WO2022009672A1 - 細胞培養システム - Google Patents

細胞培養システム Download PDF

Info

Publication number
WO2022009672A1
WO2022009672A1 PCT/JP2021/023690 JP2021023690W WO2022009672A1 WO 2022009672 A1 WO2022009672 A1 WO 2022009672A1 JP 2021023690 W JP2021023690 W JP 2021023690W WO 2022009672 A1 WO2022009672 A1 WO 2022009672A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cell culture
medium
container
tube
culture vessel
Prior art date
Application number
PCT/JP2021/023690
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
豊之 橋本
健二 田窪
統宏 井上
恭子 米田
智樹 大久保
Original Assignee
株式会社島津製作所
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 株式会社島津製作所 filed Critical 株式会社島津製作所
Priority to US18/014,876 priority Critical patent/US20230220323A1/en
Priority to JP2022535004A priority patent/JPWO2022009672A1/ja
Priority to EP21836774.6A priority patent/EP4180510A4/en
Priority to CN202180048630.4A priority patent/CN115943203A/zh
Publication of WO2022009672A1 publication Critical patent/WO2022009672A1/ja
Priority to JP2024090602A priority patent/JP2024103723A/ja

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M27/00Means for mixing, agitating or circulating fluids in the vessel
    • C12M27/18Flow directing inserts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02Form or structure of the vessel
    • C12M23/06Tubular
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/24Gas permeable parts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34Internal compartments or partitions
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/38Caps; Covers; Plugs; Pouring means
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/40Manifolds; Distribution pieces
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/44Multiple separable units; Modules
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/48Holding appliances; Racks; Supports
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/02Membranes; Filters
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M35/00Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion
    • C12M35/08Chemical, biochemical or biological means, e.g. plasma jet, co-culture
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation

Definitions

  • the present invention relates to a cell culture system.
  • Patent Document 1 International Publication No. 2018/07793
  • a cell culture vessel in which intestinal epithelial cells are seeded on a porous membrane is arranged in an anaerobic chamber, and the intestinal epithelial cells and bacteria contained in the medium are combined.
  • a system for co-culturing the cells is disclosed.
  • the present invention provides a cell culture system suitable for comparative analysis of each cell culture container.
  • the cell culture system of the present invention includes a first pump, a first cell culture vessel, and a second cell culture vessel.
  • the first cell culture vessel has a first medium circulation channel.
  • the second cell culture vessel has a second medium circulation channel that is independent of the first medium circulation channel.
  • the first medium circulation flow path and the second medium circulation flow path are fluidly connected to the first pump.
  • the cell culture system of the present invention it is possible to perform comparative analysis for each cell culture container.
  • cell culture system 100 Structure of cell culture system according to embodiment
  • cell culture system 100 the configuration of the cell culture system (hereinafter referred to as “cell culture system 100”) according to the embodiment will be described.
  • FIG. 1 is a perspective view of the cell culture system 100.
  • the cell culture system 100 includes a base 10, a plurality of independent cell culture containers 20, a plurality of medium containers 30a and a medium container 30b, a rack 40, and a plurality of tubes 50a and tubes. It has 50b, a pump 60, and a plurality of lead wires 70a (not shown) and lead wires 70b (not shown). Note that only two pairs of tubes 50a and 50b are shown in FIG.
  • the cell culture system 100 further includes a controller 80 (see FIG. 5), a transdermal electrical resistance measuring device 90 (see FIG. 5), and a chamber device 200 (see FIG. 5).
  • the number of bases 10, the number of racks 40, and the number of pumps 60 may be plural.
  • the number of the medium container 30a and the medium container 30b, the number of the tubes 50a and the tube 50b, and the number of the lead wires 70a and the lead wires 70b are equal to the number of the cell culture containers 20.
  • the number of cell culture vessels 20 per base 10 is three. However, in FIG. 1, only a pair of tubes 50a and 50b is shown.
  • the base 10 has a main body 11, a wiring board 12, a spring 13, and a ball 14.
  • the main body 11 has an upper surface and a bottom surface.
  • the bottom surface of the main body 11 is the opposite surface of the upper surface of the main body 11.
  • a recess 11a is formed in the main body 11. In the recess 11a, the upper surface of the main body 11 is recessed toward the bottom surface side of the main body 11.
  • the recess 11a extends along the longitudinal direction of the base 10 (main body 11).
  • a hole 11b and a hole 11c are formed in the main body 11.
  • the upper surface of the main body 11 is recessed toward the bottom surface side of the main body 11.
  • the hole 11c is formed so as to communicate with the internal space of the main body 11.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view of the base 10.
  • a wiring board 12 is arranged in the internal space of the main body 11.
  • the wiring board 12 is formed with the wiring 12a.
  • the wiring board 12 has a plurality of protruding electrodes 12b and a plurality of protruding electrodes 12c.
  • the number of protruding electrodes 12b and 12c is equal to the number of cell culture vessels 20.
  • One end of the protruding electrode 12b and one end of the protruding electrode 12c are electrically connected to the wiring 12a.
  • the other end of the protruding electrode 12b and the other end of the protruding electrode 12c project from the bottom surface of the recess 11a.
  • the ball 14 is attached to the tip of the spring 13.
  • the spring 13 is embedded in the base 10 so that the ball 14 attached to the tip thereof projects from the side surface of the recess 11a.
  • FIG. 3 is a cross-sectional view of the cell culture vessel 20.
  • the cell culture container 20 has a container body 21, a cell culture insert 22, a lid member 23, a lid member 24, and electrodes 25a and 25b.
  • the first medium 26 is stored inside the container body 21.
  • the container body 21 has an upper wall 21a, a bottom wall 21b, and a side wall 21c.
  • the container body 21 is preferably made of a resin material.
  • An opening 21aa is formed in the upper wall 21a.
  • the opening 21aa penetrates the upper wall 21a along the thickness direction.
  • the upper wall 21a may be formed separately from the bottom wall 21b and the side wall 21c.
  • the bottom wall 21b faces the upper wall 21a at a distance.
  • An electrode 21ba and an electrode 21bb are embedded in the bottom wall 21b.
  • the electrode 21ba and the electrode 21bb are electrically connected to the first medium 26.
  • the electrode 21ba and the electrode 21bb are exposed from the outer surface of the bottom wall 21b.
  • the electrode 21ba and the electrode 21bb are electrically connected to the projecting electrode 12b and the projecting electrode 12c, respectively, when the container body 21 is arranged in the recess 11a.
  • the side wall 21c is connected to the upper wall 21a and the bottom wall 21b.
  • a recess 21ca is formed on the outer surface of the side wall 21c.
  • the recess 21ca is formed at a position facing the ball 14 when the container body 21 is arranged in the recess 11a.
  • the cell culture insert 22 has a tubular portion 22a and an oxygen permeable membrane 22b.
  • the lower end side of the tubular portion 22a is closed by the membrane 22b.
  • the upper end side of the tubular portion 22a is closed by the lid member 23.
  • the lid member 23 is removable from the tubular portion 22a.
  • the second medium 27 is stored inside the tubular portion 22a.
  • the dissolved oxygen concentration of the second medium 27 is lower than the dissolved oxygen concentration of the first medium 26. That is, the first medium 26 is an aerobic medium, and the second medium 27 is an anaerobic medium.
  • the second medium 27 contains, for example, anaerobic bacteria.
  • the tubular portion 22a is inserted into the opening 21aa so that the lower end side thereof is inside the container body 21.
  • the cell culture insert 22 is attached to the container body 21.
  • the cell culture insert 22 is removable from the container body 21.
  • the membrane 22b is, for example, a track etch film made of polycarbonate.
  • the membrane 22b has a first main surface 22ba and a second main surface 22bb.
  • the first main surface 22ba faces the inner side of the container body 21.
  • the second main surface 22bb faces the inner side of the tubular portion 22a.
  • the second main surface 22bb is the opposite surface of the first main surface 22ba.
  • Cells are cultured on the second main surface 22bb. These cells are, for example, intestinal epithelial cells that form tight junctions on the second main surface 22bb. Specific examples of these cells include Caco-2 cells. Oxygen in the first medium 26 is supplied to the cells via the membrane 22b.
  • the lid member 24 is detachably attached to the container body 21. This prevents the cell culture insert 22 from falling off from the container body 21.
  • An opening is formed in the lid member 24, and the upper surface of the lid member 23 is exposed from the opening.
  • the electrodes 25a and 25b are inserted into the lid member 23. One end of the electrode 25a and one end of the electrode 25b are electrically connected to the second medium 27. The other end of the electrode 25a and the other end of the electrode 25b are exposed from the lid member 23.
  • the cell culture container 20 is detachably attached to the base 10. More specifically, the cell culture container 20 is attached to the base 10 by arranging the container body 21 in the recess 11a. By this attachment, the electrode 21ba and the electrode 21bb are electrically connected to the projecting electrode 12b and the projecting electrode 12c, respectively.
  • the ball 14 comes into contact with the recess 21ca.
  • the spring 13 generates an urging force toward the side wall 21c via the ball 14.
  • the misalignment of the cell culture container 20 (container body 21) in the recess 11a is suppressed.
  • FIG. 4 is a perspective view of the rack 40 attached to the base 10. In FIG. 4, the tube 50a and the tube 50b are not shown. As shown in FIG. 4, the rack 40 is detachably attached to the base 10. More specifically, the rack 40 has a support column 41. The rack 40 is attached to the base 10 by inserting the support column 41 into the hole 11b.
  • the rack 40 is made of a magnetic material (soft magnetic material).
  • the second medium 27 is stored in the medium container 30a.
  • One end of the tube 50a is inserted into the lid member 23. As a result, the tube 50a and the inside of the tubular portion 22a are connected. The other end of the tube 50a is connected to the medium container 30a.
  • One end of the tube 50b is inserted into the lid member 23. As a result, the tube 50b and the inside of the tubular portion 22a are connected.
  • a pump 60 is attached to the tube 50a.
  • the pump 60 sends the second medium 27 stored in the medium container 30a via the tube 50a into the inside of the tubular portion 22a.
  • a pump 60 is attached to the tube 50b.
  • the pump 60 sends the second medium 27 stored in the tubular portion 22a to the medium container 30b via the tube 50b. That is, by operating the pump 60, the second medium 27 stored inside the tubular portion 22a is replaced.
  • the supply of the second medium 27 from the medium container 30a to the cell culture container 20 and the recovery of the second medium 27 from the cell culture container 20 to the medium container 30b are performed by one pump 60. It is possible to reduce the difference between the amount of medium supplied and the amount of medium recovered due to individual differences.
  • the pump 60 is a pump capable of delivering the above liquid without coming into contact with the second medium 27.
  • the pump 60 is, for example, a tube pump.
  • the pump 60 is not limited to this.
  • the pump 60 may be, for example, a syringe pump.
  • the pump 60 has a magnet 61. Since the rack 40 is made of a magnetic material, the pump 60 can be attached to the rack 40 by a magnet 61 (see FIG. 4).
