WO2022118987A1 - 滅菌が不要な微生物の連続製造法およびそのためのシステム - Google Patents

滅菌が不要な微生物の連続製造法およびそのためのシステム Download PDF

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WO2022118987A1
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temperature bath
inoculum
medium
storage tank
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克敏 堀
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国立大学法人東海国立大学機構
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/30Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16Yeasts; Culture media therefor

Definitions

  • the present invention relates to a new method for producing a microorganism and a system for that purpose.
  • microorganisms have been used in a wide range of applications such as production of useful substances, food production, water treatment, and decomposition of specific substances such as fats and oils.
  • Microbial growth methods for these uses are generally broadly divided into three types: batch culture, feeding culture, and continuous culture, but on an industrial scale, the culture medium is mainly collected after each cycle of culture.
  • Formulations and products containing a large amount of microorganisms are produced by batch culture or feeding culture, and efficient large-scale production of microorganisms by continuous culture is difficult and rarely carried out.
  • a sterilization operation of a medium or a manufacturing apparatus is performed in order to prevent contamination of microorganisms other than the target microorganism and contamination with various germs.
  • the sterilization operation is indispensable because there is a high risk that the contaminated microorganisms and bacteriophage will grow during long-term culture.
  • heat-resistant microorganisms that could not be sterilized and bacteriophage that are easily contaminated may grow during the long-term operation of continuous culture, and such germs and the like may grow.
  • Continuous culture has been shunned due to the magnitude of damage in the case and the difficulty of controlling the quality of manufactured products.
  • the microbial preparation used for wastewater treatment or the like if the growth of the target microorganism and its efficacy are not affected, some contamination with various germs may be allowed.
  • it is natural for the quality control of the product that it is necessary to suppress the contamination of various germs and the like as much as possible, and the sterilization operation of the medium and the manufacturing apparatus has been performed as much as possible.
  • a short-time batch culture can be exceptionally carried out so that the mixed germs and the like do not grow and affect the growth and efficacy of the target microorganism.
  • the seed microorganisms are stored in a cold storage, and the seed microorganisms are periodically put into a growth tank such as once a day to grow the seed microorganisms to produce a microbial preparation.
  • An automatic microbial charging device has been developed in which the microbial preparation produced in the above-mentioned method is charged into the oil-containing wastewater (Patent Document 1), but the microbial preparation used in such a case is also generally produced by batch culture. Manufactured.
  • the present invention provides a novel production method for continuously growing a large amount of microorganisms and a system for that purpose.
  • INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, it is possible to provide a method for continuous growth of microorganisms, that is, a method for producing microorganisms, in which the need for sterilization is reduced as compared with conventional methods. Further, according to the continuous production method of the present invention, it is possible to save the amount of microorganisms used as an inoculum and efficiently produce a large amount of microorganisms.
  • the present invention provides: (Item 1) The medium is continuously supplied to the constant temperature bath for 20 hours or more at a constant flow rate Y (L / h), and the carbon source is supplied at a constant flow rate Q (L / h).
  • Y constant flow rate
  • Q constant flow rate
  • the microbial preparation containing a substantially constant concentration of microorganisms is discharged from the constant temperature bath continuously for 20 hours or more at a constant flow rate F (L / h), and the discharged microbial preparation is charged into the oil-containing drainage at a constant flow rate F.
  • a method for adding a microbial preparation in the treatment of the oil-and-fat-containing wastewater which comprises the above-mentioned method.
  • the culture medium has a medium component of the target concentration, and the medium charged at the constant flow rate Y is about 10 times or more the medium component of the target concentration supplied at the constant flow rate Y1 (L / h).
  • Y1 + Y2 Y, which is produced by a concentrated medium having a concentration of medium components and water supplied separately from the concentrated medium at a constant flow rate of Y2 (L / h).
  • the concentrated medium and the water are separately supplied to the constant temperature bath to become a medium component having the desired concentration in the constant temperature bath, or (2) the concentrated medium and the water are mixed in a mixing tank or The method for charging a microbial preparation according to item 1, wherein the mixture is mixed in a supply line to generate a mixed solution having a medium component having the target concentration, and the mixed solution is continuously supplied to the constant temperature bath.
  • Item 3 Item 2.
  • the microbial preparation according to Item 1 or 2 wherein the carbon source is supplied to the constant temperature bath so that the carbon source concentration of the culture solution in the constant temperature bath is always about 0.01 w / v% or less.
  • Items 1 to 1 characterized in that the constant temperature bath is operated so that the temperature of the culture solution in the constant temperature bath is 20 to 35 ° C., the dissolved oxygen concentration is 0.1 mg / L or more, and the pH is 6.0 to 8.0.
  • the method for charging a microbial preparation according to any one of 3. (Item 5) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 1 to 4, wherein the microbial preparation continuously discharged from the constant temperature bath contains 1 ⁇ 10 9 cells / mL or more of the oil-degrading microorganism. ..
  • Items 1 to 1 characterized in that the volume Y (L) of the medium supplied per hour to the constant temperature bath is one-thirtieth to one-half the volume of the volume V (L) of the culture solution in the constant temperature bath. 5.
  • Item 7 Item 6 is characterized in that the volume Y (L) of the medium supplied per hour to the constant temperature bath is one-twelfth to one-half the volume of the volume V (L) of the culture solution in the constant temperature bath.
  • (Item 8) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 1 to 7, wherein Y and F are equal to each other.
  • the method for adding a microbial preparation according to any one of items 1 to 7. (Item 10)
  • the culture supernatant is removed from the batch culture of the oil-degrading microorganisms, and the inoculum is re-applied to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL in a fresh medium containing no carbon source.
  • the method for adding a microbial preparation according to item 9 which is turbid and refrigerated.
  • the inoculum in (i) above is stored as dried cells of oil-degrading microorganisms, and is in the liquid so as to be 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL before being supplied as an inoculum suspension to the constant temperature bath.
  • Item 9. The method for charging a microbial preparation according to Item 9, wherein the inoculum suspension suspended in the inoculum and thus prepared is continuously supplied to the constant temperature bath.
  • the method for adding a microbial preparation according to the section (Item 13) The method for feeding a microbial preparation according to item 9, 11 or 12, wherein the dried cells are stored at room temperature. (Item 14) Item 2. The microbial preparation according to any one of Items 9, 11 to 13, wherein the dried microbial cell is a dried microbial cell produced by a step of mixing whey with the oil-degrading microorganism and drying under reduced pressure. Input method. (Item 15) Two constant temperature baths are provided, (1) All of the culture solution in one of the two constant temperature baths is discharged every 1 to 7 days at a timing according to a predetermined condition, and then 95 to 99% of the discharged culture solution is discharged.
  • the volume of medium is re-supplied to the constant temperature bath, and the inoculum suspension of 1 ⁇ 10 8 to 1 ⁇ 10 10 cells / mL of fat-degrading microorganisms is discharged so as to have a volume of 5 to 1% of the culture solution. It comprises a step of once amplifying the oil-decomposing microorganism in the constant temperature bath by supplying it to the constant temperature bath and exposing it to air for 12 to 24 hours, or (2) in one of the two constant temperature baths. All of the culture solution is discharged every 1 to 7 days at a timing according to a predetermined condition, and then the same amount of medium as the discharged culture solution is re-supplied to the constant temperature bath, and further, the oil and fat in the constant temperature bath.
  • the oil and fat decomposition in the constant temperature bath is carried out by supplying the inoculum dried cells of the oil and fat decomposition microorganism so that the concentration of the decomposed microorganism becomes 1 ⁇ 10 6 to 1 ⁇ 10 8 cells / mL and exposing to air for 12 to 24 hours.
  • the method for feeding a microbial preparation according to any one of items 1 to 14, which comprises a step of once amplifying a microorganism. (Item 16) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 1 to 15, wherein the oil-degrading microorganism contains at least one selected from the group consisting of bacteria or yeast.
  • (Item 17) The method for feeding a microbial preparation according to any one of Items 1 to 16, wherein the oil-degrading microorganism contains at least one selected from the group consisting of Gram-negative bacteria or yeast.
  • (Item 18) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 1 to 17, wherein the oil-degrading microorganism contains at least one selected from the group consisting of Burkholderia bacteria or Yarrowia yeast.
  • (Item 19) The method for treating oil-containing wastewater, which comprises the method for adding a microbial preparation according to any one of items 1 to 18.
  • (Item 20) A system for supplying a fat-decomposing microbial preparation to fat-containing wastewater for the method for charging a microbial preparation according to any one of items 1 to 18 or the treatment method according to item 19.
  • a constant temperature bath With a blower that aerates the constant temperature bath, Medium storage tank and A medium supply unit provided with a first pump for continuously supplying the medium from the medium storage tank to the constant temperature bath at a constant flow rate Y (L / h).
  • Carbon source storage tank and A carbon source supply unit provided with a second pump for continuously supplying a carbon source to the constant temperature bath at a constant flow rate Q (L / h), and a carbon source supply unit.
  • a discharge means configured to discharge the microbial preparation from the constant temperature bath at a constant flow rate F (L / h) and charge the microbial preparation into the oil-containing wastewater. Equipped with a fat-decomposing microbial preparation supply system.
  • the medium supply unit adds water from the medium storage tank to the first pump for continuously supplying the medium to the constant temperature bath at a constant flow rate Y1 (L / h), and supplies water at a constant flow rate Y2 (L / h).
  • An inoculum storage unit for storing the inoculum suspension of the oil-degrading microorganisms, A cooling system for cooling the inoculum storage unit, A third pump configured to continuously supply the inoculum suspension to the constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h) from the inoculum storage unit.
  • the oil-and-fat-degrading microbial preparation supply system according to item 20 or 21, further comprising.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the oil-degrading microorganism as a dry inoculum
  • An inoculum suspension preparation tank for preparing an inoculum suspension so that the inoculum is 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL.
  • a dry cell supply means configured to supply the dried cells from the inoculum storage unit to the inoculum suspension preparation tank.
  • a fourth pump configured to continuously supply the inoculum suspension from the inoculum suspension preparation tank to the constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h). 20 or 21, wherein the oil-degrading microbial preparation supply system further comprises.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the oil-degrading microorganism as a dry inoculum
  • a dry cell supply means configured to supply the inoculum to the constant temperature bath from the inoculum storage unit with a seed microorganism of 1 ⁇ 10 8 cells or less per 1 mL of the constant temperature bath.
  • the oil-and-fat-degrading microbial preparation supply system according to item 20 or 21, further comprising.
  • the oil-and-fat-decomposing microbial preparation supply system according to any one of items 22 to 24, wherein the inoculum storage unit is not provided with a blower.
  • a production method comprising resuspending the wet cell agglomerates in a fresh medium to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL.
  • the production method of item 26 or 27, comprising resuspending the wet cell agglomerates in the fresh medium to 1 ⁇ 10 8-9 ⁇ 10 9 cells / mL.
  • (Item 29) An oil-and-fat-degrading microbial preparation produced by the production method according to any one of items 26 to 28.
  • (Item 30) A method for producing a microbial dry preparation, which comprises a step of mixing whey with a microorganism and drying under reduced pressure.
  • (Item 31) The production method according to item 30, wherein the microorganism comprises a gram-negative bacterium which is a non-spore-forming bacterium.
  • (Item 32) A protective agent for vacuum drying of microorganisms containing whey as an active ingredient.
  • the protective agent according to item 32, wherein the microorganism comprises a gram-negative bacterium that is a non-spore-forming bacterium.
  • step 34 A dry microbial preparation containing gram-negative bacteria and whey, which are non-spore-forming bacteria.
  • step 35 A method for adding a microbial preparation containing an oil-degrading microorganism in the treatment of oil-containing wastewater, in which step 1: the first microbial preparation stored in a storage tank is continuously added to the oil-containing wastewater.
  • step 2 When it is detected that the amount of the first microbial preparation has decreased to the threshold value in the storage tank, the second microbial preparation is charged from the constant temperature bath to the storage tank.
  • Step 3 When it is detected that the amount of the second microbial preparation has decreased to the threshold value in the constant temperature bath, water supply to the constant temperature bath is started.
  • Step 4 When it is detected that the water level has risen to the threshold value due to the water supply to the constant temperature bath, a certain amount of concentrated medium, a carbon source, and an inoculum of the fat-decomposing microorganism are supplied to the constant temperature bath.
  • Step 5 In the constant temperature bath, the inoculum is grown in the culture solution to produce a third microbial preparation. Including the process including 5 steps of Further, it is characterized in that the above steps are repeated, and the second microbial preparation and the third microbial preparation in the previous step become the first microbial preparation and the second microbial preparation in the next step, respectively.
  • a method for feeding a microbial preparation wherein the first microbial preparation, the second microbial preparation and the third microbial preparation all contain the oil-degrading microorganism.
  • the method for feeding a microbial preparation according to item 35 which comprises the following steps 3-1 and / or step 3-2 between steps 3 and 4.
  • Step 3-1 After detecting that a predetermined amount of water has been supplied to the constant temperature bath, drain the water again, detect that the water level has dropped to the threshold value and re-supply water, and repeat this drainage and water supply an arbitrary number of times. Cleaning the inside of the constant temperature bath;
  • Step 3-2 The water in the constant temperature bath is aerated for a certain period of time to dechlorinate it.
  • the method for feeding a microbial preparation according to any one of 38. (Item 40) The inoculum was prepared by removing the culture supernatant from the batch culture of the oil-degrading microorganism, resuspending it in a fresh medium containing no carbon source to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL, and refrigerating.
  • the inoculum is stored as a dry cell of a fat-degrading microorganism and suspended in a liquid so as to have 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL before being supplied as an inoculum suspension to the constant temperature bath.
  • the method for charging a microbial preparation according to any one of items 35 to 39, wherein the inoculum suspension thus prepared is supplied to the constant temperature bath.
  • One of items 35 to 39, wherein the inoculum of the oil-and-fat-degrading microorganism stored as a dry cell is directly supplied to the constant temperature bath so as to have a microbial concentration of 1 ⁇ 108 cells / mL or less.
  • the method for adding a microbial preparation according to the section (Item 43) The method for feeding a microbial preparation according to item 41 or 42, wherein the dried cells are stored at room temperature. (Item 44) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 41 to 43, wherein the dried bacterium is a dried bacterium produced by a step of mixing whey with the oil-degrading microorganism and drying under reduced pressure. .. (Item 45) The method for charging a microbial preparation according to any one of items 35 to 44, wherein the amount of the microbial preparation in the storage tank and / or the constant temperature bath is detected by a water level gauge or a liquid level sensor.
  • (Item 46) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 35 to 45, wherein the oil-degrading microorganism contains at least one selected from the group consisting of bacteria or yeast.
  • (Item 47) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 35 to 46, wherein the oil-degrading microorganism contains at least one selected from the group consisting of Gram-negative bacteria or yeast.
  • (Item 48) The method for feeding a microbial preparation according to any one of items 35 to 47, wherein the oil-degrading microorganism contains at least one selected from the group consisting of Burkholderia bacteria or Yarrowia yeast.
  • (Item 49) The method for treating oil-containing wastewater, which comprises the method for adding a microbial preparation according to any one of items 35 to 48.
  • (Item 50) A system for supplying a fat-decomposing microbial preparation to fat-containing wastewater for the method for charging a microbial preparation according to any one of items 35 to 48 or the treatment method according to item 49.
  • a constant temperature bath equipped with a mechanism to detect the internal capacity of the tank, With a blower that aerates the constant temperature bath,
  • a storage tank provided with a mechanism for detecting the content in the tank for continuously supplying the microbial preparation to the oil-containing wastewater while storing the microbial preparation produced in the constant temperature bath.
  • Medium storage tank and A medium supply unit having the following (1) and (2), (1) A first control means and a first pump for supplying a concentrated medium from the culture medium storage tank to the constant temperature bath. (2) A water supply control means linked with a mechanism for detecting the internal capacity of the constant temperature bath. Carbon source storage tank and A carbon source supply unit provided with a second control means and a second pump for supplying a carbon source from the carbon source storage tank to the constant temperature bath.
  • a first discharging means configured to continuously discharge the microbial preparation from the storage tank and put it into the oil-containing wastewater.
  • a second discharging means configured to discharge the microbial preparation from the constant temperature bath in conjunction with a mechanism for detecting the content in the storage tank and to charge the microbial preparation into the storage tank.
  • An inoculum storage unit for storing the inoculum suspension of the oil-degrading microorganisms, A cooling system for cooling the inoculum storage unit, A third control means and a third pump configured to supply the inoculum suspension from the inoculum storage unit to the incubator. Equipped with The oil-decomposing microbial preparation supply system, wherein the first control means, the second control means, and the third control means all interlock with a mechanism for detecting the content in the constant temperature bath. .. (Item 51) The oil-degrading microbial preparation supply system according to item 50, wherein the inoculum storage unit is not provided with a blower.
  • Medium storage tank and A medium supply unit having the following (1) and (2), (1)
  • a water supply control means linked with a mechanism for detecting the internal capacity of the constant temperature bath.
  • Carbon source storage tank and A carbon source supply unit provided with a second control means and a second pump for supplying a carbon source from the carbon source storage tank to the constant temperature bath.
  • a first discharging means configured to continuously discharge the microbial preparation from the storage tank and put it into the oil-containing wastewater.
  • a second discharging means configured to discharge the microbial preparation from the constant temperature bath in conjunction with a mechanism for detecting the content in the storage tank and to charge the microbial preparation into the storage tank.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the oil-degrading microorganism as a dry inoculum
  • An inoculum suspension preparation tank for preparing an inoculum suspension so that the inoculum is 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL
  • an inoculum suspension preparation tank provided with water supply control means.
  • a dry cell supply control means configured to supply the dried cells from the inoculum storage unit to the inoculum suspension preparation tank at a controlled timing.
  • a fourth control means and a fourth pump configured to supply the inoculum suspension from the inoculum suspension preparation tank to the constant temperature bath.
  • the oil-decomposing microbial preparation supply system wherein the first control means, the second control means, and the fourth control means all interlock with a mechanism for detecting the content in the constant temperature bath.
  • a storage tank provided with a mechanism for detecting the content in the tank for continuously supplying the microbial preparation to the oil-containing wastewater while storing the microbial preparation produced in the constant temperature bath.
  • Medium storage tank and A medium supply unit having the following (1) and (2), (1) A first control means and a first pump for supplying a concentrated medium from the culture medium storage tank to the constant temperature bath. (2) A water supply control means linked with a mechanism for detecting the internal capacity of the constant temperature bath. Carbon source storage tank and A carbon source supply unit provided with a second control means and a second pump for supplying a carbon source from the carbon source storage tank to the constant temperature bath.
  • a first discharging means configured to continuously discharge the microbial preparation from the storage tank and put it into the oil-containing wastewater.
  • a second discharging means configured to discharge the microbial preparation from the constant temperature bath in conjunction with a mechanism for detecting the content in the storage tank and to charge the microbial preparation into the storage tank.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the oil-degrading microorganism as a dry inoculum
  • a fifth control means and a dry cell supply means configured to supply the inoculum of 1 ⁇ 10 8 cells or less per 1 mL of the inoculum to the inoculum from the inoculum storage unit. Further prepare The oil-decomposing microbial preparation supply system, wherein the first control means, the second control means, and the fifth control means all interlock with a mechanism for detecting the content in the constant temperature bath.
  • (Item 54) The oil-degrading microbial preparation supply system according to any one of items 50 to 53, wherein the storage tank has a heat insulating material, a heat-shielding coating, and / or a heating / cooling function.
  • (Item 55) The oil-degrading microbial preparation supply system according to any one of items 50 to 54, further comprising a blower or a mechanical stirring means for stirring the contents of the storage tank.
  • (Item A1) It is a method for manufacturing microbial preparations. Incubating microorganisms in batches and The culture supernatant of the culture solution cultured in the batch was removed to obtain a wet cell agglomerate of the grown microorganism.
  • a production method comprising resuspending the wet cell agglomerates in a fresh medium to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL.
  • the production method according to item A1 wherein the fresh medium is an inorganic salt medium containing no carbon source.
  • the production method according to item A1 or A2 which comprises resuspending the wet cell agglomerates in the fresh medium to 1 ⁇ 10 8-9 ⁇ 10 9 cells / mL.
  • A4 A microbial preparation produced by the production method according to any one of items A1 to A3.
  • (Item A5) A method for producing a microbial dry preparation, which comprises a step of mixing whey with a microorganism and drying under reduced pressure.
  • (Item A6) The production method according to item A5, wherein the microorganism comprises a gram-negative bacterium which is a non-spore-forming bacterium.
  • (Item A7) A protective agent for vacuum drying of microorganisms containing whey as an active ingredient.
  • (Item A9) A dry microbial preparation containing gram-negative bacteria and whey, which are non-spore-forming bacteria.
  • a method for continuously producing microorganisms which comprises continuously discharging the microorganism culture medium containing a microorganism having a substantially constant concentration from the constant temperature bath at a constant flow rate F (L / h) for 20 hours or more, wherein the first concentration is performed.
  • a production method characterized in that a medium required for the microorganism is formed by a first medium component contained in the partial medium, a second medium component contained in the second concentrated partial medium, and water.
  • the volume F (L) of the microbial culture solution discharged every hour from the constant temperature bath is one-thirtieth to one-half the volume of the volume V (L) of the culture solution in the constant temperature bath.
  • the manufacturing method according to the item B1.
  • the first concentrated partial medium or the second concentrated partial medium contains a carbon source, and the carbon source is such that the carbon source concentration of the culture solution in the constant temperature bath is always about 0.01 w / v% or less.
  • (Item B5) The production method according to any one of items B1 to 4, wherein the suspension of the inoculum of the microorganism is continuously supplied to the constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h) for 20 hours or more.
  • (Item B6) The manufacturing method according to any one of items B1 to 5, wherein the method is carried out by providing two constant temperature baths. Before or after the continuous production for 20 hours or more. The culture solution in one of the two constant temperature baths is discharged every 1 to 30 days at a timing according to a predetermined condition, and then the first concentrated partial medium and the second concentrated partial medium are used.
  • a production method comprising resupplying water to the constant temperature bath and further supplying the inoculum of the microorganism to the constant temperature bath to aerate for a certain period of time.
  • (Item B7) The production method according to item B6, wherein after discharging the culture solution in the constant temperature bath and before supplying the inoculum of the microorganism, either or both of the following steps are performed. (1) Operation to wash the constant temperature bath by supplying and draining water at least once before supplying the concentrated partial medium; (2) Operation to aerate for a while after water supply to remove chlorine in the water.
  • Step 1 Continuously discharge the first microorganism-containing culture solution stored in the storage tank
  • Step 2 When it is detected that the amount of the first microorganism-containing culture solution has decreased to the threshold value in the storage tank, the second microorganism-containing culture solution is charged from the constant temperature tank to the storage tank.
  • Step 3 When it is detected that the amount of the second microorganism-containing culture solution has decreased to the threshold value in the constant temperature bath, water supply to the constant temperature bath is started.
  • Step 4 When it is detected that the water level has risen to the threshold value due to the water supply to the constant temperature bath, the first medium storage tank to the first concentrated partial medium is added to the constant temperature tank from the second medium storage tank. Supplying the second concentrated partial medium and the inoculum of the microorganism from the inoculum storage tank, Step 5: In the constant temperature bath, the inoculum is grown in the medium to produce a third microorganism-containing culture solution. Including the process including 5 steps of Further, the step is repeated, and the second microorganism-containing culture solution and the third microorganism-containing culture solution in the previous step become the first microorganism-containing culture solution and the second microorganism-containing culture solution in the next step, respectively.
  • a production method wherein the first microorganism-containing culture solution, the second microorganism-containing culture solution, and the third microorganism-containing culture solution all contain the microorganism.
  • Step 3-1 After detecting that a predetermined amount of water has been supplied to the constant temperature bath, drain the water again, detect that the water level has dropped to the threshold value and re-supply water, and repeat this drainage and water supply an arbitrary number of times. Cleaning the inside of the constant temperature bath;
  • Step 3-2 The water in the constant temperature bath is aerated for a certain period of time to dechlorinate it.
  • (Item B10) The production method according to item B8 or 9, wherein the amount of the culture solution in the storage tank and / or the constant temperature bath is detected by a water level gauge or a liquid level sensor.
  • (Item B11) The production method according to any one of items B1 to 10, wherein either one of the first concentrated partial medium or the second concentrated partial medium contains a nitrogen source and the other contains a carbon source.
  • (Item B12) The production method according to item B11, wherein the nitrogen source is present in either the first concentrated partial medium or the second concentrated partial medium at a concentration of 10 w / v% or more.
  • the first medium storage tank, the second medium storage tank, and the constant temperature bath should not be sterilized.
  • Item B16 Item B15, wherein the first medium storage tank, the second medium storage tank, and the constant temperature bath are not sterilized within 72 hours before and after the continuous production for 20 hours or more.
  • Items B11 to 16 which are dependent on any of items B8 to 10 or items B8 to 10, characterized in that the storage tank is not sterilized within 24 hours before and after the continuous production for 20 hours or more.
  • the manufacturing method according to any one of 17. (Item B19) The production method according to any one of items B1 to 18, wherein the culture broth discharged from the constant temperature bath contains the microorganism of 1 ⁇ 10 9 cells / mL or more. (Item B20) The production method according to any one of items B1 to 19, wherein the microorganism comprises at least one selected from the group consisting of bacteria or yeast.
  • the inoculum is obtained by removing the culture supernatant from a batch culture of the microorganism, resuspending it in a fluid containing no carbon source so as to have 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL, and refrigerating it.
  • the production method according to item B11-21 which is subordinate to any of items B5 to 10 or items B5 to 10, characterized in that.
  • the inoculum is a product obtained by culturing the microorganism in batches, diluting it 10-fold with a fluid containing no carbon source, preparing the inoculum to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL, and then refrigerating.
  • the production method according to item B11-21 which is subordinate to any of items B5 to 10 or items B5 to 10, characterized in that there is.
  • the inoculum was stored as a dry cell of the microorganism and suspended in a liquid so as to have a concentration of 1 ⁇ 10 8 cells / mL or more before being supplied as an inoculum suspension in the constant temperature bath, and thus prepared.
  • a water supply system for supplying water at a constant flow rate Y2 (L / h), A discharge means configured to discharge the microbial culture solution from the constant temperature bath at a constant flow rate F (L / h), and a discharge means.
  • a continuous microbial production system with no equipment for sterilization. (Item B29) An inoculum storage unit for storing the inoculum suspension of the microorganism, A cooling system for cooling the inoculum storage unit, A third pump configured to continuously supply the inoculum suspension to the constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h) from the inoculum storage unit. B28.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the microorganism as a dry inoculum
  • An inoculum suspension preparation tank for preparing an inoculum suspension from the inoculum and an inoculum suspension preparation tank provided with a water supply control means.
  • a dry cell supply means configured to supply the dried cells from the inoculum storage unit to the inoculum suspension preparation tank.
  • a fourth pump configured to continuously supply the inoculum suspension from the inoculum suspension preparation tank to the constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h).
  • B28. The system according to item B28.
  • (Item B33) In any one of items B28-32 for use in the manufacturing method according to any one of items B11-16 or 18-27 subordinate to any of items B1-7 or B1-7. The system described.
  • a constant temperature bath equipped with a mechanism to detect the internal capacity of the tank, With a blower that aerates the constant temperature bath, A storage tank provided with a mechanism for detecting the content in the tank for continuously discharging the microorganisms while storing the microorganisms produced in the constant temperature bath.
  • the first medium storage tank and A first control means and a first pump for supplying the first concentrated partial medium from the first medium storage tank to the constant temperature bath.
  • the second medium storage tank and A second control means and a second pump for supplying the second concentrated partial medium from the second medium storage tank to the constant temperature bath.
  • a water supply control means linked with a mechanism for detecting the internal capacity of the constant temperature bath, A first discharging means configured to continuously discharge microorganisms from the storage tank, A second discharge means configured to discharge microorganisms from the constant temperature bath in conjunction with a mechanism for detecting the content in the storage tank and charge the microorganisms into the storage tank.
  • An inoculum storage unit for storing the inoculum suspension of the microorganism, A cooling system for cooling the inoculum storage unit, A third control means and a third pump configured to supply the inoculum suspension from the inoculum storage unit to the incubator. It is a continuous microbial production system that is equipped with and does not have equipment for sterilization.
  • the system wherein the first control means, the second control means, and the third control means all interlock with a mechanism for detecting the internal capacity in the constant temperature bath.
  • a constant temperature bath equipped with a mechanism to detect the internal capacity of the tank, With a blower that aerates the constant temperature bath, A storage tank provided with a mechanism for detecting the content in the tank for continuously discharging the microorganisms while storing the microorganisms produced in the constant temperature bath.
  • the first medium storage tank and A first control means and a first pump for supplying the first concentrated partial medium from the first medium storage tank to the constant temperature bath.
  • the second medium storage tank and A second control means and a second pump for supplying the second concentrated partial medium from the second medium storage tank to the constant temperature bath.
  • a water supply control means linked with a mechanism for detecting the internal capacity of the constant temperature bath, A first discharging means configured to continuously discharge microorganisms from the storage tank, A second discharge means configured to discharge microorganisms from the constant temperature bath in conjunction with a mechanism for detecting the content in the storage tank and charge the microorganisms into the storage tank.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the microorganism as a dry inoculum
  • An inoculum suspension preparation tank for preparing an inoculum suspension from the inoculum and an inoculum suspension preparation tank provided with a water supply control means.
  • a dry cell supply control means configured to supply the dried cells from the inoculum storage unit to the inoculum suspension preparation tank at a controlled timing.
  • a fourth control means and a fourth pump configured to supply the inoculum suspension from the inoculum suspension preparation tank to the constant temperature bath. It is a continuous microbial production system that is equipped with and does not have equipment for sterilization.
  • a system characterized in that the first control means, the second control means, and the fourth control means are all interlocked with a mechanism for detecting the internal capacity in the constant temperature bath.
  • a constant temperature bath equipped with a mechanism to detect the internal capacity of the tank, With a blower that aerates the constant temperature bath, A storage tank provided with a mechanism for detecting the content in the tank for continuously discharging the microorganisms while storing the microorganisms produced in the constant temperature bath.
  • the first medium storage tank and A first control means and a first pump for supplying the first concentrated partial medium from the first medium storage tank to the constant temperature bath.
  • the second medium storage tank and A second control means and a second pump for supplying the second concentrated partial medium from the second medium storage tank to the constant temperature bath.
  • a water supply control means linked with a mechanism for detecting the internal capacity of the constant temperature bath, A first discharging means configured to continuously discharge microorganisms from the storage tank, A second discharge means configured to discharge microorganisms from the constant temperature bath in conjunction with a mechanism for detecting the content in the storage tank and charge the microorganisms into the storage tank.
  • An inoculum storage unit that stores the inoculum of the microorganism as a dry inoculum, A fifth control means and a dry cell supply means configured to supply the dried cells from the inoculum storage unit to the constant temperature bath. It is a continuous microbial production system that is further equipped with and does not have equipment for sterilization.
  • the present invention it is also possible to provide a method for efficiently and continuously producing a microorganism and a system therefor, while saving the amount of the microorganism used as an inoculum.
