WO2023229039A1 - 細胞培養方法 - Google Patents
細胞培養方法 Download PDFInfo
- Publication number
- WO2023229039A1 WO2023229039A1 PCT/JP2023/019786 JP2023019786W WO2023229039A1 WO 2023229039 A1 WO2023229039 A1 WO 2023229039A1 JP 2023019786 W JP2023019786 W JP 2023019786W WO 2023229039 A1 WO2023229039 A1 WO 2023229039A1
- Authority
- WO
- WIPO (PCT)
- Prior art keywords
- cells
- myoblasts
- skeletal muscle
- muscle stem
- culture supernatant
- Prior art date
Links
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 title claims 2
- 239000012228 culture supernatant Substances 0.000 claims abstract description 29
- 210000003098 myoblast Anatomy 0.000 claims abstract description 26
- 210000002027 skeletal muscle Anatomy 0.000 claims abstract description 23
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 claims abstract description 23
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims abstract description 19
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 claims abstract description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 12
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 54
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 claims description 6
- 210000003494 hepatocyte Anatomy 0.000 claims description 5
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 claims description 4
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 4
- 238000012136 culture method Methods 0.000 claims 3
- 239000007952 growth promoter Substances 0.000 claims 3
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 14
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 9
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 7
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 5
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 4
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 description 4
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 3
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 3
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 2
- 241000282414 Homo sapiens Species 0.000 description 2
- 241000270322 Lepidosauria Species 0.000 description 2
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 2
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 2
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 2
- 241000251539 Vertebrata <Metazoa> Species 0.000 description 2
- 238000003501 co-culture Methods 0.000 description 2
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 210000004926 tubular epithelial cell Anatomy 0.000 description 2
- 241000282465 Canis Species 0.000 description 1
- 239000012980 RPMI-1640 medium Substances 0.000 description 1
- 210000000013 bile duct Anatomy 0.000 description 1
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 description 1
- 230000030833 cell death Effects 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000003636 conditioned culture medium Substances 0.000 description 1
- 230000001079 digestive effect Effects 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 1
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 1
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 210000005087 mononuclear cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 210000001087 myotubule Anatomy 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 1
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000010992 reflux Methods 0.000 description 1
- 230000000241 respiratory effect Effects 0.000 description 1
- 239000012679 serum free medium Substances 0.000 description 1
- 230000001568 sexual effect Effects 0.000 description 1
- 210000004683 skeletal myoblast Anatomy 0.000 description 1
- 210000001057 smooth muscle myoblast Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
Definitions
- the present invention relates to a method for culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells.
- An object of the present invention is to provide a novel method for culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells.
- One embodiment of the present invention is a method for culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells, which includes the step of culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells in a medium containing a culture supernatant of epithelial cells.
- culture supernatant does not need to substantially contain serum.
- the epithelial cells may be renal tubular cells, MDCK cells, renal tubular epithelial cells, or RL34 cells.
- the present invention can provide a novel method for culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells.
- the supernatant obtained by culturing rat myoblasts L6G8, canine kidney tubular cells MDCK, rat hepatocytes RL34, or a mixture of equal amounts thereof is used to culture bovine myoblasts.
- 2 is a graph showing the cell proliferation promoting effect obtained when culturing.
- a method for culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells is a culturing method that includes the step of culturing myoblasts or skeletal muscle stem cells in a medium containing a culture supernatant of epithelial cells.
- myoblasts and skeletal muscle stem cells for promoting proliferation are hereinafter referred to as "target cells for promoting proliferation” or simply “target cells.”
- epithelial cells for obtaining a culture supernatant are referred to as "cells that utilize conditioned medium” or simply "cells for culture supernatant.”
- the animal from which the target cells are derived is not particularly limited, but is preferably a vertebrate.
- the animal may be a mammal, reptile, bird, or amphibian, but preferably a domestic animal such as a human, cow, pig, rabbit, or chicken.
- the animal from which the cells for the culture supernatant are derived is also not particularly limited, but vertebrates are preferred.
- the animal may be a mammal, reptile, bird, or amphibian, but preferably a domestic animal such as a human, cow, pig, rabbit, or chicken.
- the animal from which these cells are derived may be the same or different from the animal from which the target cells are derived.
- Target cells may be primary cultured cells isolated from animal living bodies, established cultured cells derived from myoblasts or skeletal muscle stem cells, and pluripotent cells such as iPS cells and ES cells.
- the cells may be obtained by differentiating sexual stem cells into myoblasts or skeletal muscle stem cells.
