eau distillée jusqu'à obtention du pH désiré. On utilise alors la matière cationique.

   Les matières qui sont four- nies sous forme salifiée, comme le sel de sodium de la matière d'échange d'ions acide   sulfonique,   sont égale- ment lavées à l'eau distillée pour enlever la couleur ou autre matière susceptible d.e lixiviation et sont ensuite traitées au moyen d'une base comme l'hydroxyde de sodium et lavées à l'eau jusqu'à'obtention du pH désiré pour la matière cationique. -telles sont alors utilisées dans le procédé selon   l'invention.   



   A mesure que la matière cationique d'échange d'ions purifie l'amyloglucosidase elle se charge en transglucosidase et le nombre de sites actifs utiles diminue. Elle doit alors être pour être ultérieurement utilisée. Les formes acides libres des   matières   cationiques d' échange   d'ions   sont généralement régénérées par traitement à l'aide d'un acide tel que l'acide chlorhydrique puis lavage pour enlever la transglucosidase. La matière est alors réglée à un pH approprié comme décrit ci-dessus puis ré-utilisée.

   Les formes salifiées des matières cationiques d'échange d'ions sont généralement régénérées par traitement à 

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 l'aide d'une base comme l'hydroxyde de sodium puis lavage pour enlever les   impuretés.   La matière est alors réglée au pH approprié comme on l'a dit et   ré-utilisée.   



  Les matières cationiques d'échange dions convenablement régénérées comme il est connu en technologie peuvent être ré-utilisées in éfiniment étant donné qu'elles ne sont pas   détruites   au cours du procédé d'enlèvement de la   transglucosidas   constituant une impureté de l'amylogrucosidase. 



   La capacité des matières cationiques d'échange d'ions pour l'enlèvement de la transglucosidase de l'amyloglu cosidase varie avec chaque matière particu- lière. Elle peut être déterminée   expérimentalement   pour chaque matière selon les procédés connus. 



   Les conditions opératoires dans la mise en oeuvre de l'invention na sont pas très critiques. On peut utiliser des températures d'environ 0 à 60 C. Aux températures inférieures à 0 C les solutions d'amylo- glucidase ont tendance à se   congeler.   Aux températures supérieures à 60 C l'amyloglucosidase est désactivée. On utilise de préférence des températures d'environ 20 à 30 C. Le procédé peut également être effectué à des va- leurs de pH de 3,5 à 9,5 environ. Il est préférable d'opérer sous la prussien atmosphérique mais on peut éventuellement opérer à des pressions inférieures ou su- périeures sans que celà présente d'avantages sensibles. 



  La durée de contact entre la solution d'anyloglucosidase et la matière cationique d'échange d'ions est régie par le temps que met la solution d'amyloglucosidase à passer à travers le lit de matière cationique d'échange d'ions granulée. Ces   durées   de réaction ne sont pas critiques 

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 dans le procédé. 



   Le   procède   solon l'invention enlève la trans- glucosidase de l'amyloglucosidase avec un minimum de perte de celle-ci. Il existe des procédés pour détermi- ner la teneur en amyloglucosidase (définie en unités d'activité par m1) de la matière de départ et de la ma- tière purifiée pour   évaluer   la récupération de l'amylo- glucosidase.   L'enlèvement   de la transglucosidase est déterminé en soumettant à l'incubation une solution de maltose avec l'amyloglucosidase purifiée par le présent procédé et en mesurant l'activité optique (pouvoir   rotatoire)   du produit   ainsi   obtenu.

   On compare alors ce pouvoir rotatoire spécifique avec le pouvoir rotatoire spécifique obtenu en soumettant à l'incubation une solution de maltose avec de   l'amyloglucosidase   n'ayant pas été purifiée par le présent procédé. Le pouvoir   rotatoiru   est, dans cas de la matière purifiée, plus faible que celui de la manière non-purifiée. Le pouvoir rotatoire spécifique d'un échantillon quelconque donné est d'autant plus   ,:levé   qu3 sa teneur on transglucosidase est grande. 



   Voici ces procédés de détermination. 



  Activité de l'amyloglycosidase 
On prépare une solution aqueuse contenant 4,0 g d'amidon soluble (en   produit   sec) et 5,6 ml de tampon acétate 1,1 M, pH 4,2 pour 100 ml. On met à l'aide d'une pipette exactement 50 ml de solution d'amidon tamponné dans une fiole volumétrique de 100 ml et on équilibre dans un bain d'eau à 60 C pendant quinze minutas. On ajoute alors   1,0   ml de solution d'enzyme convenablement 

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 diluée pour qu'il se produise 20 à 30 % d'hydrolyse au cours de la période d'incubation et on mélange. Au bout de soixante minutes exactement d'incubation dans le bain d'eau à 60 C on ajoute de l'hydroxyde de sodium 2 N   jusqu'à   virage au rose de la phénolphtaléino.