  • FIG. 1 is a diagram showing an outline of a microorganism automatic amplification continuous injection method and a system according to the first embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 shows the inoculum suspension of the present invention (invention of the present application, sample No. 3) and the culture solution in which the culture solution was preserved as it was without the bacterial collection step and the resuspension step (comparative example, sample No. 4). It is a graph which shows the transition of the viable cell count.
  • FIG. 3 is a graph showing the relationship between the initial concentration of the inoculum suspension and the survival rate.
  • FIG. 4 shows the inoculum suspension (Sample No.
  • FIG. 5 is a graph showing the lipase activity retention rate (%) of the pharmaceutical product after the drying treatment with respect to the pharmaceutical product before the drying treatment for the dried pharmaceutical products obtained by various drying treatments.
  • FIG. 6 shows an aqueous solution obtained by dissolving 20% sulfur as a nitrogen source in pure water, an aqueous solution obtained by mixing and dissolving ethanol having a final concentration of 50 v / v% and 5 w / v% glucose as a carbon source in pure water, or an inorganic substance.
  • the growth result of Escherichia coli in a medium in which ethanol having a final concentration of 2 v / v% and glucose having a final concentration of 0.2 w / v% are mixed as a carbon source in a salt BS medium is shown.
  • FIG. 7 is a diagram showing an outline of the automatic microorganism amplification continuous charging method and the system according to the second embodiment of the present invention.
  • Continuous does not mean only when the matter specified by this term is constantly being made, but also includes the case where the matter has a period of suspension. do.
  • Continuous or “continuous” in the present invention means a matter specified in a time exceeding 50% of a predetermined time (for example, at least 1 hour, at least 5 hours, at least 10 hours, or at least 20 hours, etc.). Is done. In a representative embodiment, “continuous” or “continuous” of the present invention is about 60% or more of a predetermined time (eg, at least 1 hour, at least 5 hours, at least 10 hours, or at least 20 hours, etc.).
  • the specified matter has been done, more typically about 70% of the predetermined time (eg, at least 1 hour, at least 5 hours, at least 10 hours, or at least 20 hours, etc.). It means that the specified matters have been done in the above time. It should be noted that the "continuous" of the present invention does not include aspects in which the matters specified intermittently are made at predetermined intervals.
  • “intermittent” means once every predetermined time (for example, once every 1 hour or more, once every 5 hours or more, once every 12 hours or more, every 24 hours or more). Once) It means that the specified matter is done.
  • This predetermined time is the sum of the time when the specified matter is done and the time when the specified matter is not done, and in the case of "intermittent", the time when the specified matter is done in the predetermined time is 20%. It is as follows. Typically, “intermittent” can refer to the case where the specified matter is done in a predetermined time of 10% or less.
  • Drying in the present specification means that the water content is 5% or less, preferably 3% or less, excluding bound water.
  • solenoid valve as used herein is also synonymous with “solenoid valve” and “solenoid valve”, and is a flow path formed by a solenoid portion that converts electrical energy into mechanical energy and a mechanical energy converted in the solenoid portion. Includes any mechanism, including a valve body that opens and closes.
  • microorganisms does not mean creating new microorganisms, but means growing a certain microorganism and newly producing a large amount of microorganisms.
  • a medium for the growth of a microorganism is formed by the first medium component, the second medium component, and water
  • the first medium is the first medium as a medium that enables the growth of the microorganism. It means that a medium component and a second medium component are required at least, and additional medium components may be included separately.
  • sterilization as used herein also includes “sterilization” and kills 99% or more, preferably 99.9% or more, of microorganisms and viruses contained in the medium or attached to the manufacturing apparatus.
  • Arbitrary processing for inactivation Typically, after sterilization, microorganisms and the like grow in a short period of time (for example, within 24 hours, preferably within 48 hours, more preferably within 72 hours) unless inoculation or contamination with new germs. It never comes.
  • methods generally used in the art such as visual transparency of the medium, measurement of cell optical density, colony counting, real-time PCR, etc. can be used.
  • the sterilization method is typically autoclave sterilization or filter sterilization for media and carbon sources, and steam sterilization, dry heat sterilization, ethylene oxide, formaldehyde gas, hydrogen peroxide gas, etc. for equipment such as tanks and lines.
  • Examples include, but are not limited to, gas sterilization using, sterilization by radiation or electron beam irradiation, and autoclave sterilization. It also includes the methods described in textbooks such as biotechnology and biochemical engineering.
  • Contamination or “contamination” as used herein is used interchangeably, and means that any microorganism (yeast, bacterium, virus, etc.) other than the microorganism intended to be produced in the present invention is contaminated.
  • microorganism yeast, bacterium, virus, etc.
  • the microorganism produced by the production method of the present invention can be used for the production of useful substances, the production of food products, the treatment of organic wastewater, waste, and the like.
  • the target microorganism to be grown by the present invention is any microorganism that can grow by assimilating a carbon source, and the use of the microorganism produced according to the microorganism may change.
  • the treatment targets include fats and oils, mineral oils, organic chlorine compounds, hydrocarbons, aromatics, organic acids and aldehydes.
  • the microorganism of the present invention is a fat-decomposing microorganism, and the object of treatment may be fat-containing wastewater.
  • the constant temperature bath is continuously supplied with the first concentrated partial medium, the second concentrated partial medium, water, and, if necessary, the inoculum, and the microorganisms are kept at a substantially constant rate in the culture medium in the constant temperature bath. It is characterized in that the target microorganism is obtained by continuously producing the microorganism having a desired concentration by growing in the medium and discharging the microorganism containing the microorganism having a substantially constant concentration from the constant temperature bath at a constant flow rate.
  • the first concentrated partial medium contains the first medium component
  • the second concentrated partial medium contains the second medium component
  • the medium may also contain a third medium component derived from the third concentrated partial medium.
  • the conventional continuous growth method of microorganisms has a high risk of contamination such as contamination by various germs during production and propagation of bacteriophage. Therefore, of course, the equipment for continuous production of microorganisms required sterilization and equipment for that purpose. In addition, even if sterilized, it is difficult to completely prevent contamination by germs and phages in long-term continuous production of microorganisms (for example, the growth of residual heat-resistant germs and unexpected contamination of germs may occur). Therefore, there are few examples of applying the continuous production method at the actual production site of microorganisms, and batch production is the mainstream.
  • the present invention it is intended to separate the storage container (and the supply line if necessary) for the first concentrated partial medium and the second concentrated partial medium.
  • the first concentrated partial medium lacks the second medium component required for microbial growth
  • the second concentrated partial medium lacks the first medium component required for microbial growth. Therefore, it is possible to suppress the growth of germs and bacteriophage in each storage container and its supply line during continuous operation.
  • the nitrogen source and the carbon source are mixed to form a medium in which microorganisms can grow.
  • the concentration of the carbon source in the constant temperature bath low, the growth of various bacteria other than the target microorganism is suppressed. be able to.
  • the production method of the present invention is a first concentrated partial medium, a second concentrated partial medium and the concentrated partial medium used for continuous production of microorganisms. It is characterized by not sterilizing the water supplied to dilute the medium.
  • the production method of the present invention is a first medium storage within 24 hours, within 36 hours, within 48 hours, or within 72 hours before and after continuous production of 20 hours or more. It is characterized in that the tank, the second medium storage tank, and the constant temperature bath are not sterilized.
  • sterility is generally not required at such timing in the present invention, considering that sterility of these facilities is usually performed within 24 hours of culturing for production. Is a big advantage.
  • either one of the first or second medium components comprises a nitrogen source and the other comprises a carbon source.
  • the concentrated partial medium containing the nitrogen source contains the nitrogen source at a concentration of about 10 w / v% or higher, at a concentration of about 15 w / v% or higher, preferably at a concentration of about 20 w / v% or higher.
  • the concentrated partial medium containing the carbon source contains the carbon source at a concentration of about 40 w / v% or more, more preferably about 50 w / v% or more, still more preferably about 60 w / v% or more. Can be included in the concentration of.
  • a concentrated partial medium containing a nitrogen source does not contain a carbon source
  • a concentrated partial medium containing a carbon source does not contain a nitrogen source
  • the first embodiment is characterized in that microorganisms are grown at a substantially constant rate in a constant temperature bath.
  • the microbial concentration of the culture solution discharged from the constant temperature bath is constant during continuous production.
  • the concentration of one of at least two concentrated partial media is very high (50 w / v% or more, preferably 60 w / v% or more, more preferably 70 w / v% or more, still more preferably 80 w / v%).
  • the supply flow rate (typically, the medium volume (Q) supplied per hour of the second concentrated partial medium) can be appropriately adjusted.
  • This can be achieved by making the discharge flow rate F of the culture solution from the constant temperature bath substantially the same as the sum (Y) of the medium volume Y1 supplied per hour of the first concentrated partial medium and the volume Y2 supplied per hour.
  • the present inventor has found that it is achievable. In the case of batch culture as in Patent Document 1, for example, neither growth at a substantially constant rate nor discharge of a culture solution containing a microorganism having a substantially constant concentration is achieved.
  • the first embodiment is characterized in that the discharge flow rate F is 1/30 to 1/2, more preferably 1/12 to 1/2 of the constant temperature bath volume V. And.
  • the residence time can be set appropriately, and the possibility of growth of various germs can be reduced. Specifically, when the residence time is the same as the continuous production time, the culture solution in the constant temperature bath is replaced with a fresh culture solution at a timing corresponding to the continuous production time. When the residence time is set to half the continuous production time, the culture solution in the constant temperature bath is replaced with the fresh culture solution twice during the continuous production. By replacing the culture medium, the mixed germs are more likely to be eliminated from the constant temperature bath than to grow in the constant temperature bath.
  • the residence time of the microorganism in the constant temperature bath can be such that the concentration of the target microorganism in the culture solution discharged from the constant temperature bath can be maintained at a substantially constant concentration without decreasing.
  • the microorganisms that have grown within the residence time are always present in the constant temperature bath, so the retention time is compared with the batch-type culture in which the introduced microorganisms must wait for a certain amount of time to grow. The time can be shortened. By shortening the residence time, before the newly contaminated germs grow, the contaminated germs should be eliminated from the constant temperature bath, and the target microorganisms that are always present in the constant temperature bath should be maintained at a constant concentration. Is possible.
  • the volume of the constant temperature bath for microbial growth can be reduced according to the residence time of the microorganism, as compared with the conventional method for producing a microorganism in which the microorganism is grown by batch culture, for example, every 24 hours. can.
  • the residence time of the microorganism is 12 hours
  • the volume of the constant temperature bath can be halved as compared with the method of growing the microorganism by batch culture every 24 hours.
  • a residence time of 12 hours may be difficult, but a continuous system as in the present invention is possible.
  • the entire system for treatment can be made compact by arranging a constant temperature bath near the place where the produced microorganisms are used (for example, a wastewater or waste treatment tank to be treated).
  • inoculum suspension of inoculum of microorganisms at a predetermined concentration (for example, 1 ⁇ 10 6 to 1 ⁇ 10 12 cells / mL, preferably 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL) in a constant temperature bath.
  • the liquid may be added at a constant flow rate X (L / h).
  • a preferred embodiment is characterized in that the sum of the constant flow rate X and the medium flow rate Y is equal to the constant flow rate F discharged from the constant temperature bath.
  • the inoculum may be stored in the inoculum storage unit in the form of a suspension, or may be stored in the inoculum storage unit as dried inoculum.
  • the method for producing dried cells will be described in detail later.
  • the inoculum is stored as a dry cell of microorganism and made into an inoculum suspension before being supplied to the constant temperature bath.
  • This inoculum suspension is suspended in a liquid so as to have a predetermined concentration (for example, 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL), and is described above at a constant flow rate X (L / h) as described above.
  • the inoculum of the present invention removes the culture supernatant from a culture (typically a batch culture) of a microorganism and does not contain a carbon source such as an inorganic salt medium, buffer, or water. It may be resuspended and refrigerated in a fluid to a predetermined concentration (eg, 1 ⁇ 10 6 to 1 ⁇ 10 12 cells / mL, preferably 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL). ..
  • the inoculum of the present invention may preferably be resuspended to 1 ⁇ 10 8 to 9 ⁇ 10 9 cells / mL, more preferably 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 9 cells / mL.
  • the inoculum of the present invention is obtained by refrigerating a culture of microorganisms diluted 10-fold with an arbitrary fluid containing no carbon source such as an inorganic salt medium, a buffer solution, or water. It can be a thing.
  • the fluid for dilution may preferably be an inorganic salt medium containing no carbon source.
  • the inoculum is generally stored as it is in the culture solution, and aeration may be required to maintain the survival rate in that state.
  • the culture supernatant should be removed from the above-mentioned batch cultures of microorganisms, resuspended in a fluid containing no carbon source (for example, fresh medium), and aerated with a blower for the refrigerated ones.
  • the medium for growth of the microorganism may contain a carbon source, nitrogen, phosphorus, potassium and the like, and the fluid for resuspension after growth may be an inorganic salt medium containing no carbon source.
  • the effect of the culture supernatant can be reduced by diluting the culture broth 10-fold with a carbon source-free fluid (eg, carbon source-free inorganic salt medium or water), and the carbon source Even if it remains, its concentration can be sufficiently low. Therefore, the present inventor has found that the viability of the inoculum can be maintained without aeration, as in the case of removing the culture supernatant and resuspending it in a fresh medium containing no carbon source.
  • a carbon source-free fluid eg, carbon source-free inorganic salt medium or water
  • the constant temperature bath of the present invention is preferably provided with a temperature controller and a thermometer, and can control the temperature during microbial culture (amplification).
  • the controlled temperature is typically 18-55 ° C, preferably 25-42 ° C, more preferably 28-37 ° C. If it does not fall within these temperature ranges, the temperature may be adjusted appropriately by heating or cooling.
  • a water level gauge or liquid level sensor may be installed in the constant temperature bath to enable sensing and control of at least the lower and upper limits and, in some cases, the middle liquid level. Further, this liquid level sensor may also serve as a foaming sensor, or a system for detecting foaming may be installed by another principle.
  • a system that automatically supplies an antifoaming agent in conjunction with a system that senses foaming may be provided.
  • aeration and stirring may be performed in a constant temperature bath to supply air necessary for the growth of microorganisms. Stirring is performed to promote the growth of the microorganism by bringing the microorganism to be grown into contact with the medium and the carbon source by mixing the culture solution.
  • the constant temperature bath of the present invention comprises a blower.
  • the blower can also agitate and mix the culture with air introduction.
  • an air introducing means for example, an air pump
  • a stirring means for example, a stirring / mixing device having a stirring blade
  • DO dissolved oxygen concentration
  • the pH of the culture solution in the constant temperature bath is usually in the range of 4.5 to 9.0, preferably 5.5 to 8.5, and more preferably 6.0 to 8.0. If it does not fall within these ranges, the pH can be adjusted as appropriate by adding an acid or alkali.
  • the growth of microorganisms in a constant temperature bath can be carried out so that the continuously discharged microorganism-containing culture medium contains microorganisms having a predetermined concentration (for example, 1 ⁇ 10 9 cells / mL) or more.
  • a predetermined concentration for example, 1 ⁇ 10 9 cells / mL
  • the two constant temperature baths may be provided and the respective constant temperature baths may be operated according to predetermined conditions.
  • a predetermined volume of the discharged culture medium (for example, a volume of 90 to 100%, 95 to 100%, 95 to 99%, etc.) is re-supplied to the constant temperature bath, and further, a predetermined concentration (for example, 1) is further supplied.
  • Predetermined volume of culture medium eg, 10 to 0.1%, 5 to 0.1%, 10 to 1%, 5
  • a predetermined time for example, 12 to 24 hours, 18 to 24 hours, etc.
  • the culture medium in one of the two constant temperature baths is applied at a predetermined timing (for example, 1 day to 1 month, 1 day to 30 days, 1 day to 15 days, 1 day to 10 days, or 1 to 1 to 1).
  • All the cells are discharged according to the predetermined conditions (every 7 days, etc.), and then the same amount of medium as the discharged culture solution is re-supplied to the constant temperature bath, and the microbial concentration in the constant temperature bath is the predetermined concentration (for example, 1 ⁇ ).
  • the predetermined concentration for example, 1 ⁇ .
  • a constant temperature bath by supplying dried inoculum of microorganisms so as to be 10 6 to 1 ⁇ 10 8 cells / mL and aerating for a predetermined time (for example, 12 to 24 hours, 18 to 24 hours, etc.).
  • Microorganisms may be grown once. These can be said to be maintenance work of the constant temperature bath.
  • the present invention can shorten the residence time, so that the volume of the constant temperature bath can also be reduced.
  • either or both of the following steps may be performed: (1) Water supply and drainage are performed at least once before supply of the concentrated partial medium, and the constant temperature bath is washed, (2). ) Operation to aerate for a while after water supply to remove chlorine in the water.
  • Predetermined conditions for switching the constant temperature bath to be used when a plurality of constant temperature baths are provided include the passage of a certain period of time, change in pH, change in DO, foaming, change in lipase activity, change in substrate concentration, and the like.
  • the amount of acid or alkali added exceeds the specified value, the total supply amount of the medium (including the concentrated medium) exceeds the specified value, and the like, but the present invention is not limited thereto.
  • the time until a change in pH, a change in DO, foaming, a change in lipase activity, a change in substrate concentration, or the like occurs may be measured, and the passage of the time may be set as a predetermined condition.
  • a predetermined condition can be set to about 400 tons (t is the time (minutes) required for the cells of the microorganism to divide under the culture conditions in a constant temperature bath).
  • FIG. 1 shows an outline of the continuous microorganism production method and system of the present invention.
  • the constant temperature bath is continuously composed of a first concentrated partial medium (for example, a nitrogen source), a second concentrated partial medium (for example, a carbon source such as fat, alcohol, and lactic acid), and water. Is thrown in.
  • a first concentrated partial medium for example, a nitrogen source
  • a second concentrated partial medium for example, a carbon source such as fat, alcohol, and lactic acid
  • This continuous loading and continuous drainage of the culture from the constant temperature bath can typically be carried out for 20 hours or more. In one embodiment, this continuous loading and unloading may be performed for about 20 hours, followed by washing, refilling of the medium, dechlorination aeration, and then continuous loading and unloading for about 20 hours again. Further inoculum may be added to the constant temperature bath.
  • FIG. 1 shows an embodiment in which the inoculum is stored as a suspension in a refrigerator. It is clear from the description in other places that the present invention is not necessarily limited to the form in which the inoculum is stored as a suspension.
  • a suspension of microorganisms having a predetermined concentration for example, 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL
  • the suspension is stored in a constant temperature bath at a flow rate of X (L / h). Is added to.
  • Microorganisms stored as dried cells can be directly supplied to a constant temperature bath, in which case, for example, the concentration of microorganisms in the constant temperature bath should be equal to or less than a predetermined concentration (for example, 1 ⁇ 10 8 cells / mL). Can be supplied.
  • the supply of the microorganism to the constant temperature bath may be continuous or intermittent.
  • the first concentrated partial medium for example, nitrogen source, etc.
  • the second concentrated partial medium for example, carbon source such as fat, alcohol, lactic acid, etc.
  • Q L / h
  • Water is added to the constant temperature bath at Y2 (L / h).
  • the first concentrated partial medium does not contain a carbon source
  • the first concentrated partial medium does not have a carbon source necessary for the growth of microorganisms
  • the second concentrated partial medium does not contain a carbon source.
  • it contains a carbon source, it does not have a medium component such as a nitrogen source necessary for growth, so that it is possible to suppress the growth of germs and bacteria in each storage container and its supply line during continuous operation.
  • the supply flow rate X of the inoculum suspension is 1/500 to 1/50 of the medium flow rate Y, and can be typically 1/100 or less.
  • the inoculum is diluted to 1/500 to 1/50 when added to a constant temperature bath, and by culturing this, a microbial culture solution containing microorganisms having a concentration 1 to 10 times that of the inoculum solution can be finally produced.
  • the concentration of microorganisms in the culture can be 1 ⁇ 10 9 cells / mL or higher.
  • a microorganism-containing culture solution having a constant microbial concentration is discharged from the constant temperature bath at a constant flow rate F (L / h).
  • the culture medium discharged from the constant temperature bath may contain 1 ⁇ 10 9 cells / mL or more of microorganisms.
  • the flow rate F is equal to Y when the inoculum suspension is not supplied, and is equal to X + Y when the inoculum suspension is supplied at the flow rate X.
  • the flow rate F corresponding to X + Y is discharged at a constant flow rate.
  • X can be Y / 100 or less
  • X can be a negligible amount with respect to Y.
  • Y and F are equal.
  • the flow rate (Q) of the second concentrated partial medium (for example, carbon source) is not taken into consideration in the discharge flow rate F.
  • the activity has a fluctuation range, for example, the consumption of a carbon source also has a fluctuation range.
  • the second concentrated partial medium contains a nitrogen source
  • the first concentrated partial medium contains a carbon source
  • Y is the supply flow rate of the medium containing the carbon source.
  • the carbon source can be supplied to the constant temperature bath as a second concentrated partial medium so that the carbon source concentration of the culture solution in the constant temperature bath is always equal to or less than a predetermined concentration (for example, about 0.01 w / v%). Therefore, the carbon source in the microorganism-containing culture solution discharged from the constant temperature bath can be about 0.01 w / v% or less.
  • a predetermined concentration for example, about 0.01 w / v%) and / or, the carbon source concentration in the culture solution discharged from the constant temperature bath is a predetermined concentration (for example).
  • the carbon source concentration of the culture solution in the constant temperature bath means the weight of the carbon source with respect to the volume of the entire culture solution. In some parts of the culture broth to which the carbon source is supplied, the carbon source concentration can locally exceed the predetermined concentration, but it is natural that the carbon source concentration in the culture broth can still be below the predetermined concentration. Can be understood.
  • the above-mentioned “always” means continuous supply of medium, carbon source, and inoculum to the constant temperature bath, continuous production of microorganisms in the constant temperature bath, and inclusion of microorganisms from the constant temperature bath. It is “always” during the continuous drainage of the culture medium.
  • the nitrogen source is a second concentrated partial medium such that the nitrogen source concentration of the culture medium in the constant temperature bath is always equal to or less than a predetermined concentration (for example, about 0.01 w / v%). Is supplied to the constant temperature bath. Therefore, the nitrogen source in the microorganism-containing culture solution discharged from the constant temperature bath can be about 0.01 w / v% or less.
  • the nitrogen source may be included as ammonia in the second concentrated medium, interlocked with the pH control of the culture medium, and the nitrogen source may be supplied in the required amount as a continuous pH stat. In that case, it is preferable to include the carbon source in the first concentrated medium. Such embodiments may also be included in the scope of the present patent.
  • the present invention provides a nitrogen source and a carbon source to a constant temperature bath through separate storage containers and supply lines to allow germs in each storage container and in its supply line during continuous operation.
  • bacteriophage growth can be suppressed, but by further suppressing the carbon source concentration (or nitrogen source concentration) of the culture solution in the constant temperature bath to a predetermined concentration or less, the growth of germs and bacteriophage in the entire manufacturing apparatus. Can be suppressed.
  • the present invention may also provide an apparatus or system for use in the method for continuous microbial production of Embodiment 1 of the present invention.
  • the apparatus or system of the present invention typically comprises an inoculum storage unit (eg, about 15-500 L) and a first medium (eg, 300-fold concentrated medium) storage tank (eg, about 5-50 L).
  • a second medium storage tank (which can be smaller in volume than the first medium storage tank, eg, about 4-40 L) and a constant temperature bath (eg, about 4-40 L) for culturing and growing the inoculum to produce microorganisms. It contains 4 to 500 L) and is for continuously producing a microorganism having a substantially constant concentration for 20 hours or more (FIG. 1).
  • the constant temperature bath for amplification of the inoculum microorganism of the present invention may be a cylindrical or square tubular, metal, plastic or glass tank.
  • the constant temperature bath is equipped with a temperature controller and a thermometer, and can control the temperature during microbial culture (amplification).
  • the controlled temperature is typically 18-55 ° C, preferably 25-42 ° C, more preferably 28-37 ° C.
  • a water level gauge or a liquid level sensor may be installed in the constant temperature bath to enable sensing and control of at least the lower limit and the upper limit, and in some cases, the middle level liquid level. Further, this liquid level sensor may also serve as a foaming sensor, or a system for detecting foaming may be installed by another principle.
  • a system that automatically supplies an antifoaming agent in conjunction with a system that senses these foams may be provided.
  • the constant temperature bath may be equipped with a blower.
  • a diffuser tube or a balloon, or a microbubble / nanobubble generator may be installed in the constant temperature bath.
  • the medium is stored in the medium storage tank and supplied to the constant temperature bath at a constant flow rate.
  • the medium storage tank is typically made of metal, plastic or glass, preferably plastic or metal.
  • the medium storage tank may be stored in a refrigerator.
  • the medium storage tank is a tank for storing concentrated medium, that is, a medium storage tank, and water can be supplied from another line (FIG. 1).
  • the carbon source is stored in a culture medium storage tank and is typically made of metal, plastic or glass, preferably plastic or metal.
  • the inoculum storage unit in the apparatus or system of the present invention is a part (storage or storage tank) for storing microorganisms as a seeding source before being cultured in a constant temperature bath.
  • the inoculum storage unit of the present invention is typically made of metal, plastic or glass, but is not limited thereto.
  • the inoculum storage unit of the present invention is not provided with a blower for aeration.
  • the inoculum storage unit is stored in a refrigerator, but the present invention is not necessarily limited to this.
  • cooling during storage is not required and the inoculum can be stored at room temperature.
  • a plurality of types of microorganisms can be used as inoculum.
  • the plurality of types of microorganisms may be stored in a plurality of storage tanks for each type, but preferably a plurality of types of microorganisms may be stored in one storage tank or in a number of storage tanks smaller than the number of the types of the microorganisms. .. Storing multiple species of microorganisms in a small number (preferably one) of storage tanks simplifies and is efficient in preparing the system and inoculum.
  • the system of the present invention may further be equipped with another tank or device, for example, a tank for storing an organic substance other than the carbon source of a microorganism or a solution thereof, an antifoaming agent, a pH regulator, and the like. You may prepare.
  • a tank for storing an organic substance other than the carbon source of a microorganism or a solution thereof, an antifoaming agent, a pH regulator, and the like You may prepare.
  • the system of the present invention comprises a first pump configured to continuously supply a first concentrated partial medium from a first medium storage tank to a constant temperature bath at a constant flow rate Y1 (L / h), and a second concentrated portion.
  • a second pump configured to continuously supply the medium (for example, a carbon source) from the second medium storage tank to the constant temperature bath at a flow rate Q (L / h), and water at a constant flow rate Y2 (L / h).
  • This discharging means can be any means for automatically draining the culture solution in the constant temperature bath so that the amount of the culture solution in the constant temperature bath becomes substantially constant.
  • the microorganism-containing culture solution is discharged from the constant temperature bath at a constant flow rate F (L). It may be a pump configured to discharge at / h), or it may be a discharge pipe installed at a intended height of a constant temperature bath.
  • the system of the present invention is configured to continuously supply the inoculum suspension from the inoculum storage unit to a constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h).
  • a third pump may be further provided.
  • the inoculum may be supplied to the inoculum suspension preparation tank to form an inoculum suspension before addition to the constant temperature bath. However, it may be added directly to the constant temperature bath.
  • the dried cells are added to the inoculum suspension preparation tank or the constant temperature bath by a dry cell supply means, and any powder feeder known in the art can be used as the dry cell supply means. Addition of the dried cells from the feeder to each tank can control the weight and / or addition time, such as adding the dried cells of a predetermined concentration to the inoculum suspension preparation tank or the constant temperature bath.
  • the system of the present invention further comprises a fourth pump configured to continuously supply the inoculum suspension to the constant temperature bath at a constant flow rate X (L / h). obtain.
  • the microbial continuous production apparatus and system of the present invention are not provided with equipment for sterilization.
  • the sterility referred to here is steam sterility, gas sterility such as ethylene oxide, and sterility by radiation or electron beam irradiation.
  • a microorganism-containing culture solution in which an inoculum is grown is stored in a storage tank, and a culture solution containing a microorganism having a substantially constant concentration is continuously discharged from the culture solution to produce a microorganism.
  • the reservoir comprises any means for identifying the amount of culture medium in the reservoir.
  • the means for specifying the content of the culture solution in the storage tank may be a means for specifying the position of the liquid level of the culture solution such as a water level gauge or a liquid level sensor, or in a storage tank such as a weigh scale.
  • the weight of the culture broth may be specified, but is not limited thereto.
  • the present invention may install a water level gauge or a liquid level sensor in the storage tank and specify that the amount of culture liquid in the storage tank is reduced beyond the threshold value from the liquid level. In this case, when the decrease in the culture solution in the storage tank reaches the threshold value, the culture solution containing the microorganisms grown in the constant temperature bath is transferred to the storage tank.
  • Means for identifying the content in the reservoir can detect at least the lower limit (water level at or near the microbial-containing culture medium), preferably further upper limit. It can be detectable (eg, full or near full water level).
  • the storage tank of the present invention may be provided with a system for detecting foaming (for example, a foaming sensor).
  • a system for detecting foaming for example, a foaming sensor
  • the above liquid level sensor may also serve as a foaming sensor.
  • a system that automatically supplies the defoaming agent in conjunction with a system that senses foaming may also be provided.
  • the storage tank of the present invention is preferably constructed for heat retention. Specifically, it is kept warm by a heat insulating material or a heat shield coating.
  • the heat insulating material or the heat insulating coating may be applied directly to the storage tank, or the storage tank may be installed in a box thus heat-retaining.
  • the storage tank may be provided with a temperature controller and a thermometer so that the temperature of the microorganism-containing culture solution in the storage tank can be controlled.
  • the temperature controller is not indispensable because it is costly.
  • the temperature in the storage tank is typically 0 to 42 ° C, preferably 4 to 40 ° C. If it does not fall within these temperature ranges, the temperature may be adjusted appropriately by heating or cooling.
  • the storage tank of the present invention comprises a blower for stirring and mixing.
  • a mechanical stirring means for example, a stirring mixer having a stirring blade or a vibration stirring device
  • the blower in the storage tank does not need to be performed with the same amount of air as when culturing microorganisms in the constant temperature bath described later, and 80% or less, 70% or less, 60% or less or 50% or less of the air amount used for aeration of the constant temperature tank, etc.
  • it can be 40 to 80%, 40 to 70%, 40 to 60%, and the like.
  • the blower in the storage tank is intended to prevent the sedimentation of microorganisms, it is preferable that the blower's air diffuser is provided at the lower part of the storage tank and air is supplied from the lower part of the storage tank.
  • the microorganism-containing culture medium supplied from the constant temperature bath to the storage tank may contain, for example, 1 ⁇ 10 9 cells / mL or more of microorganisms.
  • the emission amount of the microorganism produced in the present embodiment can be appropriately adjusted by the user according to the use of the microorganism.
  • the constant temperature bath of the present invention is provided with a temperature controller and a thermometer, and can control the temperature during microbial culture (amplification).
  • the controlled temperature is typically 18-55 ° C, preferably 25-42 ° C, more preferably 28-37 ° C. If it does not fall within these temperature ranges, the temperature may be adjusted appropriately by heating or cooling.
