WO2022260305A1 - 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물 - Google Patents

줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물 Download PDF

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WO2022260305A1
WO2022260305A1 PCT/KR2022/007132 KR2022007132W WO2022260305A1 WO 2022260305 A1 WO2022260305 A1 WO 2022260305A1 KR 2022007132 W KR2022007132 W KR 2022007132W WO 2022260305 A1 WO2022260305 A1 WO 2022260305A1
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vascular endothelial
stem cells
cells
cp1p
medium composition
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김계성
조기상
조원준
최명준
김수진
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한양대학교 산학협력단
주식회사 엑세쏘바이오파마
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Definitions

  • the present invention relates to a medium composition for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells, containing cP1P (o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient, and stem cells in the medium composition It relates to a method for inducing differentiation of stem cells comprising the step of culturing into vascular endothelial cells.
  • cP1P o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate
  • VEGF Vascular Endothelial Growth Factor
  • vascular endothelial growth factor is expensive, reaching 6 million won per 1 mg, a lot of cost is consumed for differentiation, and the number of cells that can be obtained is limited compared to the cost.
  • doubts are emerging as to whether vascular endothelial cells differentiated by conventional differentiation methods can provide a functional level and a sufficient number to exhibit an angiogenic effect during vascular transplantation. There is a need to develop a new method for inducing differentiation.
  • the present inventors confirmed the degree of differentiation into vascular endothelial cells by culturing pluripotent stem cells in a medium containing the bioactive lipid cP1P, and as a result, cP1P alone or cP1P and vascular endothelial growth factor ( The present invention was completed by confirming that pluripotent stem cells cultured in a medium containing VGEF) could produce large amounts of highly functional vascular endothelial cells.
  • an object of the present invention is to provide a medium composition for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells, which contains o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate (cP1P) or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient. .
  • cP1P o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate
  • the present invention provides a method for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells, comprising culturing the stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • a method for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells comprising culturing the stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • Another object of the present invention is to provide vascular endothelial cells induced to differentiate by culturing stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention provides a medium composition for inducing differentiation of stem cells containing cP1P (o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient into vascular endothelial cells do.
  • cP1P o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate
  • a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient into vascular endothelial cells do.
  • the medium composition may further include vascular endothelial growth factor (VEGF).
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • the stem cells may be embryonic stem cells, induced pluripotent stem cells, or SCNT embryonic stem cells.
  • the concentration of cP1P may be 0.1 nM to 1000 nM.
  • the composition can promote the differentiation of stem cells and inhibit cell death.
  • the composition can enhance the expression patterns of vascular endothelial cell markers CD34, CD31, FLI1 and ERG1.
  • the present invention provides a method for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells, comprising culturing the stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the medium composition may further include vascular endothelial growth factor (VEGF).
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • the cP1P may be at a concentration of 0.1 nM to 1000 nM.
  • the culture may be cultured for 4 to 6 passages.
  • the stem cells may be embryonic stem cells, induced pluripotent stem cells, or SCNT embryonic stem cells.
  • the present invention provides vascular endothelial cells induced to differentiate by culturing stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the vascular endothelial cells can exhibit cell migration or angiogenesis.
  • the cP1P may be at a concentration of 0.1 nM to 1000 nM.
  • cP1P O-cyclic Phytosphingosine-1-Phosphate
  • vascular endothelial growth factor unlike vascular endothelial growth factor, it has a great advantage in terms of cost, even when cP1P is treated alone. It was confirmed that the function was similar to that of vascular endothelial growth factor treatment alone, and it was confirmed that high-functioning vascular endothelial cells could be mass-produced through simultaneous treatment of cP1P and vascular endothelial growth factor during differentiation.
  • the medium composition it is possible to mass-produce highly functional vascular endothelial cells, and it is expected that it will be widely used as a resource that can replace damaged blood vessels, such as the production of functional organoids.
  • FIG. 1 shows a schematic diagram of cP1P treatment in the process of vascular endothelial cell differentiation.
  • Figure 2 shows the results of comparing differentiation efficiencies according to treatment with cP1P and vascular endothelial growth factor in the process of vascular endothelial cell differentiation.
  • Figure 3 shows the results of comparative analysis of the number of cells according to cP1P and vascular endothelial growth factor treatment in the course of differentiation.
  • Figure 4 shows the results of comparing mRNA expression patterns of markers according to differentiation time according to cP1P and vascular endothelial growth factor treatment in the course of differentiation.
  • FIG. 5 shows the results of comparing protein expression patterns of vascular endothelial cell markers.
  • 6a to 6c show the results of immunofluorescence analysis of vascular endothelial cell markers according to cP1P and vascular endothelial growth factor treatment in the course of differentiation.
  • FIG. 7 shows the result of comparing the cell migration ability of vascular endothelial cells differentiated by treatment with cP1P and vascular endothelial growth factor.
  • FIG. 8 shows the results of comparing the angiogenic abilities of vascular endothelial cells differentiated by treatment with cP1P and vascular endothelial growth factor.
  • FIG. 9 shows the result of comparing the cumulative cell number for each passage of vascular endothelial cells differentiated by concurrent treatment with cP1P.
  • the present inventors confirmed the degree of differentiation into vascular endothelial cells by culturing pluripotent stem cells in a medium containing cP1P, a physiologically active lipid. It was confirmed that pluripotent stem cells can produce high-functioning vascular endothelial cells in large quantities, and the present invention was completed.
  • the present invention provides a medium composition for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells, which contains o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate (cP1P) or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • cP1P o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate
  • cP1P of the present invention means a compound having the structure of Formula 1 below, and cannot be prepared using conventional knowledge known in the field of organic chemistry, for example (S. Li, W.K. Wilson, G.J. Schroepfer, Chemical synthesis of D-ribophytosphingosine-1-phosphate, potential modulator of cellular processes. It is different from the synthesis technique:
  • cP1P represented by [Formula 1] may be used in the form of a salt.
  • acid addition salts formed by various organic or inorganic acids that are pharmaceutically, cosmetically, or food-acceptable may be used. Acid addition salts are formed with inorganic acids such as hydrochloric acid, nitric acid, phosphoric acid, sulfuric acid, hydrobromic acid, hydroiodic acid, nitrous acid or phosphorous acid and aliphatic mono- and dicarboxylates, phenyl-substituted alkanoates, hydroxy alkanoates and alkanedios.
