WO2024071365A1 - 活性酸素低減用組成物 - Google Patents

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WO2024071365A1
WO2024071365A1 PCT/JP2023/035580 JP2023035580W WO2024071365A1 WO 2024071365 A1 WO2024071365 A1 WO 2024071365A1 JP 2023035580 W JP2023035580 W JP 2023035580W WO 2024071365 A1 WO2024071365 A1 WO 2024071365A1
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WO
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composition
active oxygen
reducing
reducing active
biosurfactant
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PCT/JP2023/035580
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博瑛 山根
隆之 浅田
増俊 野尻
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株式会社カネカ
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    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
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    • A01G7/00—Botany in general
    • A01G7/06—Treatment of growing trees or plants, e.g. for preventing decay of wood, for tingeing flowers or wood, for prolonging the life of plants
    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests
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    • A01N43/04—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom
    • A01N43/14—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom six-membered rings
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    • A01N43/40—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one nitrogen atom as the only ring hetero atom six-membered rings
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    • A01N63/20—Bacteria; Substances produced thereby or obtained therefrom
    • A01N63/22—Bacillus
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    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P13/00—Herbicides; Algicides
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    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P21/00—Plant growth regulators

Definitions

  • This disclosure relates to a composition for reducing active oxygen.
  • Patent Document 1 discloses a pharmaceutical composition for imparting environmental stress resistance to plants, which contains a yeast cell wall enzymatic hydrolysate. Patent Document 1 discloses that by administering the yeast cell wall enzymatic hydrolysate to young seedlings and/or seedlings after planting in a field, it is possible to improve resistance to environmental stresses such as temperature stress, salt stress, light stress, and water stress, and that a surfactant can be blended, and in the examples, brewer's yeast is used.
  • Patent document 2 discloses a soil treatment composition for enhancing immune health, growth and/or yield of plants, the composition including Wickerhamomyces anomalus yeast and/or its growth by-products.
  • the soil treatment composition of Patent document 2 is disclosed to be a microbial-based soil treatment composition for enhancing the health, growth and total yield of crop plants by enhancing the health and/or growth of the plant's root system and by stimulating the plant's innate immunity and other metabolic systems that contribute to plant health and productivity.
  • Wickerhamomyces anomalus yeast is a yeast-like fungus that produces ethyl acetate, and is known to cause a paint thinner odor when attached to food, etc.
  • Patent Document 3 discloses the use of at least one lipopeptide as a plant stimulant for plant growth.
  • the photosynthetic efficiency at the start and end of water stress is evaluated by the ⁇ value (PSII), but no decrease in photosynthetic efficiency is observed when comparing the start and end of water stress.
  • Patent Documents 1 to 3 do not describe or suggest a decrease in photosynthetic ability due to ROS, nor do they describe or suggest a composition that can suppress the decrease in photosynthetic ability due to ROS.
  • the purpose of this disclosure is to provide a composition for reducing reactive oxygen species that can suppress the decline in photosynthetic ability caused by ROS.
  • a composition for reducing active oxygen comprising at least one biosurfactant selected from a peptide-type biosurfactant and a sugar-type biosurfactant, and an agriculturally acceptable carrier.
  • the composition for reducing active oxygen according to [1] wherein the biosurfactant is contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen.
  • the biosurfactant is contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen;
  • the biosurfactant is contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen;
  • the composition for reducing active oxygen according to any one of [1] to [7] which is intended to be sprayed on plant leaves.
  • a precursor of a composition for reducing active oxygen which becomes the composition for reducing active oxygen according to any one of [1] to [8] upon dilution.
  • This specification includes the disclosure of Japanese Patent Application No. 2022-158110, which is the priority basis of this application.
  • composition for reducing reactive oxygen species disclosed herein can sufficiently suppress the generation of ROS.
  • 1 shows the ETR of Experimental Example 1.
  • the SPAD value of Experimental Example 1 is shown. 1 shows the ETR of Experimental Example 2.
  • the SPAD value of Experimental Example 2 is shown. 1 shows the ETR of Experimental Example 3.
  • the SPAD value of Experimental Example 3 is shown.
  • the SPAD value of Experimental Example 4 is shown. 1 shows the ETR of Experimental Example 5.
  • the SPAD value of Experimental Example 5 is shown. 1 shows the ETR of Experimental Example 6.
  • the SPAD value of Experimental Example 6 is shown.
  • 1 shows the ETR of Experimental Example 7.
  • the SPAD value of Experimental Example 7 is shown.
  • the SPAD value of Experimental Example 8 is shown. 1 shows the ETR of Experimental Example 9.
  • the SPAD value of Experimental Example 9 is shown.
  • the composition for reducing active oxygen according to the present embodiment includes at least one biosurfactant selected from a peptide-type biosurfactant and a sugar-type biosurfactant, and an agriculturally acceptable carrier. Note that the composition for reducing active oxygen according to the present embodiment can suppress not only the generation of active oxygen but also the generation of ROS, so the composition for reducing active oxygen can also be read as a composition for reducing ROS.
  • the composition for reducing active oxygen includes a biosurfactant.
  • the biosurfactant may be at least one biosurfactant selected from peptide-type biosurfactants and sugar-type biosurfactants.
  • the composition for reducing active oxygen may include one biosurfactant alone or two or more biosurfactants. Since the composition for reducing active oxygen includes a biosurfactant, the generation of ROS can be suppressed by applying it to plants. The reason for this is unclear, but the effect was not observed when a synthetic surfactant was used, and was an effect unique to the biosurfactant. In addition, it is preferable to use a biosurfactant that is not derived from Wickerhamomyces anomalus yeast from the viewpoint of odor and food hygiene.
  • a lipopeptide biosurfactant is a lipopeptide biosurfactant.
  • a lipopeptide biosurfactant has a peptide containing a hydrophobic group and a hydrophilic portion, exhibits surface activity, and is produced by a microorganism.
  • lipopeptide biosurfactants include surfactin, arthrofactin, iturin, fengicin, serawettin, lykesin, viscosin, and salts thereof.
  • the peptide-type biosurfactant is preferably at least one peptide-type biosurfactant selected from surfactin and its salts.
  • Surfactin and surfactin salts can be represented by the following general formula (1).
  • As the surfactin and surfactin salts one type or two or more types may be used.
  • X represents an amino acid residue selected from leucine, isoleucine, and valine
  • R represents an alkyl group having 9 to 18 carbon atoms
  • each M + independently represents a hydrogen ion (H + ), an alkali metal ion, an ammonium ion, or a pyridinium ion.
  • M + is a hydrogen ion
  • CO2- ( M + ) is a hydroxyl group (COOH group).
  • M + is a hydrogen ion
  • M + is a hydrogen ion
  • at least one M + is an alkali metal ion, ammonium ion or pyridinium ion
  • the general formula of surfactin is shown below as general formula (1').
  • X is an amino acid residue selected from leucine, isoleucine and valine, but may be an L-amino acid residue or a D-amino acid residue, with an L-amino acid residue being preferred.
  • R is an alkyl group having 9 to 18 carbon atoms, and is a linear or branched monovalent saturated hydrocarbon group having 9 to 18 carbon atoms.
  • alkyl groups having 9 to 18 carbon atoms include n-nonyl, 6-methyloctyl, 7-methyloctyl, n-decyl, 8-methylnonyl, n-undecyl, 9-methyldecyl, n-dodecyl, 10-methylundecyl, n-tridecyl, 11-methyldodecyl, n-tetradecyl, n-pentadecyl, n-hexadecyl, n-heptadecyl, and n-octadecyl, with 10-methylundecyl being preferred.
  • Each M + is independently a hydrogen ion (H + ), an alkali metal ion, an ammonium ion, or a pyridinium ion.
  • the alkali metal ion is not particularly limited, but may be a lithium ion, a sodium ion, a potassium ion, or the like.
  • the ammonium ion is not particularly limited, but may be, for example, an ammonium ion represented by N(R 1 ) 4 + .
  • Each R 1 independently represents hydrogen or an organic group. As the ammonium ion, a quaternary ammonium ion in which all R 1 are organic groups is one of the preferred embodiments.