  • the tube 50a is removable from the lid member 23 and the medium container 30a.
  • the tube 50b is removable from the lid member 23 and the medium container 30b.
  • the pump 60 is removable from the tube 50a.
  • the tube 50a connected to each of the plurality of cell culture vessels 20 is preferably connected to one pump 60.
  • the supply / recovery of the second medium 27 for one of the plurality of cell culture containers 20 (hereinafter referred to as the cell culture container 20A) and the plurality of cell culture containers 20 are used. Since the supply / recovery of the second medium 27 to the other one (hereinafter referred to as cell culture container 20B) is performed by one pump 60, the cell culture container 20A and the cell culture container 20B are used. , The same flow control can be performed.
  • the cell culture vessel 20A and the cell culture vessel 20B may have the same culture conditions other than the flow rate (for example, the seeding amount of cells, the type of fungus, etc.). However, the culture conditions other than the flow rate may differ between the cell culture container 20A and the cell culture container 20B.
  • the other one of the plurality of bases 10 is referred to as a base 10B.
  • the rack 40 attached to the base 10A is referred to as a rack 40A.
  • the rack 40 attached to the base 10B is referred to as a rack 40B.
  • the pump 60 attached to the rack 40A is referred to as a pump 60A.
  • the pump 60 attached to the rack 40B is referred to as a pump 60B.
  • the flow rate control for the pump 60A may be different from the flow rate control for the pump B.
  • the cell culture container 20 on the base 10A and the cell culture container 20 on the base 10B may have different culture conditions (for example, cell seeding amount, fungal type, etc.) other than the flow rate.
  • the cell culture container 20 on the base 10A and the cell culture container 20 on the base 10B may have the same culture conditions other than the flow rate (for example, the seeding amount of cells, the type of fungus, etc.).
  • One end of the lead wire 70a and one end of the lead wire 70b are electrically connected to the wiring board 12 (wiring 12a) through the hole 11c.
  • One end of the lead wire 70a and one end of the lead wire 70b are preferably removable from the wiring board 12.
  • the other end of the lead wire 70a and the other end of the lead wire 70b are detachably and electrically connected to the electrode 25a and the electrode 25b by, for example, an IC clip.
  • the controller 80 controls the pump 60. More specifically, the controller 80 has a built-in microcontroller. This microcontroller generates a control signal according to the input contents from the operation buttons and the like of the controller 80, and transmits the control signal to the pump 60 via wiring (not shown). As a result, the pump 60 is controlled.
  • the transdermal electrical resistance measuring device 90 is connected to the wiring board 12 via a wiring (not shown), and the electrode 21ba and the electrode 21bb are connected to the wiring board 12, the lead wire 70a, and the lead wire 70b. And the electric resistance value between the electrode 25a and the electrode 25b is measured. This measurement is performed, for example, by the four-terminal method.
  • a plurality of signals are output from the wiring board 12. These plurality of outputs are input to one distributor.
  • the distributor selects one of these plurality of outputs in time division and inputs it to the transdermal electrical resistance measuring device 90. This eliminates the need to prepare a plurality of transdermal electrical resistance measuring devices 90.
  • the electrical resistance value between the electrode 21ba and the electrode 21bb and the electrode 25a and the electrode 25b varies depending on whether the cells cultured on the second main surface 22bb form a tight junction or not. Therefore, by measuring the above-mentioned electric resistance value, it is possible to determine whether or not the cells cultured on the second main surface 22bb form a tight junction.
  • the cell culture system 100 may further have an oxygen sensor (not shown).
  • the oxygen sensor is arranged on the path of the tube 50b, and is configured to be able to detect the dissolved oxygen concentration of the second medium 27 flowing through the tube 50b. Thereby, the cell culture system 100 can monitor the growth state of bacteria at the time of co-culture.
  • FIG. 5 is a perspective view of the chamber device 200.
  • the chamber device 200 has an airlock 210 and an anaerobic chamber 220.
  • the airlock 210 and the outside of the chamber device 200 are separated from each other by an external door 230.
  • the airlock 210 and the anaerobic chamber 220 are separated by an internal door 240.
  • An anaerobic environment (environment with a low oxygen concentration) is maintained in the anaerobic chamber 220.
  • the anaerobic chamber 220 has a front panel 221.
  • An arm port 222 is formed on the front panel 221.
  • the arm port 222 penetrates the front panel 221 and communicates with the internal space of the anaerobic chamber 220.
  • Various operations can be performed in the anaerobic chamber 220 by inserting a hand into a sleeve (not shown) or a glove (not shown) attached to the arm port 222.
  • the arm port 222 is closed by the arm port door 223.
  • the external door 230 is opened, the object is placed in the airlock 210, and the external door 230 is closed.
  • the inside of the airlock 210 is anaerobic.
  • the internal door 240 is opened to move the object in the airlock 210 into the anaerobic chamber 220.
  • the reverse operation of the above is performed.
  • the base 10, the cell culture container 20, the medium container 30a and the medium container 30b, the rack 40, the tube 50a and the tube 50b, the pump 60, the lead wire 70a and the lead wire 70b, the controller 80, and the transdermal electrical resistance measuring device 90 are , Arranged in the anaerobic chamber 220.
  • the controller 80 and the transdermal electrical resistance measuring device 90 are permanently installed in the anaerobic chamber 220.
  • the base 10, the cell culture container 20, the medium container 30a and the medium container 30b, the rack 40, the tube 50a and the tube 50b, the pump 60, and the lead wire 70a and the lead wire 70b can be taken out from the anaerobic chamber 220. ing.
  • the cell culture system 100 Since the cell culture system 100 has a plurality of cell culture containers 20 independent of each other, it is possible to perform comparative analysis for each cell culture container 20.
  • a plurality of independent cell culture containers 20 are detachably attached to one base 10. Therefore, according to the cell culture system 100, since the plurality of independent cell culture containers 20 can be carried together with the base 10, the plurality of independent cell culture containers 20 can be easily taken out from the anaerobic chamber 220.
  • the cell culture system 100 has a medium container 30a and a medium container 30b, a tube 50a and a tube 50b, and a pump 60. Therefore, according to the cell culture system 100, cells and bacteria can be co-cultured while exchanging the second medium 27 stored inside the tubular portion 22a.
  • the rack 40 supporting the plurality of medium containers 30a and the medium containers 30b can be detachably attached to the base 10. Further, in the cell culture system 100, the pump 60 can be attached to the rack 40 by the magnet 61. Therefore, according to the cell culture system 100, the base 10, the cell culture container 20, the medium container 30a and the medium container 30b, the rack 40, the tube 50a and the tube 50b, and the pump 60 can be integrated and taken out from the anaerobic chamber 220. can.
  • the container body 21, cell culture insert 22, medium container 30a and medium container 30b, tube 50a and tube 50b come into contact with the medium. Therefore, it is preferable that these parts are co-cultured using the cell culture system 100, then discarded and replaced with new parts. However, if these parts cannot be removed, these parts must also be sterilized by an autoclave or the like and then reused, which reduces the experimental efficiency.
  • the cell culture insert 22 can be removed from the container body 21, and the lid member 23 can be removed from the cell culture insert 22.
  • the tube 50a can be removed from the lid member 23 and the medium container 30a, and the tube 50b can be removed from the lid member 23 and the medium container 30b.
  • the pump 60 can be removed from the tube 50a.
  • the cell culture system 100 it is possible to separate the parts to be reused after sterilization and the parts to be discarded, so that the efficiency of the sterilization treatment can be improved and the experimental efficiency can be improved. be able to.
  • the spring 13 since the spring 13 generates an urging force toward the side wall 21c via the ball 14, the misalignment of the cell culture container 20 in the recess 11a is suppressed. As a result, stable co-culture is possible even when the cell culture container 20 is liable to wobble by using a lightweight material (resin material or the like) for the container body 21.
  • the cell culture system 100 since the electrical resistance value between the electrode 21ba and the electrode 21bb and the electrode 25a and the electrode 25b is measured by the transdermal electrical resistance measuring device 90, the cell culture system 100 is cultured on the second main surface 22bb. Co-culture can be promoted while monitoring the state of the cells.
  • 10,10A, 10B base 11 body, 11a recess, 11b, 11c hole, 12 wiring board, 12a wiring, 12b, 12c protruding electrode, 13 spring, 14 balls, 20, 20A, 20B cell culture container, 21 container body , 21a upper wall, 21aa opening, 21b bottom wall, 21ba electrode, 21bb electrode, 21c side wall, 21ca recess, 22 cell culture insert, 22a tubular part, 22b membrane, 22ba first main surface, 22bb second main surface, 23 , 24 lid member, 25a, 25b electrode, 26 1st medium, 27 2nd medium, 30a, 30b medium container, 40 rack, 40A, 40B rack, 41 support, 50a, 50b tube, 60, 60A, 60B pump, 61 Magnet, 70a, 70b lead wire, 80 controller, 90 percutaneous electrical resistance measuring device, 100 cell culture system, 200 chamber device, 210 air lock, 220 anaerobic chamber, 221 front panel, 222 arm port, 223 arm port door, 230