  • non-toxic organic acids such as oxalates, aromatic acids, aliphatic and aromatic sulfonic acids.
  • non-toxic salts include sulfate, pyrosulfate, bisulphate, sulphite, bisulfite, nitrate, phosphate, monohydrogen phosphate, dihydrogen phosphate, metaphosphate, pyrophosphate chloride, bromide, iodide, fluoride.
  • the acid addition salt according to the present invention is prepared by a conventional method, for example, dissolving the compound of Formula 1 in an excess acid aqueous solution, and adding the salt to a water-miscible organic solvent such as methanol, ethanol, acetone or It can be prepared by precipitation using acetonitrile. It can also be prepared by evaporating the solvent or excess acid from this mixture and then drying it, or by suction filtering the precipitated salt.
  • a water-miscible organic solvent such as methanol, ethanol, acetone or It can be prepared by precipitation using acetonitrile. It can also be prepared by evaporating the solvent or excess acid from this mixture and then drying it, or by suction filtering the precipitated salt.
  • cP1P represented by [Formula 1] can be used as a pharmaceutically, cosmetically or food-acceptable metal salt.
  • An alkali metal or alkaline earth metal salt is obtained, for example, by dissolving the compound in an excess alkali metal hydroxide or alkaline earth metal hydroxide solution, filtering the undissolved compound salt, and evaporating and drying the filtrate. At this time, it is suitable for agrochemicals to prepare lithium, sodium, potassium or calcium salts as metal salts.
  • the corresponding silver salt can be obtained by reacting an alkali metal or alkaline earth metal salt with a suitable silver salt (for example, silver nitrate).
  • the medium composition may further include vascular endothelial growth factor (VEGF).
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • stem cell is a cell with pluripotency in which one cell can produce many different types of cells, and collectively refers to cells that can newly regenerate cells in damaged parts of our body.
  • Stem cells have self-renewal ability to continuously produce cells identical to themselves, differentiation ability to differentiate into functional specific cells in a specific environment, and immune control ability to react with immune cells and regulate immune responses.
  • Types of stem cells include pluripotent stem cells that have the ability to differentiate into all of the 200 types of cells that make up the human body, depending on the cell area to be differentiated, and specialized tissue-specific cells that can differentiate into specific types of cells. It can be divided into tissue-specific stem cells.
  • stem cells obtained from an embryo or blastocyte starting from a fertilized egg, and adult stem cells obtained from each body tissue of a newborn or adult after the development process is completed. cells) can be classified.
  • the stem cells are preferably embryonic stem cells, induced pluripotent stem cells, or SCNT embryonic stem cells, but are not limited thereto.
  • the cP1P may be in a concentration range of 0.1 nM to 1000 nM, and may be preferably treated at a concentration of 100 nM, but is not limited thereto.
  • composition disclosed in the present invention may promote differentiation of stem cells and inhibit cell death, but is not limited thereto.
  • the term "differentiation” refers to a phenomenon in which the structure or function of a cell is specialized during cell division and growth.
  • Pluripotent embryonic stem cells differentiate into lineage-limited progenitor cells (e.g., ectodermal cells, mesodermal cells, or endodermal cells, etc.), and then can further differentiate into other types of progenitor cells (e.g., hemangioblasts, etc.) , and then differentiate into terminally differentiated cells (eg, vascular endothelial cells and vascular smooth muscle cells) that play a characteristic role in a specific tissue (eg, blood vessels, etc.). Meanwhile, in the present invention, differentiation into vascular endothelial cells is promoted when stem cells are cultured in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • composition according to the present invention may enhance the expression pattern of a vascular endothelial cell marker, and the vascular endothelial cell marker may be any one or more selected from the group consisting of CD34, CD31, FLI1, and ERG1, but is not limited thereto. it is not going to be
  • the present inventors have confirmed through specific examples that the medium composition containing cP1P effectively differentiates stem cells into vascular endothelial cells.
  • the expression of CD34, CD31, FLI1, ERG1, etc. which are markers of vascular endothelial cells, is increased. It was confirmed (see Example 2).
  • vascular endothelial cells differentiated from stem cells using the medium composition of the present invention exhibit cell migration and angiogenesis at a level similar to that of the positive control group (see Example 3).
  • the medium composition according to the present invention can effectively induce the differentiation of stem cells into vascular endothelial cells.
  • the present invention is directed to inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells, comprising culturing the stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the culture may be subculture, and in order to effectively secure the cumulative cell number, it is preferable to perform 4 to 6 subcultures, but is not limited thereto.
  • the method for inducing the differentiation of stem cells into vascular endothelial cells is provided without departing from the essence of the method for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells. The same can be applied to
  • the present invention provides vascular endothelial cells induced to differentiate by culturing stem cells in a medium composition containing cP1P or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient. It was confirmed that the vascular endothelial cells had excellent cell migration ability or angiogenesis ability.
  • Vascular endothelial cells or organoids prepared using the medium composition for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells and the method for inducing differentiation of stem cells into vascular endothelial cells using the medium composition of the present invention are used for treating vascular diseases. It can be used for various purposes, and in particular, organoids can be usefully used for new drug development and toxicity analysis.
  • a 35 mm culture dish was coated with Matrigel (BD), a coating solution, in a 37° C. incubator for 12 hours or more. After 1 day of coating, the coating solution was removed and 10 ⁇ M/ml of Y27632 (ROCK inhibitor, Tocris) was added to the culture medium mTeSR1 (STELL Tech.) to improve the ability of the cells to attach to the culture dish, followed by activation in an incubator at 37° C. for more than 1 hour. Thereafter, pluripotent stem cells were seeded, and the culture medium was replaced every day until the next passage.
  • Y27632 Y27632
  • pluripotent stem cells Prior to entering differentiation, pluripotent stem cells were passaged as single cells for at least 5 passages.
  • the 12-well culture dish was coated with Matrigel, a coating agent, in a 37°C incubator for more than 12 hours, and the next day, the coating solution was removed, and 10 ⁇ M/ml of Y27632 was added to the culture medium mTeSR1 to improve cell adhesion in the culture dish. activated in an incubator.