- a method of adding a culture supernatant to a culture medium of target cells can be exemplified.
- the medium from which the culture supernatant is made is not particularly limited, but is preferably a serum-free medium, and examples thereof include DMEM, MEM ⁇ , F12, and the like.
- cells for the culture supernatant are seeded in a cell container at a density of 1 ⁇ 10 4 cells/ ⁇ 1 ⁇ 10 7 cells/mL, and these cells are used for 1 to 30 days using these medium.
- the culture supernatant After culturing for some time, the culture supernatant can be collected. Thereafter, precipitates such as cell debris may be removed by centrifugation.
- the obtained culture supernatant may be used as is (i.e., 100% cell supernatant) to culture target cells, but fresh medium may be used at least 10%, at least 30%, at least 50%, or at least 70% Target cells may also be cultured using a medium to which % or more is added.
- the medium used at this time is not particularly limited, but it is preferably the same type of medium used to culture the cells for the culture supernatant.
- culture supernatants of two or more types of cells When using culture supernatants of two or more types of cells as a medium for target cells, it is possible to co-culture the two or more types of cells to obtain the culture supernatant and use the supernatant, but it is also possible to culture them separately. The supernatant may then be mixed.
- target cell culture medium In addition to adding culture supernatant to the target cell culture medium, it is also possible to co-culture cells that use culture supernatant and target cells, or to culture cells that use culture supernatant and target cells in separate containers.
- the target cells may be cultured in a medium containing the culture supernatant of cells using the culture supernatant by fluidly connecting the culture media between the containers and refluxing them.
- Myoblasts are mononuclear cells that proliferate and fuse to form multinucleated muscle fibers.
- Skeletal muscle stem cells include fetal and adult types, and adult skeletal muscle stem cells include satellite cells.
- epithelial cells include, for example, digestive epithelial cells such as bile duct epithelial cells and liver epithelial cells, respiratory epithelial cells such as lung epithelial cells and tracheal epithelial cells, excretory organ epithelial cells such as renal tubular epithelial cells, and bladder epithelial cells. Contains epithelial cells, etc.
- muscle was collected from bovine skeletal muscle and myoblasts were isolated.
- the collected cells were maintained in a medium supplemented with fetal bovine serum (FBS) to make up 10% of the total medium.
- FBS fetal bovine serum
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
【課題】新規な筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法を提供することを目的とする。 【課題を解決するための手段】 本発明の筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法は、筋芽細胞または骨格筋幹細胞を、上皮細胞の培養上清を含む培地中で培養する工程を含む。
Description
本発明は、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法に関する。
従来、筋芽細胞を培養する標準培地は、10%~20%血清を含有するDMEMやRPMI-1640であった(非特許文献1など参照)。