  • Examples of the organic group include an alkyl group, an aralkyl group, and an aryl group.
  • the alkyl group include alkyl groups having 1 to 10 carbon atoms such as methyl, ethyl, n-propyl, isopropyl, n-butyl, and t-butyl
  • examples of the aralkyl group include aralkyl groups having 7 to 12 carbon atoms such as benzyl, methylbenzyl, and phenylethyl
  • examples of the aryl group include aryl groups having 6 to 15 carbon atoms such as phenyl, toluyl, and xylyl.
  • ammonium ion examples include, for example, a tetramethylammonium ion and a tetraethylammonium ion.
  • pyridinium ion examples include, for example, a tetramethylammonium ion and a tetraethylammonium ion.
  • the pyridinium ion are not particularly limited.
  • the hydrogen atom bonded to the carbon atom constituting the pyridine ring may be substituted with an organic group.
  • the N + constituting the pyridine ring may be bonded to, for example, hydrogen or an organic group.
  • the organic groups listed in the description of R1 can be appropriately used.
  • the two M + present in the general formula (1) may be the same or different from each other.
  • a part of M + is a hydrogen ion
  • a part of M + is an alkali metal ion, which is one of the preferred embodiments.
  • the alkali metal ion is not particularly limited, but represents a lithium ion, a sodium ion, a potassium ion, or the like.
  • the two M + present in the general formula (1) are two or more types of ions, when focusing on a certain molecule (salt), the two M + may be the same type of ion.
  • the ratio (molar ratio) of a certain ion A to a certain ion B is, for example, 1:10 to 10:1, preferably 1:5 to 5:1, and more preferably 1:3 to 3:1. It is one of the preferred embodiments that a part of the two M + present in the general formula (1) is a hydrogen ion, and a part is a sodium ion (Na + ).
  • Peptide-type biosurfactants such as surfactin or a salt of surfactin can be obtained by culturing a microorganism, for example a strain belonging to Bacillus subtilis, and isolating it from the culture medium according to known methods.
  • a purified product may be used, or it may be used unpurified, for example in the culture medium.
  • those obtained by chemical synthesis methods may be used in the same way as long as the molecular structure is the same. Commercially available products may also be used.
  • Glycosurfactants include rhamnolipids, sophorolipids, mannosylerythritol lipids, cellobiose lipids, trehalose lipids, succinoyl trehalose lipids, glucose lipids, polyol lipids, oligosaccharide fatty acid esters, and salts thereof.
  • the glycosurfactant is preferably at least one glycosurfactant selected from rhamnolipids, sophorolipids, and salts thereof.
  • Glycosurfactants can be obtained according to known methods. Commercially available products can also be used.
  • the biosurfactant is preferably at least one selected from surfactin, rhamnolipid, sophorolipid, and salts thereof.
  • the composition for reducing active oxygen may contain a phospholipid, which is preferable because the composition for reducing active oxygen contains a phospholipid, even when the concentration of the biosurfactant is low, since the composition can exhibit an ROS reducing effect.
  • lecithin is another name for phosphatidylcholine, and can be broadly divided into natural lecithin and synthetic lecithin.
  • Natural lecithin refers to naturally derived phospholipids that contain a high amount of phosphatidylcholine; for example, lecithin derived from egg yolk is called “egg yolk lecithin” and lecithin derived from soybeans is called “soybean lecithin.”
  • known synthetic lecithins include dimyristoyl phosphatidylcholine (DMPC) and dipalmitoyl phosphatidylcholine (DPPC).
  • DMPC dimyristoyl phosphatidylcholine
  • DPPC dipalmitoyl phosphatidylcholine
  • Phospholipids other than lecithin include glycerophospholipids such as phosphatidic acid, bisphosphatidic acid, phosphatidylserine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylmethylethanolamine, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, and diphosphatidylglycerol; sphingophospholipids such as sphingosine, ceramide, sphingomyelin, and cerebroside; and hydrogenated lecithins such as hydrogenated soybean phospholipid and hydrogenated egg yolk lecithin.
  • glycerophospholipids such as phosphatidic acid, bisphosphatidic acid, phosphatidylserine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylmethylethanolamine, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, and diphosphatidylglycerol
  • sphingophospholipids
  • the phospholipid is preferably one or more phospholipids selected from phosphatidylcholine, hydrogenated lecithin, phosphatidic acid, bisphosphatidic acid, phosphatidylethanolamine, phosphatidylmethylethanolamine, phosphatidylserine, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, diphosphatidylglycerol, and sphingomyelin.
  • the composition for reducing active oxygen may contain a soybean meal hydrolyzate.
  • the composition for reducing active oxygen contains a soybean meal hydrolyzate, it is preferable because the composition can exhibit an ROS reducing effect even when the concentration of a biosurfactant is low.
  • Soybean meal hydrolyzate can be obtained, for example, by subjecting soybean meal to a Bacillus fermentation treatment using Bacillus bacteria.
  • the composition for reducing active oxygen includes an agriculturally acceptable carrier.
  • the agriculturally acceptable carrier may be any carrier capable of holding the biosurfactant, and may be a liquid carrier or a solid carrier.
  • the solid carrier may be a hydratable solid material.
  • the solid carrier may be in the form of a powder or granules.
  • the agriculturally acceptable carrier is preferably a liquid carrier such as water or an organic solvent.
  • the water as a carrier is not limited to pure water, but may be an aqueous solution, an aqueous suspension, an aqueous gel, or an aqueous slurry, and may have viscosity.
  • the organic solvent is not limited to a pure organic solvent, but may be an organic solvent-based solution, a suspension, a gel, or a slurry, and may have viscosity. Examples of organic solvents include methyl ether, ethyl ether, propyl ether, and butyl ether.
  • the agriculturally acceptable carrier is preferably a liquid carrier such as water or an aqueous solution in which a hydratable substance is dissolved in water, or a solid carrier containing a hydratable substance that can be dissolved in water.
  • hydratable substances include polyvinylpyrrolidone, random and block copolymers of alkylene oxides, vinyl acetate/vinylpyrrolidone copolymers, alkylated vinylpyrrolidone copolymers, polyalkylene glycols including polypropylene glycol and polyethylene glycol, polyvinyl acetate, polyvinyl alcohol, gelatin, agar, gum arabic, karaya gum, tragacanth gum, guar gum, locust bean gum, xanthan gum, ghatti gum, carrageenan, alginates, casein, dextran, pectin, chitin, 2-hydroxyethyl starch, 2-aminoethyl starch, 2-hydroxyethy
  • the composition for reducing active oxygen may contain, as necessary, components other than the biosurfactant, phospholipid, soybean meal hydrolyzate, and agriculturally acceptable carrier as additives.
  • the composition for reducing active oxygen may contain one type of additive, or two or more types of additives.
  • additives include, but are not limited to, moisturizers, colorants, defoamers, UV protectants, antifreeze agents, preservatives, biological control agents or biocides, emulsifiers, bulking agents, scavengers, plasticizers, flow agents, coalescing agents, waxes, and/or fillers (e.g., clay, talc, glass fiber, cellulose, micronized wood, etc.).
  • composition for reducing active oxygen contains at least one biosurfactant selected from peptide-type biosurfactants and sugar-type biosurfactants, as described above, and an agriculturally acceptable carrier.
  • substantially free of a certain component means that the component is present in an amount of 0.01 parts by mass or less, preferably 0.001 parts by mass or less, when the biosurfactant contained in the composition for reducing active oxygen is taken as 100 parts by mass.
  • the composition for reducing active oxygen preferably contains 0.004 to 0.2% by mass of the biosurfactant, and more preferably 0.005 to 0.1% by mass, based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen.
  • the composition for reducing active oxygen preferably contains 0.01 to 0.2% by mass of the biosurfactant, and more preferably 0.02 to 0.1% by mass, based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen. This range is particularly preferable because it can effectively suppress the generation of ROS.
  • the composition for reducing active oxygen contains the biosurfactant and phospholipid.