  • any means for example, a water level gauge or a liquid level sensor for specifying the content (culture liquid volume or water volume) in the tank is installed, and at least the lower limit and the upper limit, and in some cases, the middle level are installed. Enables the sensing and control of the liquid level.
  • This liquid level sensor may also serve as a foaming sensor, or a system for detecting foaming may be installed by another principle.
  • a system that automatically supplies an antifoaming agent in conjunction with a system that senses foaming may be provided.
  • the content that is reduced by the transfer of the microbial-containing culture solution to the storage tank is reduced beyond the threshold value. Can be identified.
  • the inoculum is placed in the constant temperature bath, the first concentrated partial medium (for example, the medium containing a nitrogen source and not containing a carbon source), and the second. Concentrated partial medium (for example, a carbon source that does not contain a nitrogen source), water, etc.
  • the first concentrated partial medium contains the first medium component
  • the second concentrated partial medium contains the second medium component
  • the medium may also contain a third medium component derived from the third concentrated partial medium). Also in this embodiment, since the first concentrated partial medium and the second concentrated partial medium are separately stored and supplied as in the first embodiment, the need for sterilization is reduced. obtain.
  • the batch culture in the constant temperature bath is periodic. Please note that it is not done in a targeted manner.
  • the constant temperature bath of the present invention provides water supply or a first concentrated partial medium in response to a water level detected by a means for identifying the content in the tank (for example, a water level gauge or a liquid level sensor). It is provided with various control means for automatically starting the supply of each of the second concentrated partial medium and the inoculum, and various supply means (for example, a pump) controlled by the water level.
  • This control means can be any means that opens and closes the flow path in response to the water level, but can typically be a valve, particularly a solenoid valve.
  • the constant temperature bath can be designed so that after water supply and supply of the first concentrated partial medium, the second concentrated partial medium, and the inoculum, aeration is performed and new microorganisms grow. Further, it can be designed to perform dechlorination by supplying the inoculum after aeration for several minutes to one hour before the inoculum is supplied. Furthermore, even if the constant temperature bath is controlled by a program that cleans by detecting the water level and repeating drainage and re-water supply after water supply and before supply of the first concentrated partial medium, the second concentrated partial medium, and the inoculum. good.
  • the constant temperature bath can be washed by supplying water and repeating this any number of times (for example, 1 to 10 times).
  • the constant temperature bath may be provided with a drainage ditch separately from the line for transferring the culture solution to the storage tank.
  • processes such as "microorganism amplification (production)", “dechlorination”, and “cleaning", and the selected process can be performed by the user's appropriate selection.
  • aeration and stirring may be performed in a constant temperature bath to supply air necessary for the growth of microorganisms. Stirring is performed to promote the growth of the microorganism by bringing the microorganism to be grown into contact with the medium and the carbon source by mixing the culture solution.
  • Specific means for aeration and agitation are not limited.
  • the constant temperature bath of the present invention comprises a blower.
  • the blower can also agitate and mix the culture with air introduction.
  • an air introduction means for example, an air supply pump
  • a mechanical agitation means for example, a stirring mixer having a stirring blade or a vibration stirring device
  • DO dissolved oxygen concentration
  • the pH of the culture solution in the constant temperature bath is usually in the range of 4.5 to 9.0, preferably 5.5 to 8.5, and more preferably 6.0 to 8.0. If it does not fall within these ranges, the pH can be adjusted as appropriate by adding an acid or alkali.
  • Growth in a constant temperature bath can be carried out until the microorganisms reach 1 ⁇ 10 9 cells / mL or higher.
  • the culture solution is changed from the constant temperature bath to the culture solution.
  • the threshold value for example, the liquid level of the culture solution has dropped to the threshold value
  • the culture solution is changed from the constant temperature bath to the culture solution.
  • the function for transfer from the constant temperature bath to the storage tank may be, for example, a pump, a liquid feed pipe, or the like.
  • the water used for cleaning the constant temperature bath is sent to the storage tank, and the water accumulated in the storage tank is drained from the storage tank one to several times, thereby cleaning the storage tank.
  • the steps to be performed may also be included.
  • a high-speed liquid feeding / draining means is provided in the constant temperature tank and the storage tank separately from the discharge system used for draining the culture solution. You may.
  • the supply amount and / or residence time of the carbon source supplied as the second concentrated partial medium is such that the carbon source concentration in the microorganism-containing culture medium discharged from the constant temperature bath is a predetermined concentration (for example, about 0.05 w / v%). Hereinafter, it can be set to be about 0.01% w / v or less, or about 0.001 w / v% or less), preferably zero.
  • the carbon source concentration may be measured in the culture solution discharged from the constant temperature bath, and the supply amount and / or residence time of the carbon source may be changed according to the measurement result.
  • the carbon source concentration of the culture solution discharged from the constant temperature bath is set to about 0.01 w / v% or less
  • the carbon source concentration of the culture solution discharged from the constant temperature bath is about 0.01 w / v%. If it is exceeded, the amount of carbon source supplied may be reduced, the residence time may be extended, or both may be performed.
  • the advantage of the first embodiment that sterility is not required by separating the first concentrated partial medium and the second concentrated partial medium is the second embodiment. Can also be obtained in the same manner. Further, by controlling the carbon source concentration of the culture solution discharged from the constant temperature bath to a predetermined concentration or less, the need for sterility of the storage tank can be further reduced.
  • the nitrogen source concentration in the microbial-containing culture medium discharged from the constant temperature bath and transferred to the storage tank is a predetermined concentration (for example, about 0.05 w / v% or less, about 0.01 w / v% or less). , Or about 0.001 w / v% or less), preferably zero.
  • the nitrogen source may be included as ammonia in the second concentrated medium and linked to the pH control of the culture medium to supply the required amount of nitrogen source as a continuous pH stat.
  • the nitrogen source concentration in the microorganism-containing culture solution discharged from the constant temperature bath and transferred to the storage tank is suppressed to a predetermined concentration or less.
  • Such embodiments may also be included in the scope of the present patent.
  • the first medium component comprises a nitrogen source and the second medium component comprises a carbon source.
  • the first concentrated partial medium contains a nitrogen source at a concentration of about 10 w / v% or higher, at a concentration of about 15 w / v% or higher, preferably at a concentration of about 20 w / v% or higher, and more.
  • the concentrated partial medium containing the carbon source contains the carbon source at a concentration of about 40 w / v% or more, more preferably about 50 w / v% or more, still more preferably about 60 w / v% or more. Can be included in the concentration of.
  • a concentrated partial medium containing a nitrogen source does not contain a carbon source
  • a concentrated partial medium containing a carbon source does not contain a nitrogen source
  • the production method of the present invention does not sterilize the first concentrated partial medium and the second concentrated partial medium used for the production of microorganisms. It is characterized by. In a preferred embodiment, the production method of the present invention is within 24 hours, within 36 hours, within 48 hours, or within 72 hours before and after continuous production of 20 hours or more, first medium storage tank, second. It is characterized in that the culture medium storage tank, constant temperature bath and storage tank are not sterilized. In the production of microorganisms, sterility is generally not required at such timing in the present invention, considering that sterility of these facilities is usually performed within 24 hours of culturing for production. Is a big advantage.
  • the inoculum may be stored in the inoculum storage unit in the form of a suspension, or may be stored in the inoculum storage unit as a dry inoculum.
  • the method for producing dried cells will be described in detail later.
  • the inoculum is stored as a dry cell of microorganism and made into an inoculum suspension before being supplied to the constant temperature bath.
  • This inoculum suspension may be suspended in a liquid at 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL and added to a constant temperature bath as described above, or k ⁇ 2 ⁇ 10 10 cells.
  • this inoculum suspension may be supplied to a constant temperature bath (in this case, the inoculum suspension is added to about 50 k to 500 k times the amount of the culture solution. do).
  • dried cells are directly supplied to a constant temperature bath so as to have a microbial concentration of 1 ⁇ 108 cells / mL or less.
  • the inoculum of the present invention removes the culture supernatant from the culture (typically batch culture) of the microorganism and does not contain any carbon source such as inorganic salt medium, buffer, water or the like. It may be resuspended and refrigerated in fluid to 1 ⁇ 10 6 to 1 ⁇ 10 12 cells / mL, preferably 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL. The inoculum of the present invention may preferably be resuspended to 1 ⁇ 10 8 to 9 ⁇ 10 9 cells / mL, more preferably 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 9 cells / mL. ..
  • a fresh inorganic salt medium containing no carbon source is used as the fluid.
  • the inoculum of the present invention is obtained by refrigerating a culture of microorganisms diluted 10-fold with an arbitrary fluid containing no carbon source such as an inorganic salt medium, a buffer solution, or water. It can be a thing.
  • the fluid for dilution may preferably be an inorganic salt medium containing no carbon source.
  • the inoculum is generally stored as it is in the culture solution, and aeration may be required to maintain the survival rate in that state.
  • the culture supernatant should be removed from the above-mentioned batch cultures of microorganisms, resuspended in a fluid containing no carbon source (for example, fresh medium), and aerated with a blower for the refrigerated ones.
  • the medium for growth of the microorganism may contain a carbon source, nitrogen, phosphorus, potassium and the like, and the fluid for resuspension after growth may be an inorganic salt medium containing no carbon source.
  • the effect of the culture supernatant can be reduced by diluting the culture broth 10-fold with a carbon-free fluid (eg, carbon-free inorganic salt medium or water), and the carbon source If it remains, its concentration can be low enough to allow the inoculum to survive without exposure, similar to the culture supernatant removed and resuspended in fresh carbon-free medium.
  • a carbon-free fluid eg, carbon-free inorganic salt medium or water
  • the method and system of the second embodiment may be operated in the following cycle.
  • Emissions are set by the emission controller
  • Emissions from the storage tank are set according to the production plan of the product (microbial suspension).
  • Discharge The discharge pump operates to reach the set discharge amount, and the culture solution containing a certain concentration of microorganisms is continuously discharged from the storage tank at a constant flow rate, so that the microbial culture solution as a product is stably discharged. obtain.
  • 3. Detecting a low water level of the microorganism-containing culture solution in the storage tank The water level sensor detects that the water level has decreased by the above step 2 and the culture solution water level has reached or exceeded the threshold value. 4.
  • the liquid level sensor or water level gauge detects the water level in the constant temperature bath, which decreases due to the transfer step of the culture liquid from the constant temperature bath to the storage tank in 4 above, and the culture liquid water level reaches or exceeds the threshold value. When it becomes, the control means of the water supply port is opened and water supply is started.
  • Aeration is started, and the microorganism-containing culture solution is produced by culturing and amplifying the microorganism for a certain period of time.
  • the following steps may be further included between the above 5-2-1 and 5--2-2.
  • A. After detecting that water has been supplied to the constant temperature bath up to a predetermined amount (for example, the constant temperature tank is full), drain the water again, detect that the water level has dropped to the threshold value, and re-supply water. The inside of the constant temperature bath is washed by repeating the water supply any number of times.
  • B. After water supply, aerate for a certain period of time to dechlorinate.
  • a and B may be performed every time the above 5-2 is performed, A and B may be set to be performed after 5-2 is performed an arbitrary number of times, and the user is arbitrary. It may be possible to operate so as to perform A and B at the timing of. Further, after the above 5-2 is performed, A may be performed and B may not be performed, or B may be performed and A may not be performed. These can be appropriately set by the user according to the situation.
  • the washing water generated in the above step A may be discharged from a drainage port separately provided in the constant temperature bath, or after being transferred to the storage tank, by a culture solution discharge pump of the storage tank or a drainage port provided separately. More discharged from the storage tank. By the latter method, the storage tank can be washed following the constant temperature bath.
  • the present invention may also provide an apparatus or system for use in the method for continuous microbial production of Embodiment 2 of the present invention.
  • the apparatus or system of the present invention typically comprises an inoculum storage unit (eg, about 15-500 L), a first medium storage tank (eg, about 5-50 L), and a second medium storage tank (eg, first).
  • the volume may be smaller than that of the culture medium storage tank of 1, for example, about 4 to 40 L), a constant temperature bath for culturing and growing the inoculum and growing the microorganism (for example, about 100 to 500 L), and containing the microorganism.
  • It includes a storage tank (for example, about 100 to 500 L) for storing the culture medium, and is for continuously (for example, continuously for 24 hours or more) discharging the microorganism-containing culture medium having a substantially constant concentration from the storage tank.
  • a storage tank for example, about 100 to 500 L
  • a storage tank for example, about 100 to 500 L
  • the constant temperature bath and storage tank may be cylindrical or square cylinder, and may be a metal, plastic or glass tank.
  • the constant temperature bath has a discharge means for discharging the microorganism-containing culture solution to the storage tank, and the storage tank has a discharge means for discharging the stored microorganism-containing culture solution. Further, the constant temperature bath and the storage tank may have a discharge means for discharging the washing water or the like at high speed separately from the discharge means for the culture solution.
  • the constant temperature bath is equipped with a temperature controller and a thermometer, and can control the temperature during microbial culture (amplification).
  • the controlled temperature is typically 18-55 ° C, preferably 25-42 ° C, more preferably 28-37 ° C.
  • the constant temperature bath is provided with any means (for example, a water level gauge or a liquid level sensor) for specifying the content (amount of culture liquid or amount of water) in the tank.
  • the constant temperature bath of the present invention also responds to (in conjunction with) the water level detected by a means for identifying the content in the tank (eg, a water level gauge or a liquid level sensor).
  • a first medium control means and pump for automatically supplying the first concentrated partial medium from the first medium storage tank to the constant temperature bath.
  • a second medium control control means for automatically supplying the second concentrated partial medium from the second medium storage tank to the constant temperature bath, a pump, and an inoculum configured to supply the inoculum to the constant temperature tank. It is equipped with a control means for inoculum and a pump / feeder for inoculum and a control means for water supply.
  • the first culture medium control means, the second culture medium control means, and the inoculum control means are all automatically operated in conjunction with a mechanism for detecting the content in the constant temperature bath.
  • “interlocking with the mechanism for detecting the internal capacity in the constant temperature bath” includes directly interlocking in response to the signal of the amount of water detected by the mechanism for detecting the internal capacity in the constant temperature bath.
  • the internal capacity of the constant temperature bath can be increased via other valves and pumps. It also includes indirectly interlocking with the detection mechanism.
  • the first control means for a medium opens a flow path in conjunction with the signal.
  • the medium pump supplies the first concentrated partial medium into the constant temperature bath.
  • the first control means for the medium is "directly” linked to the mechanism for detecting the content in the constant temperature bath.
  • the second culture medium control means and the inoculum control means can be set to detect the operation of the first culture medium control means and the culture medium pump and operate in conjunction with the operation.
  • the second control means for the medium and the control means for the inoculum are "indirectly” linked to the mechanism for detecting the content in the constant temperature bath.
  • the first medium control means, the second medium control means, and the inoculum control means may all be directly linked to the mechanism for detecting the content in the constant temperature bath, or the first medium control means.
  • One of the means, the second control means for the medium, and the control means for the inoculum directly works with the mechanism for detecting the content in the constant temperature bath, and the other two control the content in the constant temperature bath. It may be indirectly linked with the detection mechanism, or any two of the first medium control means, the second medium control means, and the inoculum control means control the content in the constant temperature bath.
  • the other one may be directly linked with the mechanism for detecting the content in the constant temperature bath, and the other one may be indirectly linked with the mechanism for detecting the content in the constant temperature bath.
  • the above-mentioned inoculum control means, inoculum pump and / or inoculum feeder are used.
  • the inoculum suspension is stored in the inoculum storage unit, it is a control means and a pump for supplying the inoculum suspension from the inoculum storage unit to the constant temperature bath.
  • the dried cells are stored in the inoculum storage unit, the dried cells are used as the inoculum suspension in the inoculum suspension preparation tank, and the inoculum suspension is supplied to the constant temperature bath, the inoculum suspension is performed.
  • Inoculum suspension preparation tank water supply control means for controlling water supply to the liquid preparation tank, dry cell supply control means for supplying dried cells from the inoculum storage unit to the inoculum suspension preparation tank, and inoculum suspension.
  • a control means and pump for supplying the inoculum suspension from the liquid preparation tank to the constant temperature bath.
  • the dried inoculum is stored in the inoculum storage unit, the dried inoculum is used as an inoculum suspension in the inoculum suspension preparation tank, and the inoculum suspension is placed in a constant temperature bath.
  • the supply of water to the inoculum suspension preparation tank, the supply of dried inoculum and the supply of the inoculum suspension to the constant temperature bath are the contents of the inoculum preparation tank or the control status of the constant temperature bath (in the case of supply). It can be controlled in conjunction with drainage, water supply, medium supply, etc.).
  • the constant temperature bath also provides a discharge means for discharging the culture liquid from the constant temperature bath in response (in conjunction with) when the water level gauge or the liquid level sensor detects that the amount of the culture liquid in the storage tank has reached the lower limit. Be prepared.
  • the water supply control means, the first medium control means, the second medium control means, and the inoculum control means are all directly linked to the water level of the constant temperature bath, or the water supply control.
  • the means is directly linked to the water level of the constant temperature bath, and the first medium control means, the second medium control means and the inoculum control means are indirectly linked to the water supply control means to indirectly link the water level of the constant temperature bath. Can be linked to.
  • the water supply control means is opened in conjunction with the fact that the water level of the culture solution in the constant temperature bath becomes lower than the threshold value, and automatically detects the rise in the water level in the constant temperature bath or after supplying a constant amount of water. May be closed to.
  • control means may be a solenoid valve.
  • the storage tank is provided with an arbitrary means (for example, a water level gauge or a liquid level sensor) for specifying the content (amount of culture liquid or amount of water) in the tank.
  • an arbitrary means for example, a water level gauge or a liquid level sensor
  • the various control means, pumps, and / or discharge means linked to the water level in the constant temperature bath and storage tank can be controlled by a microcomputer (microcontroller) incorporating a program that regulates the production amount and the number of cleanings.
  • a microcomputer microcontroller
  • the storage tank is preferably constructed for heat retention. Specifically, it is kept warm by a heat insulating material or a heat shield coating.
  • the heat insulating material or the heat insulating coating may be applied directly to the storage tank, or the storage tank may be installed in a box thus heat-retaining.
  • the storage tank may be equipped with a temperature controller and a thermometer so that the temperature of the culture solution in the storage tank can be controlled, but it is not essential.
  • the storage tank may be provided with a blower for stirring and mixing to prevent sedimentation of microorganisms, or a mechanical stirring means (for example, a stirring and mixing device having a stirring blade or a vibration stirring device).
  • a blower for stirring and mixing to prevent sedimentation of microorganisms
  • a mechanical stirring means for example, a stirring and mixing device having a stirring blade or a vibration stirring device.
  • the first concentrated partial medium is stored in the first medium storage tank and is automatically supplied to the constant temperature bath in conjunction with the water level in the constant temperature tank.
  • the first medium storage tank is typically made of metal or plastic or glass, preferably plastic or metal.
  • the first medium storage tank may be stored in a refrigerator.
  • the second concentrated partial medium is stored in the second medium storage tank, and is automatically supplied to the constant temperature bath in conjunction with the water level in the constant temperature tank.
  • the second medium storage tank is typically made of metal or plastic or glass, preferably plastic or metal.
  • the second medium storage tank may be stored in a refrigerator.
  • the inoculum storage unit in the apparatus or system of the present invention is a part (storage or storage tank) for storing microorganisms as a seeding source before being cultured in a constant temperature bath.
  • the inoculum storage unit has a means for automatically supplying the inoculum to the inoculum or the inoculum suspension preparation tank in conjunction with the water level in the inoculum.
  • the inoculum storage unit of the present invention is typically made of metal, plastic or glass, but is not limited thereto.
  • the inoculum storage unit of the present invention is not provided with a blower for aeration.
  • FIG. 7 the inoculum storage unit is stored in the refrigerator, but the inoculum is not necessarily limited to this. In particular, when the inoculum is stored as a dried inoculum, cooling during storage is not required and the inoculum can be stored at room temperature.
  • a plurality of types of microorganisms can be used as inoculum.
  • the plurality of types of microorganisms may be stored in a plurality of storage units for each type, but preferably a plurality of types of microorganisms may be stored in one storage unit or in a number of storage units smaller than the number of the types of the microorganisms. .. Storing multiple species of microorganisms in a small number (preferably one) storage unit simplifies and is efficient in preparing the system and inoculum.
  • the system of the present invention may further be equipped with another tank or device, for example, a tank for storing an organic substance other than the carbon source of a microorganism or a solution thereof, an antifoaming agent, a pH adjuster, and the like. May be provided.
  • a tank for storing an organic substance other than the carbon source of a microorganism or a solution thereof, an antifoaming agent, a pH adjuster, and the like. May be provided.
  • the microbial continuous production apparatus and system of the present invention are not provided with equipment for sterilization.
  • the sterility referred to here is steam sterility, gas sterility such as ethylene oxide, and sterility by radiation or electron beam irradiation.
  • Carbon Sources The carbon sources that can be used in the present invention will be described below. The carbon sources described below are applicable to both embodiments 1 and 2 described above.
  • the carbon source used in the present invention can be any carbon source from which the microorganism can consume and grow. Microorganisms consume a carbon source, and multiply the consumption by the cell yield to convert it into a cell component and proliferate. In general, any compound that can be a carbon source makes it difficult for microorganisms to grow in the presence of high concentrations. This may be due to osmotic pressure or substrate toxicity. The higher the substrate toxicity, the more difficult it is for microorganisms to grow even at a low concentration, and the lower the substrate toxicity, the more difficult it is for microorganisms to grow unless the concentration is high.
  • the need for sterilization can be reduced by storing any carbon source in such a high concentration that it is difficult for microorganisms to grow.
  • the carbon source is stored in a second medium storage tank as a second concentrated partial medium.
  • a carbon source with high substrate toxicity or a persistent carbon source can reduce the need for sterility even at low concentrations, a carbon source with high substrate toxicity is used in a preferred embodiment.
  • even a carbon source having low substrate toxicity and easy decomposition can be used in a state in which the growth of microorganisms is difficult by storing at a high concentration.
  • the carbon source is stored in a state where the growth of microorganisms is difficult.
  • a state in which the growth of microorganisms is difficult means that, for example, Escherichia coli, Bacillus subtilis, baker's yeast, etc. are inoculated at 1 ⁇ 10 6 to 1 ⁇ 10 8 cells / ml and left at 25 to 37 ° C. for 24 hours. Can be judged by the fact that it does not multiply more than 10 times.
  • Examples of highly substrate-toxic carbon sources include alcohols (eg ethanol, methanol, isopropanol, butanol), organic solvents (eg toluene, ethyl acetate, dimethyl ether, diethyl ether, alkane), chlorine compounds (eg chloroform, trichloroethylene, trichloroacetic acid). And so on.
  • Examples of the persistent carbon source include fats and oils, mineral oils, dioxane, polycyclic aromatic compounds and the like.
  • the carbon source of the present invention one or more carbon sources may be used as needed.
  • organic waste, waste oil, or oil-containing waste discharged from food factories, food service industries, and the like may be used.
  • the carbon source of the present invention is typically a liquid, but may be provided in the form of a powder. In the case of powder, it can be added from a medium storage tank to a constant temperature bath, a supply line, a mixing tank, or the like by a supply system such as a powder feeder.
  • the carbon source is stored separately from the partial medium containing the nitrogen source, and is supplied to the constant temperature bath from a separate supply line.
  • a carbon source, a nitrogen source, and other media components are mixed in.
  • the present invention is not limited to this, and includes a second concentrated partial medium containing either a nitrogen source or a carbon source, and a carbon source or a nitrogen source not contained in the second concentrated partial medium.
  • the concentrated partial medium of 1 may be mixed in a mixing tank or supply line before being fed to the constant temperature bath, or the concentrated partial medium containing a carbon source and a nitrogen source is stored in a second storage tank, which is stored in a second storage tank. It may be supplied to a constant temperature bath through a supply line and mixed with a medium containing other components necessary for growth in the constant temperature bath.
  • the carbon source or nitrogen source of the present invention may be appropriately selected by those skilled in the art from the viewpoint that the storage tank does not need to be sterilized.
  • the first concentrated partial medium that can be used in the present invention will be described below.
  • the first concentrated partial medium is carbon-free and is typically combined with a carbon source (and additional other components as needed) to form a medium for microbial growth. It contains at least a nitrogen source.
  • the first concentrated partial medium is free of nitrogen source and is combined with a nitrogen source (and additional other components as needed) to form a medium for microbial growth. , Typically contains at least a carbon source.
  • the media described below are applicable to both embodiments 1 and 2 described above.
  • the first concentrated partial medium may be a concentrate of a medium generally used for culturing microorganisms, preferably containing phosphorus, potassium and the like.
  • the concentrated partial medium including the nitrogen source or the carbon source may be the first concentrated partial medium.
  • the medium containing the nitrogen source may be an inorganic salt medium, and an example of the composition of the inorganic salt medium is Na 2 HPO 4 3.5 g / L, KH 2 PO 4 2.0 g / L, (NH 4 ) 2 SO.
  • the first concentrated partial medium and water may be added directly to the constant temperature bath to generate a medium having a desired concentration in the constant temperature bath, or may be mixed or supplied before being added to the constant temperature bath. It may be mixed in a line to produce a medium of the desired concentration and then added to a constant temperature bath.
  • the first concentrated partial medium has a medium having a concentration of about 10 times or more, about 50 times or more, about 100 times or more, about 200 times or more, preferably about 250 times or more of the medium component of the target concentration in the constant temperature bath. Can be.
  • the nitrogen source that can be contained in either the first concentrated partial medium or the second concentrated partial medium is ammonium sulfate, other ammonium salts, nitrates, nitrites and other inorganic salts.
  • Amino acids can also be a nitrogen source, but they can also be a carbon source at the same time, so they are not suitable for storing the nitrogen source and the carbon source separately.
  • Urea is an organic compound containing carbon, but since it is first decomposed into ammonia and carbon dioxide by hydrolysis and then used by microorganisms, it can usually be a nitrogen source but not a carbon source. .. This is because heterotrophic microorganisms that utilize organic matter as a carbon source cannot immobilize carbon dioxide. Therefore, urea can be considered as a nitrogen source that is not a carbon source.
  • the nitrogen source that can be contained in either the first concentrated partial medium or the second concentrated partial medium is urea.
  • the first concentrated partial medium contains a carbon source and the second concentrated partial medium contains a nitrogen source.
  • the same nitrogen source as the above-mentioned compound can be used, but urea and ammonia are particularly preferable.
  • Ammonia water can also be supplied as a pH stat of the culture solution in the constant temperature bath. For example, 15% aqueous ammonia is a strong alkali with a pH of about 11, and normal microorganisms cannot grow. Therefore, 15% aqueous ammonia is suitable as a second concentrated partial medium containing a nitrogen source.
  • microorganisms characteristics of microorganisms
  • the microorganism targeted for continuous production in the present invention is a heterotrophic microorganism, and can be any microorganism as long as it can assimilate and proliferate the carbon source used.
  • a person skilled in the art can appropriately select a specific type of microorganism according to its purpose. Examples thereof include oil-degrading bacteria, mineral oil-degrading bacteria, organic solvent-utilizing bacteria, alcohol-utilizing bacteria, organic pollutant assimilating bacteria, Escherichia coli, bacillus, sprouting yeast, fission yeast, lactic acid bacteria, polysaccharide-degrading bacteria, and the like. ..
  • the microorganism may be a wild strain, a recombinant strain, or a mutant strain. Taxonomically, it may be a eubacteria, a gram-negative bacterium, a gram-positive bacterium, an actinomycete, a yeast, a mold (filamentous bacterium), an archaea, or the like.
  • microorganisms used in the first and second embodiments there is no particular difference in the microorganisms used in the first and second embodiments.
  • the microorganism produced by the present invention one kind alone or two or more kinds can be mixed and used. When two or more kinds are mixed and used, it is desirable to use a combination of microorganisms capable of coexisting with each other.
  • microorganisms capable of decomposing the fatty acid of the product product within 72 hours, preferably within 48 hours, more preferably within 36 hours, even more preferably within 24 hours by 80% or more.
  • the inoculum of the microorganism can be produced by culturing by a known method.
  • the inoculum suspension of the present invention can be obtained, for example, by the following steps.
  • the capacity can be adjusted according to the situation.
  • Microorganisms are cultured in an inorganic salt medium supplemented with a carbon source (for example, 10 L) by batch culture to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL.
  • a carbon source for example, 10 L
  • the composition of the inorganic salt medium for example, the above-mentioned ones can be used.
  • Bacterial collection step The culture solution obtained in the above culture step is, for example, centrifuged (for example, 2000 ⁇ g, 15 min, 25 ° C. conditions) to collect pellet-shaped wet cell aggregates.
  • Resuspension step The collected wet cell agglomerates are resuspended in a medium (for example, 100 L of an inorganic salt medium not supplemented with a carbon source) to prepare an inoculum suspension.
  • a medium for example, 100 L of an inorganic salt medium not supplemented with a carbon source
  • the culture solution is roughly divided into a cell aggregate and a culture supernatant by any means known in the art such as filtration, aggregation precipitation, compression dehydration, etc., in addition to centrifugation, and the culture supernatant is obtained. Can be obtained by removing.
  • microorganisms may be grown by continuous culture or fed-batch culture.
  • FIG. 2 the inoculum suspension (invention of the present application, sample No. 3) obtained in the above steps 1 to 4 and the culture solution obtained in the step 1 by omitting the above steps 2 and 3 are used as they are in the step 4.
  • FIG. 2 It is a graph which shows the transition of the viable cell count with the culture solution (Comparative Example 1, sample No. 4) stored as above.
  • the concentration of microorganisms in the inoculum suspension is 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL, preferably 1 ⁇ 10 8 to 9 ⁇ 10 9 cells / mL, and more. It can preferably be 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 9 cells / mL (see Example 2).
  • FIG. 4 shows the viable cell storage stability (Sample No. 5) when the culture solution was diluted 10 -fold with an inorganic salt medium after the above step 1 and the cell concentration was set to the order of 109 cells / mL. It is a graph which compared with the viable cell preservation property of the comparative example 1 (sample No. 4).
  • Sample No. 3 corresponds to the inoculum suspension (invention of the present application, sample No. 3) obtained in steps 1 to 4 shown in FIG. As can be seen from the results of FIG.
  • the present inventor agglomerates microorganisms by aggregation, precipitation, dehydration, centrifugation, etc., suspends them in water containing whey (for example, about 1 w / v%), and then dries them under reduced pressure. It was found that the activity can be maintained considerably by serving and drying. For example, in the case of Burkholderia arboris, it was found that the lipase activity, which is an index of oil / fat resolution, can be maintained by 50% or more of that before the drying treatment.
  • the present invention has been completed by further studying based on these findings, and also provides the following method for producing a microbial dry preparation, a protective agent for vacuum drying of microorganisms, and a microbial dry preparation.
  • the microbial dry preparation obtained by the present invention maintains a considerable level of enzyme activity before the drying treatment.