Cell Death Differ . 2019 Mar;26(3):426-442
本発明は、新規な筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法を提供することを目的とする。
本発明の一実施態様は、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の細胞を、上皮細胞の培養上清を含む培地中で培養する工程を含む、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法である。
なお、前記培養上清が、血清を実質的に含まなくてもよい。
また、前記上皮細胞は、腎臓尿細管細胞であってもよく、MDCK細胞であってもよく、尿細管上皮細胞であってもよく、RL34細胞であってもよい。
本発明によって、新規な筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法を提供できる。
本発明の目的、特徴、利点、およびそのアイデアは、本明細書の記載により、当業者には明らかであり、当業者であれば、容易に本発明を再現できる。以下に記載された発明の実施の形態および具体的な実施例などは、本発明の好ましい実施態様を示すものであり、例示または説明のために示すものであって、本発明をそれらに限定しない。本明細書で開示されている本発明の意図並びに範囲内で、本明細書の記載に基づき、様々な改変並びに修飾ができることは、当業者にとって明らかである。
本発明の一実施形態の筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法は、筋芽細胞または骨格筋幹細胞を、上皮細胞の培養上清を含む培地中で培養する工程を含む培養方法である。それによって、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の増殖を促進することができる。従って、以下、増殖を促進するための筋芽細胞および骨格筋幹細胞を、「増殖を促進するためのターゲット細胞」、または単に「ターゲット細胞」と称する。一方、培養上清を得るための上皮細胞は、「培養上清(conditioned medium)を利用する細胞」、または単に「培養上清のための細胞」と称する。
ターゲット細胞が由来する動物は特に限定されないが、脊椎動物であることが好ましい。哺乳類、爬虫類、鳥類、両生類のいずれであってもよいが、例えば、ヒト、ウシ、ブタ、ウサギ、ニワトリなどの家畜動物であることが好ましい。
培養上清のための細胞が由来する動物も特に限定されないが、脊椎動物であることが好ましい。哺乳類、爬虫類、鳥類、両生類のいずれであってもよいが、例えば、ヒト、ウシ、ブタ、ウサギ、ニワトリなどの家畜動物であることが好ましい。これらの細胞の由来する動物は、ターゲット細胞の由来する動物と同じであっても異なっていてもよい。
ターゲット細胞は、動物生体から単離した初代培養細胞であってもよいが、筋芽細胞または骨格筋幹細胞に由来する樹立された培養細胞であってもよく、iPS細胞やES細胞などの多能性幹細胞を筋芽細胞または骨格筋幹細胞に分化させて得られた細胞であってもよい。
培養上清を利用する細胞の培養上清を含む培地中でターゲット細胞を培養する具体的な方法としては、ターゲット細胞の培地に培養上清を添加する方法が例示できる。培養上清の元になる培地は、特に限定されないが、無血清培地であることが好ましく、DMEM、MEMα、F12等が例示できる。培養上清を単離する場合、培養上清のための細胞を1×104個/~1×107個/mLの密度で細胞容器に播種し、これらの培地を用いて1~30日程度培養した後で培養上清を回収することができる。その後、遠心して細胞残渣などの沈殿を除去してもよい。得られた培養上清は、そのまま用いて(すなわち、細胞上清100%で)、ターゲット細胞を培養してもよいが、新鮮な培地を10%以上、30%以上、50%以上、あるいは70%以上加えた培地を用いてもターゲット細胞を培養してもよい。この時に用いる培地も特に限定されないが、培養上清のための細胞を培養するのに用いたのと同じ種類の培地であることが好ましい。2種以上の細胞の培養上清を、ターゲット細胞の培地に用いる場合、培養上清を得るための2種以上の細胞を共培養して、その上清を用いてもよいが、別々に培養して、その上清を混合してもよい。
ターゲット細胞の培地に培養上清を添加する方法のほかに、培養上清を利用する細胞とターゲット細胞を共培養すること、あるいは培養上清を利用する細胞とターゲット細胞を別の容器で培養し、容器同士の培地を流体連結して還流することによって、培養上清を利用する細胞の培養上清を含む培地中でターゲット細胞を培養してもよい。
筋芽細胞は単核であり、増殖し、融合して、多核の筋線維を形成する細胞である。骨格筋幹細胞は、胎児型と成人型を含み、成人型骨格筋幹細胞はサテライト細胞(衛星細胞)を含む。また、上皮細胞は、例えば、胆管上皮細胞、肝上皮細胞などの消化器系上皮細胞、肺上皮細胞、気管上皮細胞などの呼吸器系上皮細胞、尿細管上皮細胞、膀胱上皮細胞などの排出器系上皮細胞などを含む。
まず、ウシ骨格筋から筋肉を回収し、筋芽細胞を単離した。回収した細胞は、培地にウシ胎児血清(FBS)を全体培地の10%になるように添加したものを用いて維持された。
一方、10%FBSを添加した培地を用いて、ラット筋芽細胞L6G8、イヌ腎臓尿細管細胞MDCK、ラット肝細胞RL34、またはこれらの等量混合細胞を3日間培養した後、培養上清を回収した。
ウシ筋芽細胞3x104個を96ウエルプレートに播種し、培地DMEMに上記培養細胞株の上清を100%添加した培地を用いて、48時間培養した後、XTT細胞増殖アッセイキット(コスモバイオ社)を用いて、細胞数を測定した。対照として、培地に、DMEM(陰性対照)および10%FBS含有DMEM(陽性対照)を用い、同様に細胞数を測定した。DMEMを用いた場合の細胞数を1とし、それぞれの細胞数の相対値を算出し、図1に示すようにグラフ化した。
図1に示すように、培養上清を用いた場合、DMEMに比べて、2~4倍の増殖率が得られた。このように、上皮細胞の培養上清を用いることによって、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の増殖を促進することができる。
Claims (9)
- 筋芽細胞または骨格筋幹細胞を、上皮細胞の培養上清を含む培地中で培養する工程を含む、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法。
- 前記上皮細胞由来の細胞が腎臓尿細管細胞または肝細胞である、請求項1に記載の培養方法。
- 前記腎臓尿細管細胞が、MDCK細胞である請求項2に記載の培養方法。
- 前記肝細胞が、RL34細胞である請求項2に記載の培養方法。
- 前記培地が、血清を実質的に含まない培地である請求項1~4のいずれか一項に記載の筋芽細胞または骨格筋幹細胞の培養方法。
- 上皮細胞の培養上清を含む、筋芽細胞または骨格筋幹細胞の増殖促進剤。
- 前記腎臓尿細管細胞が、MDCK細胞である請求項6に記載の増殖促進剤。