  • the biosurfactant is contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen
  • the phospholipid is contained in an amount of 0.002 to 0.1% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen
  • it is more preferred that the biosurfactant is contained in an amount of 0.005 to 0.1% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen
  • the phospholipid is contained in an amount of 0.0025 to 0.05% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen.
  • composition for reducing active oxygen contains the biosurfactant and phospholipid
  • the composition for reducing active oxygen does not substantially contain soybean meal hydrolyzate. Within the above range, it is particularly preferred because the generation of ROS can be suppressed suitably.
  • the composition for reducing active oxygen contains the biosurfactant and a soybean meal hydrolyzate.
  • the biosurfactant is preferably contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass, and more preferably 0.005 to 0.1% by mass, based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen.
  • the soybean meal hydrolyzate is preferably contained in an amount of 0.004 to 1.0% by mass, more preferably 0.004 to 0.8% by mass, even more preferably 0.005 to 0.6% by mass, and particularly preferably 0.005 to 0.5% by mass, based on 100% by mass of the composition for reducing active oxygen.
  • the biosurfactant when the composition for reducing active oxygen contains the biosurfactant and the hydrolyzed soybean meal, the biosurfactant is preferably contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen, and the hydrolyzed soybean meal is preferably contained in an amount of 0.004 to 0.2% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen, and more preferably, the biosurfactant is contained in an amount of 0.005 to 0.1% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen, and the hydrolyzed soybean meal is preferably contained in an amount of 0.005 to 0.1% by mass in 100% by mass of the composition for reducing active oxygen.
  • composition for reducing active oxygen contains the biosurfactant and the hydrolyzed soybean meal, it is preferable that the composition for reducing active oxygen does not substantially contain phospholipids. Within the above range, the generation of ROS can be particularly effectively suppressed, which is preferable.
  • the method for producing the composition for reducing active oxygen there are no particular limitations on the method for producing the composition for reducing active oxygen.
  • the agriculturally acceptable carrier is a liquid carrier
  • a method of adding a biosurfactant and optional additives, a biosurfactant, a phospholipid and optional additives, or a biosurfactant, a soybean meal hydrolyzate and optional additives to the liquid carrier and stirring until homogenous can be used.
  • composition for reducing active oxygen is usually applied to plants, for example, to the leaves, seeds, seedlings, fruits, etc. of plants.
  • the composition for reducing active oxygen is sprayed on the leaves of plants.
  • Spraying on the leaves of plants means spraying on at least the leaves, and may also include spraying on stems and leaves, and may further include spraying a portion on flowers, fruits, etc.
  • composition for reducing active oxygen there is a precursor of a composition for reducing active oxygen, which becomes the above-mentioned composition for reducing active oxygen by dilution.
  • the dilution is usually performed with the above-mentioned liquid carrier.
  • the precursor of the composition for reducing active oxygen usually contains at least one biosurfactant selected from a peptide-type biosurfactant and a sugar-type biosurfactant, and an agriculturally acceptable carrier, and the concentration of the biosurfactant is higher than that of the composition for reducing active oxygen.
  • the composition for reducing active oxygen is prepared using such a precursor of the composition for reducing active oxygen, it is preferable because it is possible to easily prepare a uniform composition for reducing active oxygen.
  • the precursor of the composition for reducing active oxygen preferably contains a biosurfactant at a concentration 10 to 50,000 times higher than that of the composition for reducing active oxygen.
  • the precursor of the composition for reducing active oxygen preferably contains a phospholipid at a concentration 10 to 50,000 times higher than that of the composition for reducing active oxygen.
  • the precursor of the composition for reducing active oxygen preferably contains a soybean meal hydrolyzate at a concentration 10 to 50,000 times higher than that of the composition for reducing active oxygen.
  • the biosurfactant contained in the precursor of the composition for reducing active oxygen is preferably 50% by mass or less, more preferably 20% by mass or less, based on 100% by mass of the precursor of the composition for reducing active oxygen.
  • the agriculturally acceptable carrier (preferably a liquid carrier) contained in the precursor of the composition for reducing active oxygen is preferably 20% by mass or more, more preferably 40% by mass or more, based on 100% by mass of the precursor of the composition for reducing active oxygen.
  • One embodiment of the present disclosure is a method for cultivating a plant, in which the above-mentioned composition for reducing active oxygen is applied to the plant.
  • the above-mentioned composition for reducing active oxygen is preferably sprayed on the leaves of the plant.
  • the active oxygen reducing composition When spraying on plant leaves, the active oxygen reducing composition is preferably sprayed in an amount such that the amount of biosurfactant in the active oxygen reducing composition is preferably 2.5 to 200 g, more preferably 5 to 100 g, per 10 a of plant cultivation area. More specifically, when the active oxygen reducing composition is substantially free of phospholipids and soybean meal hydrolyzate, the active oxygen reducing composition is preferably sprayed in an amount such that the amount of biosurfactant in the active oxygen reducing composition is preferably 20 to 200 g, more preferably 20 to 100 g, per 10 a of plant cultivation area.
  • the active oxygen reducing composition contains a biosurfactant and a phospholipid, and is substantially free of a soybean meal hydrolyzate
  • the active oxygen reducing composition contains a biosurfactant and a soybean meal hydrolyzate, and is substantially free of phospholipid
  • the amount of soybean meal hydrolyzate is preferably 4 to 1000 g, more preferably 4 to 800 g, even more preferably 5 to 600 g, and particularly preferably 5 to 500 g, per 10 a of plant cultivation area.
  • the active oxygen reducing composition is preferably sprayed in an amount that results in a soybean meal hydrolyzate of 4 to 200 g, more preferably 5 to 100 g.
  • composition for reducing active oxygen When the composition for reducing active oxygen is sprayed on the leaves of a plant, there is no particular restriction on the timing of spraying.
  • the composition can be sprayed once or multiple times at any time after germination and before harvesting the plant.
  • the plant is not particularly limited, but is preferably a crop plant.
  • crop plants include corn, wheat, barley, rye, oats, rice, soybean, canola, cotton, sunflower, sugar beet, potato, tobacco, broccoli, lettuce, cabbage, spinach, komatsuna, cauliflower, coconut, tomato, cucumber, eggplant, melon, pumpkin, okra, pepper, watermelon, carrot, radish, onion, green onion, fruit tree, flower, grass, pasture, etc.
  • SF means surfactin Na (product name: Kaneka Surfactin, manufactured by Kaneka)
  • RL means rhamnolipid (manufactured by AGAE technology)
  • SL means sophorolipid (prepared according to Journal of Oleo Science, 60, (5) pp.267-273 (2011))
  • lecithin means soybean lecithin (manufactured by Nacalai Tesque, Inc.)
  • KVP soybean meal hydrolysate
  • SILWET L-77 means a synthetic surfactant manufactured by MOMENTIVE
  • Tween 20 manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • Approach BI means a spreading agent manufactured by Maruwa Biochemical Co., Ltd., whose main ingredient is a synthetic surfactant
  • paraquat means paraquat dichloride standard (manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.).
  • each bar graph in each figure refers to the relative values when T1 in each figure is set to 100.
  • X% increase (vs. T2) is noted above each bar graph in each figure, it means that there is an X% increase in the T2 value in each figure
  • Y% decrease (vs. T2) is noted above each bar graph in each figure, it means that there is a Y% decrease in the T2 value in each figure.
  • Example 1 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • EMR electron transport rate
  • PAM pulse amplitude modulated fluorometry
  • the ETR when PAR (Photosynthetically active radiation) is set to 1516 is shown in Figure 1.
  • the SPAD values are also shown in Figure 2.
  • T2 where water that does not function as an active oxygen reducing composition was sprayed, the ETR was significantly lowered by the application of paraquat compared to T1. Since it is known that the application of paraquat generates ROS, the difference between T1 and T2 is thought to be due to the application of paraquat.
  • T3 to T5 where the active oxygen reducing composition was sprayed, the ETR was increased compared to T2, suggesting that ROS was reduced in T3 to T5 compared to T2.
  • a similar result was also suggested by the SPAD values in Figure 2.
  • Example 2 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • the ETR when the PAR is set to 1512 is shown in Figure 3.
  • the SPAD values are also shown in Figure 4.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T3 to T5 where the active oxygen reducing composition was sprayed, the ETR is higher than in T2, suggesting that ROS is reduced in T3 to T5 compared to T2.
  • a similar result is also suggested by the SPAD values in Figure 4.
  • Example 3 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • ETR was measured by PAM fluorescence method, and SPAD value was measured by using chlorophyll meter.
  • the active oxygen reducing composition and the operation outline for each treatment group in Experimental Example 3 are shown in Table 3 below.
  • the ETR when the PAR is set to 1496 is shown in Figure 5.
  • the SPAD values are also shown in Figure 6.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T3 where an active oxygen reducing composition with a dilute concentration of SF was sprayed, the ETR was slightly higher than in T2, and no increase in ETR was observed in T4, which does not contain SF.
  • T5 where an active oxygen reducing composition containing dilute SF and lecithin was sprayed, the ETR was significantly higher than in T2, suggesting that ROS was sufficiently reduced compared to T2.
  • Example 4 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • the ETR when the PAR is set to 1496 is shown in Figure 7.
  • the SPAD values are also shown in Figure 8.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T3 where an active oxygen reducing composition containing SL was sprayed
  • T5 where an active oxygen reducing composition containing SL and lecithin was sprayed
  • the ETR is significantly higher than in T2, suggesting that ROS is sufficiently reduced compared to T2.
  • a similar result is also suggested by the SPAD values in Figure 8.
  • Example 5 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • ETR was measured by PAM fluorescence method, and SPAD value was measured by using chlorophyll meter.
  • the active oxygen reducing composition and the operation outline for each treatment group in Experimental Example 5 are shown in Table 5 below.
  • the ETR when the PAR is set to 1493 is shown in Figure 9.
  • the SPAD values are also shown in Figure 10.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T3 to T5 where a composition not corresponding to the present invention was sprayed, no increase in ETR was observed compared to T2, suggesting that ROS were not reduced compared to T2.
  • a similar result was also suggested by the SPAD values in Figure 10.
  • Example 6 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • ETR was measured by PAM fluorescence method, and SPAD value was measured by using chlorophyll meter.
  • the active oxygen reducing composition and the procedure for each treatment group in Experimental Example 6 are shown in Table 6 below.
  • the ETR when the PAR is set to 1496 is shown in Figure 11.
  • the SPAD values are shown in Figure 12.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T3 which has a low concentration of SF
  • T4 which has a low concentration of KVP
  • the ETR is slightly higher than in T2
  • T5 where a composition for reducing active oxygen containing low concentrations of SF and KVP was sprayed
  • the ETR is significantly higher than in T2, suggesting that ROS is sufficiently reduced compared to T2.
  • Example 7 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • ETR was measured by PAM fluorescence method, and SPAD value was measured by using chlorophyll meter.
  • the active oxygen reducing composition and the operation outline for each treatment group in Experimental Example 7 are shown in Table 7 below.
  • the ETR when the PAR is set to 1496 is shown in Figure 13.
  • the SPAD values are also shown in Figure 14.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T2 and T3 to 6, which were sprayed with a composition for reducing active oxygen containing SF and lecithin the ETR is significantly higher than in T2, suggesting that ROS have been sufficiently reduced compared to T2.
  • a similar result is also suggested by the SPAD values in Figure 14.
  • Example 8 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • ETR was measured by PAM fluorescence method, and SPAD value was measured by using chlorophyll meter.
  • the active oxygen reducing composition and the procedure for each treatment group in Experimental Example 8 are shown in Table 8 below.
  • the ETR when the PAR is set to 1496 is shown in Figure 15.
  • the SPAD values are also shown in Figure 16.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T2 and in T3 to 6, which were sprayed with a composition for reducing active oxygen containing SF and KVP the ETR is significantly higher than in T2, suggesting that ROS have been sufficiently reduced compared to T2.
  • a similar result is also suggested by the SPAD values in Figure 16.
  • Example 9 A 9 cm polypot was filled with potting soil and three soybean seeds (Fukuyutaka) were sown. After sowing, the soybeans were cultivated in an incubator set to a light period (6:00-18:00, temperature 26°C, illuminance 120 ⁇ mol/ m2 ⁇ s) and a dark period (18:00-6:00, temperature 18°C). After germination, the soybeans were thinned to one plant.
  • composition for reducing active oxygen composition for reducing active oxygen
  • T1 application of paraquat
  • ETR was measured by PAM fluorescence method, and SPAD value was measured by using chlorophyll meter.
  • the active oxygen reducing composition and the procedure for each treatment group in Experimental Example 9 are shown in Table 9 below.
  • the ETR when the PAR is set to 1455 is shown in Figure 17.
  • the SPAD values are shown in Figure 18.
  • the ETR is significantly lower in T2 than in T1.
  • T2 and T3 which were sprayed with a composition for reducing active oxygen containing SF, the ETR is significantly higher than in T2, suggesting that ROS is sufficiently reduced compared to T2.
  • T2 and T5 which were sprayed with a composition for reducing active oxygen containing SF and KVP, the ETR is significantly higher than in T2, suggesting that ROS is sufficiently reduced compared to T2.
  • an increase in ETR was confirmed in T5 compared to T3 and T4. Similar results are also suggested by the SPAD values in Figure 18.
  • the upper and/or lower limit values of the numerical ranges described in this specification can be arbitrarily combined to define a preferred range.
  • the upper and lower limit values of the numerical ranges can be arbitrarily combined to define a preferred range
  • the upper limit values of the numerical ranges can be arbitrarily combined to define a preferred range
  • the lower limit values of the numerical ranges can be arbitrarily combined to define a preferred range.
  • a numerical range expressed using the symbol " ⁇ " includes the numerical values written before and after the symbol " ⁇ " as the upper and lower limits, respectively.