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

細胞培養システムは、第1ポンプと、第1細胞培養容器及び第2細胞培養容器とを備えている。第1細胞培養容器は、第1培地循環流路を有している。第2細胞培養容器は、第1培地循環流路から独立している第2培地循環流路を有している。第1培地循環流路及び第2培地循環流路は、第1ポンプに流体接続されている。

Description

細胞培養システム
 本発明は、細胞培養システムに関する。
 特許文献1(国際公開第2018/079793号)には、腸管上皮細胞が多孔質膜上に播種された細胞培養容器を嫌気チャンバ内に配置し、当該腸管上皮細胞と培地中に含まれる細菌とを共培養するシステムが開示されている。
国際公開第2018/079793号
 しかしながら、従来技術では、様々な条件で細胞培養を行い、その結果として細胞培養容器ごとに細胞状態や培地成分の比較分析を行うことに適したシステムの設計について、十分に検討されていない。
 本発明は、細胞培養容器ごとの比較分析に適した細胞培養システムを提供する。
 本発明の細胞培養システムは、第1ポンプと、第1細胞培養容器及び第2細胞培養容器とを備えている。第1細胞培養容器は、第1培地循環流路を有している。第2細胞培養容器は、第1培地循環流路から独立している第2培地循環流路を有している。第1培地循環流路及び第2培地循環流路は、第1ポンプに流体接続されている。
 本発明の細胞培養システムによると、細胞培養容器ごとの比較分析を行うことが可能である。
細胞培養システム100の斜視図である。 基台10の断面図である。 細胞培養容器20の断面図である。 基台10に取り付けられた状態のラック40の斜視図である。 チャンバ装置200の斜視図である。
 本発明の実施形態の詳細を、図面を参照しながら説明する。以下の図面においては、同一又は相当する部分に同一の参照符号を付し、重複する説明は繰り返さない。
 (実施形態に係る細胞培養システムの構成)
 以下に、実施形態に係る細胞培養システム(以下「細胞培養システム100」とする)の構成を説明する。
 図1は、細胞培養システム100の斜視図である。図1に示されるように、細胞培養システム100は、基台10と、独立した複数の細胞培養容器20と、複数の培地容器30a及び培地容器30bと、ラック40と、複数のチューブ50a及びチューブ50bと、ポンプ60と、複数のリード線70a(図示せず)及びリード線70b(図示せず)とを有している。なお、図1中には、二対のチューブ50a及びチューブ50bのみが示されている。細胞培養システム100は、コントローラ80(図5参照)と、経皮上電気抵抗測定装置90(図5参照)と、チャンバ装置200(図5参照)とをさらに有している。基台10の数、ラック40及びポンプ60の数は、複数であってもよい。
 培地容器30a及び培地容器30bの数、チューブ50a及びチューブ50bの数並びにリード線70a及びリード線70bの数は、細胞培養容器20の数に等しい。図1の例では、1つの基台10あたりの細胞培養容器20の数は、3つである。但し、図1において、チューブ50a及びチューブ50bは、一対のみが示されている。
 基台10は、本体11と、配線基板12と、ばね13と、玉14とを有している。本体11は、上面と、底面とを有している。本体11の底面は、本体11の上面の反対面である。本体11には、凹部11aが形成されている。凹部11aにおいて、本体11の上面は、本体11の底面側へと窪んでいる。凹部11aは、基台10(本体11)の長手方向に沿って延在している。
 本体11には、穴11bと、穴11cとが形成されている。穴11bにおいて、本体11の上面は、本体11の底面側へと窪んでいる。穴11cは、本体11の内部空間と連通するように形成されている。
 図2は、基台10の断面図である。図2に示されるように、本体11の内部空間には、配線基板12が配置されている。図示されていないが、配線基板12は、配線12aが形成されている。配線基板12は、複数の突出電極12bと、複数の突出電極12cとを有している。突出電極12b及び突出電極12cの数は、細胞培養容器20の数に等しい。突出電極12bの一方端及び突出電極12cの一方端は、配線12aに電気的に接続されている。突出電極12bの他方端及び突出電極12cの他方端は、凹部11aの底面から突出している。
 玉14は、ばね13の先端に取り付けられている。ばね13は、先端に取り付けられた玉14が凹部11aの側面から突出するように、基台10に埋設されている。
 図3は、細胞培養容器20の断面図である。図3に示されるように、細胞培養容器20は、容器本体21と、セルカルチャーインサート22と、蓋部材23と、蓋部材24と、電極25a及び電極25bとを有している。
 容器本体21の内部には、第1培地26が貯留されている。容器本体21は、上壁21aと、底壁21bと、側壁21cとを有している。容器本体21は、樹脂材料により形成されていることが好ましい。
 上壁21aには、開口21aaが形成されている。開口21aaは、上壁21aを厚さ方向に沿って貫通している。なお、上壁21aは、底壁21b及び側壁21cと別体に形成されていてもよい。
 底壁21bは、上壁21aと間隔を空けて対向している。底壁21bには、電極21ba及び電極21bbが埋設されている。電極21ba及び電極21bbは、第1培地26に電気的に接続されている。電極21ba及び電極21bbは、底壁21bの外面から露出されている。電極21ba及び電極21bbは、容器本体21が凹部11a内に配置された際に、突出電極12b及び突出電極12cにそれぞれ電気的に接続される。
 側壁21cは、上壁21a及び底壁21bに連なっている。側壁21cの外面には、凹部21caが形成されている。凹部21caは、容器本体21が凹部11a内に配置された際に玉14と対向する位置に形成されている。
 セルカルチャーインサート22は、筒状部22aと、酸素透過性のメンブレン22bとを有している。筒状部22aの下端側は、メンブレン22bにより閉塞されている。筒状部22aの上端側は、蓋部材23により閉塞されている。蓋部材23は、筒状部22aから取り外し可能である。
 筒状部22aの内部には、第2培地27が貯留されている。第2培地27の溶存酸素濃度は、第1培地26の溶存酸素濃度よりも低い。すなわち、第1培地26は好気培地であり、第2培地27は嫌気培地である。第2培地27は、例えば嫌気性細菌を含んでいる。
 筒状部22aは、その下端側が容器本体21の内部にあるように、開口21aaに挿入されている。これにより、セルカルチャーインサート22は、容器本体21に取り付けられている。セルカルチャーインサート22は、容器本体21から取り外し可能である。
 メンブレン22bは、例えば、ポリカーボネート製のトラックエッチ膜である。メンブレン22bは、第1主面22baと、第2主面22bbとを有している。第1主面22baは、容器本体21の内部側を向いている。第2主面22bbは、筒状部22aの内部側を向いている。第2主面22bbは、第1主面22baの反対面である。