   On refroi- dit alors la solution à la température ambiante et on amène au volume à l'aida d'oau distillée. On détermine les sucres réducteurs, calculés en dextrose, sur un échantillon dilué et une solution témoin traitée de la même manière mais sans addition d'enzyme par les   procê-   dés de Schoorl ou des méthodes similaires. L'activité d'amyloglucosidase est calculée par la formule 
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 dans laquelle A est l'activité d'amyloglucosidase en unités par ml de préparation d'enzyme,S désigne les sucras réducteurs présents dans l'échantillon traité par   l'enzyme   en   grammes   pour 100 ml d'échantillon dilué, B désigne los sucres réducteurs en g/100 ml d'échantil- lon dilué témoin et E est la quantité d'enzyme utilisée en   ml/100   ml d'échantillon dilué. 



  Activité   de la   transglucosidase 
On prépare uno solution de maltose en dissol- vant   100   g de maltose chimiquement pur dans de l'eau dis- tillée et on étend à 500 m1. On place alors une portion de 50 ml de cette solution de maltoso à 20 % pds./vol dans une fiole   volumétriquo   de 100 ml et on étend à   100   ml au moyen d'oau distillée. On ajoute dans le ballon 5 ml de tampon scétate 1,0 M, pH 4. Après le   mélangea   on ajoute une quantité de préparation enzymique contenant 5 unités   d'amyloglucosidase.   On place le ballon dans un 

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 bain d'eau à 60 C et on l'y maintient pendant quarante- huit heures.

   A la fin de cette période d'incubation on mesura le pouvoir rotatoire de la solution de sucre par les techniques bien connues. L'activité ou le contenu de la transglucosidase de la préparation d'enzyme essayée est d'autant plus grande que le pouvoir rotatoire mesuré à 25 C   ([alpha]25D)   est   élJvé.   



   Les exemples suivants illustrent la présente invention. 



  EXEMPLE 1 
On place 50 ml de la résine cationique d'échan- ge d'ions dite Duolite 0-65 sous forme acide phosphori- que libre dans un tube vertical en verre de 2 cm de dia- mètre intérieur. La matière cationique est sur support usuel. On la lave à pH 4,5. On fait passer un échantillon de 930 ml d'une solution aqueuse d'amyloglucosidase contenant de la transglucosidase à titre d'impureté par gravité, à la température ambiante, dans le lit d'échan- ge d'ions et on recueille vingt-et-une fractions d'envi- ron 45 ml chaque. La solution   d'amyloglucosidase   prove- nait d'une   fermentation   d'une bouillie aqueuse de mais obtenue à l'aide   d'une   souche d'Aspergillus   ni--en.   On utilisa le filtrat provenant de cette fermentation. 



  L'analyse de   portion:*:   aliquotes des solutions traitée et non-traitée d'amyloglucosidaso indique une récupération de 91,34   %   de l'activité d'amyloglucosidase dans le pro- duit purifié. L'activité de la transglucosidase est me- surée sur la matière de départ non-traitée et sur chacune dos vingt-et-une fractions de produit- Le pouvoir rota- toire spécifique   [alpha]25D   est de 55,4. Cette réduction signi- ficative du pouvoir rotatoire du produit indique un enlè- 

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 vement substantiel de la transglucosidase constituant l'impureté. 



   La purification est indiquée d'une autre ma- nière. On soumet des échantillons d'amyloglucosidase non- traités et purifiés à l'électrophorèse sur papier à 250 volts pendant doux heures à un courant de il,6 milliam- père/cm de large, en présence d'un tampon de véronal à pH   9,6   et d'une concentration ionique de Gel. Les dia- grammes de densités sont alors dressés à l'aide des chromatogrammes   d'lectrophorèse.   La fig.   1   montre le diagramme de densité obtenu à l'aide de la matière non- traitée. La quantité relative de protéine (enzyme) présente en un lieu donné est rapportée à la position le long du chromatogramme sur papier.

   La position 0 mar- quée sur l'axe des abscisses indique le point d'insertion du mélange soumis à   l'électrophorèse*   La courbe à gauche de la position 0 montre la migration des constituants du mélange sous   l'influence   du champ électrique. La pré- sence de la transglucosidase est indiquée par la hauteur da la courbe à la position   10.   L'amyloglucosidase est indiquée à la position 12. La figé 2 montre le diagramme des densités obtenu à l'aide de la matière purifiée.

   Il n'y a pas de transglucosidase décelable et la portion d'amyloglucosidase de la courbe est   sensiblement   identi- que à celle de la fig. 1, ce qui indique un minimum de changement d'activité d'amyloglucosidase EXEMPLE 2 
On place dans un tubu vertical on verre de 4 cm do diamètre intérieur une portion de 500 ml de la matière   caticnique   d'échange d'ions dite Amberlite sous forme acide   sulfonique   libre. On lave cette matière jusqu'à un 

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 pH de   4,5.   On fait passer un sens descendant une portion de 6500 ml de solution aqueuse d'amyloglucosidase pré-   parée   comme dans l'exemple 1 dans le lit   do   résinu d'é- change d'ions et on recueille des fractions de 250 ml. 



   La récupération de d'amyloglucosidase est de 93,5 %. 



   L'activité de la transglucosidase dans la matière pre- mière est indiquée par un pouvoir rotatoire de 55,5. Le pouvoir rotatoire moyen pour les fractions   1   à   12   est de 54,6, ce qui indique un enlèvement   significatif   de la transglucosidase par le traitement d'échange d'ions. 



   La matière cationique complètement chargée après la   fraction   12 est recueillie et les fractions subséquentes   + et   ont la   même   activité de transglucosidase que la matière C première. On évapore le liquide dos fractions   1   à   12   (3000   ml)+on   les concentre à 600 ml. Le concentré con- tient 25 unitésd'amyloglucosidase par ml pour une ré-   cupération   totale au cours de la concentration de 97,2 %. 



   Le pouvoir rotatoire spécifique est de 54,2, ce qui indique que, même sous une forme concentrée, l'activité de la transglucosidase est sensiblement inférieure à celle do la solution originale d'enzyme avant la traitement par échange d'ions. 



   EXEMPLE 3 
On place dans un tube en verre vertical de 4 cm de diamètre intérieur une portion de 500 ml d'Amberlite 
IRC 50 résina cationique d'échange d'ions sous la forme acide carboxylique libre et on la lave à pH 4,3. On y fait passer une portion de 6500 ml de solution aqueuse d'amyloglucosidase préparée comme dans l'exemple   1   et on recueille des fractions de 250 ml. La récupération de   l'amyloglucosidase   est de   100   %. Le pouvoir rotatoire 

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 de la matière de départ est de 56,5 alors que le pouvoir rotatoire moyen de fractions du produit est de   54,4,   ce qui indique un enlèvement substantiel de la transgluco- sidase. On concentre à 700 ml une portion do 4200 ml du produit   purifie.

   Le   concentré possède un pouvoir rota- toira de 34,5 qui est très inférieur à celui de la solu- tion originale d'enzyme avant la traitement pir échange d'ions. La récupération de l'amploglucosidase au cours de la concentration est de   100   %. 



    ±LE- 4,!PU   4 
On place dans un tube en verre vertical de 2 cm de diamètre intérieur une portion de 100 ml de la matière cationique d'échange d'ions sous la forme acide sulfoni- que libre dite Amberlite 200 et on   lavo   a pH 5. On fait passer dans le lit une portion de 500 ml de solution aqueuse d'amploglucosidase préparée comme dans l'exemple   1   et on recueille   lies   fractions de   14   ml. La récupération de l'amploglucosidase cet de 93,5   %.   Le pouvoir rotatoire de la matière de départ est de 55,1 alors que le pouvoir rotatoire moyen des fractions de produit est de 53,5, ce qui indique une élimination substantielle de la   transglucosidase.   



  EXEMPLE 5 
On place dans un tuba en verre vertical de 2 cm de diamètre intérieur   unu   portion de   100   ml de la matière   catLonique     d'échange   d'ions dite Amberlite IRC 50 sous la forme de sel de sodium et on lave à pH   7,5.   On fait passer dans le lit une portion de 600 ml de solution   aqueusa     d'amyloglucosidase   préparée comme dans l'exemple   1   et on recueille des fractions de 20 ml.

   La récupération 

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 de   l'amyloglucosidase   est de 92,3   %.   Le pouvoir rotatoi- re do la matière de départ est de 55.4 alors que celui des iroctions 1 a 20 inclus est en Moyenne de 54,3, ce .ui indique un   enlevaient   substantiel de la transgluco- sidase. 



  EXEMPLE 6 
On place   d: ns   un tube ep   vrre   vertical de 2 cm de diamètre intérieur un3 portion de 100 ml de la ma- tière cationique   ;,'échange     d'ions   dite Amberlite 200 sous la forme de sel de sodium. On feit passer dans le lit une portion de 500 ml de solution aqueuse d'amylo- glucosidase   préparée   comme dans l'exemple   1   et on re- cueille trente-cinq frétions de 14 ml. La récupération de   l'amyloglucosidase   est d'environ 92 %. Le pouvoir rotatoire de la matière première est de 55,5 alors que le pouvoir rotatoire moyen des fractions   1   à   10   inclus de produit est de 54,4, de qui   indiqua,   un enlè- vement substantiel de la transglucosidase.

   La matière   d'échange   d'ions est saturée de trangsglucosidase après collectage de la fraction   10.   Le mouvoir rotatoire moyen des fractions 11 à 35 inclus est c.e 55,3, le même que celui de la matière de départ, ce qui indique qu'il n'y a pas eu   d'enlèvement   de transglucosidase de ces fractions. 



  EXEMPLE 7 
On place une portion de 50 ml de la matière catio- nique d'échange d'ions dite Duolite C-35 sous la forme de sel de sodium dans un tube de verre vertical de 2 cm de diamètre intérieur et on lave à   pH   7,5. On fait pas- ser   :ne   portion de 369 ml Ce solution aqueuse d'amylo- glucosidase proparée comme dans l'exemple   1   dans le lit et on recueille des fractions de 43 ml. La récupération 

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 de l'amyloglucosidase est de 95 %. Le pouvoir rota- toire de la matière originale est de 55,8 alors que le pouvoir rotatoire des fractions de produit est de 54,35, ce qui indique un enlèvement substantiel de la transglucosidase. 



   La technologie antérieure avait proposé l'usage de matières anioniques d'échange d'ions pour enlever la transglucosidase de l'amyloglucosidase. L'exemple suivant décrit l'utilisation de ces matières anioniques d'échange   d'ions.   



  EXEMPLE 8 
On place   100   ml de la matière anionique d'échange d'ions dite   Duolite   A-2 (vendue par la Chemical Pro- cess Company et contenant des groupes actifs phosphate) dans un tube en verre vertical de 2 cm de diamètre intérieur et on lave à pH 6,3. On fait passer une por- tion de 485 ml de solution aqueuse l'amyloglucosidase préparée comme dans l'exemple 1 dans le lit et on recueille des fractions de 50 ml. On lave la colonne au moyen d'eau distillée de manière à obtenir un volume total d'effluent de 550 ml. La récupération de l'amylo- glucosidase est de 92 %. Le pouvoir rotatoire de la matière originale est de 53,3 alors que le pouvoir rotatoira ues fractions est en moyenne de 55,2. Ainsi il n'y a pas eu d'enlèvement de transglkucosidase par une matière anionique d'échange d'ions utilisée de cette manière. 



   -En resumé, la présente invention se rapporte à l'utilisation d'une matière cationique d'échange d'ions pour enlever sélectivement la totalité de la transglu- cosidase constituant une impureté d'une solution d'amy- 

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 loglucosidase sans perte appréciable ou   adsorp--'   tion d'amyloglucosidase. Cela représente un avantage net sur la technologie antérieurs. La purification est plus complète, la perte d'amyloglucosidase est moindre et le procédé est plus commode étant donné qu'il ne comporta pas d'élution sélective pour la récupération de   l'amylogl   cosidase.

Claims (1)

  1. R E S U M E Procédé de purificetion de l'amyloglucosidase, caractérisé par les pointu suivants, séparément ou en combinaisons : 1 ) on met en contact une. matière cationique d'échange d'ions avec une solution d'amyloglucosidase contenant à titre d'impureté de la transglucosidase pour absorber sélectivement la transglucosidase sur la matière cationique ..'échange d'ions sans adsorption d'une quantité appréciable quelconque d'amyloglucosi- dase ; 2 ) la mise en contact est effectuée en faisant passer une solution aqueuse d'amyloglucosidase à travers un lit l'une ratière cationique d'échange d'ions qui adsorbe sélectivement la transglucosidase, et la solu- tion d'amyloglucosidase purifiée est recueillie séparé- ment ; 3 ) la matière cationique d'échange d'ions est sous la forme acide libre ;
    4 ) la matière cationique d'échange d'ions est sous la forme salifiée ; 5 ) l'opération d'adsorption sélective de la trans- <Desc/Clms Page number 18> glucosidase par la matière cationiqu d'échange d'ions est répétée jusqu'à ce que celle-ci obit sensiblement saturée, et elle est ensuite soumise ' une réGénéra- tion pour enlever la transglucosidase dsorbe et est ensuite ré-utilisée dans une nouvelle opération de purification d'amyloglucosidase.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0127291A1 (fr) * 1983-05-20 1984-12-05 Miller Brewing Company Procédé pour la préparation de sirops de glucose ou de maltose au moyen d'un enzyme isolé à partir du riz

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0127291A1 (fr) * 1983-05-20 1984-12-05 Miller Brewing Company Procédé pour la préparation de sirops de glucose ou de maltose au moyen d'un enzyme isolé à partir du riz

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