- 前記肝細胞が、RL34細胞である請求項6に記載の増殖促進剤。
- 前記培養上清が、血清を実質的に含まない、請求項7または8に記載の筋芽細胞または骨格筋幹細胞の増殖促進剤。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2022087192 | 2022-05-27 | ||
JP2022-087192 | 2022-05-27 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
WO2023229039A1 true WO2023229039A1 (ja) | 2023-11-30 |
Family
ID=88919534
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PCT/JP2023/019786 WO2023229039A1 (ja) | 2022-05-27 | 2023-05-26 | 細胞培養方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
WO (1) | WO2023229039A1 (ja) |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2006111565A (ja) * | 2004-10-14 | 2006-04-27 | Oita Univ | グルタチオンsトランスフェラーゼ活性誘導剤 |
WO2017191691A1 (ja) * | 2016-05-02 | 2017-11-09 | インテグリカルチャー株式会社 | 成長誘導システム、成長誘導制御装置、成長誘導制御方法、および、成長誘導制御プログラム |
JP2019193645A (ja) * | 2019-06-20 | 2019-11-07 | テルモ株式会社 | シート状細胞培養物の製造方法 |
WO2020096004A1 (ja) * | 2018-11-08 | 2020-05-14 | インテグリカルチャー株式会社 | 動物細胞増殖促進剤、動物細胞培養用培地及び動物細胞培養装置 |
JP2020523015A (ja) * | 2017-06-07 | 2020-08-06 | ワイルド タイプ,インク. | エクスビボでの食肉の生産 |
-
2023
- 2023-05-26 WO PCT/JP2023/019786 patent/WO2023229039A1/ja unknown
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2006111565A (ja) * | 2004-10-14 | 2006-04-27 | Oita Univ | グルタチオンsトランスフェラーゼ活性誘導剤 |
WO2017191691A1 (ja) * | 2016-05-02 | 2017-11-09 | インテグリカルチャー株式会社 | 成長誘導システム、成長誘導制御装置、成長誘導制御方法、および、成長誘導制御プログラム |
JP2020523015A (ja) * | 2017-06-07 | 2020-08-06 | ワイルド タイプ,インク. | エクスビボでの食肉の生産 |
WO2020096004A1 (ja) * | 2018-11-08 | 2020-05-14 | インテグリカルチャー株式会社 | 動物細胞増殖促進剤、動物細胞培養用培地及び動物細胞培養装置 |
JP2019193645A (ja) * | 2019-06-20 | 2019-11-07 | テルモ株式会社 | シート状細胞培養物の製造方法 |
Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
GAL-LEVI, R. LESHEM, Y. AOKI, S. NAKAMURA, T. HALEVY, O.: "Hepatocyte growth factor plays a dual role in regulating skeletal muscle satellite cell proliferation and differentiation", BIOCHIMICA ET BIOPHYSICA ACTA, ELSEVIER SCIENCE PUBLISHERS, AMSTERDAM., NL, vol. 1402, no. 1, 12 March 1998 (1998-03-12), NL , pages 39 - 51, XP004277763, ISSN: 0167-4889, DOI: 10.1016/S0167-4889(97)00124-9 * |
INOSHIMA, MASATO; NINOMIYA, KAZUAKI: "G3H3(0308) Serum-free monolayer culture of myoblast cells by co-culture with 3D hepatic tissue", PROCEEDINGS OF THE 73RD MEETING OF THE JAPAN SOCIETY FOR BIOTECHNOLOGY; OCTOBER 27-29, 2021, vol. 73, 1 January 2021 (2021-01-01) - 29 October 2021 (2021-10-29), pages 202, XP009551090 * |
LEE DA YOUNG, LEE SEUNG YUN, YUN SEUNG HYEON, JEONG JAE WON, KIM JAE HYEON, KIM HYUN WOO, CHOI JUNG SEOK, KIM GAP-DON, JOO SEON TE: "Review of the Current Research on Fetal Bovine Serum and the Development of Cultured Meat", FOOD SCIENCE OF ANIMAL RESOURCES, KOREAN INTELLECTUAL PROPERTY OFFICE, vol. 42, no. 5, 1 September 2022 (2022-09-01), pages 775 - 799, XP093112536, ISSN: 2636-0772, DOI: 10.5851/kosfa.2022.e46 * |
OTTO ANTHONY, SCHMIDT CORINA, LUKE GRAHAM, ALLEN STEVE, VALASEK PETR, MUNTONI FRANCESCO, LAWRENCE-WATT DIANA, PATEL KETAN: "Canonical Wnt signalling induces satellite-cell proliferation during adult skeletal muscle regeneration", JOURNAL OF CELL SCIENCE, COMPANY OF BIOLOGISTS LIMITED, CAMBRIDGE, vol. 121, no. 17, 1 September 2008 (2008-09-01), Cambridge , pages 2939 - 2950, XP093112534, ISSN: 0021-9533, DOI: 10.1242/jcs.026534 * |