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Abstract

本開示の目的は、ＲＯＳによる光合成能力の低下を抑制することが可能な活性酸素低減用組成物を提供することである。　本実施形態の一つは、ペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントと、農業的に許容される担体とを含む、活性酸素低減用組成物である。

Description

活性酸素低減用組成物
　本開示は、活性酸素低減用組成物に関する。
　植物（野菜や果樹等）を効率的に成長させるため、植物に環境ストレス耐性を付与するための薬剤組成物が知られている（例えば、特許文献１参照）。特許文献１には、酵母細胞壁酵素分解物を含む植物の環境ストレス耐性を付与するための薬剤組成物が開示されていている。特許文献１には、酵母細胞壁酵素分解物を幼苗、及び／又は畑へ定植後の苗に与えることにより、温度ストレス、塩ストレス、光ストレス、水分ストレスなどの環境ストレスに対する耐性を向上させることができる旨、界面活性剤を配合することができる旨が開示されており、実施例ではビール酵母が使用されている。
　特許文献２には、植物の免疫健康、成長及び／又は収穫量を増進するための土壌処理組成物であって、Wickerhamomyces anomalus酵母及び／又はその成長副産物を含む、組成物が開示されている。特許文献２の土壌処理組成物は、植物の根系の健康及び／又は成長を増進することによって、そして、植物の健康及び生産性に寄与する植物の自然免疫及び他の代謝系を刺激することによって、作物植物の健康、成長及び総収穫量を増進するための、微生物ベースの土壌処理組成物であることが開示されている。なお、Wickerhamomyces anomalus酵母は、酵母様真菌であり、酢酸エチルを産生するため、食品等に付着した場合には、シンナー臭の原因となることが知られている。
　また、特許文献３には、植物成長用の植物活力剤としての少なくとも１つのリポペプチドの使用が開示されている。特許文献３の実施例では、水分ストレスの開始時及び終了時での光合成効率がΦ値（PSII）によって評価されているが、水分ストレスの開始時と終了時とを比較すると、光合成効率の減少は観察されていない。
特開２００７－４５７０９号公報 特表２０２２－５０９２０４号公報 特表２０２０－５０４７６８号公報
　植物（野菜や果樹等）が、高温、低温、塩、乾燥等に起因する非生物的ストレスにさらされると、気孔からのＣＯ２の供給量が下がり、光エネルギーから得た還元力を十分に消費することができず、ＲＯＳ（活性酸素種（Reactive Oxygen Species））が発生し、ＲＯＳによって光合成能力が低下することが知られている。
　しかしながら、特許文献１～３には、ＲＯＳによる光合成能力の低下は記載も示唆もされておらず、ＲＯＳによる光合成能力の低下を抑制することが可能な組成物についても記載も示唆もされていなかった。
　すなわち、本開示は、ＲＯＳによる光合成能力の低下を抑制することが可能な活性酸素低減用組成物を提供することを目的とする。
　本実施形態の態様例は、以下の通りに記載される。
［１］　ペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントと、農業的に許容される担体とを含む、活性酸素低減用組成物。
［２］　前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれる、［１］に記載の活性酸素低減用組成物。
［３］　リン脂質を含む、［１］又は［２］に記載の活性酸素低減用組成物。
［４］　前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれ、
　前記リン脂質が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００２～０．１質量％含まれる、［３］に記載の活性酸素低減用組成物。
［５］　ダイズ粕分解物を含む、［１］～［４］のいずれか１に記載の活性酸素低減用組成物。
［６］　前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれ、
　前記ダイズ粕分解物が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～１．０質量％含まれる、［５］に記載の活性酸素低減用組成物。
［７］　前記バイオサーファクタントが、サーファクチン、ラムノリピッド、ソホロリピッド、及びそれらの塩から選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントである、［１］～［６］のいずれか１に記載の活性酸素低減用組成物。
［８］　植物の葉に散布するための、［１］～［７］のいずれか１に記載の活性酸素低減用組成物。
［９］　希釈により［１］～［８］のいずれか１に記載の活性酸素低減用組成物となる、活性酸素低減用組成物前駆体。
　本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2022-158110号の開示内容を包含する。
　本開示の活性酸素低減用組成物は、十分にＲＯＳの発生を抑制することができる。
実験例１のＥＴＲを示す。 実験例１のＳＰＡＤ値を示す。 実験例２のＥＴＲを示す。 実験例２のＳＰＡＤ値を示す。 実験例３のＥＴＲを示す。 実験例３のＳＰＡＤ値を示す。 実験例４のＥＴＲを示す。 実験例４のＳＰＡＤ値を示す。 実験例５のＥＴＲを示す。 実験例５のＳＰＡＤ値を示す。 実験例６のＥＴＲを示す。 実験例６のＳＰＡＤ値を示す。 実験例７のＥＴＲを示す。 実験例７のＳＰＡＤ値を示す。 実験例８のＥＴＲを示す。 実験例８のＳＰＡＤ値を示す。 実験例９のＥＴＲを示す。 実験例９のＳＰＡＤ値を示す。
　以下、本発明を詳細に説明する。
　本実施形態に係る活性酸素低減用組成物は、ペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントと、農業的に許容される担体とを含む。なお、本実施形態の活性酸素低減用組成物は、活性酸素だけではなく、ＲＯＳの発生を抑制することが可能であるため、活性酸素低減用組成物は、ＲＯＳ低減用組成物と読み替えることもできる。
＜バイオサーファクタント＞
　前記活性酸素低減用組成物は、バイオサーファクタントを含む。バイオサーファクタントとしては、ペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントが挙げられる。前記活性酸素低減用組成物は、バイオサーファクタントを１種単独で含んでいても、２種以上で含んでいてもよい。前記活性酸素低減用組成物は、バイオサーファクタントを含むため、植物に与えることにより、ＲＯＳの発生を抑制することができる。この理由は明らかではないが、合成界面活性剤を用いても該効果は観察されず、バイオサーファクタント特有の効果であった。なお、バイオサーファクタントとしては、Wickerhamomyces anomalus酵母に由来しないバイオサーファクタントを用いることが臭気、食品衛生の観点から好ましい。
　ペプチド型バイオサーファクタントとしては、リポペプチドバイオサーファクタントが挙げられる。リポペプチドバイオサーファクタントは、疎水性基と、親水性部分を含むペプチドを有し、界面活性作用を示すものであり、微生物が生産するものをいう。リポペプチドバイオサーファクタントとしては、例えば、サーファクチン、アルスロファクチン、イチュリン、フェンジシン、セラウェッチン、ライケシン、ビスコシン、及びそれらの塩を挙げることができる。
　ペプチド型バイオサーファクタントとしては、サーファクチン、及びその塩から選択される少なくとも１種のペプチド型バイオサーファクタントが好ましい。サーファクチン及びサーファクチンの塩は、以下の一般式（１）で表すことができる。サーファクチン及びサーファクチンの塩としては、１種を用いても２種以上を用いてもよい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
 ［式（１）中、Ｘは、ロイシン、イソロイシンおよびバリンから選択されるアミノ酸の残基を示し、Ｒは炭素数９～１８のアルキル基を示し、Ｍ＋はそれぞれ独立に、水素イオン（Ｈ+）、アルカリ金属イオン、アンモニウムイオン又はピリジニウムイオンを示す。］
　なお、Ｍ＋が水素イオンである場合とは、ＣＯ２ ‐（Ｍ＋）が、ヒドロキシル基（ＣＯＯＨ基）であることを意味する。二つのＭ＋が水素イオンである場合が、サーファクチンであり、少なくとも一方のＭ＋がアルカリ金属イオン、アンモニウムイオン又はピリジニウムイオンである場合が、サーファクチンの塩を意味する。サーファクチンの一般式を以下の一般式（１’）に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 ［式（１’）中、Ｘ及びＲは、式（１）と同義である］
　Ｘは、ロイシン、イソロイシンおよびバリンから選択されるアミノ酸の残基であるが、Ｌ体のアミノ酸の残基であっても、Ｄ体のアミノ酸の残基であってもよく、Ｌ体のアミノ酸の残基が好ましい。
　Ｒは炭素数９～１８のアルキル基であり、炭素数９以上、１８以下の直鎖状または分枝鎖状の一価飽和炭化水素基である。炭素数９～１８のアルキル基としては、例えば、ｎ－ノニル基、６－メチルオクチル基、７－メチルオクチル基、ｎ－デシル基、８－メチルノニル基、ｎ－ウンデシル基、９－メチルデシル基、ｎ－ドデシル基、１０－メチルウンデシル基、ｎ－トリデシル基、１１－メチルドデシル基、ｎ－テトラデシル基、ｎ－ペンタデシル基、ｎ－ヘキサデシル基、ｎ－ヘプタデシル基、ｎ－オクタデシル基などが挙げられ、１０－メチルウンデシル基が好ましい。
　Ｍ＋はそれぞれ独立に、水素イオン（Ｈ+）、アルカリ金属イオン、アンモニウムイオン又はピリジニウムイオンである。アルカリ金属イオンは特に限定されないが、リチウムイオン、ナトリウムイオン、カリウムイオン等を表す。アンモニウムイオンとしては、特に限定されないが、例えばＮ（Ｒ１）４ +で表されるアンモニウムイオンが挙げられる。Ｒ１はそれぞれ独立に、水素、又は有機基を示す。アンモニウムイオンとしては、Ｒ１が全て有機基である、第四級アンモニウムイオンが好ましい態様の一つである。有機基としては、アルキル基、アラルキル基、アリール基等が挙げられる。具体的には、アルキル基としては、メチル、エチル、ｎ－プロピル、イソプロピル、ｎ－ブチル、ｔ－ブチル等の炭素数１～１０のアルキル基が挙げられ、アラルキル基としては、ベンジル、メチルベンジル、フェニルエチル等の炭素数７～１２のアラルキル基が挙げられ、アリール基としては、フェニル、トルイル、キシリル等の炭素数６～１５のアリール基が挙げられる。アンモニウムイオンとしては、例えば、テトラメチルアンモニウムイオン、テトラエチルアンモニウムイオン等が挙げられる。ピリジニウムイオンとしては、特に制限されない。ピリジニウムイオンとしては、ピリジン環を構成する炭素原子に結合する水素原子が、有機基で置換されていてもよい。また、ピリジニウムイオンとしては、ピリジン環を構成するＮ＋に結合するのは、例えば、水素又は有機基であればよい。なお、ピリジニウムイオンが有する有機基としては、Ｒ１の説明で挙げた有機基を適宜用いることができる。