  • RPMI 1640 culture medium (Gibco) containing 2% B27 minus insulin (Gibco) is used as the differentiation medium and Activin A (R&D systems) is 100ng/ml (Day 0).
  • BMP4 (Bone Morphogenetic Protein 4, R&D systems) 5ng/ml, 1 ⁇ M CHIR-99021 (GSK3 inhibitor, Tocris) was added to RPMI 1640 culture medium containing 2% B27 minus insulin after 17-18 hours. (Day 1).
  • MTG 1-Thioglycerol, Sigma-Aldrich
  • 2mM L-Glutamine Life Technologies
  • 5ng/ml bFGF basic Fibroblast Growth Factor, PeproTech
  • 300ng/ml Vascular Endothelial Growth Factor Stempro-34 SFM (Life Technologies) differentiation medium containing PeproTech
  • a 6-well culture dish was coated with 0.1% Gelatin (Sigma-Aldrich) for more than 1 hour in a 37°C incubator. Thereafter, EGM Bullet Kit (Lonza) containing 20 ng/ml of bFGF, vascular endothelial growth factor and 1 ⁇ M CHIR-99021 was used as a differentiation medium, and subcultured as much as 6 ⁇ 10 4 /well cells in a coated 6-well culture dish. From thereon, the same differentiation culture medium is replaced every day until the end of differentiation on the 12th and 15th days of differentiation. Experiments to see the migratory ability and angiogenic ability of cells were performed after stabilization through at least 2-3 subcultures after the end of differentiation.
  • the pluripotent stem cell-derived vascular endothelial cell differentiation method was a 12-day complete differentiation method, and a total of four groups were set in the differentiation process.
  • the cP1P treatment time point was set from the second day, the same as the vascular endothelial growth factor treatment time point in the conventional method (Example 1-2) (FIG. 1).
  • Group 2 treated with vascular endothelial growth factor and cP1P was divided into a group treated with vascular endothelial growth factor alone and a group treated with cP1P at the time of passage.
  • 0.1% Gelatin Sigma-Aldrich
  • a coating agent Prior to passaging, 0.1% Gelatin (Sigma-Aldrich), a coating agent, was coated on a 100mm culture dish for at least 1 hour in a 37°C incubator.
  • the vascular endothelial growth factor alone treatment group used EGM Bullet Kit (Lonza) containing 20ng/ml of bFGF, 50ng/ml of vascular endothelial growth factor and 1 ⁇ M CHIR-99021 as a differentiation medium and coated 100mm culture. Cells of 5x10 5 were subcultured to the dish.
  • the cP1P concurrent treatment group was set at the same time as the vascular endothelial growth factor treatment time point in the conventional method (Example 1-2).
  • Cells differentiated from each group were subcultured 2-3 times, and then cells were seeded in a 60 mm culture dish at 2 x 10 5 /well.
  • EGM Bullet Kit (Lonza) containing 1 ⁇ M CHIR-99021 along with 20 ng/ml of bFGF and 50 ng/ml of vascular endothelial growth factor was used. After 3 days, when the cells in the culture dish proliferated by about 90%, a scratch was made in the center of the culture dish using a sterilized 200uL tip. After washing with sterile phosphate buffered saline (PBS), it was replaced with a new culture medium. Cell migration ability was confirmed using a microscope (IX71, Olympus, Tokyo, Japan) after 12 hours of replacing the culture medium.
  • the differentiated cells in each group are subcultured 2-3 times.
  • EGM Bullet Kit (Lonza) containing 1 ⁇ M CHIR-99021 along with 20 ng/ml of bFGF and 50 ng/ml of vascular endothelial growth factor was used.
  • Dispense 350uL/well of Matrigel melted on ice into a 12-well culture dish and solidify in a 37°C incubator for 1 hour.
  • 1.6 x 10 5 cells/500uL per well are seeded on the differentiated cells on the solidified Matrigel. Be careful not to damage the solidified Matrigel during sowing.
  • angiogenesis ability was confirmed using a microscope (IX71, Olympus, Tokyo, Japan).
  • Example 2 Confirmation of enhancement of vascular endothelial cell marker expression of cP1P in the process of pluripotent stem cell-derived vascular endothelial cell differentiation
  • the differentiation efficiency of the VEGF and cP1P treatment group and cP1P alone treatment group was analyzed by flow cytometry using vascular endothelial cell-related markers (CD34, VE-Cadherin, CD31).
  • CD34 vascular endothelial cell-related markers
  • VE-Cadherin CD31
  • the expression pattern of CD34 was significantly increased by about 5% in the VEGF and cP1P concurrently treated group compared to the positive control group on the 5th day, the initial stage of differentiation, and the cP1P alone treated group.
  • VEGF alone treatment group and negative control group (non-treatment group).
  • the expression patterns of VE-Cadherin and CD31, which are late vascular endothelial cell markers, were confirmed on the 12th day, the late stage of differentiation, by the same analysis method.
  • the expression level of the cP1P alone treatment group increased by about 60% compared to the negative control group.
  • the cP1P alone-treated group was cultured for 3 more days and significantly increased to 91.3% at the 15th day of differentiation.
  • the mRNA expression patterns of early (CD34) and late (CD31, FLI1, ERG1) vascular endothelial cell markers in the vascular endothelial cell differentiation process were compared and analyzed for each time period.
  • the expression levels of CD34, CD31, FLI1, and ERG1 in the VEGF and cP1P concurrently treated group were significantly increased in both early and late stages of differentiation.
  • the expression levels of the positive control group were similar to those of the positive control group in both the early and late stages of differentiation, but it was confirmed that the expression levels of FLI1 and ERG1 increased significantly on the 15th day of differentiation after further culture for 3 days.
  • Example 3 Confirmation of efficacy of vascular endothelial cells derived from pluripotent stem cells cultured in a medium containing cP1P
  • the migration ability of the differentiated cells of each group was investigated. As a result, as shown in FIG. 7 , it was confirmed that the migratory ability of cells greatly enhanced in the cP1P concurrent treatment group. It was found that the cP1P alone treatment group had a similar level of cell migration ability to that of the positive control group, although the number of cells obtained was relatively small and the time required for differentiation was longer.