 第2主面22bb上において、細胞が培養される。この細胞は、例えば第2主面22bb上においてタイトジャンクション(密着結合)を形成する腸管上皮細胞である。この細胞の具体例としては、Caco-2細胞が挙げられる。この細胞には、メンブレン22bを介して第1培地26中の酸素が供給される。
 蓋部材24は、容器本体21に着脱可能に取り付けられている。これにより、セルカルチャーインサート22が容器本体21から脱落することが防止されている。なお、蓋部材24には開口が形成されており、当該開口から蓋部材23の上面が露出している。
 電極25a及び電極25bは、蓋部材23に挿入されている。電極25aの一方端及び電極25bの一方端は、第2培地27に電気的に接続されている。電極25aの他方端及び電極25bの他方端は、蓋部材23から露出している。
 細胞培養容器20は、着脱可能に基台10に取り付けられる。より具体的には、細胞培養容器20は、容器本体21を凹部11a内に配置することにより、基台10に取り付けられる。この取り付けにより、電極21ba及び電極21bbがそれぞれ突出電極12b及び突出電極12cと電気的に接続される。
 細胞培養容器20が基台10に取り付けられた状態において、玉14が凹部21caに接触する。ばね13は、玉14を介して側壁21cに向かって付勢力を発生させている。これにより、細胞培養容器20(容器本体21)の凹部11a内での位置ずれが抑制されている。
 培地容器30a及び培地容器30bは、ラック40に支持されている。図4は、基台10に取り付けられた状態のラック40の斜視図である。図4において、チューブ50a及びチューブ50bの図示は省略されている。図4に示されるように、ラック40は、基台10に着脱可能に取り付けられる。より具体的には、ラック40は、支柱41を有している。ラック40は、支柱41が穴11bに挿入されることにより、基台10に取り付けられる。ラック40は、磁性材料(軟磁性材料)により形成されている。
 培地容器30aには、第2培地27が貯留されている。チューブ50aの一方端は、蓋部材23に挿入されている。これにより、チューブ50aと筒状部22aの内部とが接続されている。チューブ50aの他方端は、培地容器30aに接続されている。チューブ50bの一方端は、蓋部材23に挿入されている。これにより、チューブ50bと筒状部22aの内部とが接続されている。
 チューブ50aには、ポンプ60が取り付けられている。ポンプ60は、チューブ50aを介して培地容器30aに貯留されている第2培地27を筒状部22aの内部へと送液する。チューブ50bには、ポンプ60が取り付けられている。ポンプ60は、チューブ50bを介して筒状部22aに貯留されている第2培地27を培地容器30bへと送液する。すなわち、ポンプ60を動作させることにより、筒状部22aの内部に貯留されている第2培地27が交換される。細胞培養システム100では、培地容器30aから細胞培養容器20への第2培地27の供給及び細胞培養容器20から培地容器30bへの第2培地27の回収が1つのポンプ60により行われるため、ポンプの個体差に起因した培地供給量と培地回収量との間のずれを低減できる。
 ポンプ60は、第2培地27と接触することなく上記の送液を行うことができるポンプである。ポンプ60は、例えば、チューブポンプである。但し、ポンプ60は、これに限られるものではない。ポンプ60は、例えばシリンジポンプであってもよい。
 ポンプ60は、磁石61を有している。ラック40は磁性材料により形成されているため、ポンプ60は、磁石61により、ラック40に取り付けることが可能である(図4参照)。
 チューブ50aは、蓋部材23及び培地容器30aから取り外し可能である。チューブ50bは、蓋部材23及び培地容器30bから取り外し可能である。ポンプ60は、チューブ50aから取り外し可能である。
 なお、複数の細胞培養容器20の各々に接続されているチューブ50aは、1つのポンプ60に接続されていることが好ましい。これにより、細胞培養システム100では、複数の細胞培養容器20のうちの1つ(以下においては、細胞培養容器20Aとする)に対する第2培地27の供給・回収及び複数の細胞培養容器20のうちの他の1つ(以下においては、細胞培養容器20Bとする)に対する第2培地27の供給・回収を1つのポンプ60で行われることになるため、細胞培養容器20A及び細胞培養容器20Bに対し、同様の流量制御を行うことができる。細胞培養容器20Aと細胞培養容器20Bとでは、流量以外の培養条件(例えば、細胞の播種量、菌の種類等)が同一であってもよい。但し、細胞培養容器20Aと細胞培養容器20Bとで、流量以外の培養条件が異なっていてもよい。
 複数の基台10のうちの1つを、基台10Aとする。複数の基台10のうちの他の1つを、基台10Bとする。基台10Aに取り付けられているラック40を、ラック40Aとする。基台10Bに取り付けられているラック40を、ラック40Bとする。ラック40Aに取り付けられているポンプ60を、ポンプ60Aとする。ラック40Bに取り付けられているポンプ60を、ポンプ60Bとする。ポンプ60Aに対する流量制御は、ポンプBに対する流量制御と異なっていてもよい。基台10A上の細胞培養容器20と基台10B上の細胞培養容器20とでは、流量以外の培養条件(例えば、細胞の播種量、菌の種類等)が、異なっていてもよい。但し、基台10A上の細胞培養容器20と基台10B上の細胞培養容器20とで、流量以外の培養条件(例えば、細胞の播種量、菌の種類等)が同一であってもよい。
 リード線70aの一方端及びリード線70bの一方端は、穴11cを通って配線基板12(配線12a)に電気的に接続されている。リード線70aの一方端及びリード線70bの一方端は、好ましくは、配線基板12から取り外し可能になっている。リード線70aの他方端及びリード線70bの他方端は、例えばICクリップにより、電極25a及び電極25bに着脱可能に電気的に接続されている。
 コントローラ80は、ポンプ60の制御を行う。より具体的には、コントローラ80には、マイクロコントローラが内蔵されている。このマイクロコントローラは、コントローラ80の操作ボタン等からの入力内容に応じた制御信号を生成し、当該制御信号をポンプ60に配線(図示せず)を介して送信する。これにより、ポンプ60の制御が行われる。
 経皮上電気抵抗測定装置90は、配線(図示せず)を介して配線基板12に接続されており、当該配線、配線基板12、リード線70a及びリード線70bを介して電極21ba及び電極21bbと電極25a及び電極25bとの間の電気抵抗値を測定する。この測定は、例えば四端子法により行われる。
 なお、電極21ba、電極21bb、電極25a及び電極25bは、それぞれ複数存在しているため、配線基板12からは複数の信号が出力されることになる。これら複数の出力は、1つの分配器に入力される。この分配器は、これら複数の出力のうちの1つを時分割で選択して経皮上電気抵抗測定装置90に入力する。これにより、経皮上電気抵抗測定装置90を複数準備する必要がなくなる。
 第2主面22bb上に培養されている細胞がタイトジャンクションを形成している場合とそうでない場合とで電極21ba及び電極21bbと電極25a及び電極25bとの間の電気抵抗値が変動する。そのため、上記の電気抵抗値の測定により、第2主面22bb上に培養されている細胞がタイトジャンクションを形成しているか否かの判定が可能である。
 細胞培養システム100は、酸素センサ(図示せず)をさらに有していてもよい。酸素センサは、チューブ50bの経路上に配置されており、チューブ50bを流れる第2培地27の溶存酸素濃度を検知可能に構成されている。これにより、細胞培養システム100は、共培養時の細菌の増殖状況をモニタリングすることができる。
 図5は、チャンバ装置200の斜視図である。図5に示されるように、チャンバ装置200は、エアロック210と、嫌気チャンバ220とを有している。エアロック210とチャンバ装置200の外部とは、外部ドア230により仕切られている。エアロック210と嫌気チャンバ220とは、内部ドア240により仕切られている。嫌気チャンバ220内は、嫌気的な環境(酸素濃度が低い環境)が保たれている。
 嫌気チャンバ220は、前面パネル221を有している。前面パネル221には、アームポート222が形成されている。アームポート222は、前面パネル221を貫通して嫌気チャンバ220の内部空間と連通している。アームポート222に取り付けられるスリーブ(図示せず)やグローブ(図示せず)に手を差し入れることにより、嫌気チャンバ220内において各種の作業を行うことができる。アームポート222は、アームポートドア223により閉塞されている。
 嫌気チャンバ220内に物を配置するためには、第1に、外部ドア230を開いてエアロック210内に当該物を配置し、外部ドア230を閉じる。第2に、エアロック210内を嫌気化する。第3に、嫌気化の完了後、内部ドア240を開き、エアロック210内にある物を嫌気チャンバ220内に移動させる。嫌気チャンバ220内から物を取り出すためには、上記と逆の動作が行われる。
 基台10、細胞培養容器20と、培地容器30a及び培地容器30b、ラック40、チューブ50a及びチューブ50b、ポンプ60、リード線70a及びリード線70b、コントローラ80並びに経皮上電気抵抗測定装置90は、嫌気チャンバ220内に配置されている。
 コントローラ80及び経皮上電気抵抗測定装置90は、嫌気チャンバ220内に常置されている。しかしながら、基台10、細胞培養容器20と、培地容器30a及び培地容器30b、ラック40、チューブ50a及びチューブ50b、ポンプ60並びにリード線70a及びリード線70bは、嫌気チャンバ220内から取り出し可能になっている。
 なお、嫌気チャンバ220から取り出された培地容器30b中の第2培地27及び容器本体21内の第1培地26を分析することにより、共培養時の代謝や吸収の動態を分析することができる。
 (実施形態に係る細胞培養システムの効果)
 以下に、細胞培養システム100の効果を説明する。
 細胞培養システム100は、互いに独立した複数の細胞培養容器20を有するため、細胞培養容器20ごとに比較分析を行うことが可能である。細胞培養システム100においては、複数の独立した細胞培養容器20が1つの基台10に着脱可能に取り付けられている。そのため、細胞培養システム100によると、複数の独立した細胞培養容器20を基台10とともに持ち運ぶことができるため、複数の独立した細胞培養容器20を嫌気チャンバ220から容易に取り出すことができる。
 細胞培養システム100は、培地容器30a及び培地容器30bと、チューブ50a及びチューブ50bと、ポンプ60とを有している。そのため、細胞培養システム100によると、筒状部22aの内部に貯留される第2培地27を交換しながら細胞及び細菌の共培養を行うことができる。
 細胞培養システム100においては、複数の培地容器30a及び培地容器30bを支持しているラック40を基台10に着脱可能に取り付けることができる。また、細胞培養システム100においては、磁石61によりポンプ60をラック40に取り付けることができる。そのため、細胞培養システム100によると、基台10、細胞培養容器20、培地容器30a及び培地容器30b、ラック40、チューブ50a及びチューブ50b並びにポンプ60を一体化させて嫌気チャンバ220内から取り出すことができる。
 容器本体21、セルカルチャーインサート22、培地容器30a及び培地容器30b、チューブ50a及びチューブ50bは、培地に接触する。そのため、これらの部品は、細胞培養システム100を用いて共培養を行った後に廃棄し、新たな部品と交換されることが好ましい。しかしながら、これらの部品の取り外しができない場合、これらの部品もオートクレーブ等の除菌処理を行った上で再利用に供さなければならないため、実験効率が落ちる。
 細胞培養システム100においては、容器本体21からセルカルチャーインサート22を取り外すととともに、蓋部材23をセルカルチャーインサート22から取り外すことが可能である。また、細胞培養システム100においては、チューブ50aを蓋部材23及び培地容器30aから取り外すとともに、チューブ50bを蓋部材23及び培地容器30bから取り外すことが可能である。さらに、細胞培養システム100においては、ポンプ60をチューブ50aから取り外すことが可能である。
 このように、細胞培養システム100によると、除菌した上で再利用する部品と廃棄する部品とを分別することができるため、除菌処理の効率化を図ることができ、ひいては実験効率を高めることができる。
 細胞培養システム100においては、ばね13が玉14を介して側壁21cに向かって付勢力を発生させているため、細胞培養容器20の凹部11a内での位置ずれが抑制されている。これにより、容器本体21に軽量な材料(樹脂材料等)を用いて細胞培養容器20にぐらつきが生じやすい場合でも、安定した共培養が可能となる。
 細胞培養システム100においては、経皮上電気抵抗測定装置90により電極21ba及び電極21bbと電極25a及び電極25bとの間の電気抵抗値を測定しているため、第2主面22bb上に培養されている細胞の状態をモニタリングしながら共培養を進めることができる。
 以上のように本発明の実施形態について説明を行ったが、上述の実施形態を様々に変形することも可能である。また、本発明の範囲は、上述の実施形態に限定されるものではない。本発明の範囲は、請求の範囲によって示され、請求の範囲と均等の意味及び範囲内での全ての変更を含むことが意図される。
 10,10A,10B 基台、11 本体、11a 凹部、11b,11c 穴、12 配線基板、12a 配線、12b,12c 突出電極、13 ばね、14 玉、20,20A,20B 細胞培養容器、21 容器本体、21a 上壁、21aa 開口、21b 底壁、21ba 電極、21bb 電極、21c 側壁、21ca 凹部、22 セルカルチャーインサート、22a 筒状部、22b メンブレン、22ba 第1主面、22bb 第2主面、23,24 蓋部材、25a,25b 電極、26 第1培地、27 第2培地、30a,30b 培地容器、40 ラック、40A,40B ラック、41 支柱、50a,50b チューブ、60,60A,60B ポンプ、61 磁石、70a,70b リード線、80 コントローラ、90 経皮上電気抵抗測定装置、100 細胞培養システム、200 チャンバ装置、210 エアロック、220 嫌気チャンバ、221 前面パネル、222 アームポート、223 アームポートドア、230 外部ドア、240 内部ドア。

Claims (13)

  1.  第1ポンプと、
     第1細胞培養容器及び第2細胞培養容器とを備え、
     前記第1細胞培養容器は、第1培地循環流路を有し、
     前記第2細胞培養容器は、前記第1培地循環流路から独立している第2培地循環流路を有し、
     前記第1培地循環流路及び前記第2培地循環流路は、前記第1ポンプに流体接続されている、細胞培養システム。
  2.  第1基台をさらに備え、
     前記第1細胞培養容器及び前記第2細胞培養容器は、前記第1基台に着脱可能に取り付けられている、請求項1に記載の細胞培養システム。
  3.  第2ポンプと、
     第3細胞培養容器及び第4細胞培養容器とをさらに備え、
     前記第3細胞培養容器は、第3培地循環流路を有し、
     前記第4細胞培養容器は、前記第3培地循環流路から独立している第4培地循環流路を有し、
     前記第3培地循環流路及び前記第4培地循環流路は、前記第2ポンプに流体接続されている、請求項1又は請求項2に記載の細胞培養システム。
  4.  第2基台をさらに備え、
     前記第3細胞培養容器及び前記第4細胞培養容器は、前記第2基台に着脱可能に取り付けられている、請求項3に記載の細胞培養システム。
  5.  前記第1培地循環流路は、培地供給容器と培地回収容器とに流体接続され、
     前記培地供給容器及び前記培地回収容器を支持するラックをさらに備え、
     前記ラックは、着脱可能に前記第1基台に取り付けられている、請求項2に記載の細胞培養システム。
  6.  前記第1細胞培養容器は、前記第1細胞培養容器内に配置され、第1培地が貯留される第1貯留部と前記第1培地よりも溶存酸素濃度が低い第2培地が貯留される第2貯留部とを仕切る酸素透過性のメンブレンを含む、請求項2に記載の細胞培養システム。
  7.  前記第1細胞培養容器は、
      容器本体と、
      筒状部を含み、底面に前記メンブレンが配置されたセルカルチャーインサートと、
      前記容器本体を封止するための蓋部材とを有し、
     前記容器本体は、開口が形成された上壁と、前記上壁と間隔を空けて対向している底壁と、前記上壁及び前記底壁に連なっている側壁とを含み、
     前記筒状部の第1端は、前記メンブレンにより閉塞されており、
     前記筒状部の第2端は、前記蓋部材により閉塞されており、
     前記筒状部は、前記筒状部の前記第1端が前記容器本体の内部に位置するように前記上壁の前記開口に挿入されており、
     前記第1培地は、前記容器本体の内部に貯留されており、
     前記第2培地は、前記筒状部の内部に貯留されている、請求項6に記載の細胞培養システム。
  8.  第1チューブ及び第2チューブと、
     培地供給容器及び培地回収容器とをさらに備え、
     前記第1チューブの第1端及び前記第2チューブの第1端は、前記第1細胞培養容器における前記蓋部材に挿入されて前記筒状部の前記内部に接続されており、
     前記第1チューブの第2端及び前記第2チューブの第2端は、前記培地供給容器及び前記培地回収容器にそれぞれ接続されており、
     前記第1ポンプは、前記第2培地を前記培地供給容器から前記第1細胞培養容器における前記筒状部の前記内部へと前記第1チューブを介して送液するとともに前記第2培地を前記第1細胞培養容器における前記筒状部の前記内部から前記培地回収容器へと前記第2チューブを介して送液するように構成されている、請求項7に記載の細胞培養システム。
  9.  前記セルカルチャーインサートは、前記容器本体から取り外し可能であり、
     前記蓋部材は、前記セルカルチャーインサートから取り外し可能であり、
     前記第1チューブ及び前記第2チューブは、それぞれ、前記培地供給容器及び前記培地回収容器から取り外し可能であり、
     前記第1チューブ及び前記第2チューブは、それぞれ、前記第1ポンプから取り外し可能であり、
     前記第1チューブ及び前記第2チューブは、前記第1細胞培養容器の前記蓋部材から取り外し可能である、請求項8に記載の細胞培養システム。
  10.  前記培地供給容器及び前記培地回収容器を支持し、前記基台に着脱可能に取り付けられているラックをさらに備え、
     前記第1ポンプは、磁石を有しており、
     前記ラックは、磁性材料により形成されている、請求項8又は請求項9に記載の細胞培養システム。
  11.  前記第1基台には、前記第1細胞培養容器及び前記第2細胞培養容器が配置される凹部が形成されており、
     前記第1基台には、前記凹部内に配置されている前記第1細胞培養容器及び前記第2細胞培養容器の前記側壁に向かって付勢力を発生させるばねが埋設されている、請求項7~請求項10のいずれか1項に記載の細胞培養システム。
  12.  第1リード線をさらに備え、
     前記第1基台は、配線基板を有し、
     前記第1細胞培養容器は、前記底壁に埋設され、前記第1培地に電気的に接続される第1電極と、前記蓋部材を貫通して前記第2培地に電気的に接続される第2電極とを有し、
     前記第1細胞培養容器の前記第1電極は、前記第1細胞培養容器が前記第1基台に取り付けられることにより、前記配線基板に電気的に接続され、
     前記第1リード線の第1端は、前記第1細胞培養容器の前記第2電極に電気的に接続され、
     前記第1リード線の第2端は、前記配線基板に電気的に接続される、請求項7~請求項11のいずれか1項に記載の細胞培養システム。
  13.  嫌気チャンバと、
     前記第1ポンプの制御を行うコントローラと、
     前記配線基板に電気的に接続され、前記第1細胞培養容器の前記第1電極と前記第1細胞培養容器の前記第2電極との間の電気抵抗値を測定する経上皮電気抵抗測定装置とをさらに備え、
     前記コントローラ及び前記経上皮電気抵抗測定装置は、前記嫌気チャンバ内に常置されている、請求項12に記載の細胞培養システム。
PCT/JP2021/023690 2020-07-07 2021-06-23 細胞培養システム WO2022009672A1 (ja)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US18/014,876 US20230220323A1 (en) 2020-07-07 2021-06-23 Cell culture system
JP2022535004A JPWO2022009672A1 (ja) 2020-07-07 2021-06-23
EP21836774.6A EP4180510A4 (en) 2020-07-07 2021-06-23 CELL CULTURE SYSTEM
CN202180048630.4A CN115943203A (zh) 2020-07-07 2021-06-23 细胞培养系统
JP2024090602A JP2024103723A (ja) 2020-07-07 2024-06-04 細胞培養システム