　一般式（１）中に存在する２つのＭ＋は、互いに同一でもよく、異なっていてもよい。一般式（１）中に存在する２つのＭ＋としては、例えば一部のＭ＋が水素イオンであり、一部のＭ＋がアルカリ金属イオンであることが好ましい態様の一つである。アルカリ金属イオンは特に限定されないが、リチウムイオン、ナトリウムイオン、カリウムイオンなどを表す。なお、一般式（１）中に存在する２つのＭ＋が、二種以上のイオンである場合には、ある一分子（塩）に着目した場合には、２つのＭ＋が同種のイオンであってもよい。Ｍ＋が二種のイオンである場合には、あるイオンＡと、あるイオンＢとの比（モル比）は、例えば、１：１０～１０：１であり、好ましくは１：５～５：１であり、より好ましくは１：３～３：１である。一般式（１）中に存在する２つのＭ＋の一部が水素イオンであり、一部がナトリウムイオン（Ｎａ＋）であることは好ましい態様の一つである。
　サーファクチン又はサーファクチンの塩等のペプチド型バイオサーファクタントは、公知の方法に従って、微生物、例えば枯草菌（Bacillus subtilis)に属する菌株を培養し、その培養液から分離することにより入手することができ、精製品を使用してもよく、未精製、例えば培養液、のまま使用することもできる。また、分子構造が同一であれば、化学合成法によって得られるものでも同様に使用することができる。また、市販品を使用することもできる。
　糖型バイオサーファクタントとしては、ラムノリピッド、ソホロリピッド、マンノシルエリスリトールリピッド、セロビオースリピッド、トレハロースリピッド、サクシノイルトレハロースリピッド、グルコースリピッド、ポリオールリピッド、オリゴ糖脂肪酸エステル、及びそれらの塩等が挙げられる。
　糖型バイオサーファクタントとしては、ラムノリピッド、ソホロリピッド、及びそれらの塩から選択される少なくとも１種の糖型バイオサーファクタントが好ましい。
　糖型バイオサーファクタントは、公知の方法に従って、入手することができる。また、市販品を使用することもできる。
　前記バイオサーファクタントとしては、サーファクチン、ラムノリピッド、ソホロリピッド、及びそれらの塩から選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントが特に好ましい態様として挙げられる。
＜リン脂質＞
　前記活性酸素低減用組成物は、リン脂質を含んでいてもよい。前記活性酸素低減用組成物が、リン脂質を含む場合には、バイオサーファクタントの濃度が低い場合でも、ＲＯＳ低減効果を発揮できるため好ましい。
　リン脂質としては、例えばレシチンを挙げることができる。レシチンはホスファチジルコリンの別名であり、天然レシチンと合成レシチンに大別できる。天然レシチンは、ホスファチジルコリンを高含有する天然由来のリン脂質を指し、例えば、卵黄由来のものは「卵黄レシチン」、大豆由来のものは「大豆レシチン」と称される。一方、合成レシチンとしては、ジミリストイルホスファチジルコリン（ＤＭＰＣ）、ジパルミトイルホスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）等が知られる。本明細書において、「レシチン」は、天然レシチン、合成レシチンのいずれも包含する。
　レシチン以外のリン脂質としては、ホスファチジン酸、ビスホスファチジン酸、ホスファチジルセリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルメチルエタノールアミン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、ジホスファチジルグリセロール等のグリセロリン脂質；スフィンゴシン、セラミド、スフィンゴミエリン、セレブロシド等のスフィンゴリン脂質；水素添加大豆リン脂質、水素添加卵黄レシチン等の水添レシチンが挙げられる。
　リン脂質としては、ホスファチジルコリン、水添レシチン、ホスファチジン酸、ビスホスファチジン酸、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルメチルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、ジホスファチジルグリセロール、およびスフィンゴミエリンから選択される１以上のリン脂質が好ましい。
＜ダイズ粕分解物＞
　前記活性酸素低減用組成物は、ダイズ粕（Soybean meal）分解物を含んでいてもよい。前記活性酸素低減用組成物が、ダイズ粕分解物を含む場合には、バイオサーファクタントの濃度が低い場合でも、ＲＯＳ低減効果を発揮できるため好ましい。
　ダイズ粕分解物は、例えば、バチルス属細菌を用いて、ダイズ粕をバチルス発酵処理することにより得ることができる。
＜農業的に許容される担体＞
　前記活性酸素低減用組成物は、農業的に許容される担体を含む。本開示において農業的に許容される担体としては、前述のバイオサーファクタントを保持することができる担体であればよく、液体担体又は固体担体であることができる。固体担体としては、水和性物質固体が挙げられる。固体担体は粉末又は顆粒の形態であることができる。
　農業的に許容される担体は、好ましくは水、有機溶媒等の液体担体である。ここで担体としての水は、純水に限らず水溶液、水系懸濁液、水系のゲル又は水系のスラリーであってよく粘性を有するものであってよい。同様に、有機溶媒は、純粋な有機溶媒に限らず、有機溶媒をベースとする溶液、懸濁液、ゲル又はスラリーであってよく粘性を有するものであってもよい。有機溶媒としては、メチルエーテル、エチルエーテル、プロピルエーテル、ブチルエーテルが例示できる。
　農業的に許容される担体は、好ましくは、水、水中に水和性物質が溶解した水溶液等の液体担体、又は、水に溶解できる水和性物質を含む固体担体である。水和性物質としてはポリビニルピロリドン、アルキレンオキシドのランダム及びブロックコポリマー、ビニルアセテート／ビニルピロリドンコポリマー、アルキル化ビニルピロリドンコポリマー、ポリプロピレングリコール及びポリエチレングリコールを含むポリアルキレングリコール、ポリ酢酸ビニル、ポリビニルアルコール、ゼラチン、寒天、アラビアガム、カラヤガム、トラガカントガム、グアーガム、ローカストビーンガム、キサンタンガム、ガッチガム、カラギーナン、アルギン酸塩、カゼイン、デキストラン、ペクチン、キチン、２－ヒドロキシエチルデンプン、２－アミノエチルデンプン、２－ヒドロキシエチルセルロース、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース塩、硫酸セルロース、ポリアクリルアミド、無水マレイン共重合体のアルカリ金属塩、ポリ（メタ）アクリル酸塩のアルカリ金属塩等が例示できる。
＜添加剤＞
　前記活性酸素低減用組成物は、上述のバイオサーファクタント、リン脂質、ダイズ粕分解物、及び農業的に許容される担体以外の成分を、必要に応じて添加剤として含んでいてもよい。前記活性酸素低減用組成物は、添加剤を１種含んでいても、２種以上含んでいてもよい。添加剤としては、保湿剤、着色剤、消泡剤、ＵＶ保護剤、凍結防止剤、保存剤、生物学的制御剤もしくは殺生物剤、乳化剤、増量剤、捕捉剤、可塑剤、流動剤、融合助剤、ろう、及び／又は充填剤（例として、粘土、タルク、ガラス繊維、セルロース、微粉化木材等）が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
＜活性酸素低減用組成物＞
　前記活性酸素低減用組成物は、上述のようにペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントと、農業的に許容される担体とを含む。
　なお、本開示において、ある成分を「実質的に含まない」とは、活性酸素低減用組成物に含まれるバイオサーファクタントを１００質量部としたとき、該成分が０．０１質量部以下であることを意味し、好ましくは該成分が０．００１質量部以下であることを意味する。
　前記活性酸素低減用組成物は、前記バイオサーファクタントを、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含むことが好ましく、０．００５～０．１質量％含むことがより好ましい。また、前記活性酸素低減用組成物が、リン脂質及びダイズ粕分解物を実質的に含まない場合には、前記バイオサーファクタントを、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中０．０１～０．２質量％含むことが好ましく、０．０２～０．１質量％含むことがより好ましい。前記範囲内では、特に好適にＲＯＳの発生を抑制することができるため好ましい。
　前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びリン脂質を含むことが好ましい態様の一つである。前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びリン脂質を含む場合には、前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれ、前記リン脂質が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００２～０．１質量％含まれることが好ましく、前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００５～０．１質量％含まれ、前記リン脂質が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００２５～０．０５質量％含まれることがより好ましい。また、前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びリン脂質を含む場合には、ダイズ粕分解物を実質的に含まないことが好ましい。前記範囲内では、特に好適にＲＯＳの発生を抑制することができるため好ましい。
　前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びダイズ粕分解物を含むことが好ましい態様の一つである。前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びダイズ粕分解物を含む場合には、前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれることが好ましく、０．００５～０．１質量％含まれることがより好ましい。また、前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びダイズ粕分解物を含む場合には、前記ダイズ粕分解物が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～１．０質量％含まれることが好ましく、０．００４～０．８質量％含まれることがより好ましく、０．００５～０．６質量％含まれることが更に好ましく、０．００５～０．５質量％含まれることが特に好ましい。また、別の態様としては、前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びダイズ粕分解物を含む場合には、前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれ、前記ダイズ粕分解物が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれることが好ましく、前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００５～０．１質量％含まれ、前記ダイズ粕分解物が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００５～０．１質量％含まれることがより好ましい。また、前記活性酸素低減用組成物が、前記バイオサーファクタント及びダイズ粕分解物を含む場合には、リン脂質を実質的に含まないことが好ましい。前記範囲内では、特に好適にＲＯＳの発生を抑制することができるため好ましい。
　前記活性酸素低減用組成物の製造方法としては特に制限はないが、例えば農業的に許容される担体が液体担体である場合には、液体担体に、バイオサーファクタント及び任意に用いられる添加剤、バイオサーファクタント、リン脂質及び任意に用いられる添加剤、又はバイオサーファクタント、ダイズ粕分解物及び任意に用いられる添加剤を添加し、均一になるまで攪拌する方法が挙げられる。
　前記活性酸素低減用組成物は、通常は植物に対して施用され、例えば植物の葉、種子、苗、果実等に対して用いられる。前記活性酸素低減用組成物は、植物の葉に散布されることが好ましい態様の一つである。なお、植物の葉に散布するとは、少なくとも葉に散布することを意味し、茎葉に散布してもよく、更に花、果実等に一部が散布されてもよい。
＜活性酸素低減用組成物前駆体＞
　本開示の一実施形態として、希釈により上述の活性酸素低減用組成物となる、活性酸素低減用組成物前駆体が挙げられる。なお、希釈は、通常は上述の液体担体により行われる。活性酸素低減用組成物前駆体は、通常はペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントと、農業的に許容される担体とを含み、バイオサーファクタントの濃度が活性酸素低減用組成物よりも高い。このような活性酸素低減用組成物前駆体を用いて活性酸素低減用組成物を調製した場合には、均一な活性酸素低減用組成物を容易に調製することが可能であるため好ましい。
　活性酸素低減用組成物前駆体は、活性酸素低減用組成物と比べた際にバイオサーファクタントを１０～５００００倍の濃度で含むことが好ましい。活性酸素低減用組成物がリン脂質を含む場合には、活性酸素低減用組成物前駆体は、活性酸素低減用組成物と比べた際にリン脂質を１０～５００００倍の濃度で含むことが好ましい。また、活性酸素低減用組成物がダイズ粕分解物を含む場合には、活性酸素低減用組成物前駆体は、活性酸素低減用組成物と比べた際にダイズ粕分解物を１０～５００００倍の濃度で含むことが好ましい。なお、活性酸素低減用組成物前駆体に含まれるバイオサーファクタントは、前記活性酸素低減用組成物前駆体１００質量％中に、５０質量％以下であることが好ましく、２０質量％以下であることがより好ましい。また、活性酸素低減用組成物前駆体に含まれる農業的に許容される担体（好ましくは液体担体）は、前記活性酸素低減用組成物前駆体１００質量％中に、２０質量％以上であることが好ましく、４０質量％以上であることがより好ましい。
＜植物の栽培方法＞
　本開示の一実施形態として、前述の活性酸素低減用組成物を植物に施用する、植物の栽培方法が挙げられる。植物の栽培方法としては、前述の活性酸素低減用組成物を植物の葉に散布することが好ましい。
　植物の葉に散布する場合には、植物の栽培面積１０ａ当たり、前記活性酸素低減用組成物中のバイオサーファクタントが好ましくは２．５～２００ｇ、より好ましくは５～１００ｇとなる量で、前記活性酸素低減用組成物を散布することが好ましい。より具体的には前記活性酸素低減用組成物が、リン脂質及びダイズ粕分解物を実質的に含まない場合には、植物の栽培面積１０ａ当たり、前記活性酸素低減用組成物中のバイオサーファクタントが好ましくは２０～２００ｇ、より好ましくは２０～１００ｇとなる量で、前記活性酸素低減用組成物を散布することが好ましい。前記活性酸素低減用組成物が、バイオサーファクタント及びリン脂質を含み、ダイズ粕分解物を実質的に含まない場合には、植物の栽培面積１０ａ当たり、前記活性酸素低減用組成物中のバイオサーファクタントが好ましくは４～２００ｇ、より好ましくは５～１００ｇとなる量、且つリン脂質が好ましくは２～１００ｇ、より好ましくは２．５～５０ｇとなる量で、前記活性酸素低減用組成物を散布することが好ましい。また、前記活性酸素低減用組成物が、バイオサーファクタント及びダイズ粕分解物を含み、リン脂質を実質的に含まない場合には、植物の栽培面積１０ａ当たり、前記活性酸素低減用組成物中のバイオサーファクタントが好ましくは４～２００ｇ、より好ましくは５～１００ｇとなる量、且つダイズ粕分解物が好ましくは４～１０００ｇ、より好ましくは４～８００ｇ、更に好ましくは５～６００ｇ、特に好ましくは５～５００ｇとなる量で、前記活性酸素低減用組成物を散布することが好ましい。また、別の態様としてはダイズ粕分解物が好ましくは４～２００ｇ、より好ましくは５～１００ｇとなる量で、前記活性酸素低減用組成物を散布することが好ましい。
　前記活性酸素低減用組成物を植物の葉に散布する場合には、その散布する時期としては特に制限はなく、例えば、発芽以降、植物の収穫前の任意の時期に、１回又は複数回散布することができる。
＜植物＞
　本開示において、植物は特に限定されないが、好ましくは作物植物である。作物植物としては、トウモロコシ（corn、maize）、コムギ、オオムギ、ライムギ、オートムギ、イネ、ダイズ、カノーラ（セイヨウアブラナ）、綿、ヒマワリ、サトウダイコン、ジャガイモ、タバコ、ブロッコリー、レタス、キャベツ、ホウレンソウ、コマツナ、カリフラワー、ココナッツ、トマト、キュウリ、ナス、メロン、カボチャ、オクラ、ピーマン、スイカ、ニンジン、ダイコン、タマネギ、ネギ、果樹、花卉類、芝、牧草等が例示できる。
　以下、実施例を挙げて本実施形態を説明するが、本開示はこれらの例によって限定されるものではない。
　なお、本実施例において「ＳＦ」とは、サーファクチンＮａ（製品名カネカ・サーファクチン、カネカ製）を意味し、「ＲＬ」とは、ラムノリピッド（ＡＧＡＥ　ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）を意味し、「ＳＬ」とは、ソホロリピッド（Journal of Oleo Science, 60, (5) pp.267-273 (2011)に従い調製したもの）を意味し、「レシチン」とは、大豆レシチン（ナカライテスク株式会社製）を意味し、ＫＶＰは、ダイズ粕分解物（APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Jan. 1994, pp. 243-247に従い、ダイズ粕をバチルス発酵処理して製造するペプチド系素材）を意味し、「ＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７」はＭＯＭＥＮＴＩＶＥ社製の合成界面活性剤を意味し、「Ｔｗｅｅｎ　２０」（富士フィルム和光純薬株式会社製）の合成界面活性剤を意味し、「アプローチＢＩ」は丸和バイオケミカル株式会社製の、合成界面活性剤を主成分とする展着剤を意味し、「パラコート」とは、パラコートジクロリド標準品（富士フィルム和光純薬株式会社製）を意味する。
　なお、実施例に関連する図１～図１８において、各図の各棒グラフの上に記した相対値は、各図におけるＴ１を１００とした際の相対値を意味し、各図の各棒グラフの上にＸ％増（対Ｔ２）と記した場合には、各図におけるＴ２の値に対してＸ％増加していることを意味し、各図の各棒グラフの上にＹ％減（対Ｔ２）と記した場合には、各図におけるＴ２の値に対してＹ％減少していることを意味する。
［実験例１］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法（pulse amplitude modulated fluorometry）で電子伝達速度（ＥＴＲ）を測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例１の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　ＰＡＲ（Photosynthetically active radiation）を１５１６とした際のＥＴＲを図１に示す。またＳＰＡＤ値を図２に示す。図１から明らかなように、活性酸素低減用組成物として機能しない水を散布したＴ２では、パラコート施用によって、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。パラコート施用によりＲＯＳが発生することは公知であるため、Ｔ１とＴ２との差はパラコート施用によるものと考えられる。活性酸素低減用組成物を散布したＴ３～Ｔ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲが増加しており、Ｔ３～Ｔ５では、ＲＯＳがＴ２と比べて低減されていることが示唆された。同様の結果が図２のＳＰＡＤ値からも示唆された。