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Abstract

본 발명은 cP1P(o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물, 및 상기 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법에 관한 것이다. 본 발명에 사용되는 생리활성지질인 cP1P (O-cyclic Phytosphingosine-1-Phosphate)는 저비용으로 고효율 합성이 가능하기 때문에 혈관내피성장인자와 달리 비용적인 측면에서 큰 이점이 있으며, cP1P를 단독 처리했을 때에도 그 기능이 혈관내피성장인자 단독 처리 시와 유사함을 확인하였고, 분화 중 cP1P와 혈관내피성장인자의 병행 처리를 통하여 고기능의 혈관내피세포를 대량으로 생산할 수 있음을 확인하였는바, 본 발명에 따른 배지 조성물을 이용하는 경우 고기능 혈관내피세포의 대량생산이 가능하여, 기능성 오가노이드 제작 등 손상된 혈관을 대체할 수 있는 자원으로써 널리 활용될 수 있을 것으로 기대된다.

Description

줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물
본 발명은 cP1P(o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물, 및 상기 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법에 관한 것이다.
전분화능 줄기세포는 이론적으로 인체를 구성하는 모든 종류의 세포로 분화 가능한 특징을 가지고 있다. 이러한 전분화능 줄기세포를 이용하여 혈관내피세포를 생산하는 것이 가능하다고 밝혀졌으며, 이에 따라 세계 각국의 많은 연구자들이 각종 혈관질환의 근본적인 치료법을 제시하고자 연구를 진행하고 있다. 혈관은 기능이 상실되면 회복이 어려워 혈관이식을 통한 치료법이 필요하다. 그래서 신규세포 제공 가능 기반으로써 인간 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포의 분화에 대한 연구가 주목받고 있다.
최근 혈관내피세포 분화과정에서 혈관내피성장인자 (VEGF; Vascular Endothelial Grotwh Factor)가 중요한 역할을 한다는 연구결과가 보고되었다 (Nourse MB et al., Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2010). 이에 따라 많은 연구자들에 의해 혈관내피성장인자가 포함된 고효율 (최종 분화 혈관내피세포 표지인자 발현율이 99% 이상)의 혈관내피세포 분화방법들이 확립되었다.
그러나 혈관내피성장인자는 합성단가가 1mg 기준 600만원에 이르는 고가이기 때문에 분화에 많은 비용이 소비되며, 그 비용 대비 얻을 수 있는 세포의 수가 제한적이다. 그리고 기존의 분화 방법으로 분화시킨 혈관내피세포로 혈관이식 시 혈관 재생효과를 나타낼만한 기능적 수준인지와 충분한 수를 제공할 수 있을지에 대한 의구심이 대두되고 있는바, 전분화능 줄기세포로부터 혈관내피세포로의 분화를 유도하기 위한 새로운 방법의 개발이 필요한 실정이다.
상기와 같은 문제점을 해결하기 위해, 본 발명자들은 생리활성 지질인 cP1P를 포함하는 배지에서 전분화능줄기세포를 배양함으로써 혈관내피세포로의 분화 정도를 확인한 결과, cP1P 단독 또는 cP1P 및 혈관내피성장인자(VGEF)를 포함하는 배지에서 배양된 전분화능 줄기세포가 고기능 혈관내피세포를 대량으로 생산할 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
이에, 본 발명은 cP1P(o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물을 제공하는 것을 목적으로 한다.
또한, 본 발명은 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는, 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법을 제공하는 것을 다른 목적으로 한다.
또한, 본 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하여 분화 유도된 혈관내피세포를 제공하는 것을 또 다른 목적으로 한다.
그러나 본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제는 이상에서 언급한 과제에 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 당업자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 cP1P(o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물을 제공한다.
본 발명의 일구현예로, 상기 배지 조성물은 혈관내피세포성장인자(Vascular endothelial growth factor, VEGF)를 더 포함할 수 있다.
본 발명의 다른 구현예로, 상기 줄기세포는 배아줄기세포(embryonic stem cell), 유도만능줄기세포(induced Pluripotent stem cell) 또는 체세포 핵치환 배아줄기세포(SCNT embryonic stem cell)일 수 있다.
본 발명의 또 다른 구현예로, 상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도일 수 있다.
본 발명의 또 다른 구현예로, 상기 조성물은 줄기세포의 분화를 촉진하고, 세포 사멸을 저해할 수 있다.
본 발명의 또 다른 구현예로, 상기 조성물은 혈관내피세포 표지인자인 CD34, CD31, FLI1 및 ERG1의 발현양상을 증진시킬 수 있다.
또한, 본 발명은 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는, 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법을 제공한다.
본 발명의 일구현예로, 상기 배지 조성물은 혈관내피세포성장인자(Vascular endothelial growth factor, VEGF)를 더 포함할 수 있다.
본 발명의 다른 구현예로, 상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도일 수 있다.
본 발명의 또 다른 구현예로, 상기 배양은 4 내지 6 계대 배양하는 것일 수 있다.
본 발명의 또 다른 구현예로, 상기 줄기세포는 배아줄기세포(embryonic stem cell), 유도만능줄기세포(induced Pluripotent stem cell) 또는 체세포 핵치환 배아줄기세포(SCNT embryonic stem cell)일 수 있다.
또한, 본 발명은 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하여 분화 유도된, 혈관내피세포를 제공한다.
본 발명의 일구현예로, 상기 혈관내피세포는 세포 이주능 또는 혈관생성능을 낼 수 있다.
본 발명의 다른 구현예로, 상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도일 수 있다.
본 발명에 사용되는 생리활성지질인 cP1P (O-cyclic Phytosphingosine-1-Phosphate)는 저비용으로 고효율 합성이 가능하기 때문에 혈관내피성장인자와 달리 비용적인 측면에서 큰 이점이 있으며, cP1P를 단독 처리했을 때에도 그 기능이 혈관내피성장인자 단독 처리 시와 유사함을 확인하였고, 분화 중 cP1P와 혈관내피성장인자의 병행 처리를 통하여 고기능의 혈관내피세포를 대량으로 생산할 수 있음을 확인하였는바, 본 발명에 따른 배지 조성물을 이용하는 경우 고기능 혈관내피세포의 대량생산이 가능하여, 기능성 오가노이드 제작 등 손상된 혈관을 대체할 수 있는 자원으로써 널리 활용될 수 있을 것으로 기대된다.