  • the method for producing a dried microbial preparation of the present invention can alleviate a decrease in enzyme activity after drying in a wide range of microorganisms, but is resistant to gram-positive bacteria and microorganisms other than yeast (for example, non-spore-forming bacteria). It can be widely applied to certain Gram-negative bacteria) and can be easily performed.
  • the protective agent for vacuum drying of microorganisms of the present invention enhances the survival rate when drying a gram-positive bacterium resistant to drying or a microorganism other than yeast (for example, a gram-negative bacterium which is a non-spore-forming bacterium) under reduced pressure. It is possible.
  • the method for producing a dry microbial preparation of the present invention is characterized by comprising a step of mixing whey with a microorganism and drying under reduced pressure.
  • the protective agent for vacuum drying of microorganisms of the present invention is characterized by containing whey as an active ingredient.
  • the drying treatment is not particularly limited as much as possible by the method of the present invention, and various microorganisms such as bacteria, archaea, and fungi can be widely used.
  • various microorganisms such as bacteria, archaea, and fungi can be widely used.
  • the microorganism one kind alone or two or more kinds can be mixed and used.
  • Bacteria to which the method for producing a dry microbial preparation of the present invention can be applied include gram-negative bacteria (for example, photosynthetic bacteria, cyanobacteria, Pseudomonas spp., Proteobacterium, intestinal bacterial group, chemically synthesized inorganic vegetative bacteria, etc. Methane-producing bacteria, etc.) and gram-positive bacteria (eg, staphylococcus, spore-forming rod, lactic acid, corineform, actinomycetes, etc.), among which gram-negative bacteria, especially non-blast-forming bacteria, are gram-negative. Suitable. This is because the bacterium has low resistance to drying and it is difficult to apply a conventional drying method.
  • gram-negative bacteria for example, photosynthetic bacteria, cyanobacteria, Pseudomonas spp., Proteobacterium, intestinal bacterial group, chemically synthesized inorganic vegetative bacteria, etc. Methane-producing bacteria,
  • yeasts of the genus Candida yeasts of the genus Yarrowia, yeasts of the genus Saccharomyces, and yeasts of the genus Schizosaccharomyces.
  • Pichia yeast Cryptococcus yeast, Trichosporon yeast, Hansenula yeast, etc.
  • filamentous fungi Aspergillus, etc.
  • the microorganisms to be used include lipase-secreting microorganisms that consume and assimilate fatty acids as described above, microorganisms that consume and assimilate glycerol, and assimilate free fatty acids to use lipase. Examples include microorganisms that do not secrete.
  • microorganisms used in producing the dry fat-degrading microbial preparation include Burkholderia arboris, Candida syrindrasea, and Yarrowia lipotica, and it is desirable to use two or three of these in combination. ..
  • microorganisms that do not form spores have an extremely low survival rate in dry storage, but the present inventor unexpectedly uses whey to prevent the death of microorganisms that do not form spores due to drying. I found that I could do it.
  • Microorganisms can be produced by culturing by a known method. After culturing, microorganisms are collected from the culture solution as a wet cell agglomerate by aggregation, precipitation, dehydration, centrifugation, etc., and if necessary, operations such as washing are performed to obtain a wet cell, and the wet cell is obtained. Can be used for mixing with whey.
  • Whey also called whey
  • Whey is a yellow-green liquid that is discharged after removing curds produced by adding rennet or acid to milk or defatted milk, and is a by-product of the production of cheese and casein.
  • the components of whey are proteins, lactose, water-soluble vitamins, salts (mineral components) and the like.
  • As the whey concentrated whey, dried whey, powdered whey and the like can also be used.
  • Whey is discharged in large quantities as a by-product when producing cheese, so it can be obtained at low cost.
  • the method of mixing whey and microorganisms is not particularly limited, and various known methods can be used.
  • Examples of the method of mixing whey and microorganisms include a method of suspending microorganisms formed as wet cell agglomerates in a solution containing whey.
  • the amount of whey in the solution in which such microorganisms are suspended is not particularly limited as long as the effects of the present invention can be obtained, and is 0.1 w / v% or more, preferably 0.5 w / v% or more, more preferably. Is 1 w / v% or more, for example, 0.1 to 5 w / v%, preferably 0.1 to 3 w / v%, and more preferably 0.5 to 2 w / v%. Water can be preferably used as the solvent for the solution containing whey.
  • the mixing ratio of the microorganism to the whey can be usually about 1 mg to about 5 mg, preferably about 2 mg to about 3 mg for the whey relative to the microorganism 1 ⁇ 10 10 cells.
  • the mixture of whey and microorganisms can contain other components other than whey and microorganisms, if necessary.
  • Vacuum drying is also called vacuum drying, and is a method of drying under a reduced pressure of atmospheric pressure or less.
  • vacuum drying unlike freeze-drying, the object to be dried is not frozen.
  • the vacuum drying is usually performed at 20 to 60 ° C, preferably 30 to 50 ° C. Heating can be performed if necessary.
  • the degree of depressurization may be arbitrary as long as the microorganism can be dried without freezing, and a slight depressurization slightly lower than the atmospheric pressure (for example, about 970 HPa) is preferable, but the depressurization is not limited to this.
  • Vacuum drying can be performed using commercially available equipment.
  • the microbial dry preparation obtained by the production method of the present invention can be placed in a suitable container and refrigerated or stored at room temperature.
  • the dry state can be maintained by putting a desiccant or the like in the container containing the microbial dry preparation.
  • the method for producing a dried microbial preparation of the present invention by whey is widely applicable to and easily carried out to gram-positive bacteria resistant to drying and microorganisms other than yeast (for example, gram-negative bacteria which are non-spore-forming bacteria). Is possible.
  • the microbial dry preparation obtained by the present invention maintains the enzyme activity (for example, lipase activity in Burkholderia arboris) before the drying treatment by 50% or more.
  • whey can bring about the maintenance of the enzymatic activity of the microbial preparation before and after drying, as compared with the case where there is no protective agent or when known trehalose is used as the protective agent.
  • the microbial preparation obtained by adding 1 w / v% of whey and drying under reduced pressure maintained the lipase activity remarkably as compared with that before drying.
  • the lipase activity was 20% or less as compared with that before drying.
  • the inoculum is stored as the above-mentioned dry preparation and suspended in a liquid so as to be 1 ⁇ 10 8 cells / mL or more before being supplied as an inoculum suspension in a constant temperature bath, thus being prepared.
  • the inoculum suspension may be continuously supplied to the constant temperature bath.
  • "in liquid” is typically a medium or water, but may be any solution for suspending the inoculum, such as a buffer solution or a salt solution.
  • the concentration of the inoculum suspension can be freely adjusted because the dried cells are used as a starting material.
  • an inoculum suspension having a high concentration of about 2 ⁇ 10 1000 cells / mL can also be prepared.
  • a general inoculum suspension concentration of 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL is used.
  • the input flow rate or the input amount of the inoculum suspension may be about 1/100.
  • Example 1 Burgholderia arboris KH-1 is used as a microorganism, and the inoculum suspension is preserved by resuspending the microbial cells in a fresh medium containing no carbon source except for the culture supernatant. The effect of was examined by the transition of the viable cell rate.
  • KH-1 was batch-cultured to 1 ⁇ 10 8 to 2 ⁇ 10 10 cells / mL at 30 ° C. in an inorganic salt medium supplemented with canola oil (1 v / v%) as a carbon source.
  • the composition of the inorganic salt medium is Na 2 HPO 4 3.5 g / L, KH 2 PO 4 2.0 g / L, (NH 4 ) 2 SO 4 4 g / L, MgCl 2.6H 2 O 0.34 g / L, FeSO 4.7H 2 O 2.8mg / L, MnSO 4.5H 2 O 2.4mg / L, CoCl 2.6H 2 O 2.4mg / L, CaCl 2.2H 2 O 1.7mg / L, CuCl 2 2H 2 O 0.2 mg / L, ZnSO 4.7H 2 O 0.3 mg / L, and NaMoO 4 0.25 mg / L.
  • Bacterial collection step The culture solution obtained in the above culture step was centrifuged at 2000 ⁇ g for 15 minutes at 4 ° C., and wet cell aggregates were collected.
  • Resuspension step The collected wet cell agglomerates were resuspended in an inorganic salt medium not supplemented with canola oil so as to have a total volume of 100 ml, and used as an inoculum suspension.
  • a culture solution obtained by omitting the above steps 2 and 3 and preserving the culture solution obtained in step 1 as it was in step 4 was used.
  • the viable cell count of the microorganism in the inoculum suspension of the present invention and the comparative example was measured.
  • the viable cell count was measured by appropriately diluting the inoculum suspension with an inorganic salt medium, dropping 100 ⁇ L of the diluted solution onto an LB agar medium plate, culturing at 28 ° C., and counting the number of colonies.
  • the results are shown in FIG. As can be seen from the results of FIG. 2, it was possible to maintain the survival rate for a long period of time without aeration by going through steps 2 and 3.
  • Example 2 Subsequently, the relationship between the initial concentration of the inoculum suspension obtained in Example 1 and the survival rate was examined. The results are shown in FIG. As shown in the results of FIG. 3, the long-term viability was higher in the order of 10 9 cells / mL than in the order of 10 10 cells / mL.
  • Example 3 Further, after step 1 in Example 1, the culture broth was diluted 10 -fold with an inorganic salt medium to the order of 109 cells / mL and then stored as in step 4 (Sample No. 5 in FIG. 4). The viable cell count of microorganisms was measured with the culture medium stored as it was without dilution. Sample No. in FIG. 3 corresponds to the inoculum suspension shown in FIG. 2 (invention of the present application, sample No. 3).
  • Example 4 3 mL of the culture medium containing 2 ⁇ 10 9 cells / mL of Burgholderia arboris SL1B1 and 3 ⁇ 10 7 cells / mL of Yarrowia lipolytica 1A1 was subjected to centrifugation, and the obtained wet cell agglomerates were collected without a protective agent. Resuspended in water or 0.1 mL of whey aqueous solution (0.1 w / v% or 1 w / v%) or trehalose aqueous solution (0.2 w / v% or 2 w / v%). This was centrifugally vacuum dried at 28 ° C. and 550 rpm for 2.5 hours (Tokyo University of Science UT-200). The obtained dried product was refrigerated at 4 ° C. overnight and used as an inoculum in the following culture.
  • the pre-drying and post-drying formulations containing the same amount of cells are added to a triangular flask with a 500 mL baffle containing 100 mL of an inorganic salt medium supplemented with canola oil (3 v / v%) and cultured for 24 hours. Then, the lipase activity retention rate (%) of the pharmaceutical product after the drying treatment was calculated with respect to the pharmaceutical product before the drying treatment. Lipase activity was measured by the following lipase assay.
  • the substrate solution for the lipase assay was prepared by mixing 18.9 mg of 4-nitrophenyl palmitate (4-NPP) with 12 ml of 3v / v% triton-X at 70 ° C. 1 ml substrate solution, 0.9 ml deionized water, 1 ml 150 mM GTA buffer (150 mM 3,3-dimethylglutaric acid), 150 mM Tris, and 150 mM 2-amino-2-methyl-1,3.
  • a mixed solution of -a solution consisting of propanediol adjusted to pH 6 with NaOH or HCl) was pre-incubated at 28 ° C. in a quartz cell.
  • the enzymatic reaction was started by adding 100 ⁇ l of the culture supernatant after the above 24-hour culture, and the absorbance at 410 nm was started using a U-2810 spectrophotometer (Hitachi, Tokyo) equipped with a temperature-controlled cell holder.
  • the lipase activity was determined by monitoring.
  • the enzyme activity that produced 1 ⁇ mol of 4-nitrophenol in 1 minute was defined as 1 unit of lipase activity.
  • the activity maintenance rate between the pre-drying and post-drying formulations was calculated.
  • whey brings about a significantly higher effect of maintaining enzyme activity before and after drying as compared with the case where there is no protective agent or when known trehalose is used as the protective agent.
  • the microbial preparation to which 1% of whey was added and dried under reduced pressure maintained 80% or more of lipase activity as compared with that before drying.
  • the lipase activity was 5% or less as compared with that before drying.
  • Example 5 it is shown that even if a carbon source or a nitrogen source capable of growing microorganisms at a low concentration is used, the growth of microorganisms is suppressed by using a high-concentration aqueous solution without containing other components necessary for growth.
  • An aqueous solution of sulfur having a final concentration of 20% as a nitrogen source (concentrated nitrogen source) in ultrapure water, ethanol having a final concentration of 50 v / v% and glucose having a final concentration of 5 w / v% as a carbon source are mixed in ultrapure water.
  • the prepared aqueous solution was prepared (concentrated carbon source).
  • a medium in which 2 v / v% ethanol and 0.2 w / v% glucose were mixed with an inorganic salt BS medium was also prepared (comparative example). These aqueous solutions and media were subjected to the experiment without sterilization. A 1/100 amount of Escherichia coli BL21 strain precultured in LB medium was inoculated into a 5 mL concentrated carbon source aqueous solution or medium in a 50 mL tube, and incubated at 28 ° C. for 3 days with shaking.
  • the inorganic salt BS medium those having the composition shown in the table below were used.
  • microorganisms As shown in FIG. 6, the growth of microorganisms was confirmed under the conditions of the comparative example, but the microorganisms could not grow in the concentrated nitrogen source aqueous solution or the concentrated carbon source aqueous solution. Thus, it was shown that microorganisms that can grow in media containing appropriate concentrations of carbon and nitrogen sources, as well as other required media components, cannot grow in concentrated partial media containing only nitrogen or carbon sources. It has also become clear that such concentrated partial media do not need to be sterilized.
  • the present invention solves such a problem by providing a novel method for continuous production of microorganisms and / or a system for the present invention.

Abstract

滅菌の必要なく微生物を連続製造する方法およびシステムを提供することを課題とする。本発明は、滅菌の必要なく、保存状態にある微生物の種菌を増殖させ、連続的に微生物を製造する新規方法およびそのためのシステムを提供する。本発明によれば、一般的な微生物の製造法およびシステムと比較して、雑菌のコンタミネーションの回避のための滅菌の必要性が低減された微生物の新規製造法およびシステムが提供される。

Description

滅菌が不要な微生物の連続製造法およびそのためのシステム
 本発明は、微生物の新規製造法およびそのためのシステムに関する。
 従来より、微生物は有用物質産生、食品製造、水処理、油脂などの特定物質の分解など、幅広い用途で使用されてきた。それらの用途のための微生物の増殖法は、一般的にバッチ培養、流加培養および連続培養の3つに大別されるが、工業規模では、主として1サイクルの培養ごとに培養液を回収するバッチ培養または流加培養によって大量の微生物を含む製剤や製品は製造されており、連続培養による効率的な微生物の大規模製造は困難であり、ほとんど実施されていない。一般に、バッチ培養であれ、流加培養であれ、連続培養であれ、微生物の培養には、目的微生物以外の微生物の混入、雑菌汚染を防ぐため、培地や製造装置の滅菌操作が行われる。特に、連続培養では、混入した微生物やバクテリオファージが、長期間の培養中に増殖してしまうリスクが高いため、滅菌操作は不可欠である。しかし、たとえ滅菌操作を行っても、連続培養の長期運転中に、滅菌しきれなかった耐熱性微生物や混入しやすいバクテリオファージの増殖の可能性があり、そのような雑菌等の増殖が起きた場合の損害の大きさや製造される製品の品質コントロールの困難さから、連続培養は敬遠されてきた。他方、排水処理などに使用される微生物製剤などでは、目的微生物の増殖やその効力に影響がないのならば、多少の雑菌等の混入が許容されることもあろう。しかし、そのような場合でも、雑菌等の混入をできる限り抑える必要があることは、製品の品質管理上、当然であり、培地や製造装置の滅菌操作は可能な限り行われてきた。滅菌操作が困難な場合は、混入した雑菌等が増殖して目的の微生物の増殖や効能に影響が出ないように、短時間のバッチ培養なら、例外的に実施され得る。
 例えば一例として、油脂含有排水の処理のために、種微生物を冷蔵保管し、それを1日1回など定期的に増殖槽に投入して種微生物を増殖して微生物製剤を製造し、そのようにして製造された微生物製剤を油脂含有排水に投入するという微生物自動投入装置が開発されている(特許文献1)が、このような場合に使用される微生物製剤も、一般的にはバッチ培養によって製造されている。
国際公開第2018/207825号
 本発明は、連続的に微生物を大量に増殖させる新規製造方法およびそのためのシステムを提供する。本発明により、従来の方法と比較して滅菌の必要性が低減された微生物の連続増殖方法、すなわち微生物の製造方法が提供され得る。また、本発明の連続製造方法によれば、種菌としての微生物の使用量を節約することができるとともに、効率的に微生物を大量に製造することができる。
 本発明は、以下を提供する。
(項目1)
 20時間以上連続的に、恒温槽に、培地を定流量Y(L/h)で、炭素源を定流量Q(L/h)でそれぞれ供給するとともに、
 前記恒温槽に曝気を施すことにより、前記恒温槽中の培養液中で油脂分解微生物を増殖させて微生物製剤を製造し、
 20時間以上連続的に、前記恒温槽から略一定濃度の微生物を含む前記微生物製剤を定流量F(L/h)で排出し、排出された前記微生物製剤を油脂含有排水に定流量Fで投入すること
を特徴とする、前記油脂含有排水の処理における微生物製剤投入方法。
(項目2)
前記培養液は目的の濃度の培地成分を有し、前記定流量Yで投入される培地は、定流量Y1(L/h)で供給される前記目的の濃度の培地成分の約10倍以上の濃度の培地成分を有する濃縮培地と、定流量Y2(L/h)で前記濃縮培地と別個に供給される水とによって生成され、Y1+Y2=Yであり、
(1)前記濃縮培地と前記水が恒温槽に別々に供給されて、前記恒温槽において前記目的の濃度の培地成分になるか、または
(2)前記濃縮培地と前記水とが、混合槽または供給ラインにおいて混合されて、前記目的濃度の培地成分を有する混合液を生成し、前記混合液が前記恒温槽に連続供給される
ことを特徴とする、項目1に記載の微生物製剤投入方法。
(項目3)
前記恒温槽の培養液の炭素源濃度が常時約0.01w/v%以下となるように、前記炭素源を前記恒温槽に供給することを特徴とする項目1または2に記載の微生物製剤投入方法。
(項目4)
前記恒温槽の培養液温度が20~35℃、溶存酸素濃度が0.1mg/L以上、pHが6.0~8.0になるように恒温槽を運転することを特徴とする項目1~3のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目5)
前記恒温槽から連続的に排出される微生物製剤が、1×10cells/mL以上の前記油脂分解微生物を含むことを特徴とする項目1~4のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目6)
前記恒温槽に毎時供給する培地体積Y(L)が、前記恒温槽内の培養液の体積V(L)の30分の1から2分の1の体積であることを特徴とする項目1~5のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目7)
前記恒温槽に毎時供給する培地体積Y(L)が、前記恒温槽内の培養液の体積V(L)の12分の1から2分の1の体積であることを特徴とする項目6に記載の微生物製剤投入方法。
(項目8)
YとFとが等しいことを特徴とする項目1~7のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目9)
(i)1×10~2×1010cells/mLの油脂分解微生物の種菌の懸濁液を定流量X(L/h)で前記恒温槽に20時間以上連続供給し、ここで、X≦Y/100であり、(X+Y)とFとが等しいことを特徴とするか、または、
(ii)種菌を油脂分解微生物の乾燥菌体として保管し、前記恒温槽に供給される前にk×2×1010cells/mL以上(k≧1)となるように調製された種菌懸濁液を、定流量Z(L/h)で前記恒温槽に20時間以上連続供給し、ここでZ=X/kであり、(Z+Y)とFとが等しいことを特徴とする、
項目1~7のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目10)
前記(i)における種菌は、油脂分解微生物を回分培養したものから培養上清を取り除き、炭素源を含まない新鮮な培地に1×10~2×1010cells/mLになるように再懸濁し、冷蔵したものであることを特徴とする項目9に記載の微生物製剤投入方法。
(項目11)
前記(i)における種菌は油脂分解微生物の乾燥菌体として保管され、前記恒温槽に種菌懸濁液として供給される前に1×10~2×1010cells/mLとなるように液中に懸濁され、こうして調製された種菌懸濁液を前記恒温槽に連続供給することを特徴とする項目9に記載の微生物製剤投入方法。
(項目12)
乾燥菌体として保管された油脂分解微生物の種菌を、前記恒温槽に1×10cells/mL以下の微生物濃度になるように直接、供給することを特徴とする項目1~8のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目13)
前記乾燥菌体の保管が常温で行われる、項目9、11または12に記載の微生物製剤投入方法。
(項目14)
前記乾燥菌体は、ホエイを前記油脂分解微生物と混合し、減圧乾燥する工程により製造された乾燥菌体であることを特徴とする項目9、11~13のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目15)
二つの恒温槽を設け、
(1)前記二つの恒温槽のうちの一方の恒温槽における前記培養液を、所定の条件に従うタイミングで1~7日間ごとに全て排出し、その後、排出した前記培養液の95~99%の容量の培地を前記恒温槽に再供給し、さらに、1×10~1×1010cells/mLの油脂分解微生物の種菌懸濁液を排出培養液の5~1%の容量になるように前記恒温槽に供給し、12~24時間曝気することにより前記恒温槽内の前記油脂分解微生物をいったん増幅する工程を含むか、または
(2)前記二つの恒温槽のうちの一方の恒温槽における前記培養液を、所定の条件に従うタイミングで1~7日間ごとに全て排出し、その後、排出した前記培養液と同量の培地を前記恒温槽に再供給し、さらに、前記恒温槽内の油脂分解微生物濃度が1×10~1×10cells/mLになるように、前記油脂分解微生物の種菌乾燥菌体を供給し、12~24時間曝気することにより前記恒温槽内の前記油脂分解微生物をいったん増幅する工程を含む
ことを特徴とする項目1~14のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目16)
前記油脂分解微生物が細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目1~15のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目17)
前記油脂分解微生物がグラム陰性細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目1~16のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目18)
前記油脂分解微生物がブルクホルデリア属細菌またはヤロウィア属酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目1~17のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目19)
項目1~18のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法を含む、前記油脂含有排水の処理方法。
(項目20)
項目1~18のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法または項目19に記載の処理方法のための、油脂含有排水に油脂分解微生物製剤を供給するシステムであって、
 恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 培地保管槽と、
 前記培地保管槽から培地を定流量Y(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための、第1ポンプを備える培地供給部と、
 炭素源保管槽と、
 炭素源を定流量Q(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための、第2ポンプを備える炭素源供給部と、
 前記恒温槽から微生物製剤を定流量F(L/h)で排出し、前記油脂含有排水へ投入するように構成された排出手段と、
を備える、油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目21)
前記培地供給部は、前記培地保管槽から培地を定流量Y1(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための第1ポンプに加え、水を定流量Y2(L/h)で供給するための水供給システムを備え、さらにY1+Y2=Yであることを特徴とする項目20に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目22)
前記油脂分解微生物の種菌懸濁液を保管するための種菌保管部と、
前記種菌保管部を冷却するための冷却システムと、
前記種菌保管部から定流量X(L/h)で前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ連続供給するように構成された第3ポンプと、
をさらに備えることを特徴とする項目20または21に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目23)
前記油脂分解微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
前記種菌を1×10~2×1010cells/mLになるように種菌懸濁液を調製するための種菌懸濁液調製槽と、
前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記種菌懸濁液調製槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給手段と、
前記種菌懸濁液調製槽から定流量X(L/h)で前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ連続供給するように構成された第4ポンプと、
をさらに備える、項目20または21に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目24)
前記油脂分解微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記恒温槽へ、恒温槽1mLあたり1×10cells以下の種微生物を供給するように構成された乾燥菌体供給手段と、
をさらに備えることを特徴とする項目20または21に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目25)
 前記種菌保管部はブロアを備えないことを特徴とする項目22~24のいずれか一項に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目26)
 油脂分解微生物製剤の製造方法であって、
 油脂分解微生物を回分培養することと、
 前記回分培養した培養液の培養上清を取り除き、増殖した前記油脂分解微生物の湿細胞集塊を得ることと、
 新鮮な培地に前記湿細胞集塊を1×10~2×1010cells/mLになるように再懸濁することと
を含む製造方法。
(項目27)
 前記新鮮な培地が炭素源を含まない無機塩培地である、項目26に記載の方法。
(項目28)
 前記湿細胞集塊を前記新鮮な培地に、1×10~9×10cells/mLになるように再懸濁することを含む、項目26または27に記載の製造方法。
(項目29)
 項目26~28のいずれか記載の製造方法によって製造された油脂分解微生物製剤。
(項目30)
 ホエイを微生物と混合し、減圧乾燥する工程を含む、微生物乾燥製剤の製造方法。
(項目31)
 前記微生物が、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌を含む、項目30に記載の製造方法。
(項目32)
 ホエイを有効成分とする微生物の減圧乾燥用保護剤。
(項目33)
 前記微生物が、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌を含む、項目32に記載の保護剤。
(項目34)
 非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌とホエイとを含む微生物乾燥製剤。
(項目35)
 油脂含有排水の処理における、油脂分解微生物を含む微生物製剤の投入方法であって、ステップ1:貯留槽において貯留されている第1の微生物製剤を連続的に前記油脂含有排水に投入することと、
ステップ2:前記貯留槽において前記第1の微生物製剤の量が閾値まで低減したことを検知した場合に、恒温槽から貯留槽へ第2の微生物製剤を投入することと、
ステップ3:前記恒温槽において前記第2の微生物製剤の量が閾値まで低減したことを検知した場合に、前記恒温槽に、給水を開始することと、
ステップ4:前記恒温槽への給水により水位が閾値まで上昇したことを検知した場合に、前記恒温槽に、一定量の濃縮培地と炭素源と前記油脂分解微生物の種菌とを供給することと、
ステップ5:前記恒温槽において、前記培養液中で前記種菌を増殖させて第3の微生物製剤を製造することと、
の5つのステップを含む工程を包含し、
 さらに前記工程を繰り返すことを特徴とし、前工程の第2の微生物製剤および第3の微生物製剤はそれぞれ次工程の前記第1の微生物製剤および第2の微生物製剤となり、
 前記第1の微生物製剤、前記第2の微生物製剤および前記第3の微生物製剤はいずれも前記油脂分解微生物を含む、微生物製剤投入方法。
(項目36)前記ステップ3とステップ4の間に、以下のステップ3-1および/あるいはステップ3-2を含む項目35に記載の微生物製剤投入方法:
ステップ3-1:所定量前記恒温槽に給水されたことを検知後、再び排水し、水位が閾値まで低減したことを検知して再給水し、この排水と給水を任意の回数繰り返すことにより、恒温槽内を洗浄すること;
ステップ3-2:前記恒温槽内の水に、一定時間の曝気を行って脱塩素すること。
(項目37)
前記第1の微生物製剤、前記第2の微生物製剤および前記第3の微生物製剤はそれぞれ、1×10cells/mL以上の前記油脂分解微生物を含む、項目35または36に記載の微生物製剤投入方法。
(項目38)
前記恒温槽から排出される微生物製剤における炭素源濃度が約0.01w/v%以下となるように、前記炭素源を前記恒温槽に供給することを特徴とする項目35~37のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目39)
前記恒温槽の培養液温度が20~35℃、溶存酸素濃度が0.1mg/L以上、pHが6.0~8.0になるように恒温槽を運転することを特徴とする項目35~38のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目40)
前記種菌は、油脂分解微生物を回分培養したものから培養上清を取り除き、炭素源を含まない新鮮な培地に1×10~2×1010cells/mLになるように再懸濁し、冷蔵したものであることを特徴とする項目35~39のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目41)
前記種菌は油脂分解微生物の乾燥菌体として保管され、前記恒温槽に種菌懸濁液として供給される前に1×10~2×1010cells/mLとなるように液中に懸濁され、こうして調製された種菌懸濁液を前記恒温槽に供給することを特徴とする項目35~39のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目42)
乾燥菌体として保管された油脂分解微生物の種菌を、前記恒温槽に1×10cells/mL以下の微生物濃度になるように直接、供給することを特徴とする項目35~39のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目43)
前記乾燥菌体の保管が常温で行われる、項目41または42に記載の微生物製剤投入方法。
(項目44)
前記乾燥菌体は、ホエイを前記油脂分解微生物と混合し、減圧乾燥する工程により製造された乾燥菌体であることを特徴とする項目41~43のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目45)
 前記貯留槽および/または恒温槽における微生物製剤の量を、水位計または液面センサーによって検知することを特徴とする項目35~44のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目46)
前記油脂分解微生物が細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目35~45のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目47)
前記油脂分解微生物がグラム陰性細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目35~46のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目48)
前記油脂分解微生物がブルクホルデリア属細菌またはヤロウィア属酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目35~47のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法。
(項目49)
項目35~48のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法を含む、前記油脂含有排水の処理方法。
(項目50)
項目35~48のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法または項目49に記載の処理方法のための、油脂含有排水に油脂分解微生物製剤を供給するシステムであって、
 槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 前記恒温槽で製造された微生物製剤を貯蔵しながら前記油脂含有排水に前記微生物製剤を連続的に供給するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
 培地保管槽と、
 下記の(1)および(2)を備える培地供給部と、
  (1)前記培地保管槽から濃縮培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプ、
  (2)前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段、
 炭素源保管槽と、
 前記炭素源保管槽から炭素源を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプを備える炭素源供給部と、
 前記貯留槽から微生物製剤を連続的に排出し、前記油脂含有排水へ投入するように構成された第1排出手段と、
 前記恒温槽から微生物製剤を前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
 前記油脂分解微生物の種菌懸濁液を保管するための種菌保管部と、
 前記種菌保管部を冷却するための冷却システムと、
 前記種菌保管部から前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ供給するように構成された、第3の制御手段および第3ポンプと、
を備え、
 前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第3の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする、油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目51)
 前記種菌保管部はブロアを備えないことを特徴とする項目50に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目52)
項目35~48のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法または項目49に記載の処理方法のための、油脂含有排水に油脂分解微生物製剤を供給するシステムであって、
 槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 前記恒温槽で製造された微生物製剤を貯蔵しながら前記油脂含有排水に前記微生物製剤を連続的に供給するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
 培地保管槽と、
 下記の(1)および(2)を備える培地供給部と、
(1)前記培地保管槽から濃縮培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプ、
(2)前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段、
 炭素源保管槽と、
 前記炭素源保管槽から炭素源を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプを備える炭素源供給部と、
 前記貯留槽から微生物製剤を連続的に排出し、前記油脂含有排水へ投入するように構成された第1排出手段と、
 前記恒温槽から微生物製剤を前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
 前記油脂分解微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
 前記種菌を1×10~2×1010cells/mLになるように種菌懸濁液を調製するための種菌懸濁液調製槽給水制御手段を備える種菌懸濁液調製槽と、
 制御されたタイミングで前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記種菌懸濁液調製槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給制御手段と、
 前記種菌懸濁液調製槽から前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ供給するように構成された、第4の制御手段および第4ポンプと、
をさらに備え、
 前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第4の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目53)
項目35~48のいずれか一項に記載の微生物製剤投入方法または項目49に記載の処理方法のための、油脂含有排水に油脂分解微生物製剤を供給するシステムであって、
 槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 前記恒温槽で製造された微生物製剤を貯蔵しながら前記油脂含有排水に前記微生物製剤を連続的に供給するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
 培地保管槽と、
 下記の(1)および(2)を備える培地供給部と、
(1)前記培地保管槽から濃縮培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプ、
(2)前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段、
 炭素源保管槽と、
 前記炭素源保管槽から炭素源を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプを備える炭素源供給部と、
 前記貯留槽から微生物製剤を連続的に排出し、前記油脂含有排水へ投入するように構成された第1排出手段と、
 前記恒温槽から微生物製剤を前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
 前記油脂分解微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
 前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記恒温槽へ、恒温槽1mLあたり1×10cells以下の種菌を供給するように構成された、第5の制御手段および乾燥菌体供給手段と、
をさらに備え、
 前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第5の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目54)
 前記貯留槽が、断熱材、遮熱塗装、および/または加熱・冷却機能を備える、項目50~53のいずれか一項に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目55)
さらに貯留槽の内容物を攪拌するための、ブロアまたは機械的攪拌手段を備える、項目50~54のいずれか一項に記載の油脂分解微生物製剤供給システム。
(項目A1)
 微生物製剤の製造方法であって、
 微生物を回分培養することと、
 前記回分培養した培養液の培養上清を取り除き、増殖した前記微生物の湿細胞集塊を得ることと、
 新鮮な培地に前記湿細胞集塊を1×10~2×1010cells/mLになるように再懸濁することと
を含む製造方法。
(項目A2)
 前記新鮮な培地が炭素源を含まない無機塩培地である、項目A1に記載の製造方法。
(項目A3)
 前記湿細胞集塊を前記新鮮な培地に、1×10~9×10cells/mLになるように再懸濁することを含む、項目A1またはA2に記載の製造方法。
(項目A4)
 項目A1~A3のいずれか記載の製造方法によって製造された微生物製剤。
(項目A5)
 ホエイを微生物と混合し、減圧乾燥する工程を含む、微生物乾燥製剤の製造方法。
(項目A6)
 前記微生物が、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌を含む、項目A5に記載の製造方法。
(項目A7)
 ホエイを有効成分とする微生物の減圧乾燥用保護剤。
(項目A8)
 前記微生物が、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌を含む、項目A7に記載の保護剤。
(項目A9)
 非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌とホエイとを含む微生物乾燥製剤。
(項目B1)
20時間以上連続的に、恒温槽に、第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を定流量Y1(L/h)で、第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を流量Q(L/h)で、水を定流量Y2(L/h)で、それぞれ別個に恒温槽に供給、または混合槽または供給ラインで混合後に恒温槽に供給するとともに、
前記恒温槽に曝気を施すことにより、前記恒温槽中の培養液中で、炭素源を資化して増殖し得る微生物を増殖させて微生物培養液を20時間以上連続的に連続製造し、
20時間以上連続的に、前記恒温槽から略一定濃度の微生物を含む前記微生物培養液を定流量F(L/h)で排出すること
を含む微生物連続製造方法であって、前記第1の濃縮部分培地に含まれる第1の培地成分、前記第2の濃縮部分培地に含まれる第2の培地成分および水によって、前記微生物に必要な培地が形成されることを特徴とする、製造方法。
(項目B2)
前記恒温槽から毎時排出する前記微生物培養液の体積F(L)が、前記恒温槽内の培養液の体積V(L)の30分の1から2分の1の体積であることを特徴とする項目B1に記載の製造方法。
(項目B3)
前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地は炭素源を含み、前記恒温槽中の培養液の炭素源濃度が常時約0.01w/v%以下となるように、前記炭素源を含む濃縮部分培地を前記恒温槽に供給することを特徴とする項目B1または2に記載の製造方法。
(項目B4)
前記第2の濃縮部分培地以外の前記恒温槽に供給される流体の流量と、前記恒温槽から排出される前記培養液の流量とが等しいことを特徴とする、項目B1~3のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B5)
微生物の種菌の懸濁液を定流量X(L/h)で前記恒温槽に20時間以上連続供給することを特徴とする、項目B1~4のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B6)
項目B1~5のいずれか一項に記載の製造方法であって、前記方法は二つの恒温槽を設けることによって実施され、
前記20時間以上連続的な連続製造の前または後に、
前記二つの恒温槽のうちの一方の恒温槽における前記培養液を、所定の条件に従うタイミングで1~30日間ごとに全て排出し、その後、第1の濃縮部分培地および第2の濃縮部分培地と水を前記恒温槽に再供給し、さらに、前記微生物の種菌を前記恒温槽に供給して一定時間曝気することを含む、製造方法。
(項目B7)前記恒温槽内の前記培養液の排出後、前記微生物の種菌を供給する前に次のどちらか又は両方の工程を行う、項目B6に記載の製造方法:
(1)濃縮部分培地供給前に給水と排水を1回以上行い、恒温槽を洗浄する操作;
(2)給水後にばっ気をしばらく行い、水中の塩素を抜く操作。
(項目B8)
微生物を増殖させて略一定濃度の微生物培養液を20時間以上連続的に略一定流量で連続製造する、微生物連続製造方法であって、
ステップ1:貯留槽において貯留されている第1の微生物含有培養液を連続的に排出することと、
ステップ2:前記貯留槽において前記第1の微生物含有培養液の量が閾値まで低減したことを検知した場合に、恒温槽から貯留槽へ第2の微生物含有培養液を投入することと、
ステップ3:前記恒温槽において前記第2の微生物含有培養液の量が閾値まで低減したことを検知した場合に、前記恒温槽に、給水を開始することと、
ステップ4:前記恒温槽への給水により水位が閾値まで上昇したことを検知した場合に、前記恒温槽に、第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を、第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を、そして種菌保管槽から前記微生物の種菌とを供給することと、
ステップ5:前記恒温槽において、前記培地中で前記種菌を増殖させて第3の微生物含有培養液を製造することと、
の5つのステップを含む工程を包含し、
 さらに前記工程を繰り返すことを特徴とし、前工程の第2の微生物含有培養液および第3の微生物含有培養液はそれぞれ次工程の前記第1の微生物含有培養液および第2の微生物含有培養液となり、
 前記第1の微生物含有培養液、前記第2の微生物含有培養液および前記第3の微生物含有培養液はいずれも前記微生物を含む、製造方法。
(項目B9)
前記ステップ3とステップ4の間に、以下のステップ3-1および/あるいはステップ3-2を含む項目B8に記載の製造方法:
ステップ3-1:所定量前記恒温槽に給水されたことを検知後、再び排水し、水位が閾値まで低減したことを検知して再給水し、この排水と給水を任意の回数繰り返すことにより、恒温槽内を洗浄すること;
ステップ3-2:前記恒温槽内の水に、一定時間の曝気を行って脱塩素すること。
(項目B10)
前記貯留槽および/または恒温槽における培養液の量を、水位計または液面センサーによって検知することを特徴とする項目B8または9に記載の製造方法。
(項目B11)
前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地のいずれか一方が窒素源を含み、他方が炭素源を含む、項目B1~10のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B12)
前記窒素源が10w/v%以上の濃度で前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地のいずれかにおいて存在する、項目B11に記載の製造方法。
(項目B13)
前記炭素源が40w/v%以上の濃度で前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地のいずれかにおいて存在する、項目B11または12に記載の製造方法。
(項目B14)
前記恒温槽から排出される培養液の炭素源濃度が常時約0.01w/v%以下となるように、前記炭素源を含む濃縮部分培地を前記恒温槽に供給することを特徴とする項目B11~13のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B15)
1)前記連続製造に使用する前記第1の濃縮部分培地、前記第2の濃縮部分培地、水の滅菌を行わないこと、および
2)前記20時間以上の前記連続製造の前後24時間以内には、前記第1の培地保管槽、前記第2の培地保管槽、および前記恒温槽の滅菌を行わないこと、
を特徴とする項目B1~14のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B16)
前記20時間以上の前記連続製造の前後72時間以内には、前記第1の培地保管槽、前記第2の培地保管槽、および前記恒温槽の滅菌を行わないことを特徴とする、項目B15に記載の製造方法。
(項目B17)
前記20時間以上の前記連続製造の前後24時間以内には、前記貯留槽の滅菌を行わないことを特徴とする、項目B8~10、または項目B8~10のいずれかに従属する項目B11~16のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B18)
前記恒温槽の培養液温度が18~55℃、溶存酸素濃度が0.1mg/L以上、pHが6.0~8.0になるように恒温槽を運転することを特徴とする項目B1~17のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B19)
前記恒温槽から排出される培養液が、1×10cells/mL以上の前記微生物を含むことを特徴とする項目B1~18のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B20)
前記微生物が細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目B1~19のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B21)
前記微生物がグラム陰性細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする項目B1~20のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B22)
前記種菌は、前記微生物を回分培養したものから培養上清を取り除き、炭素源を含まない流体に1×10~2×1010cells/mLとなるように再懸濁し、冷蔵したものであることを特徴とする、項目B5~10、または項目B5~10のいずれかに従属する項目B11~21に記載の製造方法。
(項目B23)
前記種菌は、前記微生物を回分培養したものを、炭素源を含まない流体で10倍に希釈して、1×10~2×1010cells/mLとなるように調製後、冷蔵したものであることを特徴とする、項目B5~10、または項目B5~10のいずれかに従属する項目B11~21に記載の製造方法。
(項目B24)
前記種菌は前記微生物の乾燥菌体として保管され、前記恒温槽に種菌懸濁液として供給される前に1×10cells/mL以上となるように液中に懸濁され、こうして調製された種菌懸濁液を前記恒温槽に供給することを特徴とする項目B5~10、または項目B5~10のいずれかに従属する項目B11~21に記載の製造方法。
(項目B25)
乾燥菌体として保管された前記微生物の種菌を、前記恒温槽に直接供給することを特徴とする項目B1~4または6~10、あるいは項目B1~4または6~10のいずれかに従属する項目B11~21のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B26)
前記乾燥菌体の保管が常温で行われる、項目B24または25に記載の製造方法。
(項目B27)
前記乾燥菌体は、ホエイを前記微生物と混合し、減圧乾燥する工程により製造された乾燥菌体であることを特徴とする項目B24~26のいずれか一項に記載の製造方法。
(項目B28)
 恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 第1の培地保管槽と、
 前記第1の培地保管槽から前記第1の濃縮部分培地を定流量Y1(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための第1ポンプと、
 第2の培地保管槽と、
 前記第2の培地保管槽から前記第2の濃縮部分培地を流量Q(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための、第2ポンプと、
 水を定流量Y2(L/h)で供給するための水供給システムと、
 前記恒温槽から微生物培養液を定流量F(L/h)で排出するように構成された排出手段と、
を備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システム。
(項目B29)
前記微生物の種菌懸濁液を保管するための種菌保管部と、
前記種菌保管部を冷却するための冷却システムと、
前記種菌保管部から定流量X(L/h)で前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ連続供給するように構成された第3ポンプと、
をさらに備える、項目B28に記載のシステム。
(項目B30)
前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
前記種菌から種菌懸濁液を調製するための種菌懸濁液調製槽給水制御手段を備える種菌懸濁液調製槽と、
前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記種菌懸濁液調製槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給手段と、
前記種菌懸濁液調製槽から定流量X(L/h)で前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ連続供給するように構成された第4ポンプと、
をさらに備える、項目B28に記載のシステム。
(項目B31)
前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記恒温槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給手段と、
をさらに備えることを特徴とする項目B28に記載のシステム。
(項目B32)
前記種菌保管部はブロアを備えないことを特徴とする項目B29~31のいずれか一項に記載のシステム。
(項目B33)
項目B1~7、または項目B1~7のいずれかに従属する項目B11~16または18~27のいずれか一項に記載の製造方法における使用のための、項目B28~32のいずれか一項に記載のシステム。
(項目B34)
 槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 前記恒温槽で製造された微生物を貯蔵しながら前記微生物を連続的に排出するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
 第1の培地保管槽と、
 前記第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプと、
 第2の培地保管槽と、
 前記第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプと、
 前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段と、
 前記貯留槽から微生物を連続的に排出するように構成された第1排出手段と、
 前記恒温槽から微生物を、前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
 前記微生物の種菌懸濁液を保管するための種菌保管部と、
 前記種菌保管部を冷却するための冷却システムと、
 前記種菌保管部から前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ供給するように構成された、第3の制御手段および第3ポンプと、
を備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システムであって、
 前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第3の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする、システム。
(項目B35)
 槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 前記恒温槽で製造された微生物を貯蔵しながら前記微生物を連続的に排出するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
 第1の培地保管槽と、
 前記第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプと、
 第2の培地保管槽と、
 前記第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプと、
 前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段と、
 前記貯留槽から微生物を連続的に排出するように構成された第1排出手段と、
 前記恒温槽から微生物を、前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
 前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
 前記種菌から種菌懸濁液を調製するための種菌懸濁液調製槽給水制御手段を備える種菌懸濁液調製槽と、
 制御されたタイミングで前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記種菌懸濁液調製槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給制御手段と、
 前記種菌懸濁液調製槽から前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ供給するように構成された、第4の制御手段および第4ポンプと、
を備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システムであって、
 前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第4の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とするシステム。
(項目B36)
 槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
 前記恒温槽を曝気するブロアと、
 前記恒温槽で製造された微生物を貯蔵しながら前記微生物を連続的に排出するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
 第1の培地保管槽と、
 前記第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプと、
 第2の培地保管槽と、
 前記第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプと、
 前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段と、
 前記貯留槽から微生物を連続的に排出するように構成された第1排出手段と、
 前記恒温槽から微生物を、前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
 前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
 前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記恒温槽へ供給するように構成された、第5の制御手段および乾燥菌体供給手段と、
をさらに備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システムであって、
 前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第5の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする、システム。
(項目B37)
前記種菌保管部はブロアを備えないことを特徴とする項目B34~36のいずれか一項に記載のシステム。
(項目B38)
前記貯留槽が、断熱材、遮熱塗装、および/または加熱・冷却機能を備える、項目B34~37のいずれか一項に記載のシステム。
(項目B39)
さらに貯留槽の内容物を攪拌するための、ブロアまたは機械的攪拌手段を備える、項目B34~38のいずれか一項に記載のシステム。
(項目B40)
項目B8~10、または項目B8~10のいずれかに従属する項目B11~27のいずれか一項に記載の製造方法における使用のための、項目B34~39のいずれか一項に記載のシステム。
 本発明によれば、一般的な微生物の増殖法およびそのためのシステムと比較して、雑菌のコンタミネーションの回避のための滅菌の必要性が低減された、微生物の新規連続製造法およびシステムが提供され得る。
 本発明によればまた、種菌としての微生物の使用量を節約しながら、効率的かつ連続的に、微生物を製造する方法およびそのためのシステムが提供され得る。
図1は、本発明の実施形態1の微生物自動増幅連続投入法およびシステムの概要を示す図である。 図2は、本発明の種菌懸濁液(本願発明、サンプルNo.3)と、集菌工程および再懸濁工程を省いて培養液をそのまま保存した培養液(比較例、サンプルNo.4)との、生菌数の推移を示すグラフである。 図3は、種菌懸濁液の初期濃度と生存率との関係を示すグラフである。 図4は、集菌工程および再懸濁工程を経て得られた本発明の種菌懸濁液(サンプルNo.3)と、集菌工程および再懸濁工程を省いて培養液をそのまま保存した培養液(サンプルNo.4)と、培養液を無機塩培地で10倍希釈により10cells/mLオーダーにした後に保存した培養液(サンプルNo.5)についての、生菌数の推移を示すグラフである。 図5は、種々の乾燥処理によって得られた乾燥製剤について、乾燥処理前の製剤に対する乾燥処理後の製剤のリパーゼ活性維持率(%)を示したグラフである。 図6は、純水に窒素源として20%の硫安を溶解させた水溶液、純水に炭素源として終濃度50v/v%のエタノールと5w/v%のグルコースを混合溶解させた水溶液、または無機塩BS培地に炭素源として終濃度2v/v%のエタノールと0.2w/v%のグルコースを混合した培地における、大腸菌の増殖結果を示す。 図7は、本発明の実施形態2の微生物自動増幅連続投入法およびシステムの概要を示す図である。
 以下、本発明について詳細に説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。従って、単数形の冠詞(例えば、英語の場合は「a」、「an」、「the」など)は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用されるすべての専門用語および科学技術用語は、本発明の属する分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。矛盾する場合、本明細書(定義を含めて)が優先する。
 1.定義
 以下、本明細書において特に使用される用語の定義および/または基本的技術内容を適宜説明する。
 本明細書において「含む(comprise)」とは、「本質的にからなる(essentially consist of)」という意味と、「からなる(consist of)」という意味をも包含する。
 本明細書において、「約」は後に続く数値の±10%を意味する。
 本明細書において、流量や濃度などが「略」一定とは、その流量や濃度の数値の変動が±10%の範囲内に収まることを意味する。
 本明細書において、「連続的」または「連続」とは、この用語で特定される事項が絶えずなされている場合だけを意味するものではなく、その事項が一旦停止する期間を有する場合をも包含する。本発明の「連続的」または「連続」とは、所定の時間(例えば、少なくとも1時間、少なくとも5時間、少なくとも10時間、または少なくとも20時間等)の50%を超える時間において、特定された事項がなされていることをいう。代表的な実施形態においては、本発明の「連続的」または「連続」は、所定の時間(例えば、少なくとも1時間、少なくとも5時間、少なくとも10時間、または少なくとも20時間等)の約60%以上の時間において、特定された事項がなされていることをいい、より典型的には、所定の時間(例えば、少なくとも1時間、少なくとも5時間、少なくとも10時間、または少なくとも20時間等)の約70%以上の時間において、特定された事項がなされていることをいう。本発明の「連続的」は、所定の間隔ごとに間欠的に特定された事項がなされる態様は包含しないことに留意されたい。
 本発明において、「間欠的」とは、所定の時間ごとに1度(例えば、1時間以上ごとに1度、5時間以上ごとに1度、12時間以上ごとに1度、24時間以上ごとに1度)特定された事項がなされることをいう。この所定の時間は、特定された事項がなされる時間となされない時間とを合わせた時間であり、「間欠的」な場合においては、所定の時間において特定された事項がなされる時間は20%以下である。典型的には、「間欠的」とは、所定の時間において特定された事項がなされる時間が10%以下の場合を指し得る。
 本明細書中における「乾燥」とは、水分量が結合水を除いて5%以下、好ましくは3%以下であることをいう。
 本明細書における「電磁バルブ」とは、「電磁弁」や「ソレノイドバルブ」とも同義であり、電気エネルギーを機械的エネルギーに変換するソレノイド部と、ソレノイド部において変換された機械的エネルギーによって流路の開閉を行う弁体とを含む任意の機構を包含する。
 本明細書において、「微生物の製造」とは、新たな微生物を創り出すことを意味するのではなく、ある微生物を増殖させ、大量の微生物を新たに製造することをいう。
 本明細書において、「第1の培地成分と第2の培地成分と水とによって、微生物の増殖のための培地が形成される」とは、当該微生物の増殖を可能にする培地として第1の培地成分と第2の培地成分とが少なくとも必要であることを意味し、さらなる培地成分を別途含み得る。
 本明細書中でいう「滅菌」は、「殺菌」も含むものであり、培地に含まれていたり製造装置に付着している微生物やウイルスを99%以上、好ましくは99.9%以上殺す又は不活化するための任意の処理をいう。典型的には、滅菌処理後には、植菌や新たな雑菌の混入がない限り、短期間(例えば24時間以内、好ましくは48時間以内、より好ましくは72時間以内)では微生物等が増殖してくることはない。微生物の増殖の確認は、目視による培地の透明度、菌体光学密度の測定、コロニー計数、リアルタイムPCR等、当該分野で一般的に行われている手法を用いることができる。滅菌処理方法としては、培地や炭素源については典型的にはオートクレーブ滅菌やフィルター滅菌であり、槽やラインなどの設備については蒸気滅菌、乾熱滅菌、エチレンオキサイド、ホルムアルデヒドガス、過酸化水素ガスなどを用いるガス滅菌、放射線や電子線照射による滅菌、高圧滅菌などが挙げられるが、これらに限定されない。生物工学や生物化学工学等の教科書に記載されている方法も含まれる。
 本明細書中でいう「コンタミネーション」または「汚染」は互換可能に使用され、本発明において製造が意図される微生物以外の任意の微生物(酵母、細菌、ウイルス等)が混入することをいう。
 本発明の製造法によって製造される微生物は、有用物質の産生、食品の製造、有機性の排水や廃棄物などの任意の対象の処理に使用され得る。本発明によって増殖する対象となる微生物は、炭素源を資化して増殖し得る任意の微生物であり、その微生物に応じて製造される微生物の用途は変わり得る。本発明によって製造される微生物が、排水や廃棄物の処理に使用される場合には、処理する対象としては、油脂、鉱物油、有機塩素化合物、炭化水素、芳香族、有機酸、アルデヒド類、アミン類、悪臭物質、ダイオキシン、PCB、農薬類、有機溶媒、重金属、ヒ素などが挙げられるが、これらに限定されない。本発明における1つの実施形態においては、本発明の微生物は油脂分解微生物であり、処理の対象は油脂含有排水であり得る。
 2.恒温槽における連続的な微生物の製造(実施形態1)
 本発明は、恒温槽に連続的に第1の濃縮部分培地、第2の濃縮部分培地、水、および必要に応じて種菌を供給し、恒温槽の中の培養液中で微生物を略一定速度で増殖させて所望の濃度の微生物を連続製造し、そして定流量で恒温槽から略一定濃度の微生物を含む微生物を排出することにより目的微生物を得ることを特徴とする。第1の濃縮部分培地は第1の培地成分を含み、第2の濃縮部分培地は第2の培地成分を含み、この第1の培地成分と第2の培地成分と水とによって、微生物の増殖のための培地が形成される(ここで、培地はさらに第3の濃縮部分培地に由来する第3の培地成分も含み得る)。このように、連続的な微生物の製造において、微生物の増殖のために必須な少なくとも2つの成分を別個に恒温槽に供給することが、本願発明の特徴の1つである。本願発明の連続的な微生物の製造法は、一般的なバッチ処理による製造法と比較すると、連続的なので生産性が高い。しかしながら、従来の微生物の連続増殖法は、製造中の雑菌汚染やバクテリオファージの繁殖などのコンタミネーションリスクが高い。そのために当然、微生物の連続製造のための設備は、滅菌処理およびそのための設備を必要とした。また、たとえ滅菌処理をしたとしても、微生物の長期にわたる連続製造では雑菌やファージによる汚染を完全に防ぐのは難しい(例えば残存した耐熱性菌の増殖や予期せぬ雑菌の混入などもあり得る)ので、実際の微生物の生産現場で連続製造法を適用している例は少なく、バッチ生産が主流である。
 そこで、本発明においては、第1の濃縮部分培地と第2の濃縮部分培地の保管容器(および必要に応じて供給ライン)を分けることを企図した。このように構成することにより、第1の濃縮部分培地には微生物の増殖に必要な第2の培地成分がなく、そして第2の濃縮部分培地には微生物の増殖に必要な第1の培地成分がないため、連続運転中、それぞれの保管容器内やその供給ラインでの雑菌やバクテリオファージの増殖を抑制することができる。また、恒温槽においては窒素源と炭素源が混合し、微生物が増殖可能な培地が構成されるが、恒温槽における炭素源の濃度を低く設定することにより、目的微生物以外の雑菌の増殖を抑えることができる。このことにより、微生物の製造設備において、および微生物の製造方法において、従来の方法および設備と比較して滅菌のための設備および操作の必要性が低減され、その結果、滅菌に関するコストをなくす又は大幅に低減することができる。これは、微生物の連続製造において画期的な進歩である。滅菌のための設備および操作の必要性が従来と比較して低減されることによって、製造設備の簡略化およびコンパクト化を達成できる。製造設備の簡略化およびコンパクト化によって、微生物製造における設備投資や維持コストが画期的に下がるほか、製造設備の設置場所の選択肢が大きく拡がり、それによって排水や廃棄物処理場内への設置およびオンサイトでの微生物の連続製造が可能になる。もちろん、滅菌工程にかかるエネルギー、時間、労力が不要または大幅削減となるため、微生物製造における生産コストの飛躍的削減が可能となる。
 このように本発明は滅菌を必要としないため、好ましい実施形態において、本発明の製造方法は、微生物の連続製造に使用する第1の濃縮部分培地、第2の濃縮部分培地及び前記濃縮部分培地を希釈するために供給する水の滅菌を行わないことを特徴とする。好ましい実施形態において、本発明の製造方法は、20時間以上の連続製造の前後24時間以内には、36時間以内には、48時間以内には、または72時間以内には、第1の培地保管槽、第2の培地保管槽、および恒温槽の滅菌を行わないことを特徴とする。微生物の製造においては、一般的に製造のための培養の24時間以内にこれらの設備の滅菌を行うのが通常であることに鑑みると、本発明においてそのようなタイミングで滅菌を必要としないことは大きな利点である。
 好ましい実施形態において、第1又は第2の培地成分のどちらか一方は窒素源を含み、他方は炭素源を含む。窒素源と炭素源とを分けて保管および供給することによって、微生物の増殖を顕著に低減することができる。それによって、滅菌の必要性が低減される。1つの実施形態において、窒素源を含む濃縮部分培地は、窒素源を約10w/v%以上の濃度で、約15w/v%以上の濃度で、好ましくは約20w/v%以上の濃度で、より好ましくは約30w/v%以上の濃度で、さらに好ましくは約40w/v%以上の濃度で、さらにもっと好ましくは約50w/v%以上の濃度で、含み得る。1つの実施形態において、炭素源を含む濃縮部分培地は、炭素源を約40w/v%以上の濃度で、より好ましくは約50w/v%以上の濃度で、さらに好ましくは約60w/v%以上の濃度で含み得る。このように窒素源および/または炭素源をそれぞれの濃縮培地において一定濃度以上の高濃度で存在させることによって、高浸透圧や高塩濃度、基質毒性、高または低pHなどが原因となり、微生物の増殖を低減することができ、滅菌の必要性低減に寄与し得る。典型的には、窒素源を含む濃縮部分培地は炭素源を含まず、炭素源を含む濃縮部分培地は窒素源を含まない。
 好ましい実施形態において、実施形態1においては、恒温槽において微生物を略一定速度で増殖させることを特徴としている。また、恒温槽から排出される培養液の微生物濃度が、連続生産中、一定であることを特徴としている。そのためには、普通、恒温槽に供給される流体の流量と、恒温槽から排出される流体の流量を等しくする必要がある。しかし、少なくとも2つの濃縮部分培地のうちの一方の濃度を非常に高くし(50w/v%以上、好ましくは60w/v%以上、より好ましくは70w/v%以上、さらに好ましくは80w/v%以上、さらにもっと好ましくは90w/v%以上、最も好ましくは100%)、供給流量(典型的には、第2の濃縮部分培地の毎時供給する培地体積(Q))を適切に調節すれば、恒温槽からの培養液の排出流量Fを第1の濃縮部分培地の毎時供給する培地体積Y1と、水を毎時供給する体積Y2との和(Y)とほぼ同じにすることで、このことが達成可能であることを本発明者は見出した。なお、例えば特許文献1のようなバッチ培養の場合には、略一定速度の増殖にも、略一定濃度の微生物を含む培養液の排出にもならない。
 好ましい実施形態において、実施形態1においては、排出流量Fを恒温槽体積Vの30分の1から2分の1とすること、より好ましくは12分の1から2分の1にすることを特徴とする。これにより滞留時間を適切に設定でき、雑菌の増殖の可能性を低減することができる。具体的には、滞留時間を連続製造時間と同じにした場合、該連続製造時間に合致するタイミングで恒温槽内の培養液が新鮮な培養液に入れ替わることになる。滞留時間を連続製造時間の半分の時間とした場合、連続製造中に恒温槽内の培養液は2回新鮮な培養液に入れ替わることになる。培養液の入れ替わりにより、混入した雑菌は、恒温槽内で増殖するよりも恒温槽から排除されやすくなる。他方、恒温槽内の微生物の滞留時間は、恒温槽から排出される培養液中の目的微生物の濃度が減少せずに略一定濃度を維持できるような時間であり得る。連続系での培養の場合、滞留時間内に増殖した微生物が常に恒温槽内に存在するため、投入した微生物が一定程度まで増殖する時間待たなければならないバッチ式での培養と比較して、滞留時間を短くすることができる。滞留時間を短くすることで、新たに混入した雑菌が増殖する前に、混入雑菌を恒温槽内から排除しつつ、恒温槽内に常に存在している目的微生物については、一定濃度で維持することが可能である。
 また、従来の例えば24時間ごとなどに微生物を回分培養で増殖させる微生物製造方法と比較して、本発明においては、微生物の滞留時間に応じて微生物増殖用の恒温槽の体積を低減することができる。例えば、24時間ごとなどに微生物を回分培養で増殖させる方法と比較して、微生物の滞留時間が12時間の場合には、恒温槽の体積を1/2とすることができる。回分培養で恒温槽における微生物増殖を行う系では12時間の滞留時間は困難なことがあるが、本発明のような連続系であれば可能である。
 このようにして恒温槽の体積を小さくすることにより、恒温槽の設置条件をより柔軟に検討することができるようになり、狭い工場敷地内においても設置が可能になる。また、製造した微生物の使用場所(例えば、処理対象である排水や廃棄物の処理槽)の近くに恒温槽を配置することによって処理のためのシステム全体をコンパクトにすることができる。
 (種菌)
 本実施形態においては、恒温槽に所定の濃度(例えば、1×10~1×1012cells/mL、好ましくは1×10~2×1010cells/mL)の微生物の種菌の懸濁液を定流量X(L/h)で添加してもよい。その場合、好ましい実施形態では、定流量Xと培地流量Yとの和を、恒温槽から排出される定流量Fと等しくすることを特徴とする。
 本実施形態において、種菌は、種菌保管部に懸濁液の形態で保管されていてもよいし、乾燥菌体として種菌保管部に保管されていてもよい。乾燥菌体の製造方法については、後に詳述する。1つの実施形態においては、種菌を微生物の乾燥菌体として保管し、前記恒温槽に供給される前に種菌懸濁液とする。この種菌懸濁液は、所定の濃度(例えば、1×10~2×1010cells/mL)となるように液中に懸濁され、前記の通り定流量X(L/h)で前記恒温槽に20時間以上連続供給するか、k×2×1010cells/mL以上(k≧1)となるように調製され、この種菌懸濁液を定流量Z(L/h)で前記恒温槽に20時間以上連続供給する。ここで、定流量Xと、Zとの関係は、Z=X/kである。その場合、好ましい実施形態では、(Z+Y)と、恒温槽から排出される定流量Fとが等しいことを特徴とする。本発明の別の実施形態においては、前記恒温槽に、乾燥菌体を1×10cells/mL以下の微生物濃度となるように直接、供給する。微生物の恒温槽への供給は、意図した濃度になれば連続的であっても間欠的であってもよい。
 1つの実施形態において、本発明の種菌は、微生物を培養(典型的には、回分培養)したものから培養上清を取り除き、無機塩培地や緩衝液、水等の炭素源を含まない任意の流体に所定の濃度(例えば、1×10~1×1012cells/mL、好ましくは1×10~2×1010cells/mL)になるように再懸濁し、冷蔵したものであり得る。本発明の種菌は、好ましくは、1×10~9×10cells/mL、より好ましくは1×10~2×10cells/mLになるように再懸濁されたものであり得る。また、好ましくは、流体としては炭素源を含まない新鮮な無機塩培地を用いる。本発明の別の実施形態においては、本発明の種菌は、微生物を培養したものを無機塩培地や緩衝液、水等の炭素源を含まない任意の流体で10倍に希釈したものを冷蔵したものであり得る。希釈するための流体としては、好ましくは、炭素源を含まない無機塩培地であり得る。
 当該分野においては、種菌は培養液中でそのまま保管することが一般的であり、その状態で生存率を保つためには曝気が必要であり得る。しかしながら、上記のような、微生物を回分培養したものから培養上清を取り除き、炭素源を含まない流体(例えば、新鮮な培地)に再懸濁し、冷蔵したものについては、ブロアによる曝気を行うことなく種菌の生存率を維持できることを本発明者は見出した。好ましい実施形態において、微生物の増殖のための培地は炭素源、窒素、リン、カリウム等を含み、増殖後の再懸濁のための流体は、炭素源を含まない無機塩培地であり得る。あるいは、培養液を炭素源を含まない流体(例えば、炭素源を含まない無機塩培地または水)で10倍に希釈することにより、培養上清の影響を低下させることができ、また炭素源が残存していたとしても、その濃度を十分に低くすることもできる。そのため、培養上清を取り除き、炭素源を含まない新鮮な培地に再懸濁したものと同様に、曝気を行うことなく種菌の生存率を維持できることを本発明者は見出した。
 (恒温槽)
 本発明の恒温槽は、好ましくは、温調器および温度計を備え、微生物培養(増幅)中の温度の制御が可能である。制御される温度は典型的には18~55℃、好ましくは25~42℃、より好ましくは28~37℃である。これらの温度範囲に入らない場合は、加温又は冷却による温度調節を適宜行い得る。恒温槽内に水位計や液面センサーを設置し、少なくとも下限および上限、さらに場合によっては中位の液面の感知および制御を可能にしてもよい。さらにこの液面センサーは発泡センサーを兼ねてもよく、あるいは別の原理で発泡を感知するシステムを設置してもよい。これら発泡を感知するシステムと連動して消泡剤を自動供給するシステムを備え得る。
 本発明においては、恒温槽において、微生物の増殖に必要な空気を供給するためにエアレーションおよび攪拌が行われてもよい。撹拌は、培養液の混合により、増殖させたい微生物と、培地および炭素源とを接触させて微生物の増殖を促進するために行う。エアレーションや撹拌のための具体的な手段は限定されない。好ましい実施形態においては、本発明の恒温槽はブロアを備える。ブロアは、空気導入と共に培養物の撹拌混合も行い得る。あるいは、機械的にエアレーションと撹拌を行う空気導入手段(例えば送気ポンプ)や、撹拌手段(例えば撹拌羽根を有する撹拌混合装置)を併用してもよい。
 恒温槽における曝気のための散気場所が深くなるほど、水深による水圧によって酸素の溶解効率が高くなるため、ブロアの散気管は恒温槽の下部に設けられ、恒温槽の下部から空気が供給されるのが好ましい。
 恒温槽中の溶存酸素濃度(DO)は、ブロアなどの曝気撹拌手段により通常0.05mg/L以上、好ましくは0.1mg/L以上に保つことが望ましい。
 恒温槽中の培養液のpHは、通常4.5~9.0、好ましくは5.5~8.5、より好ましくは6.0~8.0の範囲内である。これらの範囲に入らない場合は、酸又はアルカリの添加により適宜pHの調整を行い得る。
 恒温槽における微生物の増殖は、連続的に排出される微生物含有培養液が、所定の濃度(例えば、1×10cells/mL)以上の微生物を含むように行われ得る。
 好ましい実施形態においては、二つの前記恒温槽を設け、所定の条件ごとにそれぞれの恒温槽を稼働してもよい。ここで、二つの恒温槽のうちの一方の恒温槽における培養液を所定のタイミング(例えば、1日~1ヶ月、1日~30日、1日~15日、1日~10日、または1~7日間ごと等)に所定の条件に従って全て恒温槽から排出してしまうことも可能である。なお、この期間は連続運転期間とは考えず、この期間においては後述するY=Fは成り立たない。その後、排出した培養液の所定の容量(例えば、90~100%、95~100%、95~99%等の容量)の培地を恒温槽に再供給し、さらに、所定の濃度(例えば、1×10~1×1010cells/mL)の微生物の種菌懸濁液を排出培養液の所定の容量(例えば、10~0.1%、5~0.1%、10~1%、5~1%等の容量)になるように恒温槽に供給し、所定の時間(例えば、12~24時間、18~24時間等)曝気することにより恒温槽内の前記微生物をいったん増殖させてもよい。あるいは、二つの恒温槽のうちの一方の恒温槽における培養液を所定のタイミング(例えば、1日~1ヶ月、1日~30日、1日~15日、1日~10日、または1~7日間ごと等)に所定の条件に従って全て排出し、その後、排出した培養液と同量の培地を恒温槽に再供給し、さらに、恒温槽内の微生物濃度が所定の濃度(例えば、1×10~1×10cells/mL)になるように、微生物の種菌乾燥菌体を供給し、所定の時間(例えば、12~24時間、18~24時間等)曝気することにより恒温槽内の微生物をいったん増殖させてもよい。これらは、恒温槽のメンテナンス作業ということができる。前述のとおり、本発明は滞留時間を短くすることができるので恒温槽の体積を減らすこともできるようになる。そのため、容積の小さい複数の恒温槽を設けることができるようになり、連続生産している恒温槽とメンテナンスしている恒温槽を分けることが可能になる。例えば、所定の条件に従うタイミングで各恒温槽の培養液全排出操作をするごとに、洗浄、注水、曝気による脱塩素、濃縮培地の投入、種菌植菌を行い得る。なお、メンテナンス中には、種菌の連続供給を止めるのが一般的である。なお、上記では例示として二つの恒温槽の場合を記載したが、三つや四つの恒温槽が並列して設けられ、所定の条件に従うタイミングで使用される恒温槽が切り替えられる実施形態もまた、本発明の範囲内である。培養液の排出後、微生物種菌供給前に次のどちらか又は両方の工程を行い得る:(1)濃縮部分培地供給前に給水と排水を1回以上行い、恒温槽を洗浄する操作、(2)給水後にばっ気をしばらく行い、水中の塩素を抜く操作。
 恒温槽が複数設けられた場合の使用される恒温槽の切り替えのための所定の条件としては、一定時間の経過、pHの変化、DOの変化、発泡、リパーゼ活性の変化、基質濃度の変化、酸やアルカリの添加量が規定値を超えること、培地(濃縮培地を含む)の総供給量が規定値を超えることなどが挙げられるが、これらに限定されない。pHの変化、DOの変化、発泡、リパーゼ活性の変化、基質濃度の変化などが生じるまでの時間を測定し、その時間の経過を所定の条件としてもよい。あるいは、所定の条件を約400t分(tは、恒温槽における培養条件において微生物の細胞が分裂に要する時間(分))とすることもできる。
 (流量)
 図1に、本発明の微生物連続製造法およびシステムの概要を示す。
 図1に示されるように、恒温槽には、第1の濃縮部分培地(例えば、窒素源)、第2の濃縮部分培地(例えば、油脂、アルコール、乳酸等の炭素源)、および水が連続的に投入される。この連続的な投入と、恒温槽からの培養液の連続的な排出は、典型的には20時間以上行われ得る。1つの実施形態においては、この連続的な投入および排出を約20時間行い、その後洗浄、培地の再投入、脱塩素曝気を経て、再度約20時間の連続的な投入および排出を行い得る。恒温槽には、さらに種菌を投入してもよい。
 図1においては、種菌を懸濁液として冷蔵庫に保管する実施形態が示される。なお、本発明が必ずしも種菌を懸濁液として保管する形態に限定されないのは他の箇所の記載から明らかである。図1の種菌は、所定の濃度(例えば、1×10~2×1010cells/mL)の微生物の懸濁液が冷蔵庫において保管され、それがX(L/h)の流量で恒温槽に添加される。乾燥菌体として保管された微生物を直接恒温槽に供給することもでき、その場合には、例えば恒温槽において所定の濃度(例えば、1×10cells/mL)以下の微生物濃度になるように供給され得る。微生物の恒温槽への供給は、連続的に行われてもよいし、間欠的に行われてもよい。
 第1の濃縮部分培地(例えば、窒素源等)はY1(L/h)で、第2の濃縮部分培地(例えば、油脂やアルコール、乳酸等の炭素源)がQ(L/h)で、水がY2(L/h)で恒温槽に添加される。
 図1においては例えば、第1の濃縮部分培地を炭素源を含まないものとすることにより、第1の濃縮部分培地には微生物の増殖に必要な炭素源がなく、そして第2の濃縮部分培地には炭素源が含まれるが増殖に必要な窒素源などの培地成分がないため、連続運転中、それぞれの保管容器内やその供給ラインでの雑菌やバクテリオファージの増殖を抑制することができる。
 種菌懸濁液の供給流量Xは、培地流量Yの1/500~1/50であり、典型的には1/100以下であり得る。種菌は恒温槽への添加時に1/500~1/50に希釈され、これを培養することで、最終的に種菌溶液の1~10倍の濃度の微生物を含む微生物培養液を製造することができる。培養液中の微生物の濃度は、1×10cells/mL以上であり得る。
 好ましい実施形態においては、種菌の懸濁液の投入流量Xは、代表的にはゼロよりも大きいが、流量Y(Y1+Y2)に対して無視できる程度の量であり得、そのためF=Yであり得る。あるいは、20時間以上の連続運転中に種菌を投入しない、すなわちXがゼロの場合もあり得、その場合はもちろんF=Yである。
 恒温槽からは、一定流量F(L/h)で一定微生物濃度の微生物含有培養液が排出される。恒温槽から排出される培養液は、1×10cells/mL以上の微生物を含み得る。好ましい実施形態では、種菌懸濁液が供給されない場合は流量FはYと等しく、種菌懸濁液が流量Xで供給される場合はX+Yと等しい。種菌懸濁液が供給される場合、恒温槽には、種菌懸濁液(X)+第2の濃縮部分培地(例えば、炭素源)(Q)+培地(Y=Y1+Y2)が定流量で投入され、同時にX+Yに相当する流量Fが定流量で排出される。上記のとおり、XはY/100以下であり得るため、XはYに対して無視できる程度の量であり得る。その場合においては、YとFが等しくなる。本発明においては、排出流量Fにおいては第2の濃縮部分培地(例えば、炭素源)の流量(Q)は考慮しない点に留意されたい。連続運転とは言え、恒温槽中の微生物は生き物なので活性を一定に長期間保つのは難しい。活性には変動幅があるため、例えば炭素源の消費にも変動幅が生じる。そのため、恒温槽への流入物の総量と恒温槽からの流出物の総量を同じとする従来の連続運転では、恒温槽における培養液量や培地濃度を一定に保つのは容易ではなく、微生物濃度や炭素源濃度のセンサーなどを多用せざるを得ない。他方、本発明のように炭素源の流量を無視して、炭素源以外の恒温槽への流入物の総量と恒温槽からの流出物の総量とを同じにすることにより、炭素源の添加量を無視して排出量を設定することになるので、連続運転中の炭素源の消費の変動の影響を受けにくくなり、そのため微生物製造設備の運転の安定化が容易になる。別の実施形態では、第2の濃縮部分培地に窒素源を含有させ、第1の濃縮部分培地に炭素源を含ませ、上述のとおりX+Y=Fとなるように運転される。この場合、Yは炭素源を含む培地の供給流量ということになる。このようにどちらの濃縮部分培地を炭素源又は窒素源のどちらかを含むかについては、実施者が適宜、決定できる。
 炭素源は、恒温槽の培養液の炭素源濃度が常時、所定の濃度(例えば、約0.01w/v%)以下となるように、第2の濃縮部分培地として恒温槽に供給され得る。そのため、恒温槽から排出される微生物含有培養液における炭素源は、約0.01w/v%以下であり得る。恒温槽の培養液の炭素源濃度が所定の濃度(例えば、約0.01w/v%)を超える場合、および/または、恒温槽から排出される培養液中の炭素源濃度が所定の濃度(例えば、約0.01w/v%)を超える場合には、供給する炭素源の流量Qを減少させるか、恒温槽における滞留時間を延長するか、またはその両方などで対応することができる。恒温槽の炭素源濃度を所定の濃度以下にコントロールすることによって、恒温槽における意図しない微生物によるコンタミネーションの可能性を低減することができる。なお、恒温槽の培養液の炭素源濃度とは、培養液全体の体積に対する炭素源の重量をいう。培養液中の炭素源が供給される一部においては炭素源濃度は局所的に当該所定の濃度を上回り得るが、それでもなお培養液の炭素源濃度が所定の濃度以下であり得ることが当然に理解され得る。また、上記の「常時」とは、恒温槽への連続的な培地、炭素源、および必要に応じて種菌の供給と、恒温槽中での微生物の連続製造と、そして恒温槽からの微生物含有培養液の連続的な排出とが行われている間について、「常時」である。
 好ましい別の実施形態においては、窒素源が、恒温槽の培養液の窒素源濃度が常時、所定の濃度(例えば、約0.01w/v%)以下となるように、第2の濃縮部分培地として恒温槽に供給される。そのため、恒温槽から排出される微生物含有培養液における窒素源は、約0.01w/v%以下であり得る。別の実施形態として、窒素源をアンモニアとして第2の濃縮培地に含め、培養液のpHコントロールと連動させ、連続的なpHスタットとして窒素源を必要量だけ供給し得る。その場合、第1の濃縮培地に炭素源を含ませることが好ましい。このような実施形態も本特許の範囲内に含まれ得る。
 特に好ましい実施形態において、本発明は、窒素源と、炭素源とを別個の保管容器および供給ラインを通じて恒温槽に供給することによって、連続運転中、それぞれの保管容器内やその供給ラインでの雑菌やバクテリオファージの増殖を抑制することができるが、さらに恒温槽の培養液の炭素源濃度(または窒素源濃度)を所定の濃度以下に抑制することによって、製造装置全体における雑菌やバクテリオファージの増殖を抑制することができる。炭素源の流量を無視して炭素源以外の恒温槽への流入物の総量と恒温槽からの流出物の総量とを同じにすることにより、恒温槽の培養液における炭素源濃度のコントロールを簡便に達成することができる。これを実現するには、炭素源を高濃度の濃縮部分培地として供給し、かつ恒温槽の炭素源濃度を所定の濃度以下にコントールすることが重要である。
 (装置およびシステム)
 本発明はまた、本発明の実施形態1の微生物連続製造方法における使用のための装置またはシステムも提供し得る。本発明の装置またはシステムは、典型的には、種菌保管部(例えば、約15~500L)と、第1の培地(例えば、300倍濃縮培地)保管槽(例えば、約5~50L)と、第2の培地保管槽(第1の培地保管槽よりも小さい容積であり得、例えば、約4~40L)と、種菌を培養して増殖させ、微生物を製造するための恒温槽(例えば、約4~500L)を含み、略一定濃度の微生物を20時間以上連続的に製造するためのものである(図1)。
 本発明の種菌微生物の増幅のための恒温槽は、円筒形または角筒形で、金属製、プラスチック製またはガラス製の槽であり得る。好ましくは、恒温槽は温調器および温度計を備え、微生物培養(増幅)中の温度の制御が可能である。制御される温度は典型的には18~55℃、好ましくは25~42℃、より好ましくは28~37℃である。恒温槽内に水位計や液面センサーを設置し、少なくとも下限および上限、さらに場合によっては中位の液面の感知・制御を可能にしてもよい。さらにこの液面センサーは発泡センサーを兼ねてもよく、あるいは別の原理で発泡を感知するシステムを設置してもよい。これら発泡を感知するシステムと連動して消泡剤を自動供給するシステムを備え得る。典型的な実施形態において、恒温槽はブロアを備え得る。恒温槽には、散気管または散気球、あるいはマイクロバブル・ナノバブル発生装置を設置してもよい。
 培地は培地保管槽において保管され、定流量で恒温槽に供給される。培地保管槽は、典型的には金属製またはプラスチック製またはガラス製であり、好ましくはプラスチック製または金属製である。培地保管槽は、冷蔵庫に格納されてもよい。好ましい実施形態においては、培地保管槽は濃縮培地を保管するタンク、すなわち培地保管槽であり、水は別ラインから供給され得る(図1)。
 炭素源は培地保管槽において保管されており、典型的には金属製またはプラスチック製またはガラス製であり、好ましくはプラスチック製または金属製である。
 本発明の装置またはシステムにおける種菌保管部は、恒温槽において培養される前の、植種源となる微生物を保管する部分(保管庫または保管槽)である。本発明の種菌保管部は、典型的には金属製、プラスチック製またはガラス製であるが、これに限定されるものではない。代表的な実施形態においては、本発明の種菌保管部は、曝気のためのブロアを備えない。図1においては、種菌保管部は冷蔵庫に格納されているが、必ずしもこれに限定されない。特に、種菌を乾燥菌体として保管する場合には、保管中の冷却は不要であり常温で保管することができる。
 本発明の方法においては複数種の微生物を種菌として使用し得る。この複数種の微生物は、種類ごとに複数の保管タンクにおいて保管されてもよいが、好ましくは複数の微生物を1つまたは当該微生物の種類の数よりも少ない数の保管タンクにおいて保管されてもよい。少ない数(好ましくは1つ)の保管タンクにおいて複数種の微生物を保管することにより、システムや種菌の準備が簡単になり、効率的である。
 図示していないが、本発明のシステムはさらに、別のタンクや装置を備えてもよく、例えば微生物の炭素源以外の有機物またはその溶液、消泡剤、pH調整剤などをそれぞれ保管するタンクを備えてもよい。
 本発明のシステムは、第1の濃縮部分培地を第1の培地保管槽から恒温槽へ定流量Y1(L/h)で連続供給するように構成された第1ポンプと、第2の濃縮部分培地(例えば、炭素源)を第2の培地保管槽から恒温槽へ流量Q(L/h)で連続供給するように構成された第2ポンプと、水を定流量Y2(L/h)で供給するための水供給システムと、恒温槽から微生物含有培養液を定流量F(L/h)で排出するように構成された排出手段を備え得る(Y1+Y2=Y)。この排出手段は、恒温槽の培養液量が略一定となるように恒温槽内の培養液を自動で排水する任意の手段であり得、例えば恒温槽から微生物含有培養液を定流量F(L/h)で排出するように構成されたポンプであってもよいし、恒温槽の意図した高さに設置された排出管などであってもよい。
 種菌懸濁液を種菌保管部で保管する実施形態においては、本発明のシステムは、種菌保管部から定流量X(L/h)で種菌懸濁液を恒温槽へ連続供給するように構成された第3ポンプをさらに備え得る。
 種菌を乾燥菌体として種菌保管部で保管する実施形態においては、乾燥菌体は、種菌懸濁液調製槽へ供給されて恒温槽への添加の前に種菌懸濁液を形成してもよいし、恒温槽へ直接添加されてもよい。乾燥菌体の種菌懸濁液調製槽または恒温槽への添加は乾燥菌体供給手段によって行い、乾燥菌体供給手段としては当該分野で公知の任意の粉末フィーダーを用いることができる。所定の濃度の乾燥菌体を種菌懸濁液調製槽または恒温槽へ添加するように、フィーダーからの乾燥菌体の各槽への添加は、添加重量および/または添加時間を制御し得る。
 種菌懸濁液調製槽を備える実施形態においては、本発明のシステムはさらに、定流量X(L/h)で種菌懸濁液を恒温槽へ連続供給するように構成された第4ポンプを備え得る。
 本発明の微生物連続製造装置およびシステムは、滅菌のための設備を備えない。ここでいう滅菌は、蒸気滅菌、エチレンオキサイドなどのガス滅菌、放射線や電子線照射による滅菌である。
 3.バッチ式の恒温槽と貯留槽との組み合わせ(実施形態2)
 本発明はまた、恒温槽において連続式で種菌微生物を培養する上述の実施形態1に加えて、種菌微生物をバッチ式の恒温槽で培養し、それを付帯する貯留槽に移し、貯留槽から連続的に培養液を排出する方法およびシステムも提供する(図7を参照のこと)。実施形態1と実施形態2とでは、微生物を自動増幅する方法が異なるが、一定濃度の微生物を一定流量で連続的に製造することに関しては、共通している。
 (貯留槽)
 本実施形態の方法では、貯留槽に種菌を増殖させた微生物含有培養液を貯留し、そこから連続的に略一定濃度の微生物を含む培養液を排出して微生物を製造する。貯留槽は、貯留槽内の培養液量を特定するための任意の手段を備える。貯留槽内の培養液の内容量を特定するための手段は、水位計や液面センサーなどの培養液の液面の位置を特定するものであってもよいし、重量計などの貯留槽内の培養液の重量を特定するものであってもよいが、これらに限定されない。好ましい実施形態においては、本発明は、貯留槽に水位計や液面センサーを設置し、液面から貯留槽内の培養液量が閾値を越えて減少していることを特定し得る。この場合、貯留槽内の培養液の減少が閾値に達した場合には、恒温槽で増殖した微生物を含有する培養液が貯留槽に移送される。
 貯留槽における内容量を特定するための手段(例えば、水位計や液面センサー)は、少なくとも下限(微生物含有培養液がなくなっている、またはそれに近い水位)を検知可能であり、好ましくはさらに上限(例えば、満水またはそれに近い水位)を検知可能なものであり得る。
 本発明の貯留槽は、発泡を感知するシステム(例えば、発泡センサー)を備え得る。上記の液面センサーが発泡センサーを兼ねてもよい。好ましい実施形態において、発泡を感知するシステムと連動して消泡剤を自動供給するシステムも備え得る。
 本発明の貯留槽は、好ましくは、保温のための施工が施される。具体的には、断熱材や遮熱塗装により保温される。断熱材や遮熱塗装は、貯留槽に直接施されてもよいし、そのように保温施工された箱の中に貯留槽が設置されてもよい。あるいは、貯留槽は、温調器および温度計を備え、貯留槽中の微生物含有培養液の温度の制御が可能であってもよい。ただし、この場合はコストがかかるので、温調器は必須というわけではない。貯留槽内の温度は典型的には0~42℃、好ましくは4~40℃である。これらの温度範囲に入らない場合は、加温又は冷却による温度調節を適宜行い得る。
 貯留槽において、微生物が下に沈んでしまわないように、攪拌が行われてもよい。撹拌のための具体的な手段は限定されない。好ましい実施形態においては、本発明の貯留槽は攪拌混合のためのブロアを備える。あるいは、機械的撹拌手段(例えば撹拌羽根を有する撹拌混合装置または振動攪拌装置)を備えてもよい。貯留槽におけるブロアは、後述の恒温槽における微生物培養時ほどの空気量で行う必要はなく、恒温槽のエアレーションに用いる空気量の80%以下、70%以下、60%以下または50%以下など、例えば40~80%、40~70%、40~60%などであり得る。
 貯留槽におけるブロアは微生物の沈降を防ぐことを目的としているため、ブロアの散気管は貯留槽の下部に設けられ、貯留槽の下部から空気が供給されるのが好ましい。
 恒温槽から貯留槽に補給される微生物含有培養液は、例えば1×10cells/mL以上の微生物を含み得る。本実施形態において製造された微生物の排出量は、微生物の用途に応じて、使用者が適切に調整することができる。
 (恒温槽)
 本発明の恒温槽は、温調器および温度計を備え、微生物培養(増幅)中の温度の制御が可能である。制御される温度は典型的には18~55℃、好ましくは25~42℃、より好ましくは28~37℃である。これらの温度範囲に入らない場合は、加温又は冷却による温度調節を適宜行い得る。恒温槽内には、槽内の内容量(培養液量や水量)を特定するための任意の手段(例えば、水位計や液面センサー)を設置し、少なくとも下限および上限、場合によっては中位の液面の感知・制御を可能にする。この液面センサーは発泡センサーを兼ねてもよく、あるいは別の原理で発泡を感知するシステムを設置してもよい。これら発泡を感知するシステムと連動して消泡剤を自動供給するシステムを備え得る。
 恒温槽内の内容量を特定するための手段(例えば、水位計や液面センサー)によって、貯留槽への微生物含有培養液の移送により減少する内容物が閾値を超えて減少していることを特定し得る。恒温槽内の微生物含有培養液量の減少が閾値に達した場合には、恒温槽に種菌、第1の濃縮部分培地(例えば、窒素源を含有し、炭素源を含有しない培地)、第2の濃縮部分培地(例えば、窒素源を含有しない炭素源)、水などが供給され、回分培養されて微生物が新たに製造され、再び貯留槽内の微生物含有培養液量が減少して閾値を超えたときに貯留槽に移送され得る。第1の濃縮部分培地は第1の培地成分を含み、第2の濃縮部分培地は第2の培地成分を含み、この第1の培地成分と第2の培地成分と水とによって、微生物の増殖のための培地が形成される(ここで、培地はさらに第3の濃縮部分培地に由来する第3の培地成分も含み得る)。本実施形態においても、上述の実施形態1と同様に第1の濃縮部分培地と第2の濃縮部分培地とを別個に保管して供給するため、滅菌の必要性が低減されるという効果を奏し得る。なお、本実施形態においては、貯留槽における微生物含有培養液の量が閾値まで低減したタイミングで恒温槽において回分培養を行って新たに微生物含有培養液を製造するため、恒温槽における回分培養は定期的に行われるものではない点に留意されたい。
 さらに、本発明の恒温槽は、槽内の内容量を特定するための手段(例えば、水位計または液面センサー)によって検出される水位に呼応して、給水や、第1の濃縮部分培地・第2の濃縮部分培地・種菌のそれぞれの供給を自動的に開始するための各種制御手段と、それによって水位に応じて制御された各種供給手段(例えば、ポンプ)とを備える。この制御手段は、水位に呼応して流路を開閉する任意の手段であり得るが、典型的にはバルブ、特に電磁バルブであり得る。
 給水や第1の濃縮部分培地・第2の濃縮部分培地・種菌の供給後、曝気が行われ新たな微生物の増殖が行われるように、恒温槽は設計され得る。また、種菌の供給前に数分から1時間程度の曝気が行われてから種菌が供給されることで脱塩素を行うように設計され得る。さらに、給水後、第1の濃縮部分培地・第2の濃縮部分培地・種菌の供給前に、水位を検出して排水、再給水を繰り返すことで洗浄するプログラムで、恒温槽を制御してもよい。給水後に、恒温槽の水位計や液面センサーによって検出される水位が上位の閾値を越えたことに応じて排水し、恒温槽において検出される水位が下位の閾値を越えたことに応じて再給水し、これを任意の回数(例えば1~10回)繰り返すことによって、恒温槽を洗浄することができる。この洗浄工程における排水のために、恒温槽には、貯留槽に培養液を移すためのラインとは別に排水溝を設けてもよい。これらは、「微生物の増幅(生産)」、「脱塩素」、「洗浄」などそれぞれ工程がプログラムされており、使用者が適宜選択することによって選択された工程が行われ得る。
 本発明においては、恒温槽において、微生物の増殖に必要な空気を供給するためにエアレーションおよび攪拌が行われてもよい。撹拌は、培養液の混合により、増殖させたい微生物と、培地および炭素源とを接触させて微生物の増殖を促進するために行う。エアレーションや撹拌のための具体的な手段は限定されない。好ましい実施形態においては、本発明の恒温槽はブロアを備える。ブロアは、空気導入と共に培養物の撹拌混合も行い得る。あるいは、機械的にエアレーションと撹拌を行う空気導入手段(例えば送気ポンプ)や、機械的撹拌手段(例えば撹拌羽根を有する撹拌混合装置または振動攪拌装置)を併用してもよい。
 恒温槽における曝気のための散気場所が深くなるほど、水深による水圧によって酸素の溶解効率が高くなるため、ブロアの散気管は恒温槽の下部に設けられ、恒温槽の下部から空気が供給されるのが好ましい。
 恒温槽中の溶存酸素濃度(DO)は、ブロアなどの曝気撹拌手段により通常0.05mg/L以上、好ましくは0.1mg/L以上に保つことが望ましい。
 恒温槽中の培養液のpHは、通常4.5~9.0、好ましくは5.5~8.5、より好ましくは6.0~8.0の範囲内である。これらの範囲に入らない場合は、酸又はアルカリの添加により適宜pHの調整を行い得る。
 恒温槽における増殖は、微生物が1×10cells/mL以上になるまで行われ得る。
 本発明の恒温槽は、上述の貯留槽において、微生物含有培養液量が閾値に達した(例えば、培養液の液面が閾値まで低下したこと)ことを検知したタイミングで、恒温槽から培養液を貯留槽へ移送するための機能を備え得る。恒温槽から貯留槽への移送のための機能は、例えばポンプ、送液管等であり得る。
 実施形態2における一つの実施形態では、恒温槽の洗浄に使用した水を貯留槽に送り、貯留槽に溜まった水を貯留槽から排水することを1~数回繰り返すことで、貯留槽を洗浄する工程も含み得る。恒温槽から貯留槽への洗浄水の移送と貯留槽からの排水を高速に行うため、培養液の排水に使用する排出システムとは別に高速送液・排水手段を、恒温槽および貯留槽に設けてもよい。
 第2の濃縮部分培地として供給される炭素源の供給量および/または滞留時間は、恒温槽から排出される微生物含有培養液における炭素源濃度が所定の濃度(例えば、約0.05w/v%以下、約0.01%w/v以下、または約0.001w/v%以下)、好ましくはゼロとなるように設定され得る。恒温槽から排出される培養液において炭素源濃度を測定し、その測定結果に応じて炭素源の供給量および/または滞留時間を変更してもよい。例えば、恒温槽から排出される培養液の炭素源濃度を約0.01w/v%以下とする設定の場合、恒温槽から排出される培養液の炭素源濃度が約0.01w/v%を超えている場合には、供給する炭素源の量を低減するか、滞留時間を延長するか、またはその両方を行ってもよい。恒温槽から排出される培養液の炭素源濃度を所定の濃度以下にコントロールすることによって、培養液移送後の貯留槽における意図しない微生物によるコンタミネーションの可能性を低減することができる。
 第1の濃縮部分培地と第2の濃縮部分培地とに分ける(例えば、炭素源と、それ以外の培地成分とを分ける)ことによって滅菌が不要になるという実施形態1の利点は、実施形態2においても同様に得ることができる。また、恒温槽からの排出培養液の炭素源濃度を所定濃度以下になるようにコントロールすることによって、貯留槽の滅菌の必要性がさらに低減され得る。
 好ましい別の実施形態においては、恒温槽から排出され貯留槽に移送される微生物含有培養液における窒素源濃度が所定の濃度(例えば約0.05w/v%以下、約0.01w/v%以下、または約0.001w/v%以下)、好ましくはゼロとなるように設定され得る。さらに別の実施形態として、窒素源をアンモニアとして第2の濃縮培地に含め、培養液のpHコントロールと連動させ、連続的なpHスタットとして窒素源を必要量だけ供給し得る。これによって恒温槽から排出され貯留槽に移送される微生物含有培養液における窒素源濃度が所定の濃度以下に抑えられる。この場合、第1の濃縮培地に炭素源を含ませることが好ましい。このような実施形態も本特許の範囲内に含まれ得る。
 好ましい実施形態において、第1の培地成分は窒素源を含み、第2の培地成分は炭素源を含む。窒素源と炭素源とを分けて保管および供給することによって、細菌や微生物の増殖を顕著に低減することができる。それによって、滅菌の必要性が低減される。1つの実施形態において、第1の濃縮部分培地は、窒素源を約10w/v%以上の濃度で、約15w/v%以上の濃度で、好ましくは約20w/v%以上の濃度で、より好ましくは約30w/v%以上の濃度で、さらに好ましくは約40w/v%以上の濃度で、さらにもっと好ましくは約50w/v%以上の濃度で、含み得る。1つの実施形態において、炭素源を含む濃縮部分培地は、炭素源を約40w/v%以上の濃度で、より好ましくは約50w/v%以上の濃度で、さらに好ましくは約60w/v%以上の濃度で含み得る。このように窒素源および/または炭素源をそれぞれの濃縮培地において一定濃度以上の高濃度で存在させることによって、高浸透圧や高塩濃度、基質毒性、高または低pHなどが原因となり微生物の増殖を低減することができ、滅菌の必要性低減に寄与し得る。典型的には、窒素源を含む濃縮部分培地は炭素源を含まず、炭素源を含む濃縮部分培地は窒素源を含まない。
 このように本発明は滅菌を必要としないため、好ましい実施形態において、本発明の製造方法は、微生物の製造に使用する第1の濃縮部分培地および第2の濃縮部分培地の滅菌を行わないことを特徴とする。好ましい実施形態において、本発明の製造方法は、20時間以上の連続製造の前後24時間以内に、36時間以内に、48時間以内に、または72時間以内に、第1の培地保管槽、第2の培地保管槽、恒温槽および貯留槽の滅菌を行わないことを特徴とする。微生物の製造においては、一般的に製造のための培養の24時間以内にこれらの設備の滅菌を行うのが通常であることに鑑みると、本発明においてそのようなタイミングで滅菌を必要としないことは大きな利点である。
 (種菌)
 本実施形態においては、1×10~1×1012cells/mL、好ましくは1×10~2×1010cells/mLの微生物の種菌の懸濁液を、恒温槽中の約50~500倍量の培養液に添加してもよい。
 種菌は、種菌保管部に懸濁液の形態で保管されていてもよいし、乾燥菌体として種菌保管部に保管されていてもよい。乾燥菌体の製造方法については、後に詳述する。本発明の1つの実施形態においては、種菌を微生物の乾燥菌体として保管し、前記恒温槽に供給される前に種菌懸濁液とする。この種菌懸濁液は、1×10~2×1010cells/mLとなるように液中に懸濁され、前記の通り恒温槽に添加されてもよいし、k×2×1010cells/mL以上(k≧1)となるように調製され、この種菌懸濁液を恒温槽に供給してもよい(この場合は、種菌懸濁液を約50k~500k倍量の培養液に添加する)。本発明の別の実施形態においては、恒温槽に、乾燥菌体を1×10cells/mL以下の微生物濃度となるように直接供給する。
 1つの実施形態において、本発明の種菌は、微生物を培養(典型的には、回分培養)したものから培養上清を取り除き、無機塩培地や緩衝液、水等の炭素源を含まない任意の流体に1×10~1×1012cells/mL、好ましくは1×10~2×1010cells/mLになるように再懸濁し、冷蔵したものであり得る。本発明の種菌は、好ましくは、1×10~9×10cells/mL、より好ましくは1×10~2×10cells/mLになるように再懸濁されたものであり得る。また、好ましくは、流体としては炭素源を含まない新鮮な無機塩培地を用いる。本発明の別の実施形態においては、本発明の種菌は、微生物を培養したものを無機塩培地や緩衝液、水等の炭素源を含まない任意の流体で10倍に希釈したものを冷蔵したものであり得る。希釈するための流体としては、好ましくは、炭素源を含まない無機塩培地であり得る。
 当該分野においては、種菌は培養液中でそのまま保管することが一般的であり、その状態で生存率を保つためには曝気が必要であり得る。しかしながら、上記のような、微生物を回分培養したものから培養上清を取り除き、炭素源を含まない流体(例えば、新鮮な培地)に再懸濁し、冷蔵したものについては、ブロアによる曝気を行うことなく種菌の生存率を維持できることを本発明者は見出した。好ましい実施形態において、微生物の増殖のための培地は炭素源、窒素、リン、カリウム等を含み、増殖後の再懸濁のための流体は、炭素源を含まない無機塩培地であり得る。あるいは、培養液を炭素源を含まない流体(例えば、炭素源を含まない無機塩培地または水)で10倍に希釈することにより、培養上清の影響を低下させることができ、また炭素源が残存していたとしても、その濃度を十分に低くすることもでき、培養上清を取り除き、炭素源を含まない新鮮な培地に再懸濁したものと同様に、曝気を行うことなく種菌の生存率を維持できることを本発明者は見出した。
 (運転サイクル)
 実施形態2の方法およびシステムは、以下のようなサイクルで運転され得る。1.排出量コントローラーにより排出量を設定
 製品(微生物懸濁液)の生産計画に合わせ、貯留槽からの排出量を設定する。
2.排出
 設定された排出量になるよう排出ポンプが稼働し、貯留槽から一定濃度の微生物を含有する培養液を一定流量で連続的に排出することで、製造物としての微生物培養液を安定的に得る。
3.貯留槽における微生物含有培養液の水位が低い状態を検知
 上記2の工程により水位が減少し、培養液水位が閾値に達した、またはそれを越えた状態になったことを水位センサーが検知する。
4.恒温槽から培養液を移送
 上記3の検知に応じて、恒温槽中に存在する培養液を全量貯留槽に移送する。
5.微生物の再増殖
 5-1.上記2に戻り、貯留槽から微生物含有培養液を排出するとともに、
 5-2.恒温槽に給水および加温、曝気、種菌・第1の濃縮部分培地・第2の濃縮部分培地投入を行い、微生物を回分培養する。さらにこの具体的な運転フローは下記であり得る。
  5-2-1.上記4の恒温槽から貯留槽への培養液の移送工程により減少する恒温槽内の水位を液面センサーまたは水位計が検知し、培養液水位が閾値に達した、またはそれを越えた状態になったら、給水口の制御手段が開き給水が開始される。
  5-2-2.給水により水位が上昇し閾値に達したら給水口の制御手段が閉じて給水が停止されるとともに、第1の濃縮部分培地・第2の濃縮部分培地・種菌の供給口の制御手段が開き、それぞれ一定量の第1の濃縮部分培地、第2の濃縮部分培地、種菌が恒温槽に供給される。
  5-2-3.曝気が開始され、一定時間、微生物を培養、増幅することにより微生物含有培養液が製造される。
 上記2~5のサイクルが繰り返されるが、5-2(5-2-3)において製造された培養液が、上記4において恒温槽中に存在する培養液になる。
 また、上記5-2-1と5-2-2との間に、さらに以下の工程を含んでもよい。
A.所定量まで(例えば、恒温槽が満水になる、等)恒温槽に給水されたことを検知後、再び排水し、水位が閾値まで低減したことを検知して再給水し、以下、この排水と給水を任意の回数繰り返すことにより、恒温槽内を洗浄する。
B.給水後、一定時間の曝気を行って脱塩素する。
 上記5-2が行われるごとにAおよびBが行われてもよいし、5-2が任意の回数行われた後にAおよびBが行われるように設定されてもよいし、使用者が任意のタイミングでAおよびBを行うように操作することができてもよい。また、上記5-2が行われた後に、Aが行われてBが行われなくてもよいし、Bが行われてAが行われなくてもよい。これらについては、使用者が状況に応じて適切に設定することができる。
 上記Aの工程で生じる洗浄水は、恒温槽に別に設けた排水口から排出されてもよいし、貯留槽に移送された後、貯留槽の培養液排出ポンプによるか、別に設けられた排水口より貯留槽から排出される。後者の方法により、恒温槽に続いて貯留槽を洗浄することができる。
 (装置およびシステム)
 本発明はまた、本発明の実施形態2の微生物連続製造方法における使用のための装置またはシステムも提供し得る。本発明の装置またはシステムは、典型的には、種菌保管部(例えば、約15~500L)と、第1の培地保管槽(例えば、約5~50L)と、第2の培地保管槽(第1の培地保管槽よりも小さい容積であり得、例えば、約4~40L)と、種菌を培養して増殖させ、微生物を増殖させるための恒温槽(例えば、約100~500L)と、微生物含有培養液を貯留する貯留槽(例えば、約100~500L)とを含み、略一定濃度の微生物含有培養液を貯留槽から連続的に(例えば、24時間以上連続的に)排出するためのものである(図7)。
 恒温槽および貯留槽は、円筒形または角筒形で、金属製、プラスチック製またはガラス製の槽であり得る。恒温槽は、貯留槽へ微生物含有培養液を排出するための排出手段を有し、貯留槽は、貯留している微生物含有培養液を排出するための排出手段を有する。さらに恒温槽および貯留槽は、洗浄水等を高速に排出するための排出手段を、培養液の排出手段とは別に有し得る。
 恒温槽は温調器および温度計を備え、微生物培養(増幅)中の温度の制御が可能である。制御される温度は典型的には18~55℃、好ましくは25~42℃、より好ましくは28~37℃である。恒温槽は、槽内の内容量(培養液量や水量)を特定するための任意の手段(例えば、水位計や液面センサー)を備える。
 本発明の恒温槽はまた、槽内の内容量を特定するための手段(例えば、水位計または液面センサー)によって検出される水位に呼応して(連動して)、
・第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を恒温槽へ自動的に供給するための第1の培地用制御手段とポンプ、
・第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を恒温槽へ自動的に供給するための第2の培地用制御制御手段とポンプ
・種菌を恒温槽へ供給するように構成された、種菌用制御手段および種菌用ポンプ/フィーダー
・給水用制御手段
を備える。第1の培地用制御手段、第2の培地用制御手段および種菌用制御手段はいずれも、恒温槽内の内容量を検知する機構と連動して自動的に稼働されることが好ましい。ここで、「恒温槽内の内容量を検知する機構と連動する」とは、恒温槽内の内容量を検知する機構によって検知された水量のシグナルに呼応して直接的に連動することも含むし、恒温槽内の内容量を検知する機構によって検知された水位のシグナルに連動した他のバルブやポンプの挙動に呼応することにより、他のバルブやポンプを介して恒温槽内の内容量を検知する機構と間接的に連動することも含む。例えば、恒温槽内の内容量を検知する機構によって、恒温槽内の水位がある閾値または条件を満たしたというシグナルが発せられると、第1の培地用制御手段がそれに連動して流路を開き、培地用ポンプによって第1の濃縮部分培地が恒温槽内に供給される。この場合、第1の培地用制御手段は、恒温槽内の内容量を検知する機構に「直接的に」連動する。第2の培地用制御手段や種菌用制御手段は、この第1の培地用制御手段や培地用ポンプの稼働を検知して、それに連動して稼働するように設定することができる。この場合、第2の培地用制御手段や種菌用制御手段は、恒温槽内の内容量を検知する機構に「間接的に」連動する。第1の培地用制御手段、第2の培地用制御手段および種菌用制御手段がすべて、恒温槽内の内容量を検知する機構と直接的に連動してもよいし、第1の培地用制御手段、第2の培地用制御手段および種菌用制御手段のうちのいずれか1つが恒温槽内の内容量を検知する機構と直接的に連動し、他の2つは恒温槽内の内容量を検知する機構と間接的に連動してもよいし、あるいは、第1の培地用制御手段、第2の培地用制御手段および種菌用制御手段のうちのいずれか2つが恒温槽内の内容量を検知する機構と直接的に連動し、他の1つは恒温槽内の内容量を検知する機構と間接的に連動してもよい。
 なお、上記の種菌用制御手段、ならびに種菌用ポンプおよび/または種菌用フィーダーは、
(i)種菌保管部に種菌懸濁液を保管している場合には、種菌保管部から種菌懸濁液を恒温槽に供給するための制御手段およびポンプであり、
(ii)種菌保管部に乾燥菌体を保管し、その乾燥菌体を種菌懸濁液調製槽において種菌懸濁液にしてその種菌懸濁液を恒温槽へ供給する場合には、種菌懸濁液調製槽への給水を制御する種菌懸濁液調製槽給水制御手段と、種菌保管部から乾燥菌体を種菌懸濁液調製槽へ供給するための乾燥菌体供給制御手段と、種菌懸濁液調製槽から種菌懸濁液を恒温槽へ供給するための制御手段およびポンプであり、
(iii)種菌保管部に乾燥菌体を保管し、その乾燥菌体を恒温槽へ供給する場合には、種菌保管部から乾燥菌体を恒温槽へ供給するための制御手段および種菌用フィーダーである。
 なお、上記の(ii)の場合(すなわち、種菌保管部に乾燥菌体を保管し、その乾燥菌体を種菌懸濁液調製槽において種菌懸濁液にしてその種菌懸濁液を恒温槽へ供給する場合)には、種菌懸濁液調製槽への給水や乾燥菌体種菌の供給および種菌懸濁液の恒温槽への供給がそれぞれ、種菌調製槽の内容量または恒温槽の制御状況(排水、給水、培地の供給など)と連動して制御され得る。
 恒温槽はまた、水位計や液面センサーによって貯留槽内の培養液量が下限に達したことを検知すると、それに呼応して(連動して)、恒温槽から培養液を排出する排出手段を備える。
 好ましい実施形態においては、給水用制御手段、第1の培地用制御手段、第2の培地用制御手段および種菌用制御手段が全て恒温槽の水位に直接的に連動するか、あるいは、給水用制御手段が恒温槽の水位に直接的に連動し、第1の培地用制御手段、第2の培地用制御手段および種菌用制御手段が給水用制御手段と連動することによって間接的に恒温槽の水位に連動し得る。
 給水用制御手段は、恒温槽内の培養液の水位が閾値を超えて低くなったことに連動して開口され、恒温槽内の水位の上昇を感知して、または一定水量の供給後に自動的に閉口されてもよい。
 本発明の好ましい実施形態において、制御手段は電磁バルブであり得る。
 貯留槽は、槽内の内容量(培養液量や水量)を特定するための任意の手段(例えば、水位計や液面センサー)を備える。
 前記恒温槽や貯留槽における水位と連動した各種制御手段、ポンプ、および/または排出手段は、製造量や洗浄回数などを規定したプログラムなどを組み込んだマイコン(マイクロコントローラ)等で制御しえる。
 貯留槽は、好ましくは、保温のための施工が施される。具体的には、断熱材や遮熱塗装により保温される。断熱材や遮熱塗装は、貯留槽に直接施されてもよいし、そのように保温施工された箱の中に貯留槽が設置されてもよい。あるいは、貯留槽は、温調器および温度計を備え、貯留槽中の培養液の温度の制御が可能であってもよいが、必須ではない。
 貯留槽は、微生物の沈降を防ぐための攪拌混合のためのブロア、または、機械的撹拌手段(例えば撹拌羽根を有する撹拌混合装置または振動攪拌装置)を備えてもよい。
 第1の濃縮部分培地は第1の培地保管槽において保管され、恒温槽における水位と連動して自動的に恒温槽に供給される。第1の培地保管槽は、典型的には金属製またはプラスチック製またはガラス製であり、好ましくはプラスチック製または金属製である。第1の培地保管槽は、冷蔵庫に格納されてもよい。
 第2の濃縮部分培地は第2の培地保管槽において保管されており、恒温槽における水位と連動して自動的に恒温槽に供給される。第2の培地保管槽は、典型的には金属製またはプラスチック製またはガラス製であり、好ましくはプラスチック製または金属製である。第2の培地保管槽は、冷蔵庫に格納されてもよい。
 本発明の装置またはシステムにおける種菌保管部は、恒温槽において培養される前の、植種源となる微生物を保管する部分(保管庫または保管槽)である。種菌保管部は、恒温槽における水位と連動して自動的に種菌を恒温槽または種菌懸濁液調製槽に供給する手段を有する。本発明の種菌保管部は、典型的には金属製、プラスチック製またはガラス製であるが、これに限定されるものではない。代表的な実施形態においては、本発明の種菌保管部は、曝気のためのブロアを備えない。図7においては、種菌保管部は冷蔵庫に格納されているが、必ずしもこれに限定されない。特に、種菌を乾燥菌体として保管する場合には、保管中の冷却は不要であり常温で保管することができる。
 本発明の方法においては複数種の微生物を種菌として使用し得る。この複数種の微生物は、種類ごとに複数の保管部において保管されてもよいが、好ましくは複数の微生物を1つまたは当該微生物の種類の数よりも少ない数の保管部において保管されてもよい。少ない数(好ましくは1つ)の保管部において複数種の微生物を保管することにより、システムや種菌の準備が簡単になり、効率的である。
 図示していないが、本発明のシステムはさらに、別のタンクや装置を備えてもよく、例えば微生物の炭素源以外の有機物またはその溶液、消泡剤、pH調整剤などをそれぞれを保管するタンクを備えてもよい。
 本発明の微生物連続製造装置およびシステムは、滅菌のための設備を備えない。ここでいう滅菌は、蒸気滅菌、エチレンオキサイドなどのガス滅菌、放射線や電子線照射による滅菌である。
 4.炭素源
 以下、本発明において使用され得る炭素源について説明する。以下で説明する炭素源は、上述の実施形態1および2の両方に適用可能である。
 本発明において使用される炭素源は、微生物がそれを消費して増殖することができる任意の炭素源であり得る。微生物は炭素源を消費し、消費量に菌体収率を乗じた分を菌体成分に変換して増殖する。一般に、炭素源となり得るどんな化合物でも、高濃度存在下では微生物の増殖は困難になる。これには、浸透圧や基質毒性などが原因として考えられる。基質毒性が高い化合物ほど低濃度でも微生物の増殖は困難になるし、基質毒性が低い化合物ほど高濃度にしないと微生物が増殖し得る。したがって、どんな炭素源であれ、微生物の増殖が困難なほど高濃度の状態で保管することで、滅菌の必要性が低減され得る。好ましい実施形態において、炭素源は、第2の濃縮部分培地として第2の培地保管槽に保管される。また、基質毒性が高いか難分解性の炭素源は高濃度でなくても滅菌の必要性を低減し得るため、好ましい実施形態では基質毒性の高い炭素源が使用される。しかし、別の好ましい実施形態では、基質毒性が低く分解が容易な炭素源であっても、高濃度で保管することで微生物の増殖を困難な状態にして使用し得る。本発明においては、微生物の増殖が困難な状態で炭素源を保管する。製造する対象の微生物に対する基質毒性や難分解性といった化合物の性質について、閾値や程度を明確に知ることは困難であり得るため、微生物の増殖が困難かどうかについては、適宜実験等により判断してもよい。微生物の増殖が困難な状態とは、例えば大腸菌、枯草菌、パン酵母などを、例えば1×10~1×10cells/mlで接種し、25~37℃で24時間放置したときに微生物が10倍以上に増殖しないことなどで判断しえる。基質毒性の高い炭素源としては、アルコール類(例えばエタノール、メタノール、イソプロパノール、ブタノール)、有機溶媒(例えばトルエン、酢酸エチル、ジメチルエーテル、ジエチルエーテル、アルカン)、塩素化合物(例えばクロロホルム、トリクロロエチレン、トリクロロ酢酸)等が挙げられる。難分解性の炭素源としては、油脂、鉱物油、ジオキサン、多環芳香族化合物などが挙げられる。
 本発明の炭素源は、必要に応じて1種または複数の炭素源を用いてもよい。また、食品工場や外食産業などから排出される有機性廃棄物、廃油あるいは油を含んだ廃棄物を用いてもよい。また、本発明の炭素源は、典型的には液体であるが、粉末の形態で提供されてもよい。粉末の場合、培地保管槽から粉末フィーダーなどの供給システムで恒温槽や供給ライン、混合槽等に添加され得る。
 上述の実施形態1および2のいずれにおいても、好ましい実施形態においては、炭素源は、窒素源を含む部分培地とは別々に保管し、それぞれ別々の供給ラインから恒温槽に供給されて、恒温槽において炭素源、窒素源、および他の培地成分が混合される。こうすることによって、保管槽においては微生物の増殖に必要な炭素源と窒素源のどちらかが欠けるため、雑菌での汚染が回避できるからである。しかしながら、本発明はこれに限定されず、窒素源または炭素源のどちらかを含む第2の濃縮部分培地と、第2の濃縮部分培地には含まれていなかった炭素源または窒素源を含む第1の濃縮部分培地が、恒温槽に供給される前に混合槽または供給ラインにおいて混合されてもよいし、炭素源と窒素源を含む濃縮部分培地が第2の保管槽に保管され、それが供給ラインを通じて恒温槽に供給され、恒温槽にて他の増殖に必要な成分を含む培地と混合されてもよい。
 本発明においては、炭素源または窒素源、その保管槽およびその供給ラインを滅菌する必要がない。換言すると、本発明の炭素源または窒素源は、保管槽を滅菌する必要がないという観点から当業者が適宜選択してもよい。
 5.第1の濃縮部分培地
 以下、本発明において使用され得る第1の濃縮部分培地について説明する。好ましい実施形態において、第1の濃縮部分培地は、炭素源を含まず、炭素源(および必要に応じて追加の他の成分)と組み合わされて微生物増殖用の培地を構成するものであり、典型的には窒素源を少なくとも含む。別の実施形態においては、第1の濃縮部分培地は、窒素源を含まず、窒素源(および必要に応じて追加の他の成分)と組み合わされて微生物増殖用の培地を構成するものであり、典型的には炭素源を少なくとも含む。以下で説明する培地は、上述の実施形態1および2の両方に適用可能である。
 好ましい実施形態において、第1の濃縮部分培地は、一般的に微生物の培養に使用される培地を濃縮したものであり得、好ましくはリンおよびカリウムなどを含み得る。これに窒素源または炭素源を含め濃縮したものが第1の濃縮部分培地であり得る。窒素源を含む培地は無機塩培地であってもよく、無機塩培地の組成の一例は、NaHPO 3.5g/L,KHPO 2.0g/L,(NHSO 4g/L,MgCl・6HO 0.34g/L,FeSO・7HO 2.8mg/L, MnSO・5HO 2.4mg/L,CoCl・6HO 2.4mg/L,CaCl・2HO 1.7mg/L,CuCl・2HO 0.2mg/L,ZnSO・7HO 0.3mg/L,NaMoO 0.25mg/Lであり得る。該事例の培地は、炭素源を含まないため、必ずしも冷蔵する必要はない。該事例の培地においては、窒素源は硫安(NHSOである。
 本発明においては、第1の濃縮部分培地および水がそれぞれ直接恒温槽に添加されて恒温槽中で目的濃度の培地を生成してもよいし、恒温槽に添加される前に混合槽または供給ラインにおいて混合され、目的濃度の培地を生成した後に恒温槽に添加されてもよい。
 第1の濃縮部分培地は、恒温槽における目的濃度の培地成分の約10倍以上、約50倍以上、約100倍以上、約200倍以上、好ましくは約250倍以上の濃度の培地を有するものであり得る。
 6.窒素源
 好ましい実施形態において、第1の濃縮部分培地または第2の濃縮部分培地のいずれかに含み得る窒素源は、硫安、他のアンモニウム塩、硝酸塩、亜硝酸塩などの無機塩である。アミノ酸なども窒素源となり得るが、同時に炭素源ともなるので窒素源と炭素源を別々に保管するには適さない。また、尿素は炭素を含む有機化合物であるが、まず、加水分解によってアンモニアと二酸化炭素に分解されてから微生物に利用されるため、通常は窒素源とはなり得るが炭素源とはなり得ない。炭素源として有機物を利用する従属栄養微生物は、二酸化炭素を固定することはできないからである。よって、尿素は炭素源とはならない窒素源と考えてよい。好ましい別の実施形態において、第1の濃縮部分培地または第2の濃縮部分培地のいずれかに含み得る窒素源は尿素である。
 好ましい別の実施形態においては、第1の濃縮部分培地に炭素源を含み、第2の濃縮部分培地に窒素源を含む。この場合、窒素源としては、上述の化合物と同じものを使用し得るが、特に尿素やアンモニアは好ましい。アンモニア水は、恒温槽内の培養液のpHスタットも兼ねて供給し得る。例えば、15%のアンモニア水は、pHが約11の強アルカリであり、通常の微生物は増殖できない。したがって、15%アンモニア水は窒素源を含む第2の濃縮部分培地として好適である。
 7.微生物
(微生物の特性)
 本発明において連続製造の対象とされる微生物は、従属栄養微生物であり、使用される炭素源を資化して増殖できるものであれば任意の微生物であり得る。微生物の具体的な種類は、その目的に応じて当業者が適宜選択することができる。例えば、油脂分解菌、鉱物油分解菌、有機溶媒資化菌、アルコール資化菌、有機性汚染物質資化菌、大腸菌、枯草菌、出芽酵母、分裂酵母、乳酸菌、多糖分解菌などが挙げられる。また、該微生物は野生株であっても、遺伝子組換え株であっても、突然変異株であってもよい。また、分類学的には、真正細菌、グラム陰性細菌、グラム陽性細菌、放線菌、酵母、カビ(糸状菌)、古細菌などであり得る。
 上記実施形態1および実施形態2において、使用される微生物には特に相違はない。本発明によって製造する微生物としては、1種単独又は2種以上を混合して使用することができる。2種以上を混合して使用する場合は、共生可能な微生物の組み合わせを使用することが望ましい。
 油脂分解微生物の一例として、22~35℃、pH=5.5~8.5、DO≧0.1mg/L、回分培養の条件で、n-Hex値=10000mg/L相当の油脂及び加水分解物産物の脂肪酸を、72時間内に、好ましくは48時間以内に、より好ましくは36時間以内に、より一層好ましくは24時間以内に80%以上分解する能力を有する微生物が挙げられる。
 微生物の種菌は、公知の方法により培養することで製造することができる。
 (種菌懸濁液)
 好ましい実施形態において、本発明の種菌懸濁液は、例えば以下の工程で得られるものであり得る。なお、容量は状況に応じて調整可能である。
 1.培養工程:微生物を、炭素源を補充した無機塩培地(例えば10L)中で回分培養により1×10~2×1010cells/mLまで培養する。無機塩培地の組成としては、例えば、前述のものが使用可能である。
 2.集菌工程:上記培養工程において得られた培養液を、例えば、遠心分離(例えば、2000×g、15min、25℃の条件)し、ペレット状の湿細胞集塊を回収する。
 3.再懸濁工程:集菌した湿細胞集塊を培地(例えば、炭素源を補充しない無機塩培地100L)に再懸濁し、種菌懸濁液とする。
 4.保存工程:必要に応じて、保管容器(例えば、200L)に入れ蓋をして4℃で遮光して静置保存する。なお、このようにして得られた本発明の種菌懸濁液の保存のためには、ブロアによる曝気が不要であり、これは本発明の有利な特徴である。従来は、微生物の種菌懸濁液の保存のためには一定間隔でブロアによる曝気が必要であったが、本発明のシステムにおいては種菌懸濁液の曝気のためのブロアが不要であり、コストを低減することができる。
 上記の湿細胞集塊は、遠心分離以外にも、ろ過、凝集沈殿、圧縮脱水など当該分野で公知の任意の手段によって、培養液を概ね細胞集塊と培養上清とに分け、培養上清を取り除くことによって得ることができる。
 上記の培養工程においては、連続培養や流加培養により微生物を増殖させてもよい。
 図2は、上記の工程1~4で得られた種菌懸濁液(本願発明、サンプルNo.3)と、上記工程2および3を省略して工程1によって得られた培養液をそのまま工程4のように保存した培養液(比較例1、サンプルNo.4)との、生菌数の推移を示すグラフである。図2の結果から分かるように、工程2および3を経ることにより、曝気をしなくても生存率を長期にわたって維持することが可能である(実施例1を参照のこと)。
 また、図3の結果に示されるように、1010cells/mLオーダーよりも10cells/mLオーダーの方が長期生存性が高かった。従って、好ましい実施形態においては、種菌懸濁液における微生物の濃度は1×10~2×1010cells/mLであり、好ましくは1×10~9×10cells/mLであり、より好ましくは1×10~2×10cells/mLであり得る(実施例2を参照のこと)。
 通常の回分培養では1010cells/mL程度の培養液が得られるので、これを10倍希釈するように無機塩培地に懸濁してもよい。図4は、上記の工程1の後に培養液を無機塩培地で10倍に希釈し、菌体濃度を10cells/mLオーダーにした場合の生菌保存性(サンプルNo.5)を上記の比較例1(サンプルNo.4)の生菌保存性と比較したグラフである。サンプルNo.3は、図2において示した、工程1~4で得られた種菌懸濁液(本願発明、サンプルNo.3)に相当する。図4の結果から分かるように、10倍希釈するだけで、無機塩培地に再懸濁した場合と同程度の生菌の長期保存性が、曝気をしなくても得られることがわかる(実施例3を参照のこと)。理論に拘束されることを意図しないが、希釈の過程で老廃物の濃度が薄まることや、炭素源が既に培養の過程でほぼ消費されており、希釈によって炭素源を実質的に含まない状態になることに起因すると考えられる。
 (乾燥菌体)
 従来の微生物乾燥方法は、主に乾燥に耐性のあるグラム陽性菌、特に芽胞形成細菌や胞子を形成する酵母に適用されるものであった。他方、こういったものを形成しない多くの微生物、特に真正細菌は、乾燥への特別な耐性手段を有していない。例えば油脂や脂肪酸を消費・資化するリパーゼ分泌細菌であるブルクホルデリア・アルボリスも非芽胞形成菌のグラム陰性菌であり、乾燥耐性を有しない。このようなグラム陰性菌については、効率的な乾燥菌体の製造方法は存在しなかった。
 本発明者は鋭意研究を重ねた結果、微生物を凝集沈殿、脱水、遠心分離などによって湿細胞集塊にし、ホエイを含む水(例えば、約1w/v%程度)に懸濁後、減圧乾燥に供し乾燥させることで、活性をかなり維持できることを見出した。例えば、前記ブルクホルデリア・アルボリスの場合、油脂分解能の指標であるリパーゼ活性を、乾燥処理前のものに対して50%以上維持させることができるという知見を得た。
 本発明は、これら知見に基づき、更に検討を重ねて完成されたものであり、次の微生物乾燥製剤の製造方法、微生物の減圧乾燥用保護剤、及び微生物乾燥製剤も提供するものである。
 本発明により得られる微生物乾燥製剤は、乾燥処理前の酵素活性を相当レベル維持している。本発明の微生物乾燥製剤の製造方法は、広く微生物全般において乾燥後の酵素活性低下を軽減することができるが、乾燥に耐性のあるグラム陽性菌や酵母以外の微生物(例えば、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌)にも広く適用可能で且つ簡便に行える。
 また、本発明の微生物の減圧乾燥用保護剤は、乾燥に耐性のあるグラム陽性菌や酵母以外の微生物(例えば、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌)を減圧乾燥する際に生存率を高めることが可能である。
 本発明の微生物乾燥製剤の製造方法は、ホエイを微生物と混合し、減圧乾燥する工程を含むことを特徴とする。
 また、本発明の微生物の減圧乾燥用保護剤は、ホエイを有効成分とすることを特徴とする。
 上記微生物としては、本発明の方法により乾燥処理が可能な限り特に制限されず、細菌、古細菌、真菌などの各種の微生物を広く使用できる。微生物としては、1種単独又は2種以上を混合して使用することができる。
 本発明の微生物乾燥製剤の製造方法が適用可能な細菌としては、グラム陰性細菌(例えば、光合成細菌、シアノバクテリア、シュードモナス(Pseudomonas)属細菌、プロテオバクテリア、腸内細菌群、化学合成無機栄養細菌、メタン生成細菌など)、及びグラム陽性細菌(例えば、ブドウ球菌、胞子形成桿菌、乳酸菌、コリネフォルム細菌、放線菌など)が挙げられ、中でもグラム陰性細菌、特に非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌が好適である。これは、当該細菌は、乾燥への耐性が低く従来の乾燥方法を適用することが難しいためである。
 本発明の微生物乾燥製剤の製造方法が適用可能な真菌としては、酵母(例えば、カンジダ(Candida)属酵母、ヤロウィア(Yarrowia)属酵母、サッカロマイセス(Saccharomyces)属酵母、シゾサッカロマイセス(Schizosaccharomyces)属酵母、ピキア(Pichia)属酵母、クリプトコッカス(Cryptococcus)属酵母、トリコスポロン(Trichosporon)属酵母、ハンゼヌラ(Hansenula)属酵母など)、糸状菌(アスペルギルス(Aspergillus)属など)などが挙げられる。
 微生物乾燥製剤が油脂分解微生物製剤である場合は、使用する微生物として、上記のような脂肪酸を消費・資化するリパーゼ分泌微生物、グリセロールを消費・資化する微生物、遊離脂肪酸を資化し、リパーゼを分泌しない微生物などが挙げられる。
 乾燥油脂分解微生物製剤を製造する際に使用する微生物の具体例としては、ブルクホルデリア・アルボリス、カンジダ・シリンドラセア、及びヤロウィア・リポティカが挙げられ、これらを2又は3種組み合わせて使用することが望ましい。
 芽胞を形成しない微生物は乾燥保存において生存率が極端に落ちることが知られているが、本発明者は予想外に、ホエイを使うことによって、芽胞を形成しない微生物でも、乾燥による死滅を防ぐことができることを見出した。
 微生物は、公知の方法により培養することで製造することができる。培養を行った後、培養液から微生物を、凝集沈殿、脱水、遠心分離などにより湿細胞集塊として集菌し、必要により洗浄等の操作を行って湿菌体を得て、当該湿菌体をホエイとの混合に使用することができる。
 ホエイ(whey)とは、乳清とも呼ばれ、牛乳又は脱脂乳に、レンネットや酸を加えて生じるカードを除去した後に排出される黄緑色の液体であり、チーズやカゼインの製造時の副産物として得られ、チーズやレンネットカゼインの製造で得られるスウィートホエイや酸カゼインの製造で得られる酸ホエイなどがある。ホエイの成分は、タンパク質、乳糖、水溶性ビタミン、塩類(ミネラル成分)などである。ホエイとしては、濃縮したもの、乾燥したもの、粉末状のものなども使用することができる。
 ホエイは、チーズを製造する際に副産物として大量に排出されるため、低コストで入手が可能である。
 ホエイと微生物を混合する方法は、特に制限されず、各種の公知の方法により行うことができる。ホエイと微生物を混合する方法としては、例えば、湿細胞集塊とした微生物をホエイを含む溶液に懸濁する方法が挙げられる。
 そのような微生物を懸濁する溶液中のホエイの配合量は、本発明の効果が得られる限り特に制限されず、0.1w/v%以上、好ましくは0.5w/v%以上、より好ましくは1w/v%以上であり、例えば0.1~5w/v%、好ましくは0.1~3w/v%、より好ましくは0.5~2w/v%である。ホエイを含む溶液の溶媒としては、水を好適に使用できる。
 微生物とホエイとの混合割合は、微生物1×1010cellsに対して、ホエイが通常約1mg~約5mg、好ましくは約2mg~約3mgであり得る。
 ホエイと微生物との混合物には、必要によりホエイと微生物以外の他の成分を含ませることができる。
 減圧乾燥とは、真空乾燥とも呼ばれ、大気圧以下の減圧の下で乾燥を行う方法である。減圧乾燥では、凍結乾燥とは異なり、乾燥させる対象を凍結させずに行う。減圧乾燥は、通常20~60℃、好ましくは30~50℃で行われる。必要により加熱を行うことができる。減圧の程度は、凍結させずに微生物を乾燥させることができれば任意のものであり得、大気圧よりやや低い微減圧(例えば、約970HPa)が好ましいが、これに限定されない。減圧乾燥は、市販されている機器を使用して実施できる。
 本発明の製造方法において、減圧乾燥工程以外にも、その他の工程を実施することができる。
 本発明の製造方法により得られた微生物乾燥製剤は、適当な容器に入れて、冷蔵または常温保存することができる。また、微生物乾燥製剤を入れた容器には、乾燥剤などを入れておくことで乾燥状態を維持することができる。
 ホエイによる本発明の微生物乾燥製剤の製造方法は、乾燥に耐性のあるグラム陽性菌や酵母以外の微生物(例えば、非芽胞形成菌であるグラム陰性細菌)にも広く適用可能で且つ簡便に行うことが可能である。本発明により得られる微生物乾燥製剤は、乾燥処理前の酵素活性(例えば、ブルクホルデリア・アルボリスにおけるリパーゼ活性)を50%以上維持している。
 本発明では、減圧乾燥を行うため、運搬や保管時の低コスト化が可能であり、スケールアップも容易である。
 図5に示されるように、保護剤がない場合や、保護剤として公知のトレハロースを使用した場合と比較して、ホエイは乾燥前後の微生物製剤の酵素活性の維持をもたらすことできる。特にホエイを1w/v%添加して減圧乾燥した微生物製剤は、乾燥前と比べて顕著にリパーゼ活性を維持していた。保護剤がない場合や、保護剤としてトレハロースを使用した場合は、リパーゼ活性は乾燥前と比べて20%以下であった。本発明の、ホエイを用いる乾燥製剤およびその製造方法の有利な効果が実証されている。
 本発明においては、種菌は上記の乾燥製剤として保存され、そして恒温槽に種菌懸濁液として供給される前に1×10cells/mL以上となるように液中に懸濁され、こうして調製された種菌懸濁液を前記恒温槽に連続供給してもよい。この場合における「液中」とは、培地や水が代表的であるが、緩衝液や塩溶液など種菌を懸濁するための任意の溶液であり得る。
 乾燥菌体から濃縮懸濁液をいったん調製し、それを恒温槽または培養液に供給する実施形態では、種菌懸濁液は乾燥菌体を出発物質とするため、濃度が自由に調整可能であり、例えば2×101000cells/mLほどの濃い濃度の種菌懸濁液も調製することができる。2×101000cells/mLほどの濃度の種菌懸濁液を用いると、一般的な種菌懸濁液濃度1×10~2×1010cells/mLの濃度の種菌懸濁液を用いる場合と比較して、種菌懸濁液の投入流量または投入量が1/100程度でよいことになる。
 (実施例1)
 本実施例では、微生物としてブルクホルデリア・アルボリスKH-1を用い、培養上清を除いて微生物細胞を炭素源を含まない新鮮な培地に再懸濁することによる、種菌懸濁液の保存性の効果を、生菌率の推移により検討した。
 1.培養工程:KH-1を、炭素源としてのキャノーラ油(1v/v%)を補充した無機塩培地において30℃にて、1×10~2×1010cells/mLまで回分培養した。無機塩培地の組成は、NaHPO 3.5g/L,KHPO 2.0g/L,(NHSO 4g/L,MgCl・6HO 0.34g/L,FeSO・7HO 2.8mg/L, MnSO・5HO 2.4mg/L,CoCl・6HO 2.4mg/L,CaCl・2HO 1.7mg/L,CuCl・2HO 0.2mg/L,ZnSO・7HO 0.3mg/L,NaMoO 0.25mg/Lであった。
 2.集菌工程:上記培養工程において得られた培養液を2000×g、15min、4℃の条件で遠心分離し、湿細胞集塊を回収した。
 3.再懸濁工程:集菌した湿細胞集塊を、キャノーラ油を補充しない無機塩培地に全量100mlになるように再懸濁し、種菌懸濁液とした。
 4.保存工程:種菌懸濁液を100mlのメディウム瓶に入れ蓋をして、密閉状態で4℃にて、遮光して静置保存した。保存の間、ブロアによる曝気は行わなかった。
 比較例として、上記工程2および3を省略して工程1によって得られた培養液をそのまま工程4のように保存した培養液を用いた。
 本発明および比較例の種菌懸濁液における微生物の生菌数を測定した。生菌数の測定は、種菌懸濁液を無機塩培地で適宜希釈し、希釈液をLB寒天培地プレートへ100μL滴下し、28℃で培養しコロニー数をカウントすることで行った。結果を図2に示す。図2の結果から分かるように、工程2および3を経ることにより、曝気をしなくても生存率を長期にわたって維持することが可能であった。
 (実施例2)
 続いて、実施例1において得られた種菌懸濁液の初期濃度と生存率との関係を検討した。その結果を図3に示す。図3の結果に示されるように、1010cells/mLオーダーよりも10cells/mLオーダーの方が長期生存性が高かった。
 (実施例3)
 さらに、実施例1における工程1の後、培養液を無機塩培地で10倍希釈により10cells/mLオーダーにした後に工程4のように保存したもの(図4のサンプルNo.5)と、そのまま希釈せずに保存した培養液とで、微生物の生菌数を測定した。図4におけるサンプルNo.3は、図2において示した種菌懸濁液(本願発明、サンプルNo.3)に相当する。
 図4の結果から分かるように、10倍に希釈することで、無機塩培地に再懸濁したときと同様に、曝気をしなくても生存率を長期にわたって維持することが可能であった。
 (実施例4)
 ブルクホルデリア・アルボリスSL1B1を2×10cells/mL、ヤロウィア・リポリティカ1A1を3×10cells/mL含む培養液3mLを遠心分離に供し、得られた湿細胞集塊を、保護剤なしの水、あるいはホエイ水溶液(0.1w/v%または1w/v%)、またはトレハロース水溶液(0.2w/v%または2w/v%)0.1mLに再懸濁した。これを28℃、550rpmにて、2.5時間、遠心減圧乾燥した(東京理科UT-200)。得られた乾燥体を4℃で一晩冷蔵したものを下記培養の種菌に用いた。
 含まれる菌体量が等しい乾燥処理前の製剤と乾燥処理後の製剤を、それぞれキャノーラ油(3v/v%)を補充した無機塩培地100mLを含む500mLバッフル付三角フラスコに添加して24時間培養し、乾燥処理前の製剤に対する乾燥処理後の製剤のリパーゼ活性維持率(%)を算出した。リパーゼ活性は以下のようなリパーゼアッセイによって測定した。
 リパーゼアッセイのための基質溶液は、18.9mgのパルミチン酸4-ニトロフェニル(4-NPP)を、12mlの3v/v%triton-Xと70℃で混合することによって調製した。1mlの基質溶液と、0.9mlの脱イオン水と、1mlの150mM GTA緩衝液(150mMの3,3-ジメチルグルタル酸)、150mM Tris、および150mMの2-アミノ-2-メチル-1,3-プロパンジオールからなる溶液をNaOHまたはHClでpH6に調整したもの)の混合溶液を、石英セル内で28℃にプレインキュベートした。上記の24時間の培養後の100μlの培養上清を添加することによって酵素反応を開始させ、温度制御されたセルホルダーを備えるU-2810分光光度計(東京、日立製作所)を用いて410nmの吸光度をモニターすることでリパーゼ活性を求めた。1分間に1μmolの4-ニトロフェノールを生じるような酵素活性を、1ユニットのリパーゼ活性とした。乾燥処理前の製剤と乾燥処理後の製剤との間の活性維持率を算出した。
 結果を図5に示す。図5から、ホエイは保護剤がない場合や、保護剤として公知のトレハロースを使用した場合と比較して、顕著に高い乾燥前後の酵素活性維持効果をもたらすことがわかる。特にホエイを1%添加して減圧乾燥した微生物製剤は、乾燥前と比べて80%以上のリパーゼ活性を維持していた。保護剤がない場合や、保護剤としてトレハロースを使用した場合は、リパーゼ活性は乾燥前と比べて5%以下であった。本発明の、ホエイを用いる乾燥製剤およびその製造方法の有利な効果が実証された。
 (実施例5)
 本実施例においては、低濃度では微生物が増殖可能な炭素源または窒素源でも、増殖に必要な他の成分を含まずに高濃度水溶液にすると、微生物の増殖が抑制されることを示す。窒素源として終濃度20%の硫安を超純水中に含む硫安水溶液(濃縮窒素源)と、炭素源として終濃度50v/v%のエタノールと5w/v%のグルコースを超純水中に混合した水溶液を準備した(濃縮炭素源)。また、無機塩BS培地に2v/v%のエタノールと0.2w/v%のグルコースを混合した培地も準備した(比較例)。これらの水溶液および培地を滅菌せずに実験に供した。50mLチューブ中の5mLの濃縮炭素源水溶液または培地に、LB培地で前培養した大腸菌BL21株を1/100量、植菌し、28℃にて3日間、振とうしながらインキュベーションした。植菌には、LB液体培地で培養後、遠心分離で集菌を行い、超純水で2回洗浄を行なった後、濁度をOD=1.8程度に超純水で再懸濁したものを使用した。無機塩BS培地としては、以下の表の組成のものを使用した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 図6に示す通り、比較例の条件では微生物の増殖が確認されたが、濃縮窒素源水溶液中または濃縮炭素源水溶液中では微生物は増殖できなかった。よって、適切な濃度の炭素源と窒素源、および他の必要な培地成分が含まれる培地中では増殖可能な微生物でも、窒素源または炭素源のみを含む濃縮部分培地中では増殖できないことが示され、そのような濃縮部分培地は滅菌する必要がないことも明らかとなった。
 上記記載の様々な実施形態が組み合わされて、さらなる実施形態を提供することができる。当業者は、上記の詳細な記載に照らし合わせて実施形態に任意の改変を適切に加えることができる。一般的に、添付の特許請求の範囲において使用される用語は、特許請求の範囲を明細書に開示される特定の実施形態に限定するように解釈されるべきではなく、すべての可能な実施形態およびそのような特許請求の範囲が権利を与えられる等価物の全範囲を含むように解釈されるべきである。したがって、特許請求の範囲は本開示によって限定されない。
 本発明によれば、種菌としての微生物の使用量を節約しながら、効率的かつ連続的に、微生物を製造する方法およびそのためのシステムが提供される。
 特に、本発明によれば、一般的な微生物の増殖法およびシステムと比較して、雑菌のコンタミネーションの回避のための滅菌の必要性が低減された微生物の新規連続製造法およびシステムが提供される。
 微生物触媒への関心は昨今高まりつつあり、微生物の効率的な増殖方法の開発は喫緊の課題である。本発明は、新規微生物連続製造方法および/またはそのためのシステムを提供することにより、そのような課題を解決するものである。

Claims (40)

  1. 20時間以上連続的に、恒温槽に、第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を定流量Y1(L/h)で、第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を流量Q(L/h)で、水を定流量Y2(L/h)で、それぞれ別個に恒温槽に供給、または混合槽または供給ラインで混合後に恒温槽に供給するとともに、
    前記恒温槽に曝気を施すことにより、前記恒温槽中の培養液中で、炭素源を資化して増殖し得る微生物を増殖させて微生物培養液を20時間以上連続的に連続製造し、
    20時間以上連続的に、前記恒温槽から略一定濃度の微生物を含む前記微生物培養液を定流量F(L/h)で排出すること
    を含む微生物連続製造方法であって、前記第1の濃縮部分培地に含まれる第1の培地成分、前記第2の濃縮部分培地に含まれる第2の培地成分および水によって、前記微生物に必要な培地が形成されることを特徴とする、製造方法。
  2. 前記恒温槽から毎時排出する前記微生物培養液の体積F(L)が、前記恒温槽内の培養液の体積V(L)の30分の1から2分の1の体積であることを特徴とする請求項1に記載の製造方法。
  3. 前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地は炭素源を含み、前記恒温槽中の培養液の炭素源濃度が常時約0.01w/v%以下となるように、前記炭素源を含む濃縮部分培地を前記恒温槽に供給することを特徴とする請求項1または2に記載の製造方法。
  4. 前記第2の濃縮部分培地以外の前記恒温槽に供給される流体の流量と、前記恒温槽から排出される前記培養液の流量とが等しいことを特徴とする、請求項1~3のいずれか一項に記載の製造方法。
  5. 微生物の種菌の懸濁液を定流量X(L/h)で前記恒温槽に20時間以上連続供給することを特徴とする、請求項1~4のいずれか一項に記載の製造方法。
  6. 請求項1~5のいずれか一項に記載の製造方法であって、前記方法は二つの恒温槽を設けることによって実施され、
    前記20時間以上連続的な連続製造の前または後に、
    前記二つの恒温槽のうちの一方の恒温槽における前記培養液を、所定の条件に従うタイミングで1~30日間ごとに全て排出し、その後、第1の濃縮部分培地および第2の濃縮部分培地と水を前記恒温槽に再供給し、さらに、前記微生物の種菌を前記恒温槽に供給して一定時間曝気することを含む、製造方法。
  7. 前記恒温槽内の前記培養液の排出後、前記微生物の種菌を供給する前に次のどちらか又は両方の工程を行う、請求項6に記載の製造方法:
    (1)濃縮部分培地供給前に給水と排水を1回以上行い、恒温槽を洗浄する操作;
    (2)給水後にばっ気をしばらく行い、水中の塩素を抜く操作。
  8. 微生物を増殖させて略一定濃度の微生物培養液を20時間以上連続的に略一定流量で連続製造する、微生物連続製造方法であって、
    ステップ1:貯留槽において貯留されている第1の微生物含有培養液を連続的に排出することと、
    ステップ2:前記貯留槽において前記第1の微生物含有培養液の量が閾値まで低減したことを検知した場合に、恒温槽から貯留槽へ第2の微生物含有培養液を投入することと、
    ステップ3:前記恒温槽において前記第2の微生物含有培養液の量が閾値まで低減したことを検知した場合に、前記恒温槽に、給水を開始することと、
    ステップ4:前記恒温槽への給水により水位が閾値まで上昇したことを検知した場合に、前記恒温槽に、第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を、第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を、そして種菌保管槽から前記微生物の種菌とを供給することと、
    ステップ5:前記恒温槽において、前記培地中で前記種菌を増殖させて第3の微生物含有培養液を製造することと、
    の5つのステップを含む工程を包含し、
     さらに前記工程を繰り返すことを特徴とし、前工程の第2の微生物含有培養液および第3の微生物含有培養液はそれぞれ次工程の前記第1の微生物含有培養液および第2の微生物含有培養液となり、
     前記第1の微生物含有培養液、前記第2の微生物含有培養液および前記第3の微生物含有培養液はいずれも前記微生物を含む、製造方法。
  9. 前記ステップ3とステップ4の間に、以下のステップ3-1および/あるいはステップ3-2を含む請求項8に記載の製造方法:
    ステップ3-1:所定量前記恒温槽に給水されたことを検知後、再び排水し、水位が閾値まで低減したことを検知して再給水し、この排水と給水を任意の回数繰り返すことにより、恒温槽内を洗浄すること;
    ステップ3-2:前記恒温槽内の水に、一定時間の曝気を行って脱塩素すること。
  10. 前記貯留槽および/または恒温槽における培養液の量を、水位計または液面センサーによって検知することを特徴とする請求項8または9に記載の製造方法。
  11. 前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地のいずれか一方が窒素源を含み、他方が炭素源を含む、請求項1~10のいずれか一項に記載の製造方法。
  12. 前記窒素源が10w/v%以上の濃度で前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地のいずれかにおいて存在する、請求項11に記載の製造方法。
  13. 前記炭素源が40w/v%以上の濃度で前記第1の濃縮部分培地または前記第2の濃縮部分培地のいずれかにおいて存在する、請求項11または12に記載の製造方法。
  14. 前記恒温槽から排出される培養液の炭素源濃度が常時約0.01w/v%以下となるように、前記炭素源を含む濃縮部分培地を前記恒温槽に供給することを特徴とする請求項11~13のいずれか一項に記載の製造方法。
  15. 1)前記連続製造に使用する前記第1の濃縮部分培地、前記第2の濃縮部分培地、水の滅菌を行わないこと、および
    2)前記20時間以上の前記連続製造の前後24時間以内には、前記第1の培地保管槽、前記第2の培地保管槽、および前記恒温槽の滅菌を行わないこと、
    を特徴とする請求項1~14のいずれか一項に記載の製造方法。
  16. 前記20時間以上の前記連続製造の前後72時間以内には、前記第1の培地保管槽、前記第2の培地保管槽、および前記恒温槽の滅菌を行わないことを特徴とする、請求項15に記載の製造方法。
  17. 前記20時間以上の前記連続製造の前後24時間以内には、前記貯留槽の滅菌を行わないことを特徴とする、請求項8~10、または請求項8~10のいずれかに従属する請求項11~16のいずれか一項に記載の製造方法。
  18. 前記恒温槽の培養液温度が18~55℃、溶存酸素濃度が0.1mg/L以上、pHが6.0~8.0になるように恒温槽を運転することを特徴とする請求項1~17のいずれか一項に記載の製造方法。
  19. 前記恒温槽から排出される培養液が、1×10cells/mL以上の前記微生物を含むことを特徴とする請求項1~18のいずれか一項に記載の製造方法。
  20. 前記微生物が細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする請求項1~19のいずれか一項に記載の製造方法。
  21. 前記微生物がグラム陰性細菌または酵母からなる群から選択される少なくとも1種を含むことを特徴とする請求項1~20のいずれか一項に記載の製造方法。
  22. 前記種菌は、前記微生物を回分培養したものから培養上清を取り除き、炭素源を含まない流体に1×10~2×1010cells/mLとなるように再懸濁し、冷蔵したものであることを特徴とする、請求項5~10、または請求項5~10のいずれかに従属する請求項11~21に記載の製造方法。
  23. 前記種菌は、前記微生物を回分培養したものを、炭素源を含まない流体で10倍に希釈して、1×10~2×1010cells/mLとなるように調製後、冷蔵したものであることを特徴とする、請求項5~10、または請求項5~10のいずれかに従属する請求項11~21に記載の製造方法。
  24. 前記種菌は前記微生物の乾燥菌体として保管され、前記恒温槽に種菌懸濁液として供給される前に1×10cells/mL以上となるように液中に懸濁され、こうして調製された種菌懸濁液を前記恒温槽に供給することを特徴とする請求項5~10、または請求項5~10のいずれかに従属する請求項11~21に記載の製造方法。
  25. 乾燥菌体として保管された前記微生物の種菌を、前記恒温槽に直接供給することを特徴とする請求項1~4または6~10、あるいは請求項1~4または6~10のいずれかに従属する請求項11~21のいずれか一項に記載の製造方法。
  26. 前記乾燥菌体の保管が常温で行われる、請求項24または25に記載の製造方法。
  27. 前記乾燥菌体は、ホエイを前記微生物と混合し、減圧乾燥する工程により製造された乾燥菌体であることを特徴とする請求項24~26のいずれか一項に記載の製造方法。
  28.  恒温槽と、
     前記恒温槽を曝気するブロアと、
     第1の培地保管槽と、
     前記第1の培地保管槽から前記第1の濃縮部分培地を定流量Y1(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための第1ポンプと、
     第2の培地保管槽と、
     前記第2の培地保管槽から前記第2の濃縮部分培地を流量Q(L/h)で前記恒温槽へ連続供給するための、第2ポンプと、
     水を定流量Y2(L/h)で供給するための水供給システムと、
     前記恒温槽から微生物培養液を定流量F(L/h)で排出するように構成された排出手段と、
    を備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システム。
  29. 前記微生物の種菌懸濁液を保管するための種菌保管部と、
    前記種菌保管部を冷却するための冷却システムと、
    前記種菌保管部から定流量X(L/h)で前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ連続供給するように構成された第3ポンプと、
    をさらに備える、請求項28に記載のシステム。
  30. 前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
    前記種菌から種菌懸濁液を調製するための種菌懸濁液調製槽給水制御手段を備える種菌懸濁液調製槽と、
    前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記種菌懸濁液調製槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給手段と、
    前記種菌懸濁液調製槽から定流量X(L/h)で前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ連続供給するように構成された第4ポンプと、
    をさらに備える、請求項28に記載のシステム。
  31. 前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
    前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記恒温槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給手段と、
    をさらに備えることを特徴とする請求項28に記載のシステム。
  32. 前記種菌保管部はブロアを備えないことを特徴とする請求項29~31のいずれか一項に記載のシステム。
  33. 請求項1~7、または請求項1~7のいずれかに従属する請求項11~16または18~27のいずれか一項に記載の製造方法における使用のための、請求項28~32のいずれか一項に記載のシステム。
  34.  槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
     前記恒温槽を曝気するブロアと、
     前記恒温槽で製造された微生物を貯蔵しながら前記微生物を連続的に排出するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
     第1の培地保管槽と、
     前記第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプと、
     第2の培地保管槽と、
     前記第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプと、
     前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段と、
     前記貯留槽から微生物を連続的に排出するように構成された第1排出手段と、
     前記恒温槽から微生物を、前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
     前記微生物の種菌懸濁液を保管するための種菌保管部と、
     前記種菌保管部を冷却するための冷却システムと、
     前記種菌保管部から前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ供給するように構成された、第3の制御手段および第3ポンプと、
    を備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システムであって、
     前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第3の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする、システム。
  35.  槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
     前記恒温槽を曝気するブロアと、
     前記恒温槽で製造された微生物を貯蔵しながら前記微生物を連続的に排出するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
     第1の培地保管槽と、
     前記第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプと、
     第2の培地保管槽と、
     前記第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプと、
     前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段と、
     前記貯留槽から微生物を連続的に排出するように構成された第1排出手段と、
     前記恒温槽から微生物を、前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
     前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
     前記種菌から種菌懸濁液を調製するための種菌懸濁液調製槽給水制御手段を備える種菌懸濁液調製槽と、
     制御されたタイミングで前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記種菌懸濁液調製槽へ供給するように構成された乾燥菌体供給制御手段と、
     前記種菌懸濁液調製槽から前記種菌懸濁液を前記恒温槽へ供給するように構成された、第4の制御手段および第4ポンプと、
    を備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システムであって、
     前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第4の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とするシステム。
  36.  槽内の内容量を検知する機構を備える恒温槽と、
     前記恒温槽を曝気するブロアと、
     前記恒温槽で製造された微生物を貯蔵しながら前記微生物を連続的に排出するための、槽内の内容量を検知する機構を備える貯留槽と、
     第1の培地保管槽と、
     前記第1の培地保管槽から第1の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第1の制御手段および第1ポンプと、
     第2の培地保管槽と、
     前記第2の培地保管槽から第2の濃縮部分培地を前記恒温槽へ供給するための、第2の制御手段および第2ポンプと、
     前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動した給水用制御手段と、
     前記貯留槽から微生物を連続的に排出するように構成された第1排出手段と、
     前記恒温槽から微生物を、前記貯留槽内の内容量を検知する機構と連動して排出し、前記貯留槽へ投入するように構成された第2排出手段と、
     前記微生物の種菌を乾燥菌体として保管する種菌保管部と、
     前記種菌保管部から前記乾燥菌体を前記恒温槽へ供給するように構成された、第5の制御手段および乾燥菌体供給手段と、
    をさらに備え、滅菌用設備を備えない、微生物連続製造システムであって、
     前記第1の制御手段、前記第2の制御手段および前記第5の制御手段はいずれも、前記恒温槽内の内容量を検知する機構と連動することを特徴とする、システム。
  37. 前記種菌保管部はブロアを備えないことを特徴とする請求項34~36のいずれか一項に記載のシステム。
  38. 前記貯留槽が、断熱材、遮熱塗装、および/または加熱・冷却機能を備える、請求項34~37のいずれか一項に記載のシステム。
  39. さらに貯留槽の内容物を攪拌するための、ブロアまたは機械的攪拌手段を備える、請求項34~38のいずれか一項に記載のシステム。
  40. 請求項8~10、または請求項8~10のいずれかに従属する請求項11~27のいずれか一項に記載の製造方法における使用のための、請求項34~39のいずれか一項に記載のシステム。
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Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1157762A (ja) * 1997-08-19 1999-03-02 Nippon Soda Co Ltd 汚水の好気性処理方法
JP2002126785A (ja) * 2000-10-30 2002-05-08 Moriroku Co Ltd 油脂含有排水処理方法および装置
JP2003274937A (ja) * 2002-03-25 2003-09-30 Sumitomo Chem Co Ltd 微生物製剤の製造方法および微生物製剤
JP2013527023A (ja) * 2010-01-29 2013-06-27 ジー・ロバート・ホワイトマン 廃水処理施設で生じる汚泥を減少させるためのシステムおよび方法
WO2018207825A1 (ja) 2017-05-09 2018-11-15 日産化学株式会社 微生物製剤の投入方法、微生物製剤の自動投入装置及び廃水処理システム
WO2019098255A1 (ja) * 2017-11-14 2019-05-23 国立大学法人名古屋大学 油脂含有排水処理方法、システムおよび装置
JP2020505024A (ja) * 2017-01-16 2020-02-20 メルク パテント ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツングMerck Patent Gesellschaft mit beschraenkter Haftung 滅菌培地を放出するためのシステムおよび器具

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1157762A (ja) * 1997-08-19 1999-03-02 Nippon Soda Co Ltd 汚水の好気性処理方法
JP2002126785A (ja) * 2000-10-30 2002-05-08 Moriroku Co Ltd 油脂含有排水処理方法および装置
JP2003274937A (ja) * 2002-03-25 2003-09-30 Sumitomo Chem Co Ltd 微生物製剤の製造方法および微生物製剤
JP2013527023A (ja) * 2010-01-29 2013-06-27 ジー・ロバート・ホワイトマン 廃水処理施設で生じる汚泥を減少させるためのシステムおよび方法
JP2020505024A (ja) * 2017-01-16 2020-02-20 メルク パテント ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツングMerck Patent Gesellschaft mit beschraenkter Haftung 滅菌培地を放出するためのシステムおよび器具
WO2018207825A1 (ja) 2017-05-09 2018-11-15 日産化学株式会社 微生物製剤の投入方法、微生物製剤の自動投入装置及び廃水処理システム
WO2019098255A1 (ja) * 2017-11-14 2019-05-23 国立大学法人名古屋大学 油脂含有排水処理方法、システムおよび装置

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