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2020116946 2020-07-07
JP2020-116946 2020-07-07

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2022009672A1 true WO2022009672A1 (ja) 2022-01-13

Family

ID=79552919

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2021/023690 WO2022009672A1 (ja) 2020-07-07 2021-06-23 細胞培養システム

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20230220323A1 (ja)
EP (1) EP4180510A4 (ja)
JP (2) JPWO2022009672A1 (ja)
CN (1) CN115943203A (ja)
WO (1) WO2022009672A1 (ja)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN117887572B (zh) * 2023-12-01 2024-08-30 山东壹瑞特生物科技有限公司 一种人工肝系统细胞反应器快接结构

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010075200A (ja) * 2009-11-30 2010-04-08 Hitachi Ltd 細胞培養装置
JP2015084686A (ja) * 2013-10-29 2015-05-07 オリンパス株式会社 細胞培養用ジグおよび自動培地交換システム
WO2016006680A1 (ja) * 2014-07-10 2016-01-14 オリンパス株式会社 細胞培養システム
WO2018079793A1 (ja) 2016-10-28 2018-05-03 国立大学法人京都大学 嫌気性細菌などの細菌と上皮細胞との共培養装置及び共培養方法
JP2018512853A (ja) * 2015-04-22 2018-05-24 バークレー ライツ,インコーポレイテッド マイクロ流体デバイス用の培養ステーション
JP2019004723A (ja) * 2017-06-21 2019-01-17 株式会社日立製作所 連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置
WO2019191685A1 (en) * 2018-03-30 2019-10-03 Arizona Board Of Regents On Behalf Of The University Of Arizona Workstation for automated control of an in vitro system
WO2019222333A1 (en) * 2018-05-15 2019-11-21 The University Of North Carolina At Chapel Hill Devices, systems and apparatuses for generating self-sustaining hypoxic conditions and gaseous and non-gaseous chemical gradients for in vitro cell culture

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5892216B1 (ja) * 2014-09-17 2016-03-23 東洋製罐グループホールディングス株式会社 細胞培養システムにおける送液方法、及び細胞培養システム
US11958050B2 (en) * 2018-05-24 2024-04-16 John Collins Fluidic devices for closed cell culture applications under current good manufacturing practice

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010075200A (ja) * 2009-11-30 2010-04-08 Hitachi Ltd 細胞培養装置
JP2015084686A (ja) * 2013-10-29 2015-05-07 オリンパス株式会社 細胞培養用ジグおよび自動培地交換システム
WO2016006680A1 (ja) * 2014-07-10 2016-01-14 オリンパス株式会社 細胞培養システム
JP2018512853A (ja) * 2015-04-22 2018-05-24 バークレー ライツ,インコーポレイテッド マイクロ流体デバイス用の培養ステーション
WO2018079793A1 (ja) 2016-10-28 2018-05-03 国立大学法人京都大学 嫌気性細菌などの細菌と上皮細胞との共培養装置及び共培養方法
JP2019004723A (ja) * 2017-06-21 2019-01-17 株式会社日立製作所 連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置
WO2019191685A1 (en) * 2018-03-30 2019-10-03 Arizona Board Of Regents On Behalf Of The University Of Arizona Workstation for automated control of an in vitro system
WO2019222333A1 (en) * 2018-05-15 2019-11-21 The University Of North Carolina At Chapel Hill Devices, systems and apparatuses for generating self-sustaining hypoxic conditions and gaseous and non-gaseous chemical gradients for in vitro cell culture

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP4180510A4

Also Published As

Publication number Publication date
JPWO2022009672A1 (ja) 2022-01-13
US20230220323A1 (en) 2023-07-13
CN115943203A (zh) 2023-04-07
EP4180510A1 (en) 2023-05-17
EP4180510A4 (en) 2024-08-21
JP2024103723A (ja) 2024-08-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2024103723A (ja) 細胞培養システム
DeBusschere et al. Portable cell-based biosensor system using integrated CMOS cell-cartridges
JP4858870B2 (ja) 培養細胞の電気シグナル計測デバイスおよび該デバイスを用いる電気シグナル計測方法
CN112203765B (zh) 用于进行电测量的设备
US20020108869A1 (en) Device and technique for multiple channel patch clamp recordings
JP5948355B2 (ja) 電気生理学的分析のためのハンドヘルド装置
US4567748A (en) On-line linear tonometer
US6541243B1 (en) Perfusion chamber for electrophysiological testing of oocytes
CN110257240A (zh) 核酸提取、扩增及检测一体试剂卡
US9766205B2 (en) Apparatus for the measurement of a concentration of a charged species in a sample
CN109313156B (zh) 用于分析体液样本的测试系统
JP4441007B2 (ja) 拡散可能な化学物質のためのモニタ
US20210079337A1 (en) Workstation for Automated Control of an In Vitro System
CN106361351A (zh) 生物体信息测定装置以及药液供给装置
CN110987570A (zh) 用于总有机碳测试的前处理系统
JPWO2022009672A5 (ja)
CN202710509U (zh) 生物反应容器
US10365264B2 (en) Apparatus for measuring contractile ability of myocardial tissue
JP2022144918A (ja) 培養デバイス、培養体製造方法、及び薬剤評価方法
EP4245839A1 (en) Method for monitoring at least one substance produced or consumed by a living entity
EP4434624A1 (en) Detection chip assembly tool, liquid injection apparatus and method, electronic device, and medium
Yao Development and Characterization of High-Throughput Screening Technologies for Studying the Effect of Varying Oxygen Environments on Cultured Cells
KR102651182B1 (ko) 인큐베이터
WO2024062114A1 (en) Cell culture electrification
WO2011045910A1 (ja) 測定デバイス

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 21836774

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2022535004

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2021836774

Country of ref document: EP

Effective date: 20230207