［実験例２］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例２の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　ＰＡＲを１５１２とした際のＥＴＲを図３に示す。またＳＰＡＤ値を図４に示す。図３から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。活性酸素低減用組成物を散布したＴ３～Ｔ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲが増加しており、Ｔ３～Ｔ５では、ＲＯＳがＴ２と比べて低減されていることが示唆された。同様の結果が図４のＳＰＡＤ値からも示唆された。
［実験例３］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例３の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　ＰＡＲを１４９６とした際のＥＴＲを図５に示す。またＳＰＡＤ値を図６に示す。図５から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。ＳＦの濃度が希薄な活性酸素低減用組成物を散布したＴ３では、Ｔ２と比べてＥＴＲが僅かに増加しており、ＳＦを含まないＴ４ではＥＴＲの増加がみられなかったが、希薄なＳＦとレシチンとを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。
［実験例４］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例４の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　ＰＡＲを１４９６とした際のＥＴＲを図７に示す。またＳＰＡＤ値を図８に示す。図７から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。ＳＬを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ３では、Ｔ２と比べてＥＴＲがわずかに増加しているが、ＳＬ及びレシチンを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。同様の結果が図８のＳＰＡＤ値からも示唆された。
［実験例５］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例５の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　ＰＡＲを１４９３とした際のＥＴＲを図９に示す。またＳＰＡＤ値を図１０に示す。図９から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。本発明に該当しない組成物が散布されたＴ３～Ｔ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲの増加が観察されず、ＲＯＳがＴ２と比べて低減されないことが示唆された。同様の結果が図１０のＳＰＡＤ値からも示唆された。
［実験例６］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例６の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　ＰＡＲを１４９６とした際のＥＴＲを図１１に示す。またＳＰＡＤ値を図１２に示す。図１１から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。ＳＦの濃度が希薄なＴ３やＫＶＰの濃度が希薄なＴ４では、Ｔ２と比べてＥＴＲが僅かに増加しており、希薄なＳＦとＫＶＰとを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。
［実験例７］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例７の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表７に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　ＰＡＲを１４９６とした際のＥＴＲを図１３に示す。またＳＰＡＤ値を図１４に示す。図１３から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。Ｔ２と、ＳＦ及びレシチンを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ３～６では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。同様の結果が図１４のＳＰＡＤ値からも示唆された。
［実験例８］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例８の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　ＰＡＲを１４９６とした際のＥＴＲを図１５に示す。またＳＰＡＤ値を図１６に示す。図１５から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。Ｔ２と、ＳＦ及びＫＶＰを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ３～６では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。同様の結果が図１６のＳＰＡＤ値からも示唆された。
［実験例９］
　９ｃｍポリポットに培土をつめ、ダイズ（フクユタカ）を３粒播種した。
　播種後、ダイズを明期（６：００－１８：００、温度２６℃、照度１２０μｍｏｌ／ｍ２・ｓ）、暗期（１８：００－６：００、温度１８℃）に設定したインキュベーター内で栽培した。発芽後は１株に間引きした。
　第一本葉展開後に下記処理区ごとに下記液体（活性酸素低減用組成物）を、各株に対して葉面散布した（活性酸素低減用組成物施用）。葉面散布の２４時間後、Ｃｏｎｔｒｏｌ区（Ｔ１）以外に、パラコート水溶液にＳＩＬＷＥＴ　Ｌ－７７を１，０００倍希釈になるように添加したものを各株に対して、葉面散布した（パラコート施用）。
　パラコート施用２４時間後にＰＡＭ蛍光法でＥＴＲを測定した。また、パラコート施用２４時間後に、葉緑素計を用いてＳＰＡＤ値を測定した。
　実験例９の各処理区毎の、活性酸素低減用組成物、操作の概要を、下記表９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　ＰＡＲを１４５５とした際のＥＴＲを図１７に示す。またＳＰＡＤ値を図１８に示す。図１７から明らかなように、Ｔ２では、Ｔ１と比べて大きくＥＴＲが低下している。Ｔ２と、ＳＦを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ３では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。Ｔ２と、ＳＦ及びＫＶＰを含む活性酸素低減用組成物を散布したＴ５では、Ｔ２と比べてＥＴＲが大きく増加しており、ＲＯＳがＴ２と比べて十分に低減されていることが示唆された。また、Ｔ５では、Ｔ３及びＴ４と比べてもＥＴＲの増加が確認された。同様の結果が図１８のＳＰＡＤ値からも示唆された。
　本明細書中に記載した数値範囲の上限値及び／又は下限値は、それぞれ任意に組み合わせて好ましい範囲を規定することができる。例えば、数値範囲の上限値及び下限値を任意に組み合わせて好ましい範囲を規定することができ、数値範囲の上限値同士を任意に組み合わせて好ましい範囲を規定することができ、また、数値範囲の下限値同士を任意に組み合わせて好ましい範囲を規定することができる。また、本願において、記号「～」を用いて表される数値範囲は、記号「～」の前後に記載される数値のそれぞれを下限値及び上限値として含む。
　本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。したがって、単数形の冠詞（例えば、英語の場合は「ａ」、「ａｎ」、「ｔｈｅ」等）は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。
　以上、本実施形態を詳述したが、具体的な構成はこの実施形態に限定されるものではなく、本開示の要旨を逸脱しない範囲における設計変更があっても、それらは本開示に含まれるものである。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。

Claims (9)

  1. 　ペプチド型バイオサーファクタント及び糖型バイオサーファクタントから選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントと、農業的に許容される担体とを含む、活性酸素低減用組成物。
  2. 　前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれる、請求項１に記載の活性酸素低減用組成物。
  3. 　リン脂質を含む、請求項１に記載の活性酸素低減用組成物。
  4. 　前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれ、
    　前記リン脂質が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００２～０．１質量％含まれる、請求項３に記載の活性酸素低減用組成物。
  5. 　ダイズ粕分解物を含む、請求項１に記載の活性酸素低減用組成物。
  6. 　前記バイオサーファクタントが、前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～０．２質量％含まれ、
    　前記ダイズ粕分解物が前記活性酸素低減用組成物１００質量％中に０．００４～１．０質量％含まれる、請求項５に記載の活性酸素低減用組成物。
  7. 　前記バイオサーファクタントが、サーファクチン、ラムノリピッド、ソホロリピッド、及びそれらの塩から選択される少なくとも１種のバイオサーファクタントである、請求項１に記載の活性酸素低減用組成物。
  8. 　植物の葉に散布するための、請求項１に記載の活性酸素低減用組成物。
  9. 　希釈により請求項１～８のいずれか１項に記載の活性酸素低減用組成物となる、活性酸素低減用組成物前駆体。
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