YAMAMOTO HIDEKI, SATO AKIRA, KIKUCHI AKIRA: "Apical secretion of Wnt1 in polarized epithelial cells is regulated by exocyst-mediated trafficking", JOURNAL OF BIOCHEMISTRY, OXFORD UNIVERSITY PRESS, GB, vol. 162, no. 5, 1 November 2017 (2017-11-01), GB , pages 317 - 326, XP093112535, ISSN: 0021-924X, DOI: 10.1093/jb/mvx035 * |
YAMANAKA KUMIKO, HARAGUCHI YUJI, TAKAHASHI HIRONOBU, KAWASHIMA IKKO, SHIMIZU TATSUYA: "Development of serum-free and grain-derived-nutrient-free medium using microalga-derived nutrients and mammalian cell-secreted growth factors for sustainable cultured meat production", SCIENTIFIC REPORTS, NATURE PUBLISHING GROUP, US, vol. 13, no. 1, US , XP093112538, ISSN: 2045-2322, DOI: 10.1038/s41598-023-27629-w * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Nejadnik et al. | Improved approach for chondrogenic differentiation of human induced pluripotent stem cells | |
JP4532493B2 (ja) | 細胞培養培地 | |
Coraux et al. | Embryonic stem cells generate airway epithelial tissue | |
Zhang et al. | Comparisons of rabbit bone marrow mesenchymal stem cell isolation and culture methods in vitro | |
IL288185B2 (en) | New methods and mediums for growing pluripotent stem cells | |
JP6694512B2 (ja) | 幹細胞由来ヒト肝細胞を使用した微小組織形成 | |
CN104364263B (zh) | 含有层粘连蛋白和钙粘蛋白的细胞培养基底 | |
Szkolnicka et al. | Concise review: advances in generating hepatocytes from pluripotent stem cells for translational medicine | |
Wang et al. | Derivation of smooth muscle cells with neural crest origin from human induced pluripotent stem cells | |
JP5782200B2 (ja) | ウシ及びブタ精原幹細胞の培養のためのフィーダーフリー法 | |
Kim et al. | Prolongation of liver-specific function for primary hepatocytes maintenance in 3D printed architectures | |
US20130071365A1 (en) | Induced hepatocytes | |
EP3541929B1 (en) | In vitro production of muscle stem cells | |
JP6421335B2 (ja) | 肝幹前駆様細胞の培養方法及びその培養物 | |
Li et al. | Construction of bioengineered hepatic tissue derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells via aggregation culture in porcine decellularized liver scaffolds | |
CN102933704A (zh) | 软骨祖细胞、用于细胞衍生的方案和其用途 | |
Xu et al. | Adipose-derived stromal cells resemble bone marrow stromal cells in hepatocyte differentiation potential in vitro and in vivo | |
WO2023229039A1 (ja) | 細胞培養方法 | |
Kojima et al. | Spheroid array of fetal mouse liver cells constructed on a PEG-gel micropatterned surface: upregulation of hepatic functions by co-culture with nonparenchymal liver cells | |
WO2011016485A1 (ja) | iPS細胞から肝実質細胞への分化誘導方法 | |
JP5710588B2 (ja) | 単一細胞クローニングの改良法 | |
FI3963050T3 (fi) | Ihmisen allogeenisten maksaperäisten esisolujen valmistaminen | |
Takahashi et al. | An analysis of the effect of “conditioned medium” upon the cell culture at low density | |
CN113166722A (zh) | 羊水细胞来源的细胞外基质及其用途 | |
JP2007000077A (ja) | 付着性動物細胞の無血清培養方法及び付着性動物細胞の無血清培養用培地 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application |
Ref document number: 23811911 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |