<Desc/Clms Page number 1>
On sait qu'on peut oxygéner ou déshydrogéner des stéroïdes présentant une configuration naturelle, à l'aide de microorganismes, c'est-à-dire introduire des hydroxyles ou des groupes oxo ou des doubles liaisons, ou transformer des hydroxyles en groupes oxo. Or, la demanderesse a fait - l'observation surprenante que les d,#-stéroïdes se comportent différemment vis-à-vis de ces microorganismes, pratiquement
<Desc/Clms Page number 2>
seule la forme d, c'est-à-dire la forme énantiomorphe correspondant aux stéroïdes naturels, étant oxydée, alors que la formel reste inchangée.
Cette constatation a donc conduit à un nouveau procédé de scission de racémates qui permet d'ob- tenir, à côté des d-stéroïdes oxydés, les #-stéroïdes qui, jusqu'à présent, n'avaient été rencontrés que dans de rares cas.
Ce nouveau procédé est caractérisé par le fait qu'on fait agir des enzymes oxydantes produites à l'aide de cultures aérobies de microorganismes, sur des d,#-stéroïdes, et qu'on isole au moins l'une des formes énantiomorphes. Des enzymes oxydantes sont celles qui sont capables soit d'introduire de l'oxygène dans la molécule de stéroïde, soit d'en enlever de l'hydrogène.
Des substances de départ pour le nouveau procédé sont en général des d,#-stéroïdes saturés et non saturés, portant des substituants quelconques, par exemple des d,#-composés des séries du cholestane, du coprostane, du cholane, du spirostane, d furostane, du bufanolide, du cardanolide, de l'oestrane, notamment ceux de la série du prégnane, de l'androstane et du testane, ainsi que leurs homologues supérieurs et inférieurs, par exemple les A-nor, D-homo, et 19-nor-composés correspondants Des doubles liaisons se trouvent par exemple en position 1 et/ou 4, 5, 6, 7, 9, 11, 14, 15 et/ou 16.
Comme substituants, on envisage en particulier des groupes hydroxyles, oxo ou
<Desc/Clms Page number 3>
EMI3.1
carboxyliques libres ou fonctionnellemont modifiés, par exemple des groupes ester, éther, th')ester, thioéther, thiol-
EMI3.2
et thion-ester, acétal, mercaptal, cétal, hydrazone, semi- carbasone et des groupes énoliques, par exemple en position
EMI3.3
2, 3, 6, 7, 11, 12, 16, 17, 18, 19, 20 et 21, ainsi que des
EMI3.4
atomes d'halogène, en particulier de chlore ou de fluor, par exemple en position 9 et 17.
Il est particulièrement intéres- sant de mettre en oeuvre ce nouveau procédé dans le cas de
EMI3.5
composés d1?-prégnanlqueso Des substances de départ spécifiques de cette série sont, entre autres, la d, /-progestérone, la d$'?e- 17a-progestérone, la d,-l6a-hydrosy -progestérone, la d,t:-17a- hydroxyprogesté3*on, la d,-e-11-oxo-progestêrone, la d,'-lla- ainsi que la d,*113-hydroxy-progeotérone, la d,t-9,11- ou -ll,12-déhydï>o-prosestéroneJ, la d..t-19-o,w-progeetérol'H3, la d,''6'-ll-O3s:o¯17a-h.yd3.'ioxîy¯pï'ogestérone, la d,-I-11a- ainsi que la d..t:11-hYdOXY-17a-hYdroXy-progeatérone, la d,if-9-chloro- ou -9-fluoro-lip,i7a-dîhsrdrosy-progestéron, la dj,f-ll,l8-di- hydrorcy-progestérone, la d,-11,17,18-trlhYdroxy-proggtérone, la d..';
-11-hYàroXY-18-oxo-progestérone, la d..9-chloro- ou -9-fluoro-lip-hydroxy-l8-oxo-progeatérone, la Ci ,-{-Il ,18-dloxo- progestérone, la d,e-19-nor-progeatérone, la d,-19-nor-lip- hydro:ty-l8-oxo-progestérone, la d,C-cortexone, la d,118- hydroxy- et la d,-l8-oso-cort@sone, la d,t-oortîsone, la d,if# hydrocortisone, la d,t-17a;-hyctroxycortéxone, la d,if-aldos- térone, la d,le-prégnénolone, les 1-déhydro-composés corres-
<Desc/Clms Page number 4>
EMI4.1
pondants, par exemple la d, -3-dhydro-progest:one, la d,-;;":l- déhydro-17-a-hydroxy-progestérone, la d, 1--déhyd=o-1-oxo-- proge3téror.e, la d, 1-dhydr o-11-a-hydro:y--p9ogestrone ou la d,1-déhydro-ll-hydroxy-proge6térone, le à,f-androstène- dia, le d,f-l'7-méthyl-androatène-diol, la d,{-déhydro-épi- andro3téror.e, ou leurs dérivés fonctionnels.
Des substances de départ particulièrement importante pour la synthèse de
EMI4.2
l'aldostércne sont, par exemple, la I8 - 11-.actone du d,'-p 3,2C dioo-.1°-hydroy-prgnérie-18-oique, le d ^e¯A4¯ 3,18,20- cr3.oxo-1.-hydroay-prgn:ne ou son 18,11-cyclo-semi- acétal et le d,--& -3,20-dioxo-lll8-dihydroxy-prëgnene. Il y a lieu également d'indiquer les composés correspondants hydroxylés en position 17a.
Le présent procédé est avantageusement mis en oeuvre en faisant agir sur la substance de départ la culture aérobie
EMI4.3
d'un seul microorganisme. Suivant le microorgan1smè utilisé, on obtient, par exemple, le d-stéroïde comportant un hydroxyle en position 6p, 7a, 7P, 8, lia, lip, 14, 15a, 15P, i6a, 17a ou 21, ou comportant une double liaison en position 1,2 et/ou 4,5,
EMI4.4
ou comportant un groupement A 4¯3-cétonîque et/ou 17-cétonique.
On peut toutefois aussi procéder en faisant agir en une phase opératoire plusieurs cultures sur la substance de départe il s'est alors avéré avantageux de faire agir successivement dans le temps les diverses cultures.
Toutes les cultures aérobies de microorganismes qui
<Desc/Clms Page number 5>
EMI5.1
sont capables d'oxyder les stéroldem, c'est-à-dire d'Introduit des hydroxyles ou des doubles liaisons, ou de transformer des hydroxyles en groupes oxo, conviennent pour le présent procédé.
On a indiqué par exemple ci-après quelques catégories qu'on envisage pour le procédé
EMI5.2
Position 6 Trichothecîum roseum Lenzites abietina Rhisopus arrhizus
EMI5.3
G110cladium catenulatum Gliocladium deliquescens Position 70 Curvularia lunata
Curvularia pallescens
EMI5.4
Curvularîa falcata Curvularia fallax
EMI5.5
.Psziza spec.
Position 7 : , Rhisopus arrhisus Proactinomyces rosées Position 8 Curvularia palieseens Pleospora Gaeumanni Helioostylum piriforme
EMI5.6
Position lia ; Rhisopus iiigrîcans Rhiopus arrhizus Aspergillus niger Aspergillus, ochraceus Pénicillium notatum
<Desc/Clms Page number 6>
Pénicillium adametzi Pénicillium janthinellum Mucor mucedo
EMI6.1
Lensites sepiarla Tilletia tritici Neurospora sitophila Neurospora crassa
EMI6.2
Position 119 Curvularia lunata Curvularia pallescens Curvularia fallax Curvularia brachyspora
EMI6.3
Cunnlnghamel1a Blakesleena
Streptomyces fradiae Stigmlna platani Position Il} :
Sclerophoma entoxylina Parasitella simplex Helicostylum piriforme
Mucor griseocyanus
EMI6.4
Mucor parasiticus Position 15[alpha] Gibberella baccata Nectria cinnabarina
EMI6.5
HorModendrium viride Position 15ss : Lenzites abietina Spicaria Position 16[alpha] : Didymella Vodakii
<Desc/Clms Page number 7>
EMI7.1
Actinomycètes A 6246, A 77*6* A 7747. A 7451,
EMI7.2
A 7486 conservés a l'Ecole Polytechnique Fédérale de Zurich
EMI7.3
Position 17a :
Trîchothecîum roseum Cephalothec1um roseum Oucurbitaria laburni Lspthosphaeria maculans Trichoderma lignorum Trichoderma glacum Acrospeira lavis
EMI7.4
Lophotrichua hartînîl Melanospora parasitica Thielavia terricola Dactylium dendroldes
EMI7.5
Position 21 Ophiobolu3 herpotrichus Sclerotinia fruoticola
EMI7.6
Wojnowlela graminia
Hendersonia r'ubi
Hendersonia abietus
Dilophosphora spec.
Phoma hibernica
Septoria aesculi
Aspergillus niger
EMI7.7
,Oéshydrogénatîon en ll' 2: Fusr1um solani Fsar1m cauca.a1cum Calonectria décora Alternaria passiflorae
<Desc/Clms Page number 8>
Ophiobolus heterostrophus Ophiobolus Miyabeanus Didymella lycopersici Corynebacterium simplex
EMI8.1
Bacillus sphaer1cus Baeillus subtilis
EMI8.2
%cobacteries Position 3 et/ou 17 Proactinomyces erythropolis
Proactinomyces aquosus
Proactinomyces restrictus
Proactinomyces roseus
Azotobacter
EMI8.3
94yeobactéries Mlcrococcua dehydrogenans Corynebacterium mediols.num Alca11gerHa faecalis Levure et bactéries oxydantes Pseudomonas
EMI8.4
Flavobac terium
androstenedionleum Plavobacterlum carbonilicum Actinomyces albus Aspergillus niger
EMI8.5
Phycomyces blakesleeanus Pénicillium chrysogenum.
<Desc/Clms Page number 9>
@omme il ressort de la liste ci-dessus, les micro- organismes indiques sont des champignons ou des bactéries et appartiennent par exemple aux classes des phycomycètes, des ascomycétes, des basidiomycètes, des Fungi imperfecti ou des actinomycetes.
Pour la mise en oeuvre du procédé, on peut incuber les substances de départ, dans des conditions aérobies connues en elles -mêmes avec des cultures des microorganismes indiqués.
La croissance a lieu en culture de surface ou, ce qui est techniquement avantageux, en culture immergée, auquel cas on secoue ou agite. Les cultures renferment du carbone assimilable, notamment des hydrates de carbone, ainsi que, le cas échéant, -des substances de croissance, par exemple de l'eau de gonflement du maïs ou du moût de bière, et des sels inorganiques.
On peut par suite utiliser des solutions nutritives naturelles, syn- thétiques ou senti-synthétiques. Un procédé pratiquement très simple sera décrit dans ce qui va suivre sans que l'invention soit limitée pour autant aux indications fourniesOn cultive les organismes dans des appareillages et dans des conditions analogues à. ceux qui sont connus dans la fabrication des antibiotiques sous le nom de procédé de culture immergée.
Après le développement des cultures, on ajoute les substances de départ indiquées à l'état de fine dispersion ou de solution, par exemple dans le méthanol, l'acétone ou l'éthylène-glycol et poursuit l'incubation. Finalement, on sépare le mycélium,
<Desc/Clms Page number 10>
extrait le filtrat et/ou la masse de mycélium et isole de l'extraite d'une manière en elle-même connue, les d-stéroïdes et/ou les #-stéroïdes, par exemple par répartition entre solvants ou mélanges de solvants non miscibles l'un avec l'autre, par adsorption, chromatographie, cristallisation, transformation en dérivés fonctionnels, tels que les composés de Girard et analogues .
On peut aussi effectuer ces mêmes réactions en séparant d'abord les enzymes actives de cultures aérobies convenables des organismes indiqués et en les utillsar à l'exclusion des cultures en croissance. C'est ainsi qu'on peut, par exemple, séparer le mycélium formé à partir de cultures aérobies convenables des organismes indiqués, le mettre en suspension dans de l'eau ou dans des solutions tampons, ajouter à ces suspensions les substances de départ indiquées, puis incuber.
Si plusieurs microorganismes doivent agir en une phase opératoire, on peut alors procéder par exemple comme suit Après développement des cultures du premier organisme, on ajoute les substances de départ indiquées, à l'état de fine dispersion ou de solution, par exemple dans le méthanol, l'acétone ou l'éthylène-glycol, et poursuit l'incubation jusqu'à ce qu'on atteigne la réaction maximum. On ajoute alors au mélange réactionnel, sans filtrer au préalable ni isoler le produit de réaction, une culture développée du second organisme et, si c'est nécessaire, des substances nutritives
<Desc/Clms Page number 11>
et des suba@an@es de croissance appropriées, pais poursuit l'incubation.
Le cas échéant, on répète cette avec un troisième microorganisme. On peut suivre par chromatographie sur papier le déroulement des diverses oxydations.
Les produits du procédé peuvent 'être utilises comme médicaments ou comme produits intermédiaires pour la préparation c'autres produits précieux. Le nouveau procède s'est avéré particulièrement intéressant pour la synthèse de !@aldostérone.
C'est ainsi, par exemple, qu'on obtient en une seule phase, avec un bon rendement, la d-aldostérone, en faisant agir une culture aérobie d'Ophiobolus herpotrichua sur du d,#-#4-3,18,20- trioxo-11ss-hydroxy-prégnène ou sur son 18,11-cyclo-semi-acétal.
Lorsqu'on opère au moyen d'un procédé purement chimique, 7 stadoe environ sont nécessaires pour'cette synthèse en partant du même produit initial.
En général, le dédoublement de racémates suivant ce nouveau procédé est particulièrement simple parse que les dérivés hydroxylés ou déshydrogénés de l'un des antipodes se laissent facilement séparer de l'autre antipode Inchangé, par suite de leur polarité élevée.
Déjà depuis les recherches classiques de Pasteur, on avait, il est vrai, occasionnellement utilisé une méthode micro- biologique pour l'obtention de l'un des antipodes à partir de racémates. On utilisait alors habituellement des champignons ou des bactéries ordinaires qui assimilaient les substances de
<Desc/Clms Page number 12>
départ et qui, notamment, assimilaient l'antipode naturel (d) plus vite que l'antipodes non naturel (±}. Suivant ce procédé, on devait donc, pour obtenir une préparation pure du point de vue optique, traiter par voie microbiologique jusqu'à ce qu'au moins l'une des formes soit complètement détruit, notamment celle qui, la plupart du temps, était la plus intéressante du point de vue biologique.
Au contraire le procédé de la présente invention fournît, même dans le cas d'une réaction qui n'est que partielle, l'antipode modifié, qui, la plupart du temps, représente celui qui est le plus intéres- sant du point de vue biologique, sous une forme optiquement pure, et cela sous la forme d'un dérivé qui est pratiquement précieux en soi ou pour d'autres buts de synthèse, et économise des transformations chimiques. Si l'on transforme complètement l'un des antipodes, suivant ce procédé, l'autre se présente également sous une forme pure du point de vue optique.
La présente invention concerne un procédé permettant de dédoubler des racémates en leurs constituants..
L'invention est décrite plus en détail dans les exemples non limitatifs qui suivent dans lesquels les températures sont indiquées en degrés centigrades.
<Desc/Clms Page number 13>
EMI13.1
E:r.emple 1.
Dans cinq fioles coniques de 500 cm' de capacité, on stérilise dans chacune 120 cm d'une solution aqueuse à
EMI13.2
70% de mocât de "bière et ensemence avec de l'Ophiobolus herpo- tr1c1us. Or agite les fioles à 270. Au bout de 4 jours, et dans des conditions stériles on ajoute à chacune des cultures bien développées, une solution de 30 mg de d j, l<#progestérone dans 1,5 ctt( d'acétone et continue d'agiter à la même tempéra- turne.
Au bcut de 4 jours, on sépare le mveélium et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle. Après les avoir réunis, on extrait les filtrats, à quatre reprises.. avec chaque fois 200 cm3 d'acétate d'éthyle. On lave à l'eau les extraits réunis, les sèche et les évapore. D'appas une estimation
EMI13.3
effectuée par chromatographie sus papier, le résidu (l60 mg) renferme des quantités à peu près égales de deux composés qui se comportent comme la cortexone Ill1m(Mao;):y-corticoatérone resp. progestérone). On sépare ces deux composes par une chrom4qtograpille de préparation :/,PD7> papier, avec le système Bush B 3.
On coupe les zones correspondant à la cortexone et les élue avec 400 en.3 de méthanol à 50%. On élimine ensuite le méthanol sous vide. On extrait la solution aqueuse qui reste, à quatre reprises, avec chaque fois 50 cm3 de chloro- forme, après les avoir réunis, on lave les extraits à l'eau, les sèche et les évapore sous vide. On cristallise le résidu
EMI13.4
dans un mélange d'acétone et d'éther. et l'on oht1.b toua
<Desc/Clms Page number 14>
pu.-ce, la d-cortexone d'un point de fusion de 140 - 143 .
[[alpha]]D = + 180 /dans l'éthanol). On traite de la même manière les zones du chromatogramme de préparation sur papier qui correspondant à la progestérone. On obtient 92 mg d'un extrait brut, à partir duquel on obtient, par cristallisatio répétée dans un mélange d'acétone et d'éther de pétrole, de la #-progestérone pure, fondant 122 - 125 ; [[alpha]]D = - 190 (dans l'acétone).
¯Exemple 2.
Dans un récipient d'agitation, on ensemence avec du Cunninghamella Blakesleena 500 cm3 de moût de bière stérile et agite 3 jours à 27 . Dans', des conditions stériles, on ajouta alors à la culture bien développée une solution de 150 mg de d,#-cortexone dans 8 cm3 d'acétone. En même temps, on ensemence dans un second récipient 500 cm3 de moût de bière stérile avec du Trichothecium roseum. On agite les deux cultures. pendant 3 jours à 27 et les réunit alors dans des conditions stériles, après quoi on continue d'agitera la même température.
Au bout de 3 jours, on sépare le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle. Apres avoir réuni les filtrats, on les entrait comme décrit dans l'exemple 1. Suivant une évalua- tion effectuée par sur papier, le résidu obtenu (165 mg) est essentiellement formé de 3 composés qui correspondent respectivement à la cortexone, à l'hydrocortisone, et à la cortisone. On chromatographie ce résidu suivant la
<Desc/Clms Page number 15>
méthode par passage sur 8 g de gel de silice, en éluant d'abord avec du chloroforme, puis avec un mélange de chloroforme
EMI15.1
rt d'acétone (99 1 L et finalement avec un mélange de chloro- forme et d'acétone (1:1,;.
On soumet les diverses fractions (de 20 cm 3 chacune) à un examen chroniatographique sur papier.
Les fractions éludes au chloroforme renferment des impuretés, tandis que. dans les fractions éluées avec le mélange de chloroforme et d'acétone (99:1), se trouve un composé corres- pondant à la cortexone. On réunit ces fractions et les évapore.
Par cristallisation dans des mélanges d'acétone et d'éther,
EMI15.2
on obtient la -& cort3òne d'un point de fusion de 138 - 112().
[a]p - 1150 (dans l'éthanol). lies autres fractions éludes avec le mélange de chlo20form<s et. d'acétone (1x1) sont essentiellement constituées par d-9 la d-hydrocortisone et de la d-cortleone. On les réunit, les évapore et sépare les constituants à l'aide d'un ch:rom'3.'ogr3mme de préparation sur papier (système p'popylenegly- col-t"luène . Le traitement des zones de papier renfermant respectivement la d-hydrocortisone et la a-cortisone a 11reÙ" comme décrit à l'exemple 1. En cristallisant les deux résidus d'extraction dans des mélanges d'acétone et d'éther iaopropyli- que, on obtient la d-hydrocortisone d'un point de fusion de
EMI15.3
205 - 210 l'ai D 165 (dans l'éthanol) et la d-cortisone d'un point de fusion de 210 - 216 , [a]D" -<- 195 (dans le d 1oxa.nne) .
<Desc/Clms Page number 16>
Exemple 3.
Dans un réciplent à secouer, on dissout dans 500 cm3 d'eau du robinet 1 g de nitrate de sodium, 0,5 g d'ortho- phosphate primaire de potassium, 0,25 g de sulfate de magnésium- heptahydrate, 0,25 g de chlorure de potassium, 25 g de glucose brut et 0,5 g d'extrait de levure Difco, amené l'ensemble à un pH de 5 et stérilise. On ensemence cette solution nutritive avec du Didymella lycopersici et agite 3 joursà 27 .On ajoute alors au tout, dans des conditions stériles, une solu- tion de 120 mg de d,#-cortisone dans 5 cm3 de méthanol. On continue d'agiter pendant 4 jours à 27 , sépare alors le my- célium par essorage et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle.
Apres avoir réuni les filtrats, on les extrait comme décrit dans l'exemple 1. Ainsi qu'il résulte d'un examen chromato- graphique sur papier, le résidu d'extraction contient un produit qui se comporte comme la matière de départ,et de la l-déhydrocortisone. A l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier /système propylèneglycol-toluène),on sépare les constituants de ce mélange.
Par recristallisation dans de l'acétone, on obtient la d-1déhydro-cortisone d'un point de fusion de 231 - 234 , [[alpha]]D = + 1700 (dans le dioxanne) Par cristallisation répétée dans un mélange d'acétone et d'éther isopropylique, on obtient la "-cortisone pure d'un point de fusion de 211 - 217 , [[alpha]]D = - 1900 (dans le dioxanne).
<Desc/Clms Page number 17>
Exemple 4.
On prépare une solution nutritive renfermant, pour un litre d'eau du robinet, 20 g de peptone, 5 cm3 d'eau de
EMI17.1
gonflement du maïs (Cornsteep-l1quor) et 10 g de glucose brut et dont le pH est ajusté à 6,3. On py@nd!4 fioles coniques d'une capacité de 500 cm3 et stérilise dns chacune d'elles 120 cm3 de la solution nutritive ci-dessus et les ensemence
EMI17.2
avec du Wojnow1cia gram1nis. On agite ces cultures pendant 4 jours à 27 , après quoi on ajoute, dans des conditions stériles, chaque fois une solution contenant 30 mg de
EMI17.3
(18- # p-llgj-lactone du U 4.x".%1 3, nGlJr'tlJ.o.ad .L.1. iâ'.,doà pâgli"w' 18-oïque dans 1, 5 car de méthanol.
On continue alors <3 "agiter la même température. Au bout de 8 Jours, on sépare le
EMI17.4
mycélium le lave à l'eau et à ls acétate d'éthyle, réunit les filtrats et les extrait comme décrit à l'exemple 1. Le résidu d'extraction (140 mg) renferme, d'après une évaluation
EMI17.5
chyomstogra.phique sur papier, un produit analogue a la matière de départ, ainsi que de la .8 -x.llwlacton du  ! -3,20- dioco-..(,1-dihydror-prgnéne 18-ou. On sépare les constituants de ce résidu à l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier (système forraamide -benzène -chloroforme )# Comme décrit à l'exemple 1, on élue sur papier les deux compo- sants et lesextrait.
Par cristallisation dans un mélange
EMI17.6
d'acétone et d'éther, on obtient la tl8yll.p .acton du d-A -'320-dioxo-llp21-dihydroxy-prëgnene-l8-oïque d'un
<Desc/Clms Page number 18>
point de fusion de 205 - 222 , la]- '= 1170 (dans l'acétone).
Exemple 5.
Dans 4 fioles coniques, on Introduit chaque fois 12C cm3 de la solution nutritive décrite à l'exemple 4, puis
EMI18.1
stérilise. On ensemence avec de l'Ophiobolus herpotricU6 et agite les cultures pendant 5 jours à 27 . On ajoute alors à chacune des cultures, dans des conditions stériles,
EMI18.2
une solution de 30 mg de d9--,.8,20-trioo-â.-Idroy¯ prégnène ou de son 18,11-cyclo-semi-acétal dans 1,5 car de méthanol et continue d'agiter à la Même température.
Au bout de 10 Jours, on sépare le mycélium, le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle, réunit les filtrats et les extrait comme décrit à l'exemple 1. A côte d'un produit analogue a la matière de départ, le résidu d'extraction renferme un compose qui se comporte comme l'aldostérone. On purifie ce résidu à l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier (système Bush C), l'élut ion et l'extraction se faisant comme décrit à l'exemple 1. Dans un mélange d'acétone
EMI18.3
et d'éther on obtient la d-aldostërone cristalline qui fond in 162 - 168 , .ct] = . 142 (dans l'acétone"
<Desc/Clms Page number 19>
Exemple 6.
Dans un récipient à secouer, on stérilise 300 cm3 de la solution nutritive décrite à l'exemple 4 et ensemence avec du Wojnowicia graminis. Après 4 jours d'agitation, la culture s'est bien développée et on y ajoute, dans des conditions stériles, une solution de 50 mg de d,#-#4-3,18,20- trioxo-11ss-hydroxy-prégnene ou de son 18,11-cyclo-semi-acétaldans 3 cm3 de méthanol. En même temps j dans un second/ récipient d'agitation, on ensemence 300 cm3 de moût de bière stérilisé avec du Trichothecium roseum.
On agite les deux cultures pendant 4 Jours à 27 , les réunit alors dans des conditions stériles, et continue d'agiter à la même tempéra- -bure. Au bout de 4 jours, on sépare le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle. Après avoir réuni les filtratson les extrait comme décrit à l'exemple 1.
A côté d'un composé qui se comporte comme la matière de dé- part, le résidu d'extraction (55 mg) renferme de la d'-17[alpha]-hydroxy-aldostérone. On obtient cette dernière à l'état unitaire après une chromatographie de prépara- tion sur papier (système propylèneglycol-toluène), l'élut ion et l'extraction des papiers étant effectuée suivant les indications données dans l'exemple 1.
<Desc/Clms Page number 20>
Exemple 7
Dans un récipient à secouer, on stérilise 300 cm de moût de bière et les ensemence avec du Trichotecium roaeum. On agite la culture pendant4 jours à 27 , après quoi on ajoute, dans des conditions stériles, une solution de 60 mg de d,#-aldostérone dans 3 cm3 de méthanol. On continue d'agiter pendant 4 jours à 27 , sépare ensuite le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle. Après les avoir réunis, on extrait les filtrats comme décrit dans l'exemple 1. Le résidu d'extraction qui, à côté de la matière de départe renferme de la d-17[alpha]-hydroxy-aldostérone, est séparé à l'aide d'une chromatographie préparatoire sur papier (système Bush C).
Par élution des zones correspondantes des papiers suivant les indications données dans l'exemple 1, la d-17[alpha]-hydroxy-aldos- térone est obtenue sous une forme unitaire. Elle cristallise dans un mélange d'acétone et d'éther. A partir des zones cor- respondant à la matière de départ* on obtient, par cristalli- sation dans un mélange d'éther et d'acétone, la-aldostérone d'un point de fusion de 162-168 et d'un pouvoir rotatoire spécifique [[alpha]]D = -1420 (dans l'acétone).
Exemple 8
Dans un récipient à secouer, on ensemence avec de l'Ophiobolus herpotrichus 300 cm3 de moût de bière stérile et agita à 27 . Au bout de 5 jours, on ajoute au tout, dans
<Desc/Clms Page number 21>
des conditions stériles, une solution de 60 mg de d, -#4-
EMI21.1
5,20-dioxo-ilpj,l8-dihydrosy-prégnèns dans 4 car do méthanol et continue d'agiter à la même température. Au bout de 6 jours, on sépare le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétate
EMI21.2
d t éthyle.
Après les avoir réunis, on extrait les filtrats cossus indiqué dans l'exemple 1. Diaprés une évaluation ef- par chromatographie sur papier., le résidu est consti- tué par un composé analogue à la matière de départ, ainsi
EMI21.3
que par du d-A ¯5J,20 dloxo-lipl8,21¯til)ihydro>î3f¯prëgaàae que l'on sépare à l'aide d'une chromatogaph1G de préparation sur parler (système propylèae-glyool-toluëne). lie d,oL/-3,,20... dioxo."llp.,l8j,21-.trihydroxy-pygnèns cristallise dans un mélange d'acétone et d'éther.
Exemple
Dans un récipient à secoueron stérilise 200 cm
EMI21.4
d'une (.:olutl!:m nutritive qui renferme, pour un litre d'eau du robinet, 10 g de glucose brut., 5 g de peptone, 3 g d'extrait
EMI21.5
de viande (O.Ko Lab .temco L 5 g de chlorure de sodium et 10 g de carbonate de calcium, et qui est ajustée à un pH de 7,5, puis ensemence avec une culture d'une souche de Streptomyoes albus.
On agite 2 Jours à 27 et ajoute alors au tout, dans
EMI21.6
des conditions stériles, une solution de 50 mg de d/L-a-oestra- diol dans 2 cm3 de dioxanne. On continue d'agiter pendant 3 Jours à 27 , après quoi on sépare le mycélium et extrait le
<Desc/Clms Page number 22>
filtrat de culture avec du chlorure de méthylène. D'après un examen chromatographique sur papier, le résidu d'extraction
EMI22.1
est constitué par- des composés, correspondant à l1a-ostradlo1 et à 1 ort a!e On sépare les constituants du mélange à l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier et l'on obtient, par cristallisation dans du méthanol aqueux,
d'une
EMI22.2
part .e ae t=Wdio. d'un point de fusion de 175-178 , - ta] - -81 et, d'autre part, la doëstroue d'un point de fusion de 25'--5g - + 101 & Exemple 10 A 200 cm5 d*une c Ë;: . 4 d'agitation bien déve- loppée de Pseudomonas, on ajoute-;, Y-,A^3 des conditions stériles, une solution de 50 mg de dans 2 cl ds dloxanne. On agite z8 tt:id's:'r3: S 2'Yo et. retrait ensuite la cul- ture au chlorure de méthylène. D'après un examen chromato- graphique sur papier, le résidu d'exaction se comporte comme
EMI22.3
l'androstérone et le r .:.;"51.1.' ?W....ir ' CW vLE'.'.
On sépare les constituants de ce mélange à l'aide d'une chr-omatographiê de préparation sur papier et 1 Ion obtient, par cristallisation
EMI22.4
dans du méthanol aqueux, la )j.a;1droatéx"one d'un point' de fusion.de 180-1820; [a]D m g2a t le ë-3.17ioëtondrostane d'un point de. fusion de 130-132'\ [a]p - - 109 .
<Desc/Clms Page number 23>
Exemple 11
EMI23.1
-..¯¯¯¯--¯¯¯..
A 200 car d'une culture d'agitation bien dévelop-
EMI23.2
pée elune souche de Streptomyces fradia, on ajoute, dans des conditions stériles, une solution de 50 mg de d, -prgil- nolone dans 2 cm d'acétone. On agite pendant 24 heures à 27 et extrait alors la culture au chlorure de méthylène.
D'après un examen chromatographique sur papier, le résidu
EMI23.3
d'extraction se comporte comme la prégnénolone et la progesté- rone. On sépare les constituants du mélange à l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier et l'on obtient, par cristallisation dans des mélanges d'acétone et d'éther
EMI23.4
de pétrole, 7.a-prgrnolane d'un point de fusion de 187-189 , la]D = -250 et la d-progestroae d'un point de fusion de 125-127 , [[alpha]]D = + 1900- @
Exemple 12
EMI23.5
..¯..m..¯,...¯¯¯.
Si$ dans l'exemple ci-dessus, on utilisa pour transformer la dl-pré@1énolonGI à la place de la culture de la souche de Streptomyces fradiae une culture d'Aspergillus niger et qu'on Incube et traite de la manière indiquée, on ,
EMI23.6
peut alors obtenir également la,-prégnénolone d'un point de fusion de 185-I880, [a3p " -23 et la d-progestérone d'un point de fusion dë 123-126 , [ aj D = + 191 .
<Desc/Clms Page number 24>
EMI24.1
EK&sple 13
EMI24.2
On prépare une solution nutritive qui renferma,
EMI24.3
pour un litre d'eau du robinet, 2,6 g décide tartrique, 2 6 g de 8?''?'3rGf d'ammonium, 0117 g dus C31.'a.' â'. áfn.ilt3'iâ'U:
'?s 0,4 g ds phosphate secondaire d'ammonium, 0,k- g do carbonate de potassium, 0,27 g de carbonate de magnésium, 50 g dc glucose et 1 g d extrait de levure (Difoo) et ajuste le pH à , C. Dans une fiole coniques on stérilise 120 ci de cette solution, ensemence avec du Rhizopus nigrieans et agite à bzz. Ai?; bout de 2 jours, on ajoute au tout, dans des 02,;'onN stériles, une solution de 30 mg da dan -progestérone dans 1,5 cm d'se<$ton's et continue d:agiter pendant 2 jours à ' . On sépare alors le mycélium et la lave à 1 c :au et au chlorure de méthylène Après l'as avoir réunis , on extrait ' :!.1t: ;.""'.7.a..S'v..T-.;'s"n. à 5 1?0}.1!'isos avec du chlorure do méthylène, 18.l les e:;::.tt:'2.it,;j à 1 at\$ lus sèche et les évapore.
Un êissaien chcatogph1qu ur papier du réú:1..:'!ü d'extraction contre cua ce dernier sst constitua à parti-as zip? à psu près égalas par des composés qui correspondent respectivement à la progestérone st è la 11a-nYúro;;:y-proges-;6... i0i3.L'o 0: répare les constituants du mélange à â3t.k2 d'une chromatographie de préparation sur papier st obtient, par cristallisation dans dan mélanges dtacetcne et L 4t G 4ne.i,'. dte pétrole, dIU part, la/progea0rOnê <3*un point de fusion de 118-120 , C cI -187 1 (dans le dioxanne) e, tauûr part, la â-l1.:-hydroxy-p:rog6stél"'one d'un point de fusion de 69-1'. [ a]1) = + 176 (dans le chloroformé).
<Desc/Clms Page number 25>
Exemple 14 On prépare une solution nutritive renfermant, pour un litre d'eau du robinet, 10 g de suera de canne; 10 g de
EMI25.1
Trypton-Difoo, 2 g de nitrate de sodium; 1 g de phosphate secondaire do potassium, 0,5 g de sulfate de magnôs1um.., 0,5 g de chlorure de potassium, et 10 mg de sulfate ferreux hepta-
EMI25.2
hydrata, ajuste le pH à 7PO et ajouta ensuite 2,5 g de car.. bonate de calcium. Dans une fiole conique on. stérilise 120 eu 3 de cette solution, ensemence avec du Curvularia lunata et agite à 27 . Au bout de 2 jourson sépare le mycélium, le lave avec peu d'eau et le met en suspension dans 120 cm3 d'eau distillée.
A cette suspension, on ajouta une solution de 30 mg
EMI25.3
de dans 1,5 com d'eadtone et agite pendant 30 heures à 27 . On extrait el1.suit le, mdiangs à 4 reprises avec de l'acétate d'éthyle. On lave les extraits à l'eau, les sèohe et les évapore. D'appas une évaluation ehromato-
EMI25.4
graphique sur papier, le résidu d'extraction est 0asênt111ament constitue par deux substances qui correspondent respective- ment à la cortexone et à la corticostèrone.
A l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier et d'une cristal- lisation subséquente dans des mélanges d'acétone et d'éther
EMI25.5
de pétrole, on obtient la/C-eortexone d'un point de fusion de 138-141 la]D - -175 (dans l'alcool absolu ) et la d-oort1coBtone d'un point de fusion de 178-181 , [a + 220 (dans l'alcool absolu).
<Desc/Clms Page number 26>
EMI26.1
..ti>C:.a) .5.
¯¯Wl.).""#;:Yoo&II.,p.""r...a"""mt En ajoutant,, à uns r1-"'- -',:"i """ Sa \';"'- Ó',.Y "t-:-1 de Curvularia lunata dans 120 m3 df0au distillée,} suspension qui a été obtenus corsas 5s'i},1! 3. f"::;J"mpJ,D tt.!a itaic'.:: une solution \.1=! 1O}"i ing ds ë'-T.7chyës'cxy-oo?t:o êôv-:j "j..5 '-" ..........t ...1....':'i Gte1:1 opérant CC:.'LU\3 t.r..-''.-.vï'i,Fl.;:7"''.¯ avoii3 s.g:1.;0 posant z jours 37 1':\ t't').-f"J.j.Jh'i .1."...hYJ"':t.1...\,.:; ¯f:..=r,-:¯.... ;:;c'L"$ rlÇ1't....\';);::."I bzz évaluation sootuik'; jï3 ehoEË'bc;3iH Dtii? i efôstîrfcl!# lèvent eaux ubaui/ov. qui 6û\'.jHcdnt à la 17o>-h2yâïfos;jr- ccr'csxon e;)t à le 17(z-11tlo1:.:-i .eJG::'i;..c::;j '1Í/(.)L;? 0 -,.
S>. :t mélange il l'ai...1t!> "1h'-¯) $.:L..c. ' :'r:. :.:.. ¯ : - r '..s6::.v> , 5? .. -.';',.e Y.. ¯ :: 4n 5 :i. v.3 sur papier et l5on Oi J\a"1 ¯....... f ' ::¯":=3 ':I <.........1. ï>.'..''.. S.F; ''L.:,...;'<-':: ":::: ;;t3,a.$ i."t'."'.k â ;n
EMI26.2
d'un point de fumier' &-. SILO-- -l::as [au- -:i!SO " ' 1 alcool absolu]' et d'autre ;'.1.'iy..m: ¯' .f' -.;, ': 7, ..x-" -, .:é:<.'.rt..!.Pi-:f 'k.ic i.ji2;'i':;ryC7:r'i3aa0â';> d'ici ;;r:3:;..--:; <.-..:-v:a.i3 'i:: 09-23.2 , [aj # 171e
EMI26.3
(dans ", " ,,..1 absolu).
E;'-iin})1>oe 16 Dans un r6c:1.i'Ü1t ià secoue;?;, on '?L::d3'i,ï'iLéw .dans 500 emï ,u du robinet., 1 g de nitrate ds sodium" O/J5 g d'orthophospliate primaire de potassium,, 0, 2 g de sulfate de magnés ium-heptahydra te, 0,25 g de chlorure de potassium, 25 g de glucose brut et 0, 5 g d'extrait de levure 17i'eap amène le tout à un pH de 5 et stérilise. On ensemence, eette solution nutritive avec du Didymella lycoperslci et l'agite 3 jours à 27
EMI26.4
On ajoute alors, dans des conditions stériles, une solution de
<Desc/Clms Page number 27>
EMI27.1
120 mg de d. Jr¯l7aAvjûvoiz$ **QQX<tQQB t4von& dans QtnJ ôte metliancl. On agite encore 4 LG''!'4S 2E sépare le mycélium pas? essorage et le lave à l'eau et à l'acétatss d'éthyle, Après avoir réuni l'as filtrats,, on les entrait cossue décrit dans 1! simple 1.
Le résidu d' extraction est constitue., ainsi que le montre un examen l:d".t:ï't7r2i: ïC'S..;'.t.:w3î, 'uw sur papier par un produit Qui s's eoraports coaisra la !MEt:igr'.& de départe et par de la "f¯uchyF.)T7'w''t 4i"1,V1-hyd.PwaiJ.L YJ S9V:.7'Lfiw.Jej.YS.i On sépare les C:G s"dï':LrGL!.s':zê:3 ce mélange l5aide d'une chromatographie Cl préparation sur papier (système propyl&neglyeol¯to3.uèsi) .
Par récris tallisatioa dans E3.''"".È.'t',C7g OR obtient d'un part la 3.wy¯l-dëhyd::'esa.bÏo:: ma' aca;;E:=tun: d'un point de fusion il:.; i...',3''j'' [a 4- 98 (<3ar4s le dioxsume) et, set'autre pa2>tj, lal7c;--hydrox?-corticoatdrone d'un point do fusion de 2-..:.arl [o3D -i68o dans l'alcool absolu).
EMI27.2
Exemple 17
EMI27.3
Cornue décrit dans ls exemple précédent, on J;':;xJ.lâ' ut..' culture do Didymella a:;'Jt'àiif?ï:î.é. 5''i 7 ajouta alors une solution de 120 mg de 21-trimthylac4tat d d,17a-hydoxycoytiûogtéron@ dans 5 ôra d'acétone.
Après ' avoir agité pendant 4 jours à 27 , on isole le produit réaction- nal G'c;'ff121' '3:E:'c',-11t Clv. ..II111I'..'T'? ! Le résidu d'extraction est essentiel- lement constitué, ainsi que 1s montre une évaluation effectuée par chromatographie sur papier, par ''1.:3uë produits qui se
<Desc/Clms Page number 28>
EMI28.1
comportent respectivement comme la matière de repart. et comme le tritnéthylaoêtE1.te de la l-dcµhydrQ¯17a¯hyd:i?o.xy* corti-¯ c03t6rcn:e:.
On sépare les constituants de ce mélange à l'aida d'une chpomaogpaphie de préparation sur papier et l'on obi tient, par cristallisation dans l'acétate dl6thyle, d'une: part le 2;:.zrxhy .aca, de la -17a-hycro.ycr.-,:o 4t='on
EMI28.2
EMI28.3
d'un peint de i us 5 on de 231-232 , fa3p =' -ll5 (dans le dîo,xa.rr,:e) et d'autre part, le G"lW.d.!'.3' 4±1,.&GVGS' de la d-.xvtdr>a.'Ex.ydrsytc;y.coticostéo:ae d*un peint de fusion de 233236 p [al 4- 1030 (dans le chloroforme).
EMI28.4
Exemple 18
EMI28.5
#J >J> MM t*K M T ta *B #* a On ensemence avec du Didymslla .yop:.:.g 120 car de la solution nutritive décrits dans l'exemple 4 et agite pendant 2 Jou à 27 . On ajoute ensuite, dans des conditions 1':,';é'.":lles, une solution de 30 mg de dl' ± -aldo8téron# dans 1, 5 cm' c'Pacétont'3 et continue d'agiter à la mime h':ml}:)(5- rature.
Au bout de 3 jours, on sépare le mycélium et le lave à l'eau et i. 1 taaé.:-ate d'ethyle. Après avoir réuni les filtrats, on lam extrait comia décrit dans l'exemple 1. Ainsi que 1s montre an exaI:1.an chromatogj=,aphiquê sur papier le résidu ± 'extraction est constitué par un produit qui se com- porte oc-maes :.:3.0'I'Oiscf et par de la .-t'dt'3ytiG-,iLO'Fx'OL, On sépare ce-si deux produits à l'aida d'une chrotnatographie de préparation t:
u? papier (système Bush C) et les cristallise
<Desc/Clms Page number 29>
ensuite dans un mélange d'acétone et d'éther. On obtient
EMI29.1
lat-aldostérone (fondant à 110'/158-165', [UID = -i4l 0 [dans l'acétone]) et la d-1-dêb-ydro-aldostérone (bandes dans l'infra-rouge, dans le chloroforme, entre autre à 2t82gp 2j95gp 5p87g, 6,01n. 6.17. 6p24J.J' 6e9lg, 7el5ge '(,3llt..
7p77g 9,ten, lO,68, et ll,28|i). on acétyle de manière usuelle la d-1-déhydro- aldostérone à l'aide d'un mélangé de pyridine et d'anhydride acétique. On obtient un mélange de deux, produits qui, à la
EMI29.2
chromatographie sur papier avec le système pr.opylàn0g1ycol- toluÈ/i.'H';, donne" respectivement, des valeurs de R de Oe7O Ot O,15v ces deux produits sont respectivement lô 18,21-diao&tat et le do la d-l déhydro-aldostéî?otiê. On obtient ce dernier sous forai cristalline pure en traitant le mélange brut des acétates par de l'éther absolu.
Point de fusion
EMI29.3
182-18::, , bandes dans 1 t infra'.:\."oug dans Io chlorure de méthyltnô, entre autres à 2p81.,p 5,74j},,; 6,Olv,, 6 16pe bzz 7p31$ 8,\\17t 8iJ93J.,Y 8,98211.J! 9.1'72.I' lO,03!, lO,221.J! lOp62t.ll 11,32 , et 12,29 .
Exemple 19
EMI29.4
On prdpare, cornai décrit dangllexeiaple 6e t 120 cm'' d'unis -culture ds Didymella lycopêreio1. On y ajoute,, dans des conditions stériles, une solution de 25 mg de d,E -éOl't1i3oi1e dans 1,5 om3 de méthanol. On agite pendant
<Desc/Clms Page number 30>
EMI30.1
3 jou'e à 27 et sépara ensuite le Mycélium. On Go damier è lteau et à l'acdtatô dtôthyle. Après avoir rauni les filtrats, on 133 extrait commis décrit dans l'exemple D'après un examen chroma te graphique sur p-apîjr,, le résidu distraction est formé de l-déhyâro-cortiBone ot d'un produit qui ss CO!i1po;:.t comme la 0!! sépare ava dziuz sur." stances par chromatographie do préparation 2ur papier.
On obtient d um; part la d-1-déhydro-cor-tisone [point de fusion 2j51"2j54 , [a!D - + 1690 (dans le âioxanna)j et, d'autre part, laE -oortisone [point de fusion = 215 , [0,1D - "203- (dans le dioxanne)].
Exemple 20
Avec une culture de Trichothecium roseum, on ensemence 120 cm3 d'une solution nutritive stérilisés de Czapek-Dox et agite pendant 5 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans des conditions stériles, une solution de
EMI30.2
30 mg de d,Z-aldootérone dans le5 am3 d'acétone et continue d'agiter à la même température. Au bout de 4 Jours, on sépare le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle.
Après les avoir réunis, on extrait les filtrats comme décrit
EMI30.3
dans l'exemple 1. D'après un examen chrometographique sur papier, le résidu d'extraction est essentiellement constitué par un produit qui se comporte comme l'aldostérone, et par
EMI30.4
de la 17o-hydroxy-aldostérone. On sépare ces deux substances
<Desc/Clms Page number 31>
EMI31.1
1.c:: d'une chromatographie de préparation sur papier (système Bush 0) On obtient oFn AJ"'G6dL4 IICroata7 et la d¯17a- hydroxy-aldostërone.
Exemple 21 Avec une cultur-s d'Ophiobolus horpo4cirîchuo, on
EMI31.2
EMI31.3
ensemence 120 cm" 6e moût de biers stérile et agite pendant
EMI31.4
3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans des conditions
EMI31.5
stériles, une solution de 40 mg de (1$ -----, .r..8j..g'otx du d, L¯A l ..3ndq o0--3.p-hydrQyxgna.3.l8-oïqus dans 1,5 'Ei4" d'acëtono et continue d'agiter à 27 . Au bout do 6 jours on sépare it mycélium et le lave à Iteau et à l'acétate d'éthyle. Après avoir reliai lêc filtrats, on les traits '#olLttl":' décrit clans 1 Exemple 1.
D'après un examen ahr omztogra3:.:q,i sur papier 3 le résidu <38xtraotion est constitue par un produit, qui s@ comporte coame la matière de départ, et par la (l8 3..j...;o:,s du 3at->dco-- llpj On sépare l@s deux substances à l'aide d'uno ahx 7o:g'oraph de préparation sur papier t Iton obtient la (l8 ##-llp)-lacton@ au ,'3 p acâ-. d.cCto-llp-hydroxy-prgs:t.8.o:cu' [a] D -IS1!-0) et la (18 #-ll)-.lsctone du c- ba 3 0-d. r-.3., 2.-c.kZ;crox.. rgri:ea.8...o;qu, Lcc - ?'7 j .
EMI31.6
Exemple 22
EMI31.7
Avec une culture dtOph3.oboiu herpotrîchue, on
<Desc/Clms Page number 32>
ensemence 120 cm3 de moût de bière stérile et agite pendant 3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans des conditions stériles, une solution de 40 mg de d,#-#4-3,18,20-trioxo- 11ss-hydroxy-prégnène ou de son dans 1,5 cm3 d'acétone et continue d'agiter 27 . Au bout des 6 jours, on sépare le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétata d'éthyle. Après avoir réuni les filtrats, on les traito comme décrit dans l'exemple 1.
D'après un examen chromato- graphique sur papier, le résidu d'extraction, est constitué par un produit qui se comporte comme la matière de départ, et par de l'aldostérone. On sépara ces deux substances à 4 'aide d'une chromatographie de préparation sur papier et l'on obtient le ±-44 ou son 18,11-cyclo-semi-acétal, ainsi que de la d-aidostérone ([[alpha]]D = + 142 ).
La matière de départ niée en oeuvre peut être préparée par exemple suivant le procade décrit dans le brevet belge No. 547.904 du 17 mai 1956 au nom de Monsieur Tadéus REICHSTEIN et ayant pour titre: "Procédé de préparation de stéroïdes oxygénée et nouveaux composés ainsi obtenus.
Exemple 23
A l'aide d'une culture d'Ophiobolue herpotrichus, on ensemence 120 cm3 de moût de bière stérile et agite pendant 3 jours à 27 .On ajoute alors au tout, dans des conditions
<Desc/Clms Page number 33>
EMI33.1
stériles, une solution de 40 mg de dl.19-nor-prOgêstéron dans 1,5 cm d'acétone et continué d'agiter à 27 . Au bout de 3 jours on sépare le mycélium et le lave à l'eau et à
EMI33.2
l'aoét8t d'éthyle. Aprèb avoir réuni les filtrats,, on les extrait somme décrit dans 1 'exemple 1.
D'après un examen chrornatographiquo sur papier, le résidu d' entras tion est oon:3titué par mi produit qui se comporte esomme la matière de départ et par dg la 19-nor-oort0xoneu On sépare ces deux substances à l'aida d'une ohromatogr-aph10 de préparation sur papier et l'on obtient de la/& !9-nor pr ogesfc<iPonê (tal M -<.l43) et do la dQ19-nor-cortexon. On acétyle cette cleraîèrg de manlèro usuelle à l'aide d'un mélange de pyridine ot c1 tan.. hydride acétique. Le 21-acétate présents un pouvoir rotatoire
EMI33.3
spoifique [a]D + 145 .
Exemple 24 A l'aide d'une culture ô sophiobolua heI'potl"1chua on ensemence 120 cm3 de moût de bière stérile at agite pendant 3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans des con-
EMI33.4
ditions stériles, une solution de 40 mg de d, /±¯9o>±luoro- lip-hydroxy -progestérone dans 1,5 cm 3 dtacétone et continue' d'agiter à 27 . Au bout de 4 jours, on séppré le mycélium et le lave à l'eau et à l'acétate d'éthyle. Après avoir réuni les filtrats, on les extrait comme décrit dans l'exemple 1.
D'après un examen ûhromatographique sur papier, le résidu
<Desc/Clms Page number 34>
d'extraction est constitua par un produit qui se comporte comme la matière de départ, et par de la 9[alpha]-fluoro-cor- ticostérone. On sépare ces deux substance à l'aide d'une chromatographie de préparation sur papier et l'on obtient de
EMI34.1
1a±-9a-tluoro-ll-hYdroxy-progestérone (la]D - -190 ), et de la 9a-fluoro-eortieostérone, On acétyle cette dernière de manière usuelle à l'aide d'un mélange de pyridine et d'an- hydride acétique.Le 21-monoacétate présente un pouvoir ro- tatoire spécifique [[alpha]]D = + 187 .
Exemple 25
A l'aide d'une culture d'une espèce du genre Rhizopus, on ensemence 120 cm3 de moût de bière stérile et agite pendant 3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans dee conditions stériles, une solution de 30 mg de d,#-cor-
EMI34.2
texone (11-désoxy-cortlooBtaronè) dans 1,5 cam3 d'aeétone et continue d'agiter à 27 .Au bout de 4 jourson sépare le mycélium et extrait le filtrat de culture comme décrit dans les exemples précédents.D'après un oxamen chromato graphique sur papier,
le résidu d'extraction est essentielle- ment constitué par un produit qui se comporte comme la matière de départ et par de la 6p-hydroxy-cortexone. On sépare ces deux substances à l'aide d'une chromatographie de préparation
EMI34.3
sur papier. On obtient de la ±-aortexon0 (la]D = -175 ) et de la d-6p-hydroxy-cortexone ([[alpha]]D = + 100 ).
<Desc/Clms Page number 35>
Exemple 26
A l'aide d'une culture d'une espèce du genre Peziza portant le numéro de référence M 26 à l'Ecole Polytechnique Fédérale de Zurich, on ensemence 120 cm3 de moût de bière stérile et agite pendant 3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans Ses conditions stériles, une solution de 30 mg de
EMI35.1
d, ± >cor.txo:1.e (11-déJ13oxy-certicogtêl"on0) dans 1,5 cm 3 d'acétone et continue d'agiter à 27 . Au bout de 4 jours, on sépare le mycélium et extrait le filtrat de culture comme décrit dans
EMI35.2
1 (1i.fmpl p:;',âcé:dent.
D'après un examen chromatogfaphique sur papier.. le résidu d'extraction est essentiellement constitué par un produit qui se comporte comme la matière de départe
EMI35.3
et par d's la 7a-hydro3Ey-coî>t& one, On sépare ces deux oubstanocs à l'aide dJ'.1:le chromatographie de préparation sur papier.
On obtient da la t-cor1:;(i!:Xona ([a) D = -173 ) et de la d-7a- hydrox; -cortaxone (ïct]j3 + 155 ).
Exemple 27
A l'aide d'une culture de Lenzites abietina, on ensemence 120 om de moût de bière stérile et agite 3 Jours à 27 . On ajoute alorsdans des conditions stériles, une
EMI35.4
solution de 30 mg de d,% -cortexone (11-désoxy-corticoctérone) dans 1,5 cm d'acétone et continue d'agiter à 27 . Au bout de 4 joura, on sépare le mycélium et extrait le filtrat de
<Desc/Clms Page number 36>
EMI36.1
Otlt\.1I' a3Tlli décrit dans les exemples précédents. D'après un exanen chromatographique sur papier, le résidu d'extraction est esEentiellement constitué par un produit qui se comporte comme la matière de départ et par de la l5p-hydroxy-eortexone.
On sépere ces deux substances à l'aide d'une chromatographie
EMI36.2
de préparation sur papier. On obtient de la/,Vl-oortexone ([aJD r -170 ) et de la d-i5¯h'droxy eortexarie ([a.]D = + l4l ).
Exemple 28
EMI36.3
.aINWWibli aa
A l'aide d'une culture de Glbberella baccata, on ensemence 120 cm 3 d'une solution nutritive de Czapek-Dox et. agite 3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans des
EMI36.4
conditions sorties, une solution de 30 mg de d,l...cortexone 3.1.t oxy a>rtiaoatrctke dans 1,5 cm d'acétone et continue d'agiter à 27 . Au bout de 4 jours, on sépare le mycélium et extrait le filtrat de culture comme indiqué dans les exemples précédents.D'après un examen chromatographique sur papier, le résidu d'extraction est essentiellement constitué par un produit qui se comporte comme la matière de départ, et par
EMI36.5
de la :5a-hydroxy-cortezone. On sépare ces deux substances à l'aice d'une chromatographie de préparation sur papier.
On obtient de la L-cortexone ([ a]D :=1 -169 ) et de la d-15a-hydroxy- cortexene t cx1 + 195 ).
<Desc/Clms Page number 37>
Exemple 29
A l'aide d'une culture de Pleospora Gaeummani, on ensemence 120 car de moût de bière stérile et agite 3 jours à 27 . On ajoute alors au tout, dans des conditions stériles,
EMI37.1
une solution de 30 mg de djb -cortexone (11-désoxy-corticosté- rone) (Jans 1,5 cm 3 d'acétone et continue d'agiter à 27 0. Au bout du 4 jours, on sépare le mycélium et extrait le filtrat de culture comme décrit dans les exemples précédents. D'âpres un examen chromât graphique sur papier, le résidu d'extraction est essentiellement constitue par un produit qui se comporte
EMI37.2
comme 'la matière de départ et par de la l4a.M.hydroxy...oortêxone.
On sépare ces deux substances à l'aide d'une chromatographie
EMI37.3
d.3 préparation sur papier. On obtient de la t -cortêXOD.e {[aïn -1-711.0 et d@ la d<-l4Q-hy<3roxy<-cortexone ([o.] + 179 )-
Exemple 30 On stérilise 120 cm3 d'une solution nutritive
EMI37.4
qui r.B'ferms pour 1 litre d'eau du robinet, 10 g de glucose b?u'.:.) -5 g da peptone, 5 g de NaClj, 3 g d'pxo Lab Lemco (axerait de viande du commerce) et 10 g de CaC03.9 et qui a été 9m3ëe è. un pH de 75 à: llaide 'une solution diluée dlh7drDxyde de sodium, puis ensemence avec une culture de la Houshe d's Streptomyces ? 7747 (Institut de botanique . spéciale de l'Ecole Polytechnique Féférale de Zurich).
On
<Desc/Clms Page number 38>
agite pendant 2 jours à 27 et ajoute alors, dans des con- ditions stériles, une solution de 30 mg de d,#-cortexone dans le5 cm d'acétone. On continue d'agiter à la même tempé- rature et, au bout de 2 jours, on sépare le mycélium. On extrait le filtrat de culture comme décrit dans l'exemple 1.
D'après un examen chromatographique sur papier, le résidu d'extraction est constitué par un produit qui se comporte comme la matière de départ et par de la 16a-hydroxy-cortexone.
On sépare ces deux substances à l'aide d'une chromatographie
EMI38.1
de préparation sur papier. On obtient dé' la cortexone (Ea3D -171 ) et de la d-16a.Éydroxy-cortexo-ae cCaD + 11
Les substances de départ à utiliser conformément au procédé peuvent être préparées suivant des procédés connus en eux-mêmesen partant des produits intermédiaires tétracycli- ques qui sont accessibles par synthèse totale, par exemple de la série du cholestane, du prégnane ou du testane,
<Desc / Clms Page number 1>
It is known that steroids having a natural configuration can be oxygenated or dehydrogenated with the aid of microorganisms, ie introducing hydroxyls or oxo groups or double bonds, or transforming hydroxyls into oxo groups. However, the applicant has made - the surprising observation that d, # - steroids behave differently with respect to these microorganisms, practically
<Desc / Clms Page number 2>
only the d form, that is to say the enantiomorphic form corresponding to natural steroids, being oxidized, while the formal remains unchanged.
This finding has therefore led to a new process of racemate cleavage which makes it possible to obtain, alongside oxidized d-steroids, the # -steroids which, until now, had only been encountered in rare cases. .
This new process is characterized by the fact that oxidizing enzymes produced by means of aerobic cultures of microorganisms are made to act on d, # - steroids, and that at least one of the enantiomorphic forms is isolated. Oxidizing enzymes are those which are capable of either introducing oxygen into the steroid molecule or removing hydrogen from it.
Starting materials for the new process are generally d, # - saturated and unsaturated steroids, bearing any substituents, for example d, # - compounds of the cholestane, coprostane, cholane, spirostane, d series. furostan, bufanolide, cardanolide, estrane, especially those of the pregnan, androstane and testan series, as well as their higher and lower counterparts, for example A-nor, D-homo, and 19 -nor-corresponding compounds Double bonds are found, for example, in position 1 and / or 4, 5, 6, 7, 9, 11, 14, 15 and / or 16.
Suitable substituents are in particular hydroxyl, oxo or
<Desc / Clms Page number 3>
EMI3.1
free or functional modified carboxylic groups, for example ester, ether, th ') ester, thioether, thiol- groups
EMI3.2
and thion-ester, acetal, mercaptal, ketal, hydrazone, semi-carbasone and enolic groups, for example in position
EMI3.3
2, 3, 6, 7, 11, 12, 16, 17, 18, 19, 20 and 21, as well as
EMI3.4
halogen atoms, in particular chlorine or fluorine, for example in position 9 and 17.
It is particularly advantageous to implement this new process in the case of
EMI3.5
d1? -pregnanlqueso compounds Specific starting substances in this series are, among others, d, / -progesterone, d $ '? e-17a-progesterone, d, -l6a-hydrosy -progesterone, d, t : -17a- hydroxyprogesté3 * on, d, -e-11-oxo-progesterone, d, '- lla- as well as d, * 113-hydroxy-progeoterone, d, t-9,11- or - ll, 12-dehydi> o-prosesteroneJ, d..t-19-o, w-progeeterol'H3, d, '' 6'-ll-O3s: ō17a-h.yd3.'ioxîy¯pi 'ogesterone, d, -I-11a- as well as d..t: 11-hYdOXY-17a-hYdroXy-progeatone, d, if-9-chloro- or -9-fluoro-lip, i7a-dîhsrdrosy- progesteron, dj, f-11, 18-di-hydrorcy-progesterone, d, -11,17,18-trlhYdroxy-proggterone, d .. ';
-11-hYàroXY-18-oxo-progesterone, d..9-chloro- or -9-fluoro-lip-hydroxy-l8-oxo-progeatone, Ci, - {- II, 18-dloxo-progesterone, d, e-19-nor-progeatone, d, -19-nor-lip- hydro: ty-l8-oxo-progesterone, d, C-cortexone, d, 118-hydroxy- and d, -l8 -oso-cort @ sone, d, t-oortîsone, d, if # hydrocortisone, d, t-17a; -hyctroxycortéxone, d, if-aldosterone, d, -pregnenolone, 1- dehydro-compounds corresponding
<Desc / Clms Page number 4>
EMI4.1
laying agents, for example d, -3-dhydro-progest: one, la d, - ;; ": l-dehydro-17-a-hydroxy-progesterone, la d, 1 - dehyd = o-1-oxo- - proge3teror.e, d, 1-dhydr o-11-a-hydro: y - p9ogestrone or d, 1-dehydro-ll-hydroxy-proge6terone, α, f-androstene-dia, d, f -l'7-methyl-androatène-diol, d, {- dehydro-epi- andro3teror.e, or their functional derivatives.
Particularly important starting substances for the synthesis of
EMI4.2
aldostere are, for example, I8 - 11-.actone of d, '- p 3,2C dioo-.1 ° -hydroy-prgnérie-18-oique, d ^ leA4¯ 3,18,20 - cr3.oxo-1.-hydroay-prgn: ne or its 18,11-cyclo-semi-acetal and d, - & -3,20-dioxo-lll8-dihydroxy-prëgnene. The corresponding compounds hydroxylated at position 17a should also be indicated.
The present process is advantageously carried out by causing the aerobic culture to act on the starting substance.
EMI4.3
of a single microorganism. Depending on the microorganism used, one obtains, for example, the d-steroid comprising a hydroxyl in position 6p, 7a, 7P, 8, IIa, lip, 14, 15a, 15P, i6a, 17a or 21, or comprising a double bond in position 1,2 and / or 4,5,
EMI4.4
or comprising an A 4¯3-ketonic and / or 17-keto group.
However, it is also possible to proceed by causing several cultures to act on the starting substance in an operating phase. It has then proved advantageous to cause the various cultures to act successively over time.
All aerobic cultures of microorganisms that
<Desc / Clms Page number 5>
EMI5.1
are capable of oxidizing steroldems, i.e. introducing hydroxyls or double bonds, or converting hydroxyls to oxo groups, suitable for the present process.
Some categories that are envisaged for the process have been indicated for example below.
EMI5.2
Position 6 Trichothecium roseum Lenzites abietina Rhisopus arrhizus
EMI5.3
G110cladium catenulatum Gliocladium deliquescens Position 70 Curvularia lunata
Curvularia pallescens
EMI5.4
Curvularîa falcata Curvularia fallax
EMI5.5
.Psziza spec.
Position 7:, Rhisopus arrhisus Proactinomyces rosées Position 8 Curvularia palieseens Pleospora Gaeumanni Helioostylum piriforme
EMI5.6
Position 11a; Rhisopus iiigrîcans Rhiopus arrhizus Aspergillus niger Aspergillus, ochraceus Penicillium notatum
<Desc / Clms Page number 6>
Penicillium adametzi Penicillium janthinellum Mucor mucedo
EMI6.1
Lensites sepiarla Tilletia tritici Neurospora sitophila Neurospora crassa
EMI6.2
Position 119 Curvularia lunata Curvularia pallescens Curvularia fallax Curvularia brachyspora
EMI6.3
Cunnlnghamel1a Blakesleena
Streptomyces fradiae Stigmlna platani Position II}:
Sclerophoma entoxylina Parasitella simplex Helicostylum piriforme
Mucor griseocyanus
EMI6.4
Mucor parasiticus Position 15 [alpha] Gibberella baccata Nectria cinnabarina
EMI6.5
HorModendrium viride Position 15ss: Lenzites abietina Spicaria Position 16 [alpha]: Didymella Vodakii
<Desc / Clms Page number 7>
EMI7.1
Actinomycetes A 6246, A 77 * 6 * A 7747. A 7451,
EMI7.2
A 7486 kept at the Swiss Federal Institute of Technology in Zurich
EMI7.3
Position 17a:
Trichothecium roseum Cephalothec1um roseum Oucurbitaria laburni Lspthosphaeria maculans Trichoderma lignorum Trichoderma glacum Acrospeira lavis
EMI7.4
Lophotrichua hartînîl Melanospora parasitica Thielavia terricola Dactylium dendroldes
EMI7.5
Position 21 Ophiobolu3 herpotrichus Sclerotinia fruoticola
EMI7.6
Wojnowlela graminia
Hendersonia r'ubi
Hendersonia abietus
Dilophosphora spec.
Phoma hibernica
Septoria aesculi
Aspergillus niger
EMI7.7
, Eshydrogenation in ll '2: Fusr1um solani Fsar1m cauca.a1cum Calonectria decorates Alternaria passiflorae
<Desc / Clms Page number 8>
Ophiobolus heterostrophus Ophiobolus Miyabeanus Didymella lycopersici Corynebacterium simplex
EMI8.1
Bacillus sphaer1cus Baeillus subtilis
EMI8.2
% cobacteria Position 3 and / or 17 Proactinomyces erythropolis
Proactinomyces aquosus
Proactinomyces restrictus
Proactinomyces roseus
Azotobacter
EMI8.3
94yeobacteria Mlcrococcua dehydrogenans Corynebacterium mediols.num Alca11gerHa faecalis Yeast and oxidizing bacteria Pseudomonas
EMI8.4
Flavobac terium
androstenedionleum Plavobacterlum carbonilicum Actinomyces albus Aspergillus niger
EMI8.5
Phycomyces blakesleeanus Penicillium chrysogenum.
<Desc / Clms Page number 9>
@As it emerges from the above list, the microorganisms indicated are fungi or bacteria and belong, for example, to the classes of phycomycetes, ascomycetes, basidiomycetes, Fungi imperfecti or actinomycetes.
For carrying out the process, the starting substances can be incubated under aerobic conditions known per se with cultures of the microorganisms indicated.
Growth takes place in a surface culture or, which is technically advantageous, in a submerged culture, in which case one shakes or shakes. The cultures contain assimilable carbon, in particular carbohydrates, as well as, where appropriate, growth substances, for example corn swelling water or beer wort, and inorganic salts.
It is therefore possible to use natural, synthetic or semi-synthetic nutrient solutions. A practically very simple process will be described in what follows without the invention being limited for all that to the indications provided. The organisms are cultivated in similar apparatus and under conditions. those which are known in the manufacture of antibiotics as the submerged culture process.
After the cultures have grown, the indicated starting substances are added in the form of a fine dispersion or solution, for example in methanol, acetone or ethylene glycol, and the incubation continues. Finally, we separate the mycelium,
<Desc / Clms Page number 10>
extracts the filtrate and / or the mass of mycelium and isolates from the extract in a manner known per se, the d-steroids and / or the # -steroids, for example by partitioning between solvents or mixtures of immiscible solvents with each other, by adsorption, chromatography, crystallization, transformation into functional derivatives, such as Girard compounds and the like.
These same reactions can also be carried out by first separating the active enzymes from suitable aerobic cultures of the organisms indicated and using them to the exclusion of the growing cultures. It is thus possible, for example, to separate the mycelium formed from suitable aerobic cultures of the organisms indicated, to suspend it in water or in buffer solutions, to add to these suspensions the starting substances indicated. , then incubate.
If several microorganisms are to act in one operating phase, the following procedure can be carried out, for example, After development of the cultures of the first organism, the starting substances indicated are added, in the form of a fine dispersion or of solution, for example in methanol , acetone or ethylene glycol, and continue incubation until maximum reaction is reached. A grown culture of the second organism and, if necessary, nutrients are then added to the reaction mixture, without filtering or isolating the reaction product.
<Desc / Clms Page number 11>
and appropriate growth slugs, then continue incubation.
If necessary, this is repeated with a third microorganism. The progress of the various oxidations can be followed by chromatography on paper.
The products of the process can be used as medicaments or as intermediates for the preparation of other valuable products. The new process has proved to be particularly interesting for the synthesis of! @ Aldosterone.
Thus, for example, we obtain in a single phase, with a good yield, d-aldosterone, by causing an aerobic culture of Ophiobolus herpotrichua to act on d, # - # 4-3,18, 20-trioxo-11ss-hydroxy-pregnene or on its 18,11-cyclo-semi-acetal.
When operating by means of a purely chemical process, approximately 7 stages are necessary for this synthesis, starting from the same initial product.
In general, the resolution of racemates according to this new process is particularly straightforward because the hydroxylated or dehydrogenated derivatives of one of the antipodes can easily be separated from the other antipode Unchanged, owing to their high polarity.
Already since the classic researches of Pasteur, it is true that a microbiological method was occasionally used to obtain one of the antipodes from racemates. Usually ordinary fungi or bacteria were used which assimilated the substances of
<Desc / Clms Page number 12>
starting point and which, in particular, assimilated the natural antipode (d) faster than the non-natural antipodes (±}. According to this process, in order to obtain an optically pure preparation, it was therefore necessary to treat microbiologically up to 'that at least one of the forms is completely destroyed, especially the one which, most of the time, was the most interesting from a biological point of view.
On the contrary, the process of the present invention provides, even in the case of a reaction which is only partial, the modified antipode, which, most of the time, represents that which is the most interesting from the point of view. biological, in an optically pure form, and this in the form of a derivative which is practically valuable in itself or for other synthetic purposes, and saves chemical transformations. If one of the antipodes is completely transformed, following this process, the other is also present in an optically pure form.
The present invention relates to a process for splitting racemates into their constituents.
The invention is described in more detail in the non-limiting examples which follow in which the temperatures are indicated in degrees centigrade.
<Desc / Clms Page number 13>
EMI13.1
E: r. Example 1.
In five conical flasks of 500 cm 'capacity, 120 cm of an aqueous solution are sterilized in each.
EMI13.2
70% beer mate and inoculated with Ophiobolus herpotrilus. Or shake the flasks at 270. After 4 days, and under sterile conditions, a 30 mg solution is added to each of the well-developed cultures. of dj, progesterone in 1.5 ctt (acetone and continue to stir at the same temperature.
After 4 days, the mveelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After combining them, the filtrates are extracted four times with 200 cm3 of ethyl acetate each time. The combined extracts are washed with water, dried and evaporated. From an estimate
EMI13.3
carried out by chromatography on paper, the residue (160 mg) contains approximately equal amounts of two compounds which behave like cortexone IIIm (Mao;): y-corticoaterone resp. progesterone). These two compounds are separated by a preparation chrom4qtograpille: /, PD7> paper, with the Bush B 3 system.
The areas corresponding to the cortexone are cut and eluted with 400 in.3 of 50% methanol. The methanol is then removed in vacuo. The aqueous solution which remains is extracted four times with 50 cm 3 of chloroform each time, after having combined them, the extracts are washed with water, dried and evaporated in vacuo. The residue is crystallized
EMI13.4
in a mixture of acetone and ether. and we oht1.b toua
<Desc / Clms Page number 14>
pu.-ce, d-cortexone with a melting point of 140 - 143.
[[alpha]] D = + 180 / in ethanol). The zones of the preparation chromatogram on paper which correspond to progesterone are treated in the same way. 92 mg of a crude extract are obtained, from which there is obtained, by repeated crystallization from a mixture of acetone and petroleum ether, pure # -progesterone, melting point 122 - 125; [[alpha]] D = - 190 (in acetone).
¯Example 2.
In a stirring vessel, inoculated with Cunninghamella Blakesleena 500 cm3 of sterile beer wort and stirred 3 days to 27. Under sterile conditions, a solution of 150 mg of d, # - cortexone in 8 cm3 of acetone was then added to the well-grown culture. At the same time, in a second container 500 cm3 of sterile beer wort are inoculated with Trichothecium roseum. The two cultures are agitated. for 3 days at 27 and then combine them under sterile conditions, after which stirring is continued at the same temperature.
After 3 days, the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After having combined the filtrates, they were entered as described in Example 1. According to an evaluation carried out on paper, the residue obtained (165 mg) is essentially formed of 3 compounds which correspond respectively to cortexone, to hydrocortisone, and cortisone. This residue is chromatographed according to the
<Desc / Clms Page number 15>
method by passing through 8 g of silica gel, eluting first with chloroform, then with a mixture of chloroform
EMI15.1
rt of acetone (99 1 L and finally with a mixture of chloroform and acetone (1: 1,;.
The various fractions (20 cm 3 each) are subjected to chroniatographic examination on paper.
The fractions eluded with chloroform contain impurities, while. in the fractions eluted with the mixture of chloroform and acetone (99: 1) there is a compound corresponding to cortexone. These fractions are combined and evaporated.
By crystallization from mixtures of acetone and ether,
EMI15.2
we get the - & cort3òne with a melting point of 138 - 112 ().
[a] p - 1150 (in ethanol). The other fractions studied with the mixture of chlo20form <s and. acetone (1x1) are basically made up of d-9 d-hydrocortisone and d-cortleone. They are combined, evaporated and the constituents separated using a preparation process on paper (p'popylenegly-col-t "luene system. The treatment of the areas of paper respectively containing the d-hydrocortisone and α-cortisone a 11reÙ "as described in Example 1. By crystallizing the two extraction residues from mixtures of acetone and iaopropyl ether, d-hydrocortisone of a melting point of
EMI15.3
205 - 210 ai D 165 (in ethanol) and d-cortisone with a melting point of 210 - 216, [a] D "- <- 195 (in d 1oxa.nne).
<Desc / Clms Page number 16>
Example 3.
In a shaking container, dissolved in 500 cm3 of tap water 1 g of sodium nitrate, 0.5 g of primary potassium orthophosphate, 0.25 g of magnesium sulfate-heptahydrate, 0.25 g of potassium chloride, 25 g of raw glucose and 0.5 g of Difco yeast extract, brought together to a pH of 5 and sterilized. This nutrient solution is inoculated with Didymella lycopersici and stirred for 3 days at 27. A solution of 120 mg of d, # - cortisone in 5 cm3 of methanol is then added to the whole, under sterile conditions. Stirring is continued for 4 days at 27, then the mycelium is filtered off and washed with water and ethyl acetate.
After combining the filtrates, they are extracted as described in Example 1. As can be seen from chromatographic examination on paper, the extraction residue contains a product which behaves like the starting material, and l-dehydrocortisone. Using preparative chromatography on paper / propylene glycol-toluene system), the constituents of this mixture are separated.
By recrystallization from acetone, d-1dehydro-cortisone with a melting point of 231 - 234, [[alpha]] D = + 1700 (in dioxane) is obtained By repeated crystallization from a mixture of acetone and isopropyl ether, pure "-cortisone with a melting point of 211-217, [[alpha]] D = - 1900 (in dioxane) is obtained.
<Desc / Clms Page number 17>
Example 4.
A nutrient solution is prepared containing, for one liter of tap water, 20 g of peptone, 5 cm3 of
EMI17.1
corn swelling (Cornsteep-l1quor) and 10 g of raw glucose and the pH of which is adjusted to 6.3. We py @ nd! 4 conical flasks with a capacity of 500 cm3 and sterilize in each of them 120 cm3 of the above nutrient solution and inoculate them
EMI17.2
with Wojnow1cia gram1nis. These cultures were stirred for 4 days at 27, after which was added, under sterile conditions, each time a solution containing 30 mg of
EMI17.3
(18- # p-llgj-lactone du U 4.x ".% 1 3, nGlJr'tlJ.o.ad .L.1. Iâ '., Doà pgli" w' 18-oic in 1, 5 char of methanol.
Stirring is then continued <3 "at the same temperature. After 8 days, the
EMI17.4
mycelium washes it with water and ethyl acetate, combines the filtrates and extracts them as described in Example 1. The extraction residue (140 mg) contains, according to an evaluation
EMI17.5
chyomstogra.phique on paper, a product analogous to the starting material, as well as .8 -x.llwlacton of Â! -3,20- dioco - .. (, 1-dihydror-prgnéne 18-ou. The constituents of this residue are separated using preparative chromatography on paper (forraamide -benzene -chloroform system) # As described in Example 1, the two components and the extract are eluted on paper.
By crystallization in a mixture
EMI17.6
acetone and ether, tl8yll.p .acton of d-A -'320-dioxo-llp21-dihydroxy-prëgnene-l8-oic of a
<Desc / Clms Page number 18>
mp 205-222, 1a] - '= 1170 (in acetone).
Example 5.
In 4 conical flasks, 12C cm3 of the nutrient solution described in Example 4 are introduced each time, then
EMI18.1
sterilized. Seed with Ophiobolus herpotricU6 and shake the cultures for 5 to 27 days. Then added to each of the cultures, under sterile conditions,
EMI18.2
a solution of 30 mg of d9 - ,. 8,20-trioo-â.-Idroy¯ pregnene or its 18,11-cyclo-semi-acetal in 1.5 car of methanol and continue to stir at the same temperature.
After 10 days, the mycelium is separated, washed with water and ethyl acetate, the filtrates are combined and extracted as described in example 1. Along with a product analogous to the material. initially, the extraction residue contains a compound which behaves like aldosterone. This residue is purified using preparative chromatography on paper (Bush C system), the elution and extraction being carried out as described in Example 1. In a mixture of acetone
EMI18.3
and ether gives crystalline d-aldosterone which melts in 162 - 168, .ct] =. 142 (in acetone "
<Desc / Clms Page number 19>
Example 6.
In a shaking container, 300 cm3 of the nutrient solution described in Example 4 are sterilized and inoculated with Wojnowicia graminis. After 4 days of stirring, the culture has developed well and a solution of 50 mg of d, # - # 4-3,18,20-trioxo-11ss-hydroxy-prégnene is added to it under sterile conditions. or its 18,11-cyclo-semi-acetaldans 3 cm3 of methanol. At the same time, in a second / stirring vessel, 300 cm3 of beer wort sterilized with Trichothecium roseum are inoculated.
The two cultures were stirred for 4 days at 27, then combined under sterile conditions, and continued to stir at the same temperature. After 4 days, the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After having combined the filtratson extracts as described in Example 1.
Besides a compound which behaves like the starting material, the extraction residue (55 mg) contains α-17 [alpha] -hydroxy-aldosterone. The latter is obtained in the unitary state after preparative chromatography on paper (propylene glycol-toluene system), the elution and extraction of the papers being carried out according to the indications given in Example 1.
<Desc / Clms Page number 20>
Example 7
In a shaking container, 300 cm of beer wort are sterilized and inoculated with Trichotecium roaeum. The culture is stirred for 4 to 27 days, after which a solution of 60 mg of d, # - aldosterone in 3 cm3 of methanol is added under sterile conditions. Stirring is continued for 4 days at 27, then the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After combining them, the filtrates are extracted as described in Example 1. The extraction residue which, next to the starting material contains d-17 [alpha] -hydroxy-aldosterone, is separated with using preparatory paper chromatography (Bush C system).
By elution from the corresponding areas of the papers according to the indications given in Example 1, d-17 [alpha] -hydroxy-aldosterone is obtained in unit form. It crystallizes in a mixture of acetone and ether. From the zones corresponding to the starting material *, by crystallization in a mixture of ether and acetone, la-aldosterone with a melting point of 162-168 and a rotatory power is obtained. specific [[alpha]] D = -1420 (in acetone).
Example 8
In a shaking container, inoculated with Ophiobolus herpotrichus 300 cm3 of sterile beer wort and stirred at 27. After 5 days, add to the whole, in
<Desc / Clms Page number 21>
under sterile conditions, a solution of 60 mg of d, - # 4-
EMI21.1
5,20-dioxo-ilpj, 18-dihydrosy-pregnens in 4 car of methanol and continue to stir at the same temperature. After 6 days, the mycelium is separated and washed with water and acetate
EMI21.2
d t ethyl.
After combining them, the cossus filtrates indicated in Example 1 were extracted. Diaprés evaluated by paper chromatography., The residue consists of a compound analogous to the starting material, thus
EMI21.3
only by d-A ¯5J, 20 dloxo-lipl8,21¯til) ihydro> î3f¯prëgaàae which is separated using a preparative chromatogaph1G on speaking (propylee-glyool-toluene system). d, oL / -3,, 20 ... dioxo. "llp., 18j, 21-.trihydroxy-pygnèns crystallizes from a mixture of acetone and ether.
Example
In a shaker container, sterilize 200 cm
EMI21.4
of a (.: olutl!: m nutrient which contains, for one liter of tap water, 10 g of raw glucose., 5 g of peptone, 3 g of extract
EMI21.5
of meat (O.Ko Lab .temco L 5 g of sodium chloride and 10 g of calcium carbonate, and which is adjusted to a pH of 7.5, then inoculated with a culture of a strain of Streptomyoes albus.
We stir 2 days at 27 and then add to the whole, in
EMI21.6
under sterile conditions, a solution of 50 mg of d / L-a-estradiol in 2 cm3 of dioxane. Stirring is continued for 3 days at 27, after which the mycelium is separated and the
<Desc / Clms Page number 22>
Cultured filtrate with methylene chloride. According to chromatographic examination on paper, the extraction residue
EMI22.1
is constituted by- compounds, corresponding to l1a-ostradlo1 and 1 ort a! e The constituents of the mixture are separated using preparative chromatography on paper and one obtains, by crystallization from aqueous methanol,
of a
EMI22.2
part .e ae t = Wdio. with a melting point of 175-178, - ta] - -81 and, on the other hand, doestrous with a melting point of 25 '- 5g - + 101 & Example 10 A 200 cm5 of a c Ë ;:. After well-developed stirring of Pseudomonas, a solution of 50 mg of in 2 ml of dloxane is added under sterile conditions. We shake z8 tt: id's: 'r3: S 2'Yo and. then removing the culture with methylene chloride. According to a chromatographic examination on paper, the exaction residue behaves as
EMI22.3
androsterone and r.:.; "51.1. ' ? W .... ir 'CW vLE'. '.
The constituents of this mixture are separated using a preparation chr-omatographiê on paper and 1 ion is obtained by crystallization
EMI22.4
in aqueous methanol, la) ja; 1droatéx "one with a melting point of 180-1820; [a] D m g2a is ë-3.17ioetondrostane with a melting point of 130-132". [a] p - - 109.
<Desc / Clms Page number 23>
Example 11
EMI23.1
- .. ¯¯¯¯ - ¯¯¯ ..
At 200 because of a well-developed culture of agitation
EMI23.2
According to a strain of Streptomyces fradia, a solution of 50 mg of d, -prgillnolone in 2 cm of acetone is added under sterile conditions. Stirred for 24 hours at 27 and then extracted the culture with methylene chloride.
Based on chromatographic examination on paper, the residue
EMI23.3
extraction behaves like pregnenolone and progesterone. The constituents of the mixture are separated using preparative chromatography on paper and obtained, by crystallization from mixtures of acetone and ether
EMI23.4
petroleum, 7.a-prgrnolane with a melting point of 187-189, la] D = -250 and d-progestroae with a melting point of 125-127, [[alpha]] D = + 1900 - @
Example 12
EMI23.5
..¯..m..¯, ... ¯¯¯.
If in the example above, a culture of Aspergillus niger was used to transform the dl-pre @ 1enolonGI instead of the culture of the strain of Streptomyces fradiae and which was incubated and processed as indicated, we ,
EMI23.6
can then also obtain, -pregnenolone with a melting point of 185-1880, [a3p "-23 and d-progesterone with a melting point of 123-126, [aj D = + 191.
<Desc / Clms Page number 24>
EMI24.1
EK & sple 13
EMI24.2
A nutrient solution is prepared which contains,
EMI24.3
for a liter of tap water, 2.6 g of tartaric resolves, 2 6 g of 8? ''? '3rGf of ammonium, 0117 g of C31.'a.' at'. áfn.ilt3'iâ'U:
'? s 0.4 g of secondary ammonium phosphate, 0, k- g of potassium carbonate, 0.27 g of magnesium carbonate, 50 g of glucose and 1 g of yeast extract (Difoo) and adjust the pH to, C. In a conical flask 120 μl of this solution are sterilized, inoculated with Rhizopus nigrieans and stirred at bzz. Have?; After 2 days, a solution of 30 mg of dan -progesterone in 1.5 cm of salt is added to the whole, in sterile O 2, 'onN, and the stirring is continued for 2 days at'. The mycelium is then separated and washed at 1 c: with and with methylene chloride. After having combined it, the extract is extracted:!. 1t:;. "" '. 7.a..S'v..T - .; 's "n. to 5 1? 0} .1!' isos with methylene chloride, 18.l them:; ::. tt: '2.it,; j to 1 at \ $ read dries and evaporates them.
An eissaien chcatogph1qu ur paper of the reú: 1 ..: '! Ü of extraction against cua this last sst constituted with party-as zip? to nearly equal by compounds which correspond respectively to progesterone st è la 11a-nYúro ;;: y-proges-; 6 ... i0i3.L'o 0: repairs the constituents of the mixture at â3t.k2 of a preparative chromatography on paper is obtained by crystallization from dan mixtures of dtacetcne and L 4t G 4ne.i, '. dIU part, la / progea0rOnê <3 * a melting point of 118-120, C cI -187 1 (in dioxane) e, tauure part, the â-l1.: - hydroxy-p: rog6stél "' one with a melting point of 69-1 '. [a] 1) = + 176 (in chloroform).
<Desc / Clms Page number 25>
Example 14 A nutrient solution is prepared containing, for one liter of tap water, 10 g of cane sweat; 10 g of
EMI25.1
Trypton-Difoo, 2 g of sodium nitrate; 1 g of secondary potassium phosphate, 0.5 g of magnesium sulfate, 0.5 g of potassium chloride, and 10 mg of ferrous heptal sulfate.
EMI25.2
hydrata, adjusts the pH to 7PO and then added 2.5 g of calcium carbonate. In a conical flask one. sterilize 120 eu 3 of this solution, inoculate with Curvularia lunata and stir at 27. After 2 days the mycelium is separated, washed with little water and suspended in 120 cm3 of distilled water.
To this suspension was added a solution of 30 mg
EMI25.3
of in 1.5 com of adtone and shakes for 30 hours at 27. Extracted el1.suite le, mdiangs 4 times with ethyl acetate. The extracts are washed with water, dried and evaporated. From an ehromato- evaluation
EMI25.4
graphically, the extraction residue is essentially made up of two substances which correspond respectively to cortexone and corticosterone.
Using preparative paper chromatography and subsequent crystallization in mixtures of acetone and ether
EMI25.5
from petroleum, we obtain / C-eortexone with a melting point of 138-141 la] D - -175 (in absolute alcohol) and d-oort1coBtone with a melting point of 178-181, [ a + 220 (in absolute alcohol).
<Desc / Clms Page number 26>
EMI26.1
..ti> C: .a). 5.
¯¯Wl.). "" # ;: Yoo & II., P. "" R ... a "" "mt Adding ,, to one r1 -" '- -' ,: "i" "" Sa \ ' ; "'- Ó',. Y" t -: - 1 of Curvularia lunata in 120 m3 of distilled water,} suspension which was obtained corsas 5s'i}, 1! 3. f "::; J" mpJ, D tt.! A itaic '. :: a solution \ .1 =! 1O} "i ing ds ë'-T.7chyës'cxy-oo? T: o êôv-: j" j..5 '- ".......... t ... 1 ... . ':' i Gte1: 1 operating CC:. 'LU \ 3 tr.-''.-. vï'i, Fl.;: 7 "''. ¯ avoii3 sg: 1.; 0 posing z days 37 1 ': \ t't') .- f "JjJh'i .1." ... hYJ "': t.1 ... \,.:; ¯f: .. = r, -: ¯. ...;:; c'L "$ rlÇ1't .... \ ';); ::." I bzz evaluation sootuik'; jï3 ehoEË'bc; 3iH Dtii? i efôstîrfcl! # raise waters ubaui / ov . which 6û \ '. jHcdnt at 17o> -h2yâïfos; jr- ccr'csxon e;) t at 17 (z-11tlo1:.: - i .eJG ::' i; .. c ::; j ' 1Í / (.) L ;? 0 - ,.
S>. : t mix he has it ... 1t!> "1h'-¯) $ .: L..c. ':' r :.:.: .. ¯: - r '..s6 ::. v >, 5? .. -. ';' ,. e Y .. ¯ :: 4n 5: iv3 on paper and l5on Oi J \ a "1 ¯ ....... f ':: ¯": = 3 ': I <......... 1. Ï>.' .. '' .. SF; '' L.:,...;'<- ':: ":::: ;; t3, a. $ i. "t '."'. k â; n
EMI26.2
from a manure point '& -. SILO-- -l :: as [au- -: i! SO "'1 absolute alcohol]' and other; '. 1.'iy..m: ¯' .f '-.;,': 7 , ..x- "-,.: é: <. '. rt ..!. Pi-: f' k.ic i.ji2; 'i':; ryC7: r'i3aa0â ';> from here; ; r: 3:; ..-- :; <.- ..: - v: a.i3 'i :: 09-23.2, [aj # 171e
EMI26.3
(in "," ,, .. 1 absolute).
E; '- iin}) 1> oe 16 In a r6c: 1.i'Ü1t ià shakes;?;, On'? L :: d3'i, ï'iLéw .in 500 emï, u of the tap., 1 g of sodium nitrate "O / J 5 g of primary potassium orthophosplate ,, 0, 2 g of magnesium sulfate-heptahydra te, 0.25 g of potassium chloride, 25 g of raw glucose and 0, 5 g of yeast extract 17i'eap brings the whole to a pH of 5 and sterilizes. This nutrient solution is inoculated with Didymella lycoperslci and stirred for 3 days at 27
EMI26.4
Then added, under sterile conditions, a solution of
<Desc / Clms Page number 27>
EMI27.1
120 mg of d. Jr¯l7aAvjûvoiz $ ** QQX <tQQB t4von & in QtnJ remove metliancl. We shake 4 LG again ''! '4S 2E does not separate the mycelium? wringing and washing with water and ethyl acetates, After having combined the filtrates, they entered plush described in 1! simple 1.
The extraction residue is constituted., As shown by an examination 1: d ".t: ï't7r2i: ïC'S ..; '. T.:w3î,' uw on paper by a product which s's eoraports will cost! MEt: igr '. & From depart and by "f¯uchyF.) T7'w''t 4i" 1, V1-hyd.PwaiJ.L YJ S9V: .7'Lfiw.Jej.YS.i We separate the C: G s "of: LrGL! .s': zê: 3 this mixture l5aide of a Cl preparation on paper chromatography (propyl & neglyeol¯to3.uèsi system).
By recris tallisatioa in E3. '' "". È.'t ', C7g OR obtains on the one hand the 3.wy¯l-dëhyd ::' esa.bÏo :: ma 'aca ;; E: = tun: of a melting point it:. i ... ', 3''j' '[a 4- 98 (<3ar4s the dioxsume) and, other pa2> tj, lal7c; - hydrox? -corticoatdrone with a melting point of 2-. .:. arl [o3D -i68o in absolute alcohol).
EMI27.2
Example 17
EMI27.3
Retort described in the previous example, we J; ':; xJ.lâ' ut .. 'culture of Didymella a:;' Jt'àiif? Ï: î.é. 5''i 7 then added a solution of 120 mg of 21-trimthylac4tat d, 17a-hydoxycoytiûogteron® in 5 mg of acetone.
After stirring for 4 days at 27, the reaction product G'c; 'ff121' '3: E:' c ', -11t Clv is isolated. ..II111I '..' T '? ! The extraction residue is essentially constituted, as shown by an evaluation carried out by chromatography on paper, by '' 1: 3uë products which occur.
<Desc / Clms Page number 28>
EMI28.1
respectively behave as the starting material. and as the tritnethylaoêtE1.te of l-dcµhydrQ¯17āhyd: i? o.xy * corti-¯ c03t6rcn: e :.
The constituents of this mixture are separated with the aid of a preparation chpomaogpaphie on paper and one obtains, by crystallization from ethyl acetate, on the one hand: 2;:. Zrxhy .aca, of the -17a-hycro.ycr .- ,: o 4t = 'on
EMI28.2
EMI28.3
of a painting of i us 5 or of 231-232, fa3p = '-ll5 (in the dîo, xa.rr,: e) and on the other hand, the G "lW.d.!'. 3 '4 ± 1,. & GVGS 'of d-.xvtdr> a.'Ex.ydrsytc; y.coticosteo: ae of a fusion paint of 233236 p [al 4-1030 (in chloroform).
EMI28.4
Example 18
EMI28.5
#J> J> MM t * K M T ta * B # * a We inoculate with Didymslla .yop:.:. G 120 because of the nutrient solution described in Example 4 and stir for 2 days at 27. Then added, under conditions 1 ':,'; é '. ": Lles, a solution of 30 mg of ± -aldo8teron # in 1.5 cm' c'Pacétont'3 and continued stirring with mime h ': ml}:) (5- erasure.
After 3 days, the mycelium is separated and washed with water and i. 1 taaé.: - ate of ethyl. After having combined the filtrates, it is extracted as described in Example 1. As shown in exaI: 1.an chromatogj =, aphiquê on paper the residue ± the extraction consists of a product which behaves oc- maes:.: 3.0'I'Oiscf and by.-t'dt'3ytiG-, iLO'Fx'OL, We separate this-si two products with the help of a preparation chromatography t:
u? paper (Bush C system) and crystallizes them
<Desc / Clms Page number 29>
then in a mixture of acetone and ether. We obtain
EMI29.1
lat-aldosterone (melting at 110 '/ 158-165', [UID = -i4l 0 [in acetone]) and d-1-dêb-ydro-aldosterone (bands in the infrared, in chloroform , among others at 2t82gp 2j95gp 5p87g, 6,01n. 6.17. 6p24J.J '6e9lg, 7el5ge' (, 3llt ..
7p77g 9, ten, 10, 68, and 11, 28 | i). d-1-dehydroaldosterone is acetylated in the usual manner using a mixture of pyridine and acetic anhydride. We obtain a mixture of two, products which, at the
EMI29.2
chromatography on paper with the pr.opylàn0g1ycol-toluÈ / i.'H '; system, gives "respectively, R values of Oe7O Ot O, 15v these two products are respectively lô 18,21-diao & tat and do la dl dehydro The latter is obtained in a pure crystalline form by treating the crude mixture of acetates with absolute ether.
Fusion point
EMI29.3
182-18 ::,, bands in 1 t infra '.: \. "Oug in Io methyltnô chloride, among others at 2p81., P 5.74j} ,,; 6, Olv ,, 6 16pe bzz 7p31 $ 8 , \\ 17t 8iJ93J., Y 8.98211.J! 9.1'72.I 'lO, 03 !, lO, 221.J! LOp62t.ll 11.32, and 12.29.
Example 19
EMI29.4
One prepares, cornai described dangllexeiaple 6th t 120 cm '' of united -culture of Didymella lycopêreio1. To this is added, under sterile conditions, a solution of 25 mg of d, E -EOl't1i3oi1e in 1.5 µm3 of methanol. We shake for
<Desc / Clms Page number 30>
EMI30.1
3 plays at 27 and then separated the Mycelium. On Go checkered water and ethyl acetate. After stripping the filtrates, the extract described in the example is obtained. According to a chroma graphic examination on p-apîjr, the distraction residue is formed from l-dehyâro-cortiBone ot a product which ss CO! I1po ;:. t like 0 !! separates ava dziuz on steps by chromatography of the preparation on paper.
We obtain d um; on the one hand d-1-dehydro-cor-tisone [melting point 2j51 "2j54, [a! D - + 1690 (in âioxanna) j and, on the other hand, E -oortisone [melting point = 215, [ 0.1D - "203- (in dioxane)].
Example 20
With a culture of Trichothecium roseum, we seed 120 cm3 of a sterilized nutrient solution of Czapek-Dox and stir for 5 days at 27. Then added to the whole, under sterile conditions, a solution of
EMI30.2
30 mg of d, Z-aldootone in le5 am3 of acetone and continues to stir at the same temperature. After 4 days, the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate.
After combining them, the filtrates are extracted as described.
EMI30.3
in Example 1. According to a chrometographic examination on paper, the extraction residue is essentially constituted by a product which behaves like aldosterone, and by
EMI30.4
17o-hydroxy-aldosterone. We separate these two substances
<Desc / Clms Page number 31>
EMI31.1
1.c :: of a preparative chromatography on paper (Bush system 0) We obtain oFn AJ "'G6dL4 IICroata7 and d¯17a-hydroxy-aldostërone.
Example 21 With a culture of Ophiobolus horpo4cirîchuo, we
EMI31.2
EMI31.3
inoculate 120 cm "6th sterile beer must and stir for
EMI31.4
3 days to 27. We then add to the whole, under conditions
EMI31.5
sterile, a solution of 40 mg of (1 $ -----, .r..8j..g'otx du d, L¯A l ..3ndq o0--3.p-hydrQyxgna.3.l8- oic in 1.5% Acetono and continue to stir at 27. After 6 days the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After connecting the filtrates, they are washed. traits '#olLttl ":' described in 1 Example 1.
According to an examination ahr omztogra3:.: Q, i on paper 3 the residue <38xtraotion is constituted by a product, which behaves as the starting material, and by the (l8 3..j ...; o :, s du 3at-> dco-- llpj We separate l @ s two substances using uno ahx 7o: g'oraph of preparation on t Iton paper obtains the (l8 ## - llp) -lacton @ au , '3 p acâ-. D.cCto-llp-hydroxy-prgs: t.8.o: cu' [a] D -IS1! -0) and la (18 # -ll) -. Lsctone of c- ba 3 0-d. r-.3., 2.-c.kZ; crox .. rgri: ea.8 ... o; qu, Lcc -? '7 j.
EMI31.6
Example 22
EMI31.7
With a dtOph3.oboiu herpotrîchue culture, we
<Desc / Clms Page number 32>
inoculate 120 cm3 of sterile beer wort and stir for 3 days at 27. Then added to the whole, under sterile conditions, a solution of 40 mg of d, # - # 4-3,18,20-trioxo-11ss-hydroxy-pregnene or bran in 1.5 cm3 of acetone and continue shake 27. After 6 days, the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After combining the filtrates, they are treated as described in Example 1.
According to a chromatographic examination on paper, the extraction residue consists of a product which behaves like the starting material, and of aldosterone. These two substances were separated using preparative paper chromatography to obtain ± -44 or its 18,11-cyclo-semi-acetal, as well as d-aidosterone ([[alpha] ] D = + 142).
The starting material denied in use can be prepared for example according to the procedure described in Belgian patent No. 547,904 of May 17, 1956 in the name of Mr. Tadéus REICHSTEIN and having the title: "Process for the preparation of oxygenated steroids and new compounds thus obtained .
Example 23
Using a culture of Ophiobolue herpotrichus, 120 cm3 of sterile beer wort are inoculated and stirred for 3 days at 27. Then added to the whole, under conditions
<Desc / Clms Page number 33>
EMI33.1
sterile, a solution of 40 mg of dl.19-nor-prOgestéron in 1.5 cm of acetone and continued to stir at 27. After 3 days the mycelium is separated and washed with water and
EMI33.2
ethyl aoét8t. After combining the filtrates, they are extracted as described in Example 1.
According to a chrornatographic examination on paper, the entry residue is oon: 3tituated by a product which behaves as the starting material and by dg the 19-nor-oort0xoneu These two substances are separated with the aid of preparation on paper ohromatogr-aph10 and dQ19-nor-cortexon (tal M - <. l43) and dQ19-nor-cortexon were obtained. This cleraîèrg is acetylated in the usual manner using a mixture of pyridine ot c1 tan .. acetic hydride. 21-acetate present a rotatory power
EMI33.3
spoifique [a] D + 145.
Example 24 With the aid of an ô sophiobolua heI'potl "1chua culture, 120 cm 3 of sterile beer wort are inoculated and stirred for 3 days at 27. The whole is then added in containers.
EMI33.4
sterile ditions, a solution of 40 mg of d3 / ± ¯9o> ± luoro-lip-hydroxy -progesterone in 1.5 cm 3 of acetone and continue to stir at 27. After 4 days, the mycelium is separated and washed with water and ethyl acetate. After combining the filtrates, they are extracted as described in Example 1.
According to an chromatographic examination on paper, the residue
<Desc / Clms Page number 34>
extraction consists of a product which behaves like the starting material, and of 9 [alpha] -fluoro-corticosterone. These two substances are separated using preparative chromatography on paper and
EMI34.1
1a ± -9a-tluoro-ll-hydroxy-progesterone (la] D - -190), and 9a-fluoro-eortieosterone, The latter is acetylated in the usual manner using a mixture of pyridine and acetic anhydride. 21-monoacetate has a specific rotatory power [[alpha]] D = + 187.
Example 25
Using a culture of a species of the genus Rhizopus, 120 cm3 of sterile beer wort are inoculated and stirred for 3 days at 27. Then added to the whole, under sterile conditions, a solution of 30 mg of d, # - cor-
EMI34.2
texone (11-deoxy-cortlooBtarone) in 1.5 cam3 of acetone and continues to stir at 27. After 4 days, the mycelium is separated and the culture filtrate is extracted as described in the previous examples. chromatography on paper,
the extraction residue consists essentially of a product which behaves as the starting material and of 6p-hydroxy-cortexone. These two substances are separated using preparative chromatography
EMI34.3
on paper. We obtain ± -aortexon0 (la] D = -175) and d-6p-hydroxy-cortexone ([[alpha]] D = + 100).
<Desc / Clms Page number 35>
Example 26
Using a culture of a species of the genus Peziza bearing the reference number M 26 at the Swiss Federal Institute of Technology in Zurich, 120 cm3 of sterile beer wort are inoculated and stirred for 3 days at 27. Then added to the whole, under its sterile conditions, a solution of 30 mg of
EMI35.1
d, ±> cor.txo: 1.e (11-deJ13oxy-certicogtêl "on0) in 1.5 cm 3 of acetone and continue to stir at 27. After 4 days, the mycelium is separated and the culture filtrate as described in
EMI35.2
1 (1i.fmpl p:; ', acé: dent.
According to a chromatographic examination on paper .. the extraction residue is essentially constituted by a product which behaves like the starting material
EMI35.3
and by d's 7a-hydro3Ey-coî> t & one, These two oubstanocs are separated using dJ'.1: preparative chromatography on paper.
We obtain from t-cor1:; (i!: Xona ([a) D = -173) and d-7a-hydroxy; -cortaxone (ïct] d3 + 155).
Example 27
Using a culture of Lenzites abietina, 120 ounces of sterile beer wort are inoculated and stirred 3 days to 27. One then adds under sterile conditions, a
EMI35.4
solution of 30 mg of d,% -cortexone (11-deoxy-corticoctone) in 1.5 cm of acetone and continue to stir at 27. After 4 daysa, the mycelium is separated and the filtrate is extracted from
<Desc / Clms Page number 36>
EMI36.1
Otlt \ .1I 'a3Tlli described in the previous examples. According to chromatographic paper on paper, the extraction residue is essentially constituted by a product which behaves as the starting material and by 15p-hydroxy-eortexone.
These two substances are separated using chromatography
EMI36.2
preparation on paper. We obtain /, Vl-oortexone ([aJD r -170) and d-i5¯h'droxy eortexarie ([a.] D = + l4l).
Example 28
EMI36.3
.aINWWibli aa
Using a culture of Glbberella baccata, 120 cm 3 of a nutrient solution of Czapek-Dox and are inoculated. shakes 3 days at 27. We then add to the whole, in
EMI36.4
conditions exited, a solution of 30 mg of d, l ... cortexone 3.1.t oxy a> rtiaoatrctke in 1.5 cm of acetone and continue to stir at 27. After 4 days, the mycelium is separated and the culture filtrate is extracted as indicated in the previous examples. Based on chromatographic examination on paper, the extraction residue is essentially constituted by a product which behaves like the material of departure, and by
EMI36.5
of: 5α-hydroxy-cortezone. These two substances are separated using preparative paper chromatography.
L-cortexone ([a] D: = 1 -169) and d-15a-hydroxy-cortexone (cx1 + 195) are obtained.
<Desc / Clms Page number 37>
Example 29
Using a culture of Pleospora Gaeummani, 120 carbons of sterile beer wort are inoculated and stirred for 3 to 27 days. Then added to the whole, under sterile conditions,
EMI37.1
a solution of 30 mg of djb -cortexone (11-deoxy-corticosterone) (Jans 1.5 cm 3 of acetone and continues to stir at 27 0. After 4 days, the mycelium is separated and the culture filtrate as described in the previous examples.After a graphic chromate examination on paper, the extraction residue is essentially constituted by a product which behaves
EMI37.2
as the starting material and by 14a.M.hydroxy ... oortexone.
These two substances are separated using chromatography
EMI37.3
d.3 preparation on paper. We obtain t -cortêXOD.e {[aïn -1-711.0 and d @ la d <-l4Q-hy <3roxy <-cortexone ([o.] + 179) -
Example 30 120 cm3 of a nutrient solution are sterilized
EMI37.4
which r.B'ferms for 1 liter of tap water, 10 g of glucose b? u '.:.) -5 g of peptone, 5 g of NaClj, 3 g of pxo Lab Lemco (ax of meat from trade) and 10 g of CaCO3.9 and which was 9m3ee. a pH of 75 using dilute sodium hydroxide solution, then inoculate with a culture of the Houshe d's Streptomyces? 7747 (Special botany institute of the Federal Polytechnic of Zurich).
We
<Desc / Clms Page number 38>
stir for 2 days at 27 and then add, under sterile conditions, a solution of 30 mg of d, # - cortexone in 5 cm of acetone. Stirring is continued at the same temperature and after 2 days the mycelium is separated. The culture filtrate is extracted as described in Example 1.
According to chromatographic examination on paper, the extraction residue consists of a product which behaves as the starting material and of 16α-hydroxy-cortexone.
These two substances are separated using chromatography
EMI38.1
preparation on paper. Cortexone (Ea3D -171) and d-16a are obtained.Eydroxy-cortexo-ae cCaD + 11
The starting materials to be used according to the process can be prepared according to processes known per se, starting from tetracyclic intermediates which are accessible by total synthesis, for example from the cholestane, pregnan or testane series,