도 1은 혈관내피세포 분화 과정에서 cP1P 처리 모식도를 나타낸 것이다.
도 2는 혈관내피세포 분화 과정에서 cP1P 및 혈관내피성장인자 처리에 따른 분화 효율을 비교한 결과를 나타낸 것이다.
도 3은 분화 과정에서 cP1P 및 혈관내피성장인자 처리에 따른 세포 수를 비교 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 4는 분화 과정에서 cP1P 및 혈관내피성장인자 처리에 따른 분화 시기별 표지인자의 mRNA 발현 양상을 비교한 결과를 나타낸 것이다.
도 5는 혈관내피세포 표지인자의 단백질 발현 양상을 비교한 결과를 나타낸 것이다.
도 6a 내지 6c는 분화 과정에서 cP1P 및 혈관내피성장인자 처리에 따른 혈관내피세포 표지인자의 면역형광법 분석 결과를 나타낸 것이다.
도 7은 cP1P 및 혈관내피성장인자를 처리하여 분화시킨 혈관내피세포의 세포 이주능을 비교한 결과를 나타낸 것이다.
도 8은 cP1P 및 혈관내피성장인자를 처리하여 분화시킨 혈관내피세포의 혈관 생성능을 비교한 결과를 나타낸 것이다.
도 9는 cP1P병행 처리하여 분화시킨 혈관내피세포 계대별 누적 세포수를 비교한 결과를 나타낸 것이다.
본 발명자들은 생리활성 지질인 cP1P를 포함하는 배지에서 전분화능줄기세포를 배양함으로써 혈관내피세포로의 분화 정도를 확인한 결과, cP1P 단독 또는 cP1P 및 혈관내피성장인자(VGEF)를 포함하는 배지에서 배양된 전분화능 줄기세포가 고기능 혈관내피세포를 대량으로 생산할 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
이에, 본 발명은 cP1P(o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물을 제공한다.
본 발명의 cP1P는 하기 화학식 1의 구조를 갖는 화합물을 의미하며, 유기화학 분야에 공지되어 있는 통상의 지식을 이용하여 제조할 수 없으며, 예를 들어 (S. Li, W.K. Wilson, G.J. Schroepfer, Chemical synthesis of D-ribophytosphingosine-1-phosphate, potential modulator of cellular processes. J.Lipid Res. 40: 117-125, 1999)에 개시되어 있는 방법을 이용하여 P1P를 제조할 수는 있지만, 이는 본원의 cP1P를 합성하는 기술과 상이하다:
[화학식 1]
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.
본 발명에 따른 [화학식 1]로 표시되는 cP1P는 염의 형태로 사용될 수 있다. 상기 염으로는 약학적, 화장품학적 또는 식품학적으로 허용되는 다양한 유기산 또는 무기산에 의해 형성된 산부가염을 사용할 수 있다. 산 부가염은 염산, 질산, 인산, 황산, 브롬화수소산, 요오드화수소산, 아질산 또는 아인산과 같은 무기산류와 지방족 모노 및 다이카르복실레이트, 페닐-치환된 알카노에이트, 하이드록시 알카노에이트 및 알칸디오에이트, 방향족 산류, 지방족 및 방향족 설폰산류와 같은 무독성 유기산으로부터 얻을 수 있다. 이러한 무독성 염류로는 설페이트, 피로설페이트, 바이설페이트, 설파이트, 바이설파이트, 니트레이트, 포스페이트, 모노하이드로겐 포스페이트, 디하이드로겐 포스페이트, 메타포스페이트, 피로포스페이트 클로라이드, 브로마이드, 아이오다이드, 플루오라이드, 아세테이트, 프로피오네이트, 데카노에이트, 카프릴레이트, 아크릴레이트, 포메이트, 이소부티레이트, 카프레이트, 헵타노에이트, 프로피온산, 옥살산, 말론산, 숙신산, 수베레이트, 세바케이트, 푸마렝트, 말리에이트, 부틴-1,4-디오에이트, 헥산-1,6-디온산, 벤조산, 클로로벤조산, 메틸벤조산, 디니트로 벤조산, 하이드록시벤조에이트, 메톡시벤조산, 프달산, 테레프달레이트, 벤젠실폰산, 톨루엔실폰산, 클로로벤젠설폰산, 크실렌설폰산, 페닐아세트산, 페닐프로피온산, 페닐부티레이트, 시트레이트, 락테이트, β-하이드록시부티레이트, 글리콜레이트, 말레이트, 타트레이트, 메탄설포네이트, 프로판설포네이트, 나프탈렌-1-설포네이트, 나프탈렌-2-설포네이트, 만델레이트, 트라이플루오로아세트산 등을 사용하여 제조할 수 있다.
이때, 본 발명에 따른 상기 산 부가염은 통상의 방법, 예를들면 [화학식 1]의 화합물을 과량의 산 수용액에 용해시키고, 이 염을 수혼화성 유기용매, 예를들면 메탄올, 에탄올, 아세톤 또는 아세토니트릴을 사용하여 침전시켜서 제조할 수 있다. 또한 이 혼합물에서 용매나 과량의 산을 증발시킨 후 건조시키거나, 또는 석출된 염을 흡입 여과시켜 제조할 수도 있다.
또한, 본 발명에 따른 [화학식 1]로 표시되는 cP1P는 염기를 사용하여 약학적, 화장품학적 또는 식품학적으로 허용 가능한 금속염을 만들 수 있다. 알칼리 금속 또는 알칼리 토금속 염은 예를 들면, 화합물을 과량의 알칼리 금속 수산화물 또는 알칼리 토금속 수산화물 용액 중에 용해하고, 비용해 화합물 염을 여과하고, 여액을 증발, 건조시켜 얻는다. 이때, 금속염으로는 리튬, 나트륨, 칼륨 또는 칼슘염을 제조하는 것이 농약학상 적합하다. 또한, 이에 대응하는 은 염은 알칼리 금속 또는 알칼리 토금속 염을 적당한 은염(예를들면, 질산은)과 반응시켜 얻을 수 있다.
본 발명의 일구현예로, 상기 배지 조성물은 혈관내피세포성장인자(Vascular endothelial growth factor, VEGF)를 더 포함할 수 있다.
본 발명에서 사용되는 용어, “줄기세포”는 한 개의 세포가 여러 종류의 다른 세포를 생산해 낼 수 있는 전분화능을 가진 세포로서, 우리 몸의 손상 받은 부위의 세포들을 새로 재생할 수 있는 세포들을 통칭한다. 줄기세포는 자신과 동일한 세포를 지속적으로 만들어낼 수 있는 자가 재생산 능력, 특정 환경에서 기능성 특정 세포로 분화할 수 있는 분화능, 면역세포와 반응하여 면역반응을 조절하는 면역 조절능을 갖는다. 줄기세포의 종류는 분화되는 세포의 영역에 따라 인체를 구성하는 200여 가지의 세포로 모두 분화할 능력을 가진 전분화능 줄기세포(pluripotent stem cell)와 특정 종류의 세포로 분화할 수 있도록 특화된 조직-특이적 줄기세포(tissue-specific stem cell)로 나눌 수 있다. 또한 줄기세포를 획득하기 위한 공급원에 따라 수정란에서 출발한 배아 또는 배반포(blastocyte)에서 얻어지는 배아줄기세포(embryonic stem cell)와 발생 과정이 끝난 신생아 또는 성인의 신체 각 조직에서 얻어지는 성체줄기세포(adult stem cell)로 분류 될 수 있다. 본 발명에서 상기 줄기세포는 배아줄기세포(embryonic stem cell), 유도만능줄기세포(induced Pluripotent stem cell) 또는 체세포 핵치환 배아줄기세포(SCNT embryonic stem cell)인 것이 바람직하나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도 범위일 수 있으며, 바람직하게는 100 nM의 농도로 처리되는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 개시된 조성물은 줄기세포의 분화를 촉진하고, 세포 사멸을 저해할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 사용되는 용어, “분화(differentiation)”란 세포가 분열 증식하여 성장하는 동안에 세포의 구조나 기능이 특수화되는 현상을 의미한다. 전분화능 배아줄기세포는 계통이 한정된 전구세포(예컨대, 외배엽성 세포, 중배엽성 세포 또는 내배엽성 세포 등)로 분화한 후, 다른 형태의 전구세포로 더 분화될 수 있고(예컨대, 혈관모세포 등), 그 뒤 특정 조직(예컨대, 혈관 등)에서 특징적인 역할을 수행하는 말기 분화세포(예컨대, 혈관내피세포 및 혈관평활근세포 등)로 분화될 수 있다. 한편, 본 발명에서는 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 경우 혈관내피세포로 분화가 촉진된다.
또한, 본 발명에 따른 조성물은 혈관내피세포 표지인자의 발현양상을 증진시킬 수 있으며, 상기 혈관내피세포 표지인자는 CD34, CD31, FLI1 및 ERG1으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명자들은 구체적인 실시예를 통해 cP1P을 포함하는 배지 조성물이 줄기세포를 혈관내피세포로 효과적으로 분화시키는 것을 확인하였다.
본 발명의 일실시예에는 본 발명의 배지 조성물을 이용하여 배양한 혈관내피세포로의 분화를 유도한 줄기세포의 경우 혈관내피세포의 표지인자인 CD34, CD31, FLI1, ERG1 등의 발현이 증가되는 것을 확인하였다(실시예 2 참조).
또한, 본 발명의 다른 실시예에서는 본 발명의 배지 조성물을 이용하여 줄기세포에서 분화된 혈관내피세포는 양성대조군과 유사한 수준의 세포 이주능 및 혈관생성능을 나타낸다는 것을 확인하였다(실시예 3 참조).
상기 실시예 결과로부터, 본 발명에 따른 배지 조성물이 줄기세포를 혈관내피세포로 효과적으로 분화를 유도할 수 있음을 확인하였다.
또한, 본 발명의 다른 양태로써, 본 발명은 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는, 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법을 제공한다.
본 발명의 방법에서 상기 배양은 계대 배양일 수 있으며, 효과적으로 누적 세포 수를 확보하기 위해서는 4 내지 6 계대 배양하는 것이 바람직하나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물에 관한 사항은 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법의 본질에 벗어나지 않는 한도에서 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법에 대해서도 동일하게 적용될 수 있다.
또한, 본 발명의 또 다른 양태로써 본 발명은 cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하여 분화 유도된, 혈관내피세포를 제공한다. 상기 혈관내피세포는 세포 이주능 또는 혈관생성능이 우수함이 확인되었다.
본 발명의 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물 및 이를 이용하여 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법을 이용하여 제조한 혈관내피세포 또는 오가노이드는 혈관 질환을 치료하기 위한 목적으로 사용될 수 있고, 특히 오가노이드는 신약개발 및 독성분석에 유용하게 활용될 수 있다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
[실시예]
실시예 1. 실험방법
1-1. 전분화능 줄기세포 배양방법
전분화능 줄기세포를 배양하기 위해서 35mm 배양접시를 코팅액인 Matrigel (BD)를 이용하여 37℃인큐베이터에서 12시간이상 코팅하였다. 코팅 1일 후, 코팅액을 제거하고 세포의 배양접시 내 부착능 향상을 위하여 Y27632 (ROCK inhibitor, Tocris) 10μM/ml을 배양액 mTeSR1 (STEMCELL Tech.)에 첨가하여 1시간이상 37℃인큐베이터에서 활성화시켰다. 이후, 전분화능 줄기세포를 파종하고, 다음 계대까지 매일 배양액을 교체하였다.
1-2. VEGF를 이용한 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포의 분화유도 방법(양성대조군)
분화에 들어가기에 앞서 전분화능 줄기세포를 적어도 5계대는 단일세포(single cell)로 계대하였다. 12well 배양접시를 코팅제인 Matrigel로 37℃인큐베이터에서 12시간이상 코팅하고, 다음 날 코팅액을 제거하고 세포의 배양접시 내의 부착능 향상을 위하여 Y27632 10μM/ml을 배양액 mTeSR1에 첨가한 후 1시간이상 37℃인큐베이터에서 활성화시켰다. 세포를 파종하여 배양접시 내의 세포 밀도가 약 80~90%에 도달하면 2% B27 minus insulin (Gibco)이 포함된 RPMI 1640 배양액 (Gibco)을 분화배양액으로 하여 Activin A (R&D systems)를 100ng/ml로 처리하였다 (0일차).
Activin A가 포함된 배양액은 17-18시간 뒤에 2% B27 minus insulin이 포함된 RPMI 1640 배양액에 BMP4 (Bone Morphogenetic Protein 4, R&D systems) 5ng/ml, 1μM CHIR-99021 (GSK3 inhibitor, Tocris)을 첨가시킨 분화배양액으로 교체하였다 (1일차).
이후 3일간 400μM MTG (1-Thioglycerol, Sigma-Aldrich), 2mM L-Glutamine (Life Technologies), 5ng/ml bFGF (basic Fibroblast Growth Factor, PeproTech), 300ng/ml 혈관내피성장인자(Vascular Endothelial Growth Factor, PeproTech)가 포함된 Stempro-34 SFM (Life Technologies) 분화배양액으로 매일 교체하였다.
분화시작 6일차에 6well 배양접시에 코팅제인 0.1% Gelatin (Sigma-Aldrich)을 37℃인큐베이터에서 1시간이상 코팅하였다. 그 후에 20ng/ml의 bFGF, 혈관내피성장인자와 함께 1μM CHIR-99021가 포함된 EGM BulletKit (Lonza)를 분화배양액으로 사용하여 코팅된 6well 배양접시에 6x104/well의 세포만큼 계대 배양하였다. 이후부터 분화 12일, 15일차가 되어 분화가 끝날 때까지 같은 분화배양액으로 매일 교체를 실시한다. 세포의 이주능과 혈관 생성능을 보기 위한 실험은 분화가 끝난 후 최소 2-3번의 계대 배양을 통하여 안정화 시킨 뒤 진행하였다.
1-3. 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포 분화과정에서 cP1P 처리방법
전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포 분화방법은 12일 완성 분화법으로서, 분화과정에서 총 4개의 군을 설정하였다. 기존의 방법대로 혈관내피성장인자를 단독 처리한 1번 군(실시예 1-2, 양성대조군), 혈관내피성장인자와 cP1P를 병행 처리한 2번 군, cP1P를 단독 처리한 3번 군, 혈관내피성장인자와 cP1P를 모두 처리하지 않은 4번 군(음성대조군)으로 설정하였다. cP1P 처리 시점은 기존의 방법(실시예 1-2)에서 혈관내피성장인자가 처리되는 시점과 동일하게 2일차부터로 설정하였다(도 1).
1-4. 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포 계대 방법
혈관내피성장인자와 cP1P를 병행 처리한 2번 군을 계대 시 혈관내피세포성장인자 단독 처리 군과 cP1P 병행 처리 군으로 나누었다. 계대 전 100mm 배양접시에 코팅제인 0.1% Gelatin (Sigma-Aldrich)을 37℃인큐베이터에서 1시간이상 코팅하였다. 코팅제 제거 후 혈관내피세포성장인자 단독처리군은 20ng/ml의 bFGF, 50ng/ml의 혈관내피성장인자와 함께 1μM CHIR-99021가 포함된 EGM BulletKit (Lonza)를 분화배양액으로 사용하고 코팅된 100mm 배양접시에 5x105의 세포만큼 계대 배양하였다. cP1P 병행 처리군은 기존의 방법(실시예 1-2)에서 혈관내피성장인자가 처리되는 시점과 동일하게 설정하였다.
1-5. 세포 이주능 확인 방법
각 군별 분화가 끝난 세포를 2-3회 계대 배양을 진행한 뒤, 60mm 배양접시에 2 x 105/well 만큼 세포를 파종하였다. 배양액은 20ng/ml의 bFGF, 50ng/ml의 혈관내피성장인자와 함께 1μM CHIR-99021이 포함된 EGM BulletKit (Lonza)를 사용하였다. 3일 후 배양접시 내 세포가 약 90% 증식했을 때, 멸균된 200uL tip을 이용하여 배양접시 중앙에 스크래치를 만들었다. 멸균인산완충용액(PBS)으로 세척 후 새로운 배양액으로 교체하였다. 배양액 교체 12시간 후 현미경 (IX71, Olympus, Tokyo, Japan)을 사용하여 세포 이주능을 확인하였다.
1-6. 혈관 생성능 확인 방법
각 군별 분화가 끝난 세포를 2-3회 계대 배양을 진행한다. 배양액은 20ng/ml의 bFGF, 50ng/ml의 혈관내피성장인자와 함께 1μM CHIR-99021이 포함된 EGM BulletKit (Lonza)를 사용하였다. 얼음 위에서 녹인 Matrigel을 12well 배양접시에 350uL/well 분주하고 37℃인큐베이터에서 1시간 고체화시킨다. 분화된 세포를 고체화된 Matrigel 위에 well당 1.6 x 105 cells/500uL 파종한다. 파종 시 고체화된 Matrigel이 손상되지 않도록 주의한다. 24시간 동안 37℃인큐베이터에서 배양 후 현미경 (IX71, Olympus, Tokyo, Japan)을 사용하여 혈관 생성능을 확인하였다.
실시예 2. 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포 분화 과정에서 cP1P의 혈관내피세포 표지인자 발현 증진 확인
전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포 분화 과정에서 VEGF 및 cP1P 병행 처리군과 cP1P 단독 처리군의 분화 효율을 혈관내피세포 관련 표지인자 (CD34, VE-Cadherin, CD31)를 이용한 유세포 분석법을 통해 분석하였다, 그 결과, 도 2에 나타낸 바와 같이 분화 초기인 5일차에 초기 혈관내피세포의 표지인자인 CD34의 발현 양상이 양성대조군 대비 VEGF 및 cP1P 병행 처리군에서 약 5% 유의미하게 증가하였고, cP1P 단독 처리군(VEGF 단독 처리군)과 음성대조군(무처리군)의 차이는 없는 것을 확인하였다. 같은 분석방법으로 분화 후기인 12일차에 후기 혈관내피세포 표지인자인 VE-Cadherin, CD31의 발현양상을 확인하였다. 양성대조군과 cP1P 병행 처리군 사이에 유의미한 차이가 없었으나, cP1P 단독 처리군의 발현양이 음성대조군 대비 약 60% 증가하는 것을 확인하였으며. 또한 cP1P 단독 처리군을 3일 더 배양하여 분화 15일차가 되었을 때 91.3%로 유의미하게 증가함을 확인하였다.
또한, 분화 12일차에 각 군의 세포 수를 확인한 결과, 도 3에 나타낸 바와 같이 cP1P 병행 처리군에서 32% 더 많은 세포를 얻을 수 있게 됨을 확인하였다.
이에 더하여, 혈관내피세포 분화 과정에서 초기 (CD34) 및 후기 (CD31, FLI1, ERG1) 혈관내피세포 표지인자의 mRNA 발현 양상을 각 시기별로 비교 분석하였다. 그 결과, 도 4에 나타낸 바와 같이 VEGF 및 cP1P 병행 처리군은 분화 초기와 후기 모두에서 CD34, CD31, FLI1, ERG1의 발현양이 크게 증가하였다. cP1P 단독 처리군은 분화 초기와 후기 모두 양성대조군과 발현양이 유사하였으나, 3일을 더 배양한 분화 15일차에서 FLI1, ERG1의 발현양이 크게 증가하였음을 확인하였다.
나아가, 분화 후기 표지인자의 발현 양상을 단백질 수준에서 확인한 결과, 도 5에 나타낸 바와 같이 VE-Cadherin, CD31의 발현양이 VEGF 및 cP1P 병행 처리군에서 증가함을 확인하였으며, 분화 15일차의 cP1P 단독 처리군에서 VE-Cadherin, CD31의 발현양이 양성 대조군과 유사함을 확인하였다.
또한, 각 군의 VE-Cadherin 발현 양상을 분화 시기별로 면역형광법을 이용하여 관찰한 결과, 도 6a 내지 6c에 나타낸 바와 같이 분화 초기와 후기 모두 VEGF 및 cP1P 병행 처리군에서 발현양이 증가함을 확인하였으며, 분화 15일차 cP1P 단독 처리군에서의 발현양은 양성대조군과 유사하게 나타남을 알 수 있었다.
실시예 3. cP1P가 포함된 배지에서 배양된 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포의 효능 확인
3-1. 세포 이주능 확인
cP1P가 포함된 배지에서 배양된 전분화능 줄기세포 유래 혈관내피세포의 효능 확인하기 위해, 분화가 끝난 각 군의 세포의 이주능을 조사하였다. 그 결과, 도 7에 나타낸 바와 같이 cP1P 병행 처리군에서 크게 강화된 세포의 이주능이 확인되었다. cP1P 단독 처리군은 얻어지는 세포의 수가 상대적으로 적고 분화에 필요한 시간은 더 소요되었으나 양성대조군과 유사한 수준의 세포 이주능이 있음을 알 수 있었다.
3-2. 혈관 생성능 확인
분화가 끝난 혈관내피세포가 실질적으로 혈관을 생성할 수 있는 능력이 있는지를 조사하였다. 그 결과, 도 8에 나타낸 바와 같이 cP1P 병행 처리군의 in vitro상에서 만들어진 혈관이 debris도 훨씬 적으며 단단한 혈관이 형성되며, cP1P 단독 처리군의 혈관 생성능은 이주능과 마찬가지로 양성대조군과 유사한 수준임을 확인하였다.
실시예 4. cP1P 및 혈관내피세포성장인자 병행 처리에 따른 효능 증진 확인
혈관내피세포의 분화능이 가장 우수하다고 생각되는 VGEF 및 cP1P 병행 처리군의 분화 종료 후, 혈관내피세포성장인자 단독 처리군과 VGEF 및 cP1P 병행 처리군으로 나누어 계대 배양을 실시하였다. 그 결과, 도 9에 나타낸 바와 같이 6계대까지의 누적 세포수가 cP1P 병행처리 군에서 혈관내피세포성장인자 단독 처리군 보다 6배 이상 증가한 것을 확인하였다.
전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.

Claims (14)

  1. cP1P(o-cyclic phytosphingosine-1-phosphate) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는, 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 배지 조성물.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 배지 조성물은 혈관내피세포성장인자(Vascular endothelial growth factor, VEGF)를 더 포함하는 것을 특징으로 하는, 배지 조성물.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도인 것을 특징으로 하는, 배지 조성물
  4. 제1항에 있어서,
    상기 줄기세포는 배아줄기세포(embryonic stem cell), 유도만능줄기세포(induced Pluripotent stem cell) 또는 체세포 핵치환 배아줄기세포(SCNT embryonic stem cell)인 것을 특징으로 하는, 배지 조성물.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 조성물은 줄기세포의 분화를 촉진하고, 세포 사멸을 저해하는 것을 특징으로 하는, 배지 조성물.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 조성물은 혈관내피세포 표지인자의 발현양상을 증진시키는 것을 특징으로 하는, 배지 조성물.
  7. cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하는 단계를 포함하는, 줄기세포를 혈관내피세포로 분화 유도하기 위한 방법.
  8. 제7항에 있어서,
    상기 배지 조성물은 혈관내피세포성장인자(Vascular endothelial growth factor, VEGF)를 더 포함하는 것을 특징으로 하는, 방법.
  9. 제7항에 있어서,
    상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도인 것을 특징으로 하는, 방법.
  10. 제7항에 있어서,
    상기 배양은 4 내지 6 계대 배양하는 것을 특징으로 하는, 방법.
  11. 제7항에 있어서,
    상기 줄기세포는 배아줄기세포(embryonic stem cell), 유도만능줄기세포(induced Pluripotent stem cell) 또는 체세포 핵치환 배아줄기세포(SCNT embryonic stem cell)인 것을 특징으로 하는, 방법.
  12. cP1P 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 배지 조성물에서 줄기세포를 배양하여 분화 유도된, 혈관내피세포.
  13. 제12항에 있어서,
    상기 혈관내피세포는 세포 이주능 또는 혈관생성능을 나타내는 것을 특징으로 하는, 혈관내피세포.
  14. 제12항에 있어서,
    상기 cP1P은 0.1 nM 내지 1000 nM의 농도인 것을 특징으로 하는, 혈관내피세포.
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